Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

Высокая профилирования микроРНК Производительность: Оптимизированная Мультиплекс QRT-PCR на шкале Nanoliter на Fluidigm Динамический МФХБ ArrayTM

Published: August 3, 2011 doi: 10.3791/2552

Summary

Здесь мы опишем оптимизированы мультиплекс обратной транскриптазы количественный ПЦР (QRT-PCR) протокол в сочетании с микрожидкостных платформе, стоимость и время, эффективная высокопроизводительного скрининга инструмент для микроРНК (миРНК) уровни экспрессии, особенно при работе с ограниченным количеством образцов.

Abstract

Широкое участие микроРНК в критических процессов, лежащих развитие, гомеостаз тканей и болезни привели к растущие интерес среди исследовательских и фармацевтических сообществ. Для изучения микроРНК, важно, что количественная оценка уровней микроРНК, является точной и надежной. Сравнивая дикого типа малых РНК недостаточно мышиных эмбриональных стволовых клеток (мЭСК), мы обнаружили отсутствие точности и надежности в ранее опубликованные мультиплекс QRT-PCR методов. Здесь мы описываем оптимизированный метод, в том числе очистка от чрезмерного грунтовки от предыдущих этапов, прежде чем мультиплекс singleplex реального времени обнаружения, что резко повышает точность и надежность техники. Кроме того, мы объясняем, как выполнять технику на микрожидкостных чипов на nanoliter объемы значительно снижает затраты и реагента позволяет время эффективным высокой пропускной способности микроРНК выражение профилирования.

Protocol

1. РНК-Добыча: клетки, выращенные в монослоя

(Следуя протоколу производителя, используя TRIzol.)

Название реагента Компания Prod / Cat #
Решение TRIzol Invitrogen 15596-018
Изопропиловый спирт Sigma-Aldrich 1907-64
Хлороформ Sigma-Aldrich C 2432
Этанол
РНКазы свободной воды

Гомогенизация

  1. Однородный клетки непосредственно на культуру блюдо, добавляя 1 мл Trizol Решение на 10 см 2 блюдо область, вихрем Trizol вокруг и пипетку вверх и вниз, чтобы обеспечить полный охват пластины.

Разделение фаз

  1. Инкубируйте гомогенизированный образец в течение 5 минут при комнатной температуре.
  2. Перевод на помечены трубки, добавляют 0,2 мл хлороформа на 1 мл TrizolSolution и трясти трубку энергично вручную в течение 15 секунд.
  3. Инкубируйте при комнатной температуре в течение 3 минут.
  4. Центрифуга образца при 12 000 мкг в течение 15 минут при температуре +2 ° C. После центрифугирования смесь разделяется на нижней красной фазы, межфазного и бесцветной верхней водной фазы, которая содержит РНК, а должна быть 60% от общего объема Trizol решение.

РНК осадков

  1. Передача водных, РНК, содержащие фазы в свежем, помечены трубки.
  2. Осадок РНК путем добавления 0,5 мл изопропилового спирта на 1 мл Trizol решение.
  3. Инкубируйте образцы при комнатной температуре в течение 10 минут.
  4. Центрифуга при 12000 мкг в течение 10 минут при температуре +2 ° C.

РНК-мыть

  1. После центрифугирования супернатант отказаться от труб.
  2. Вымойте РНК гранул (на боковой и нижней части трубки), добавив по крайней мере 1 мл 75% этанола на 1 мл Trizol решений вихря.
  3. Центрифуга при 7500 мкг в течение 5 минут при температуре +2 ° C.

РНК Элюирование

  1. Удалите супернатант и центрифуга снова в течение 1 минуты. Удалить чрезмерной жидкости.
  2. Высушите гранул в течение 5-10 минут.
    Примечание: пересушенными РНК трудно растворить.
  3. Растворится осадок в РНКазы свободной воды с помощью пипетки раствор вверх и вниз и выдержать в течение 10 минут при 55 ° C.
  4. Мера РНК концентрации (A260/280 соотношение), используя спектрофотометр Nanodrop ™.
  5. Хранить при температуре -80 ° С до готовности к использованию.

2. РНК-Добыча: сыворотка

(Протокол После mirVana ПАРИЖ Kit производителя модифицированных Митчелл и др. 1.)

Название реагента Компания Prod / Cat # Комментарии
мир Вана ПАРИЖ Kit
2X денатурирующих решения
Кислотно-фенол: хлороформ
микроРНК промывочного раствора 1
микроРНК промывочного раствора 2 / 3
Амбион AM1556 Измененный протокол
2-меркаптоэтанол Sigma-Aldrich M7522
Этанол
DEPC очищенной воды

Химическая подготовка:

  • Добавить 375 мкл 2-меркаптоэтанола к 2X денатурирующих решения и хорошо перемешать.
  • Добавить 21 мл 100% этанола Решение микроРНК мыть 1.
  • Добавить 40 мл 100% этанола Решение микроРНК мыть 2 / 3.

Подготовка образцов:

  • Оттепель образца сыворотки на льду.

Гомогенизация

  1. Смешайте 300 мкл образца с равным объемом (300 мкл) 2X денатурирующих Решение (должна быть комнатной температуры) и вихрь.
  2. Выдержите смесь на льду в течение 5 минут.
  3. Добавить объема кислотно-фенол: хлороформ равно общий объем лизата образца плюс 2X денатурирующих Решение (600 мкл).
    Важно: не используйте водный буфер, который лежит на вершине кислотно-фенол: хлороформ.
  4. Vortex смеси в течение 60 секунд.
  5. Центрифуга при комнатной температуре в течение 15 минут при максимальной скорости (> 10 000 мкг). После центрифугирования смесь разделяется на верхнюю водную фазу, интерфазе и нижней органическую фазу.
  6. Удалить aqueПодразделения слой (должно быть 300 - 500 мкл в том числе любые proteinacious "туманный" слой).
  7. Re-экстракт водный слой как и прежде, снова добавить хлороформ.
    Важно: водный слой второго извлечения обычно меньше по объему (250 мкл). Обратите внимание на объем восстановлены.

Подготовка окончательного РНК-изоляции (общая РНК)

  • Разогреть (95 ° С), нуклеазы без воды.
  • 100% этанола должна быть комнатной температуры.

Заключительные РНК-изоляции (общая РНК)

  1. Добавить 1,25 объемами 100% этанола, восстановленные водной фазы (например, если 300 мкл был восстановлен, добавьте 375 мкл этанола) и тщательно перемешать.
  2. Для каждого образца, место сменный фильтр в одном из коллекции трубок.
  3. Внесите лизата на фильтре.
  4. Центрифуга (10000 мкг) в течение 30 секунд, отказаться от проточных, центрифуга снова в течение 30 секунд и замену фильтра в ту же трубку коллекции.

РНК-Wash

  1. Применить 700 мкл промывочного раствора микроРНК 1 до фильтра и центрифуги в течение 15 секунд, отбросить проточные из пробирки, и заменить сменный фильтр в той же пробирке коллекции.
  2. Применить 500 мкл промывочного раствора микроРНК 2 / 3, центрифуги в течение 15 секунд, отбросить проточные и повторите со второй 500 мкл промывочного раствора 2 / 3.
  3. Откажитесь от проточных и сухая спина в течение 1-2 минут.
  4. Место фильтр в новую пробирку сбора, применяются 100 мкл РНКазы свободной воды (95 ° C), закрыть крышкой и выдержать в течение 2 минут.
  5. Центрифуга для ~ 2 минуты, чтобы восстановить РНК.
  6. Хранить при температуре -80 ° С до использования.

3. Концентрация РНК-Solution (5X)

(После протокол завода-изготовителя)

Название реагента Компания Prod / Cat #
Микроконтроллер центробежный фильтр устройства, Ultracell YM-3 Millipore 42404
DEPC очищенной воды

Устройство: микроконтроллер Ultracell YM-3, Cutoff СС и DS Нуклеотиды: 10

Объем: Желаемый объем повторного концентрированный раствор РНК зависит от опытно-конструкторских и должны включать в себя контрольные эксперименты.

  1. Вставьте резервуар микроконтроллер образца в пузырек и пипетку раствор в резервуар.
    Примечание: Не прикасайтесь к мембране.
  2. Центрифуга для 185 минут при 4 ° С с максимальным 14000 х g.
    Примечание: Позиция флакон с трещиной группы по отношению к ротору.
  3. Внесите желаемые объем воды РНКазы бесплатно (например, 20 мкл) на водохранилище, водохранилище место перевернутый в новый флакон и спина в течение 3 минут при 4 ° С с максимальным 3000 х г.
  4. Хранить при температуре -80 ° С до использования.

4. Обратной транскрипции

(Следуя протоколу Tang и соавт. 2 с изменениями.)

Название реагента Компания Prod / Cat # Комментарии
Высокая производительность кДНК комплект архива
10x кДНК архивирования буфера
дНТФ (100 мм)
Молони мышиного вируса лейкоза (MMLV)
обратной транскриптазы (50 ед / мкл)
Applied Biosystems 4368814 модифицированный протокол
RNaseOUT (40 ед / мкл) Invitrogen 10777019
х-Plex обратном стволовых петля грунтовки смеси (40 нм) * Комплексная ДНК-технологий Обычай Последовательности *
DEPC очищенной воды

Реакция Объем: 5,5 мкл

Примечание: конечная концентрация стволовых петля грунтовки должна быть 1-5 нм (здесь 2 нм).

Подготовка мастер-Mix (тома на реакцию) следующим образом:

1. DEPC по водным ресурсам 1,959 мкл
2. 10x RT-буфера 0,55 мкл
3. Ингибитор РНКазы (40 ед / мкл) 0,0715 мкл
4. дНТФ (100 мм) 0,275 мкл
5. х-Plex обратном стволовых петля грунтовки смеси (40 нм) * 0,275 мкл
6. MMLV-RT (50 ед / мкл) 0,369 мкл
  1. Мих и центрифуги кратко.
  2. Добавить 3,5 мкл мастер-Mix по 2 мкл образца.
  3. Выполните следующие RT-реакции:
    16 ° С в течение 30 минут, затем 60 циклов при 20 ° С в течение 30 секунд, 42 ° С в течение 30 секунд, 50 ° С в течение 1 секунды и, наконец, 85 ° C в течение 5 минут для инактивации MMLV-РТ, 4 ° C ∞ .
  4. Хранить при температуре от -20 ° C до использования.

* Список обратном стволовых петля грунтовки можно найти на http://urology.ucsf.edu/blellochlab/protocols.htm

5. Предварительного усиления (Pre-ПЦР)

(Следуя протоколу Tang и соавт. 2 с изменениями.)

Название реагента Компания Prod / Cat # Комментарии
дНТФ (100 мм) Applied Biosystems 4368814 Высокие шапки. кДНК Kit архива.
2x Универсальная PCR Master Mix с NoAmpErase УНГ Applied Biosystems 4324018
х-Plex прямого праймера смеси (450 нм) * Комплексная ДНК-технологий Обычай Последовательности *
Универсальный обратный праймер (100 мкМ) Комплексная ДНК-технологий Обычай Последовательность 2
AmpliTaqGold полимераза (5 ед / мкл) Applied Biosystems 4311806
MgCl 2 (100 мМ)
DEPC очищенной воды

Реакция Объем: 27.5μl (22μl ММ + 5.5μl RT-продукт)

Примечание: Предварительно Усиление необходимо повысить уровень сигнала, особенно при исходной концентрации РНК ограничено. Входной уровень РНК определяет оптимальное количество Предварительно циклов ПЦР. Учитывая же относительной эффективности каждого цикла ПЦР следует удвоить концентрацию конечного продукта. Так как некоторые микроРНК будет более высоко выражена, избегать чрезмерной езды на велосипеде. Однако, согласно усиления может привести к потере чувствительности обнаружения, особенно для микроРНК, высказанные на низком уровне. В наших руках 12 предварительно циклов амплификации, используя 100ng суммарной РНК, появилось достаточно. Использование сыворотки в качестве исходного материала, 12 циклов приводит к обнаружению уровней микроРНК, но 15 циклов оказалась превосходной. Наконец, начиная с 3 ооцитов (примерно 400 пг полной РНК в яйцеклетку 3), 16 предварительного усиления циклов успешно позволило нам для выявления микроРНК уровни экспрессии 4.

* Список вперед грунтовки можно найти на http://urology.ucsf.edu/blellochlab/protocols.htm

Подготовка мастер-Mix (тома на реакцию) следующим образом:

1. 2x Универсальный ММ 13,75 мкл
2. DEPC по водным ресурсам 0,792 мкл
3. MgCl 2 (100 мМ) 0,55 мкл
4. дНТФ (100 мм) 1,1 мкл
5. х-Plex прямого праймера смеси (450 нм) 3,06 мкл
6. Универсальный RP (100 мкМ) 1,375 мкл
7. AmpliTaqGold полимераза (5 ед / мкл) 1,375 мкл
  1. Смешайте и центрифуги кратко.
  2. Добавить 22 мкл мастер-Mix для каждого 5,5 мкл RT-Продукт.
  3. Выполните следующие Предварительно ПЦР-реакции:
    95 ° C в течение 10 мин, 55 ° С в течение 2 мин, затем 10 - 18 циклов 95 ° С в течение 1 с и 65 ° С в течение 1 мин, 4 ° C ∞.

6. Очистка Предварительно ПЦР продукта

Очистка выбора размера на 10% родной полиакриламидном геле

Название реагента Компания Prod / Cat #
40% Акриламид / бис решения Bio-Rad 161-0144
TEMED Bio-Rad 161-0801
10 пар оснований ДНК, лестницы Invitrogen 10821-015
SYBR Золотой нуклеиновых кислот гель пятно
10000 X концентрата в ДМСО
Invitrogen S11494
Гликоген (20 мг / мл) Roche 10 901 393 001
Буфер-EB
10% Ammoniumpersulfate (APS)
TEN-буфера
6x Оранжевый G
DEPC очищенной воды
ddH2O

a. Гель подготовка

Для того, чтобы 10 мл 10%-ном полиакриламидном смесь добавить

1. DDH 2 O 6,5 мл
2. 10x КЭ 1 мл
3. Полиакриламида (40%) 2,5 мл
4. APS (10%) 80 мкл
5. TEMED 4 мкл
  1. Подготовка ДНК лестнице:
    • 0,5 мкл 10 пар оснований ДНК, лестницы
    • 4,5 мкл буфера (EB)
    • 1 мкл 6x Оранжевый G
  2. Добавить 5,5 мкл 6x Оранжевый G каждому 27,5 мкл Предварительно ПЦР продукта.

b. Выполнить Гель

  1. Выполнить Гель с 150V на 55-60 минут.
    Примечание: бромфенола синий индикатор, как работает с 20bp регионе.

c. Пятно Гель

  1. Пятно гель с SYBR-Gold в течение 25 минут на шейкере.
    Примечание: SYBR-Gold является светочувствительным.

d. Вырезать Гель

  1. Вырежьте Предварительно продукт ПЦР-группа из 60-80 б.п. и передачи меченых трубки.
    Примечание: группа низкого входного РНК Предварительно продуктов ПЦР может быть не видна.
  2. Давка гель группы (например, труба в трубе центрифугирования).

e. Повторное извлечение кДНК

  1. Добавить 300 мкл TEN-буфера и инкубировать при 37 ° С в течение 4 часов на ротатора.
  2. Передача жидкости помечены пробирку, добавить еще 300 мкл TEN-буфера для геля содержащих трубки, инкубировать всего на 4 ° С в течение ночи на ротатора.
  3. Аспирируйте оставшуюся жидкость, трансфер помечены коллекции трубку, как до, так и отметить полное восстановление объема.

f. Этанол осадков

  1. Добавить 3-х томах комнатной температуры 100% этанола.
  2. Добавить 0,5 мкл Гликоген (20 мг / мл).
  3. Vortex.
  4. Инкубировать на сухом льду как минимум на 2 часа или при -80 ° С в течение ночи.
  5. Спина в микроцентрифужных при 4 ° С в течение 30 минут для осаждения кДНК.
  6. Дамп жидкость, добавьте 700 мкл температура в помещении 75% этанола и спина в течение 10 минут.
  7. Дамп жидкости и спин снова в течение 5 минут.
  8. Отсасывать супернатант, не нарушая гранул и сухой воздух в течение 10 минут.
  9. Растворяться гранул в чистой воде.

Примечание: Желаемый объем концентрированного кДНК Решение зависит от опытно-конструкторских и должны включать в себя контрольные эксперименты.

7. Очистка Предварительно ПЦР продукта

Очистка ферментативного переваривания грунтовки затем спина колонке (следующие производит протоколов)

Название реагента Компания Prod / Cat #
ExoSAP-IT USB-Affymetrix 78250
MinElute ПЦР Очистка Kit Qiagen 28004

Примечание: В наших руках эксклюзивный ферментативной очистки успешно удален грунтовки, но и привело к частичной деградации предварительно усиливается продукт, возможно, связано с частичной денатурации-за короткого продукты, как температура поднимается до 80 ° С в течение инактивации шаг фермента. Как избежать инактивации тепла и непосредственно очистки продуктов ПЦР с использованием ферментативной реакции спина столбцов удаляет любые грунтовка без деградации продукта.

  1. Смешайте 5 мкл пост-ПЦР-продукта с 2 мкл ExoSAP-IT.
  2. Инкубировать при 37 ° С в течение 15 минут, чтобы ухудшить оставшихся праймеров и нуклеотидов.
  3. Добавьте 5 объемами буфера PB до 1 объема реакции ПЦР и перемешать, если рН индикатор Я был добавлен в буфер PB, убедитесь, что цвет смесь желтого цвета.
  4. Место MinElute столбца в условии 2 трубки коллекция мл в стойку.
  5. Применить образца MinElute колонны и центрифуги в течение 1 минуты.
  6. Отменить проточный, место MinElute колонке обратно в эту же трубку и добавить 750 мкл буфера для PE MinElute колонке мыть и центрифуги в течение 1 минуты.
  7. Отменить проточные и место MinElute назад столбец в той же трубе. Центрифуга колонку еще на 1 минуту при максимальной скорости.
  8. Место MinElute колонку в чистую 1,5 трубки микроцентрифужных мл.
  9. Для элюции ДНК, добавить 10 мкл DEPC очищенной воды в центре мембраны, пусть колонки стоять в течение 1 минуты, а затем центрtrifuge течение 1 минуты.

8. Fludigim 96,96 QRT-PCR профилирования

Название реагента Компания Prod / Cat # Комментарии
Fluidigm 96,96 динамического массива Kit
96,96 динамический массив
96,96 контрольной линии жидкости
20x Загрузка реагентов
Fluidigm корпорации
Смесь
Универсальный обратный праймер (1 мкМ)
Форвард Primer (1 мкМ)
TaqMan зондов (0,2 мкм)
Комплексная ДНК-технологий Обычай Последовательность (1)
2x Универсальная PCR Master Mix
с NoAmpErase УНГ
Applied Biosystems 4324018
Tween

1. Грунтовка 96,96 динамического массива МФК

  1. Inject контрольной линии жидкость (150 мкл) в каждую из аккумуляторов на чипе.
  2. Место чип в МФК (встроенный жидкостный контур) контроллера и запустить Prime (136x) сценарий премьер жидкости линии контроля в чипе.

Примечание: Чип должен использоваться через 24 часа после открытия упаковки. Убедитесь в том, чтобы не пролить жидкость линии управления с контролем линии жидкости на чипе или в бухтах делает чип из строя. Чип должен быть загружен в течение 60 минут грунтования.

2. Подготовка образцов

2,1 Предварительно пробоподготовки

В одноразовую пластиковую трубку, объединить компоненты в таблице ниже, чтобы Пример-Pre-Mix (тома на входе).

2x TaqMan Универсальный Master Mix 2,5 мкл
20x Загрузка реагентов 0,25 мкл

Примечание: Конечный объем 2,75 мкл, а излишки для пипетки обойтись без потерь

2,2 пробоподготовки

Комбинат в 96 и формат каждого образца с предварительно образец смеси (объемы на входе).

Предварительно Sample-Mix 2,75 мкл
Образец 2,25 мкл

Примечание: Vortex и центрифуги 96 ячейках кратко для сбора жидкости.
Конечный объем на входе 5 мкл, взять пипеткой потери во внимание, подготовив несколько выше объема.

2.3 Подготовка 13x Анализы

  1. Использование 96-луночный планшет для подготовки 13x анализов. 1x концентрации в таблице ниже, расширить для 13x.
Универсальный обратный праймер 1 мкм (1x) Последовательность в 2
Форвард * Primer 1 мкм (1x) *
Гена конкретных TaqMan зондов # 0,2 мкм #

* Список вперед грунтовки можно найти на http://urology.ucsf.edu/blellochlab/protocols.htm

# Список Зонды TaqMan можно найти на http://urology.ucsf.edu/blellochlab/protocols.htm

  1. Комбинат в новом 96-аликвоты пластины 13x анализов с твин на 0,25% конечной концентрации Твин
    Примечание: Окончательный объем на входе 5 мкл, подготовить достаточный объем (5,5 мкл) принять потери во время объем передачи во внимание.
  2. Тщательно перемешать, избегая пузырьков и кратко центрифуги для сбора жидкости.

3. Загрузка чип

Примечание: Для того чтобы правильно загрузки проб и анализов обеспечить правильное расположение чипов. Это удобно для выравнивания выемка в левом верхнем углу.

Убедитесь, что все пробы и образцы решений смешиваются перед загрузкой чипа. Это удобно сделать это в 96 ячейках и спина тарелку перед загрузкой чипа. Будьте в курсе чип пипетирования карту для дальнейшего использования.

Неиспользуемые входы образца должны быть заполнены 2,75 мкл Смешать образца и 2,25 мкл ДНК свободной воды.

Неиспользуемые входы анализа должны быть заполнены 2,5 мкл реагента загрузки теста и 2,5 мкл воды.

Не пройдите мимо первой остановкой в ​​то время как пипетки, чтобы избежать введения пузырьков воздуха.

  1. После загрузки образцов и анализов (Volume на входе: 5 мкл) запустить скрипт нагрузки Mix (136x) скрипт для загрузки образцов и анализов в чип.
  2. После того как сценарий завершится, удалить чип контроллера МКФ.
  3. Пил синий защитную пленку с нижней стороны загружены чип.
  4. Удалите все частицы пыли и мусора с поверхности чипа.

4. 96,96 QRT-PCR

  1. Передача чип системы BioMark и использование следующих условиях усиления:
    55 ° С в течение 2 мин, 95 ° С в течение 10 мин, затем 40 циклов 95 ° C в течение 15 с и 55 ° С в течение 1 мин.
  2. Следуйте протоколу производства для сбора данных, программное обеспечение.

5. Использование программного обеспечения КПЦР анализ

После RT-PCR проприетарное программное обеспечение обеспечивает усиление кривых, тепло карты и Ct значения для каждой скважины. Пожалуйста, обратитесь к руководство по программному обеспечению для анализа данных.

9. Представитель Результаты:

Рисунок 1
Рисунок 1. Схематическое изображение экспериментальной рабочий процесс. Показана шаг за шагом, описание мультиплекс QRT-PCR протокола, в том числе очистка (этап Е) чрезмерной грунтовки от мультиплекс обратной транскрипции (шаг С) и мультиплекс предварительного усиления (шаг D) до реального времени обнаружения (шаг F), в результате чего очищенная кДНК шаблон для QRT-PCR. FP: микроРНК конкретных прямого праймера, УРП: универсальная грунтовка обратном, R-SLP: микроРНК конкретных обратном стволовых петля грунт.
Нажмите здесь, чтобы увеличить картинку.

Рисунок 2
Рисунок 2. . Polyacryamide очистки гель QRT-PCR шаблон после предварительной ПЦР Полосы предварительно ПЦР размер продукта являются исключительно видели в WT образцы, но не в микроРНК недостаточно Dgcr8 - / - или Dicer - / - образцы (стрелки), после 96-сложных РТ и 12 циклов предварительного усиления. Обратите внимание, что неспецифические продукты неизвестного происхождения (наконечники стрел) и чрезмерное грунтовки можно найти во всех образцах (звезд).

Рисунок 3
Рисунок 3. Очистка после мультиплекс предусиления значительно улучшает точность QRT-PCR результаты) Сравнение относительного уровня экспрессии WT мЭСК к Dgcr8 -. / - (Канонической микроРНК недостаточным) мЭСК показывает, 1) выявление более микроРНК и 2) потеря ложных срабатываний сигналов в Dgcr8 - / - фон после очистки от праймеров предварительно ПЦР продукта. б) После очистки, относительные уровни экспрессии как Dgcr8 - / - / WT и Dicer - / - / WT-шоу потери ложных положительных сигналов и обеспечения надлежащего категоризации редких Dgcr8 независимые / Dicer зависимыми малых РНК (MIR-320, - 484, -877) 5.

Рисунок 4
Рисунок 4. Fluidigm высокой пропускной QRT-PCR микроРНК профилирования. Пример скриншот 96,96 Fluidigm QRT-PCR профилирования mircoRNA для выявления изменений в микроРНК уровней простаты сыворотки пациента рак. В режиме реального времени КПЦР программного обеспечения для анализа обеспечивает усиление кривые, цветные карты тепла и цикл порогом (КТ).

Discussion

микроРНК короткие (18-24 нуклеотидов), некодирующих РНК, которые регулируют экспрессию генов после транскрипционно как дестабилизирующий РНК посыльного (мРНК) и препятствует их перевод. 6 факт, что по крайней мере одна треть генов человека содержат сохраняется микроРНК обязательные-сайтов в их 3'UTR и очевидно взаимодействия микро-РНК с генов плюрипотентности, пролиферации и апоптозе предполагает решающий вклад в ячейке судьбу решения, тканевого гомеостаза и такими болезнями, как рак. 6,7 Поэтому точные профили микроРНК выражение, имеют широкие интерес.

Для тестирования опубликовал мультиплекс QRT-PCR микроРНК выражение профилирования протокол 2 мы использовали небольшие РНК недостаточно мЭСК качестве отрицательного контроля. Dgcr8 - / - клетки испытывают дефицит всех канонических микроРНК, в то время как Dicer - / -. Клеткам не хватает как канонические и не canoncial micoRNAs 8,9

Сравнение уровней в дикого типа MES-на Dgcr8 - / - клеток, мы обнаружили отсутствие точности, как несколько выразили 10 микроРНК не были обнаружены в дикого типа клетки 11. Некоторые даже имели более низкие уровни экспрессии по отношению к нокаутом клетки (рис. 3а). Мы предположили, что отсутствие точности может быть вызвано массивным грунтовки перенести из двух последовательных этапов мультиплексирования (RT и предварительного ПЦР), прежде чем singleplex RT-количественной оценке. Тем не менее, мультиплекс предварительного усиления необходимо повысить уровень сигнала, особенно при исходной концентрации РНК ограничено. По предварительной очистки от продуктов ПЦР-праймеров с размером отбора на родном гелях полиакриламида (рис. 2), мы могли бы продемонстрировать существенное повышение точности, обнаруживая более микроРНК и потери ложных положительных сигналов в обоих Dgcr8 - / - и Dicer - / - фон (рис. 3а и 3б) Кроме того изменение QRT-PCR подход позволил надлежащей классификации редких Dgcr8 независимые / Dicer зависимыми малых РНК (рис. 3б) 11. Поэтому дополнительный шаг, чтобы очистить чрезмерного грунтовки от предварительно ПЦР продукт имеет очевидные преимущества, особенно при использовании больших грунтовки мультиплекс комплектов в образце.

Оптимальное число предварительного усиления циклов определяется входной концентрации РНК. Баланс, чтобы не недо-или overamplify должны руководствоваться особенностями конкретного эксперимента.

Обладая более чем тысячи известных микроРНК, использование стандартных 384-луночных может не быть оптимальным для широкого профиля микроРНК, особенно при сравнении нескольких образцов. Fluidigm динамического массива IFC дает возможность, с существенным снижением пипетирования шаги и необходимые химии, тестирование до 96 отдельных образцов против 96 различных микроРНК в одном эксперименте (9216 реакций) на nanoliter масштаба (6,7 нл). Для каждого запуска программного обеспечения для анализа обеспечивает усиление кривые, цветные карты тепла и цикл пороговые значения (СТ). Одновременных крупномасштабных профилирования снижает экспериментальной дисперсии и позволяет означает нормализацию значение выражения, которое из-осуществляет иные стратегии нормализации, которые используют небольшие контроля РНК. 12

По сравнению с коммерчески доступными и 384 платформ с заданными зондов TaqMan, сочетание высокой пропускной профилирования платформы с изготовленными на заказ наборов грунтовки обеспечивает высокую гибкость экспериментальной.

Оптимизированный мультиплекс QRT-PCR подход в сочетании с динамической платформе Массив успешно позволило нам одновременно экрана 48 рака простаты сывороток пациентов для изменений в уровнях 384 микроРНК (рис. 4) и нормализовать данные без всплеска управления (т.е. синтетические микроРНК). 11

Несмотря на увеличение шагах от подготовки образцов для профилирования результаты, описанный подход является временной и экономически эффективным методом высокой пропускной способностью профиля больших наборов образцов для уровней микроРНК выражения, даже при ограниченном исходном материале.

Disclosures

Алан Мир является сотрудником корпорации Fluidigm. В противном случае, у нас нет никаких финансовых интересов раскрывать.

Acknowledgments

Мы хотели бы поблагодарить Blelloch лабораторию для комментируя текст. Работа выполнена при поддержке за счет средств, чтобы РБ от НИЗ (K08 NS48118 и R01 NS057221), Калифорнийский Институт регенеративной медицины (CIRM) (Семени Грант RS1-00161, Нью-премии факультета RN2-00906) и Благотворительный фонд Пью и FM с Wissenschaftlich Urologische Gesellschaft эВ.

References

  1. Mitchell, P. S. Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 10513-10518 (2008).
  2. Tang, F. 220-plex microRNA expression profile of a single cell. Nat Protoc. 1, 1154-1159 (2006).
  3. Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. 3, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 644-645 (2003).
  4. Suh, N. MicroRNA function is globally suppressed in mouse oocytes and early embryos. Curr Biol. 20, 271-277 (2010).
  5. Babiarz, J. E., Ruby, J. G., Wang, Y., Bartel, D. P., Blelloch, R. Mouse ES cells express endogenous shRNAs, siRNAs, and other Microprocessor-independent, Dicer-dependent small RNAs. Genes Dev. 22, 2773-2785 (2008).
  6. Babiarz, J. E. Small RNAs: their biogenesis, regulation and function in embryonic stem cells. StemBook. , (2009).
  7. Friedman, R. C., Farh, K. K., Burge, C. B., Bartel, D. P. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs. Genome Res. 19, 92-105 (2008).
  8. Wang, Y., Medvid, R., Melton, C., Jaenisch, R., Blelloch, R. DGCR8 is essential for microRNA biogenesis and silencing of embryonic stem cell self-renewal. Nat Genet. 39, 380-385 (2007).
  9. Kanellopoulou, C. Dicer-deficient mouse embryonic stem cells are defective in differentiation and centromeric silencing. Genes Dev. 19, 489-501 (2005).
  10. Thomson, J. M., Parker, J., Perou, C. M., Hammond, S. M. A custom microarray platform for analysis of microRNA gene expression. Nat Methods. 1, 47-53 (2004).
  11. Moltzahn, F. Microfluidic based multiplex qRT-PCR identifies diagnostic and prognostic microRNA signatures in sera of prostate cancer patients. Cancer Res. 71, 550-560 (2011).
  12. Mestdagh, P. A novel and universal method for microRNA RT-qPCR data normalization. Genome Biol. 10, R64-R64 (2009).

Tags

Биоинженерия выпуск 54 микроРНК мультиплекс QRT-PCR высокая пропускная способность профилирования Fluidigm
Высокая профилирования микроРНК Производительность: Оптимизированная Мультиплекс QRT-PCR на шкале Nanoliter на Fluidigm Динамический МФХБ ArrayTM
Play Video
PDF DOI

Cite this Article

Moltzahn, F., Hunkapiller, N., Mir,More

Moltzahn, F., Hunkapiller, N., Mir, A. A., Imbar, T., Blelloch, R. High Throughput MicroRNA Profiling: Optimized Multiplex qRT-PCR at Nanoliter Scale on the Fluidigm Dynamic ArrayTM IFCs. J. Vis. Exp. (54), e2552, doi:10.3791/2552 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter