Asma Bırak Yöntemiyle Fare Embriyonik Kök (MES) Hücreler in vitro Farklılaşma

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Bu video asılı bırak yöntemini kullanarak embriyoid organları fare embriyonik kök hücreleri in vitro farklılaşması nasıl yürütüleceğini gösteriyor.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Wang, X., Yang, P. In vitro Differentiation of Mouse Embryonic Stem (mES) Cells Using the Hanging Drop Method. J. Vis. Exp. (17), e825, doi:10.3791/825 (2008).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Kök hücreler birçok farklı hücre türleri geliştirmek için olağanüstü bir potansiyele sahiptir. Bir kök hücre böler, her yeni hücre, ya da bir kök hücre kalır veya daha uzmanlaşmış bir fonksiyonu ile başka bir tür hücre haline potansiyele sahiptir, bilim Bu umut verici bir hastalığın tedavisi için hücre tabanlı tedavi olasılığını araştırmak için bilim adamları lider. Antidifferentiation faktörleri olmadan süspansiyon kültür, embriyonik kök hücreler kendiliğinden farklılaştırmak ve üç boyutlu çok hücreli bir araya toplanırlar. Bu hücre agrega embriyoid organları (EB) olarak adlandırılır. Açılan kültür Asma yaygın olarak kullanılan bir EB oluşumu indüksiyon yöntemi. Asılı damla yuvarlak alt MES hücreleri oluşturan EBS için iyi bir ortam sağlayabilir ES hücrelerinin toplama sağlar. Petri kabı kapağı bir damla gibi asılı ilk hücre süspansiyon hücrelerinin sayısını değiştirerek asılı açılan aggregatied ES hücrelerinin sayısı kontrol altına alınabilir. Bu yöntemi kullanarak tekrarlanabilir ES hücrelerinin belli sayıda homojen EBS oluşabilir.

Protocol

  1. T75 şişesi önce 37 ° C,% 5 CO 2 doku kültürü inkübatör gecede bir gün içinde% 0,1 jelatin solüsyonu ve inkübe plaka kullanarak jelatinleştirmeye.
  2. Inkübe gelen MES hücreler dışarı atın, orta aspirat, PBS ile ES hücre kültürü durulama, çanak alt kat (2 ml/100mm plaka)% 0.05 tripsin çözüm ekleyin.
  3. Tabak kapatın hücrelerinin dökülmesi kadar, 37 ° C'de yaklaşık 1 dakika boyunca inkübe edin.
  4. Yavaşça (pipetlemeyin yukarı ve aşağı) bir takılı Pasteur pipeti ile 4-6 kez ES hücreleri dağıtmak için tripsinize hücreleri, çiğnemek. Prewarmed (37 ° C), orta (MES) içeren 15 ml konik santrifüj tüpü içine dağılmış ES hücrelerinin transferi.
  5. Santrifüj hücreleri toplayın. Süpernatantı aspire MES orta 10 ml ekleyin ve bir tek hücre süspansiyon formu için yukarı ve aşağı pipetle.
  6. 37% 0.1 jelatin ve inkübe ile kaplı ön T75 balona hücre süspansiyonu Transfer ° C, bir saat süreyle% 5 CO2

    * Bir saat sonra, fibroblastlar plakasına bağlı ama kök hücreler orta kalır. Kök hücreleri toplamak için orta Pipet.

  7. 1000 rpm'de 5 dakika boyunca hücreleri Spin ve MES orta aspire. Sonra başka bir 10 ml MES farklılaşma orta ekleyin ve hücrelerin ince bir süspansiyon var görünene kadar tekrarlayan pipetleme hücreleri tekrar süspansiyon haline getirin.
  8. Kök hücre süspansiyonu steril bir havza 20ul (20ul/drop) başına 400 ila 500 hücreden bir konsantrasyon sulandırmak için hemasitometre kullanımı farklılaşması orta hücreleri saymak.
  9. Kapağı kaldırın, dikkatlice ters ve 10 ml PBS içeren yemeğin üstüne koyun. Bir çok kanallı pipet kullanarak, doku kültürü çanak kapağı yukarı döndü iç yüzeyine 20ul damla satır olun.
  10. 2 gün boyunca dikkatlice inkübatör tabak koyun. İki gün sonra, dikkatle plaka kapağın üzerine açmak 180 ul taze farklılaşması orta aspirat ve 96 kuyu, ultra eki plaka kuyunun içine birkaç damla koymak. Sonra bırak pipet ve transfer damla, bire-bir, 96 plaka ile pikap. Plakalar 3 gün boyunca rahatsız kuvöz içine yerleştirin.
  11. Coat her iyi jelatin 0.1% 300ul ile 48 iyi doku kültürü plakası. Jelatin ekledikten sonra, 37 gecede plaka inkübe ° C bir gün öncesinde önce Ebs aktarmak.
  12. Ertesi gün, 48 plaka jelatin aspirat. Sonra her bir kuyunun 300 ul farklılaşması orta ekleyin. 96 kuyucuğu EBS iyi 48 jelatin kaplı plakaları tek-tek aktarın. Ertesi gün orta değiştirin ve sonra hücreleri korumak için her gün orta değiştirmek.
  13. Spontan cardiaomyocyte kasılmaları 7 gün içinde belirgin olmalıdır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

: Bir damla sıvı hacmi, yüzey gerilimi kapağı nedeniyle asılı damla korumak için daha az 50ul sınırlı ve damla asılı orta değiştirmek imkansız asılı damla yöntemi dezavantajları aşağıdaki gibidir. Mikroskobu ile doğrudan damla EBS oluşturan Gözlem ekimi sırasında da çok zordur. Dahası, asılı damla yöntemi iki aşamadan oluşur, bu nedenle, asılı damla yöntemi adım bir dizi sorun olabilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
DMEM Reagent GIBCO, by Life Technologies 11965-092
Fetal Bovine Serum(FBS) Reagent Hyclone SH30070.03
L-Glutamine Reagent GIBCO, by Life Technologies 25030
Non-Essential Amino Acids Reagent GIBCO, by Life Technologies 11140-050
Penicllin / Streptomycin Reagent GIBCO, by Life Technologies 15140-122
Sodium Pyruvate Reagent GIBCO, by Life Technologies 11360-70
β-mercapt–thanol Reagent Chemicon International ES-007-E
leukemia inhibitory factor(LIF) Reagent Chemicon International LIF2005
96-well ultralow attachment plate Tool Corning 3474

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wobus, A. M., Wallukat, G., Hescheler, J. Pluripotent mouse embryonic stem cells are able to differentiate into cardiomyocytes expressing chronotropic responses to adrenergic and cholinergic agents and Ca2+ channel blockers. Differentiation. 48, 173-182 (1991).
  2. Metzger, J. M., Lin, W. I., Samuelson, L. C. Transition in cardiac contractile sensitivity to calcium during the in vitro differentiation of mouse embryonic stem cells. J Cell Biol. 126, (1994).

Comments

7 Comments

  1. Dear Doctor Xiang Wang,  your technique appear useful and very interesting. I' m studying mES and I want to differentiate them into simple embryoid bodies, but not into predefinite cells. So I have a question for you. The differentiation medium could be a stem cell medium just without LIF? Or do I need to add some elements to my medium to produce embryoid bodies? Thank you very much and best regards,  Barbara Tondelli.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 8, 2008 - 7:13 AM
  2. hi, i work together w/ xiang. he returned to china so i asked him to respond to you but in case he dŒsn't, let me answer: 1. yes. embryoid bodies can be made w/ the stem cell medium w/o lif. you need to create a voumetric clusters. this could be done using the hanging drop method or plate in cluster of cells. we have had best exerience making hanging drop. hope this helps.   phil

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 8, 2008 - 12:09 PM
  3. Hello I want to know the function and concentration here of sodium pyvurate. Can the heartbeat appear in a differentiation medium without sodium pyvurate? And if the plates are taken out sometimes during the suspension culture period, dŒs it matter so much? I've been trying but no cardiocytes seemed to appear, and I cannot find the key to this. Thank you a lot!  

    Reply
    Posted by: Anonymous
    November 7, 2008 - 3:02 AM
  4. Dear Huijun Zhu,   I use 1mM Sodium pyvurate for mESC culturing. Sodium pyvurate works mostly  as  an additional source  energy. It also have protective effects against hydrogen peroxide.  According to my experience,  Sodium pyruvate is not necessary for differentiation. It 's not good for moving  out of the incubate when the EBs are in hanging drop situation. It should be fine to take out the plate carefully and take a simple look once they were in ultralow attachment plates. Hope this helps, Good luck!   Xiang Wang  
     

    Reply
    Posted by: Anonymous
    November 10, 2008 - 8:00 AM
  5. Thank you Xiang Wang! The cardiaomyocyte contractions became obvious after 9days. But the contraction of a certain area became weaker and finally disappeared. Is it  normal or something gŒs wrong? And how can I purify the cardiaomyocytes? How can I increase the percent of the cardiomyocytes? Thank you a lot!

    Reply
    Posted by: Anonymous
    November 18, 2008 - 3:59 AM
  6. Dear Doctor Xiang Wang

    is necessary to add gelatin on the plate or not??

    Reply
    Posted by: Anonymous
    June 12, 2009 - 10:42 AM
  7. Dear Doctor Xiang Wang,

    is it possible to split the cardiomyocytes? Or how can i isolate them, to start my assays with them?
    Thank you very much.

    Kind regards

    Reply
    Posted by: Anonymous
    April 26, 2011 - 11:27 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics