Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Иммуноцитохимическая: Человеческие нервные стволовые клетки

Published: August 24, 2007 doi: 10.3791/267

Summary

Иммуноцитохимическая представляет собой мощный метод для определения присутствия, субклеточные локализации, а также относительное содержание антигена интереса к культуре клеток. Этот протокол представляет простой в последующей серии шагов, которые позволяют сохранить антител и получить максимальную отдачу от своих пятен.

Abstract

Иммуноцитохимическая это очень мощный и достаточно простой метод для определения присутствия, субклеточные локализации, а также относительное содержание антигена интересов, чаще всего белка в культуре клеток. Этот протокол представляет простой в последующей серии шагов, что позволит исследователям сохранить первичные и вторичные антитела, получая высокое качество, воспроизводимые качественных и количественных данных из их окрашивания. Есть два аспекта этого протокола, который поможет сохранить объемы антитела необходимы для окрашивания. С одной стороны, клетки выращивают на небольших, круговые покровные, которые размещаются в лунках планшета для культуры ткани. После фиксации клеток на покровных могут быть удалены из скважин пластины. Для окрашивания антителами, покровное с клетками инвертируется на небольшую каплю раствора антител на парафильмом и покрыт второй кусок парафильмом для предотвращения высыхания. Используя этот метод, только ~ 25 мкл антител решения, необходимые для каждого покровное (или образец), чтобы быть окрашены. Этот протокол описывает иммуноокрашивания из человеческих стволовых нейронных / клеток-предшественников (hNSPCs), но может использоваться и для многих других типов клеток.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

День 1: Подготовка немецких Покровные стекла и посевные клетки

Примечание: немецкий покровные стекла часто предпочтительнее для культивирования первичных нервных стволовых клеток и нейронов. Мы используем следующий протокол очистки для улучшения адгезии клетки и распространяться. Позиция покровных в небольшой стойке, которая позволит жидкости доступ к обеим сторонам покровное. Во-первых, инкубировать покровных в 1% Liquinox в течение 10 минут, затем по 3 моет деионизированной водой. Убедитесь, что не мыльные пузыри остаются. Далее, инкубировать сползает в 1М HCl в течение 30 минут, затем по 3 моет деионизированной водой. Сухие покровные при 65 ° С в течение ночи. Передача покровные к стеклянной посуде и автоклав для стерилизации.

  1. В капотом культуры ткани, место стерильную покровных в соответствующего размера и пластины.

  2. Пальто покровные с ламинином для клеточной адгезии. Инкубируйте покровных в 10 мкг / мл поли D-лизин (PDL) в стерильной воде в течение 5 минут при комнатной температуре. Удалить PDL и инкубировать покровных в 20 мкг / мл ламинин в EMEM течение 4 часов, или на ночь, на 37 ° C культуре ткани инкубатора.


    1. Примечание: Обратитесь к пассажей правам нейронных стволовых клеток статьи ( http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=263 ) и подсчет правам нейронных стволовых клеток статьи ( http://www.jove.com / индекса / Details.stp? ID = 262 ), чтобы узнать, как ресуспендирования и считать hNSPCs.

  3. Промыть ламинин покрытием покровные с PBS и семенных клеток в каждом покровное содержащих также в определенной плотности (мы часто используем начальной плотностью покрытия из 100,000-300,000 клеток / мл для клеток, что мы покрытий для иммунной).

  4. Место пластины в 37 ° C культуре ткани инкубатора и позволяют клеткам придерживаться покровные (обычно не менее 4 часов не требуется).

День 2: фиксация, Permeabilizing, блокирование, и добавление Первичные антитела к Клетки

Примечание: Мы используем следующие 4% параформальдегида фиксатором сохранить морфологии клеток. Рецепт включает рН перехода, чтобы параформальдегида идти в раствор. Мы предпочитаем этот метод вместо использования тепла для растворения параформальдегида, поскольку более высокие температуры могут привести к образованию муравьиной кислоты, что может повысить фоне окрашивание при использовании флуоресценции. Некоторые компоненты фиксирующего помогают сохранить структуру цитоскелета (MgCl 2 и EGTA), а другие помогают поддерживать общий морфологии (сахароза).

4% Параформальдегид Fixative для ячеек

Реагенты и действия: Сумма на 100 мл фиксатора:
MilliQ воды 75 мл
Параформальдегид (весят в вытяжной шкаф) 4 г
10N NaOH, перемешать, добавить по капле, пока раствор очищает по мере необходимости
10X PBS 10 мл
1M MgCl 2 0,5 мл
0,5 М EGTA 2 мл
Сахароза 4 г
6N соляной кислоты, титровать до рН 7,4 по мере необходимости
MilliQ воды довести до 100 мл
Хранить при температуре 4 ° С в течение 1 недели. Нагреть до 37 ° С до использования
  1. На скамейке, удалить медиа и добавьте предварительно нагретого фиксатором. Инкубируйте в течение 5-15 минут (в зависимости от антигена быть обнаружены, мы обычно используем 10 минут). Выполнять это и следующие шаги при комнатной температуре.

  2. Откажитесь от фиксатора в соответствующий контейнер, так как многие учреждения ручки параформальдегида как опасные отходы. Вымойте клетки 3 раза PBS, 5 минут каждый раз. При удалении решений от клеток, будьте осторожны, что всасывание не высыхает клеток. Кроме того, всегда есть следующее решение под рукой, чтобы добавить в клетках, прежде чем снимать пальто решение, которое их так, клетки не остается сухим.

  3. Если антиген интересов внутри клетки, клеточная мембрана должна быть проницаемой, чтобы обеспечить въезд антитела. Для permeabilize клетки, используйте свежий 0,3% Тритон Х-100 решения в PBS. Внесите медленно, потому что Тритон вязкой, и убедитесь, что моющее средство полностью растворяется в PBS перед добавлением к клеткам. Permeabilize клетки в течение 5 минут с последующим промыванием клетки 3 раза PBS, 5 минут каждый раз.

  4. Клетки должны быть обработаны с блокирующий агент для предотвращения неспецифического связывания антител. Мы используем бычьего сывороточного альбумина (БСА), как блокирующий агент. Блокирование решения осуществляется путем растворения 5% BSA в PBS (на рокера или ротатор, поскольку она требует времени для растворения), то фильтрация зольution с 0,45 мкм шприц фильтр. Блок клеток в 5% BSA / PBS решение в течение 1 часа при комнатной температуре.

Развести первичного антитела (которые, как мы надеемся, специфичные для белок), чтобы заранее определенной концентрации в 1% BSA / PBS (подготовлен разведении от 5% BSA / PBS). Место разбавленный первичного антитела (30 мкл на 25 мм покровным, 20 мкл на 18 мм покровным, 15 мкл на 12 мм покровным) на стеклянную пластинку покрыты парафильмом. Возьмите покровное с фиксированным клеток, инвертировать, что клетки лицом вниз, и положите ее на антитела решения, с тем, что клетки, находящиеся в контакте с антителом. Место второй полосе парафильмом по всей конструкции. Инкубируйте при 4 ° С в течение ночи.

День 3: стиральная, средняя инкубация антител, ядерной красителей и монтаж

  1. Аккуратно снимите верхнюю полосу парафильмом и забрать покровное, инвертировать его, и поместить его обратно в тарелку с PBS в каждую лунку по моет так, чтобы клетки вверх.

  2. Вымойте клетки 3 раза PBS, 5 минут каждый раз.

  3. Выберите вторичными антителами, которые будет обнаруживать первичного антитела, например, если первичное антитело было сделано в кролика, вторичными антителами следует признать, кролика IgG. Позаботьтесь, чтобы также соответствовать антител изотипа (IgG, IgM, и т.д.). При использовании нескольких первичных антител, убедитесь, что они из разных видов или изотипов, и планируем обнаружить с помощью различных маркеров придается вторичных антител. Например, вы можете использовать анти-кролик вторичный связан с красным флуорофора с антимышиным вторичных связаны с зеленым флуорофора. Инкубируйте клетки на вторичном решение антитела разбавляют до нужной концентрации в 1% BSA в течение 2 часов в темном месте при комнатной температуре, используя ту же технику, как для первичного (шаги не показано на видео). Объем вторичных антител, необходимых для инкубации может быть немного больше, чем для первичного антитела, если вторичный хранится как глицерин (40 мкл на 25 мм покровным, 30 мкл на 18 мм покровным, 25 мкл на 12 мм покровным) .

    • Примечание: Если вы используете флуоресцентных молекул визуализировать вторичными антителами, выборка должна быть защищена от света когда-то вторичным антителом была добавлена. Инкубировать в темноте, или в фольге покрыты пластины.

  4. Осторожно удалите покровные от парафильмом, как описано для первичного антитела. Вымойте клетки 2 раза с PBS, 5 минут каждый раз, после 1 минуты инкубации в 2 мкг / мл Hoechst ядерной пятно разводят в PBS (если ядерное контрастирующая предпочтительнее). Если Hoechst пятно старое и сигнал слишком тусклое, вы можете увеличить время инкубации и / или концентрации. После инкубации с Hoechst, мыть 1 раз в PBS в течение 5 минут.

  5. Покровные стекла должны быть установлены на слайд с монтажными СМИ как визуализация на микроскоп. В тех случаях, флуоресцентные молекулы используется для визуализации вторичными антителами, монтаж средств массовой информации должны содержать агентов, чтобы минимизировать фотообесцвечивания. Мы используем Vectashield как монтаж средств массовой информации для флуоресценции. Место соответствующее снижение размера Vectashield на предметном стекле микроскопа (12 мкл на 25 мм покровным, 6 мкл на 18 мм покровным, 3 мкл на 12 мм покровным).

  6. Тщательно подберите покровное и ополосните назад деионизированной водой для удаления солей (от PBS). Dab лишнюю воду на kimwipe или бумажным полотенцем, и лег на каплю Vectashield с ячейками вниз. Место на покровное под углом и позволяют спускаться медленно, чтобы избежать захвата пузырьков воздуха. Этикетка слайд с указанием даты и любой образец информации.

  7. Разрешить слайды с покровные высохнуть (в темноте), то всасывание лишнюю Vectashield со всего покровное края. Покровное края теперь могут быть закрыты с лаком для ногтей, если это необходимо (особенно полезно, если покровные будет рассматриваться на инвертированный микроскоп). Мы как правило, хранят наши слайды в морозильной камере -20 ° C.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Этот протокол описывает процедуру иммуноокрашивания hNSPCs, что сводит к минимуму объем антител необходимо и дает надежные окрашивания клеток. Процедура, как описано, что лучше для внутриклеточных антигенов, но может быть изменен, чтобы пятно молекул клеточной поверхности, а также для усиления окраски цитоскелета.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Авторы хотели бы выразить признательность д-р Филип Х. Шварца о человеческом нейронных ресурсов стволовых клеток в детской больнице, Orange County научно-исследовательский институт для обеспечения hNSPC культур и доктор Гари Bassell в Университете Эмори для начального обучения в технике окрашивания парафильмом.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
German glass (Deutsche Spiegelglas) coverslips Tool Carolina Biological WW-63-3029 12,15,18, 22, 25 mm coverslips available
Liquinox phosphate-free detergent Reagent Sigma-Aldrich Z273279 very viscous
Poly-D-lysine hydrobromide Reagent Sigma-Aldrich P7280
Laminin, natural mouse Reagent Invitrogen 23017-015
EMEM (1X) Reagent Mediatech, Inc. MT-10-010-CV Distributed by Fisher under the indicated catalog #
24 well plate Tool Fisher Scientific 08-772-1
Triton X-100 Reagent Fisher Scientific BP151-500 very viscous
Paraformaldehyde Reagent Sigma-Aldrich P6148 potential carcinogen, use caution when using it in powder and solution form
Bovine Serum Albumin, IgG-free Reagent Jackson ImmunoResearch 001-000-161
H–chst 33342 Reagent Invitrogen H-1399
Vectashield Reagent Vector Laboratories H-1000 viscous

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Flanagan, L. A., Chou, J., Falet, H., Neujahr, R., Hartwig, J. H., Stossel, T. P., Filamin, A. Filamin A, the Arp2/3 complex, and the morphology and function of cortical actin filaments in human melanoma cells. J. Cell Biol. 155, 511-518 (2001).
  2. Flanagan, L. A., Rebaza, L. M., Derzic, S., Schwartz, P. H., Monuki, E. S. Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins. J. Neurosci. Res. 83, 845-856 (2006).
  3. Flanagan, L. A., Ziaeian, B., Palmer, T., Schwartz, P. H. Immunocytochemical analysis of stem cells. In Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. Loring, J. F., Wesselschmidt, R. W., Schwartz, P. H. Elsevier/Cell Press. (2007).
  4. Marchenko, S., Flanagan, L. A. Passaging Human Neural Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).
  5. Marchenko, S., Flanagan, L. A. Counting Human Neural Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).
Иммуноцитохимическая: Человеческие нервные стволовые клетки
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Marchenko, S., Flanagan, L. Immunocytochemistry: Human Neural Stem Cells. J. Vis. Exp. (7), e267, doi:10.3791/267 (2007).More

Marchenko, S., Flanagan, L. Immunocytochemistry: Human Neural Stem Cells. J. Vis. Exp. (7), e267, doi:10.3791/267 (2007).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter