Summary

To-og tre-dimensjonale Live-Cell Imaging av DNA Damage Response Proteiner

Published: September 28, 2012
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en fremgangsmåte for å visualisere en DNA dobbel tråd pause signal protein aktiveres i respons til DNA-skade, så vel som dens lokalisering under mitose.

Abstract

Double-tråd pauser (DSBs) er den mest skadelige DNA lesjoner en celle kan støte på. Hvis venstre unrepaired, til DSBs havn stort potensial generere mutasjoner og kromosomabberasjoner en. For å forhindre dette traumer fra katalyserende genomisk ustabilitet, er det avgjørende for cellene å oppdage DSBs, aktivere DNA skade respons (DDR), og reparere DNA. Når stimulert, fungerer DDR å bevare genomisk integritet ved å utløse cellesyklus å tillate reparasjon å finne sted eller tvinge cellen til å gjennomgå apoptose. De dominerende mekanismer for DSB reparasjon skje gjennom ikkehomologe end-delta (NHEJ) og homolog rekombinasjon reparasjon (HRR) (anmeldt i 2). Det er mange proteiner hvis aktiviteter må være nøyaktig orkestrert for DDR å fungere skikkelig. Heri, beskriver vi en fremgangsmåte for 2 – og 3-dimensjonale (D) visualisering av en av disse proteinene, 53BP1.

P53-bindende protein 1 (53BP1) lokaliserer til områder avDSBs ved binding til endrede histoner 3,4, forming foci innen 5-15 minutter 5. De histonmodifikasjonene og rekruttering av 53BP1 og andre DDR proteiner til DSB områder antas å lette de strukturelle omleggingen av kromatin rundt områder av skade og bidra til DNA-reparasjon 6. Utover direkte deltakelse i reparasjon, har flere roller er beskrevet for 53BP1 i DDR, som regulerer en intra-S sjekkpunkt, en G2 / M sjekkpunkt, og aktivere nedstrøms DDR proteiner 7-9. Nylig ble det oppdaget at 53BP1 ikke danner foci i respons til DNA-skade indusert ved mitose, istedenfor å vente på celler å angi G1 før lokalisere til nærhet av DSBs 6. DDR proteiner som 53BP1 har blitt funnet til å assosiere med mitotiske strukturer (for eksempel kinetochores) under progresjon gjennom mitose 10.

I denne protokollen beskriver vi bruk av 2 – og 3-D live celle imaging å visualiseredannelsen av 53BP1 foci i respons til DNA-skade agenten camptothecin (CPT), samt 53BP1 oppførsel under mitose. Camptothecin er en topoisomerase I-inhibitor som primært forårsaker DSBs under DNA replikasjon. For å oppnå dette, brukte vi en tidligere beskrevet 53BP1-mCherry fluorescerende fusjonsprotein konstruere består av en 53BP1 protein domene stand til å binde DSBs 11. I tillegg brukte vi en histone H2B-GFP fluorescerende fusjonsprotein konstruere stand til å overvåke kromatin dynamikk gjennom hele cellesyklus, men særlig under mitose 12. Levende celle bildebehandling i flere dimensjoner er et utmerket verktøy for å utdype vår forståelse av funksjon av DDR proteiner i eukaryote celler.

Protocol

A. celleforberedelsen Normale primære fibroblaster (GM02270) ble hentet fra Coriell Cell Repository, Camden, New Jersey, og foreviget med hTERT 6. Cellene ble dyrket og utvidet i CellStar 6-cm retter i media (4 ml) som består av MEM supplert med 20% føtalt bovint serum (Gibco), non-essential/essential aminosyrer, vitaminer, natrium pyruvat, og penicillin / streptomycin (HyClone ). Humane embryonale nyre 293 (HEK293) celler ble oppnådd fra American Type Culture Collection og dyrket og …

Discussion

Vedlikehold av genomisk integritet er avgjørende for celle overlevelse. Unnlatelse av å bevare genom resultater i for tidlig aldring, kreft eller død 8. Det er stor interesse i kresne hvordan DDR funksjoner, som stammer fra dens betydning for både grunnforskning og klinisk forskning. Mange teknikker har blitt utviklet gjennom årene for å hjelpe i studiet av hvordan celler oppdage og reparere DNA-skader. Tradisjonelle metoder som immunocytokjemi og vestlige blotting har vært bærebjelkene i feltet, men …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttes delvis av R01NS064593 og R21ES016636 (KV). Mikroskopi ble utført ved VCU – Institutt for nevrobiologi og anatomi Mikroskopi Facility, støttet, delvis med støtte fra NIH-NINDS senter kjerne stipend 5P30NS047463. Den roterende disk confocal mikroskop ble kjøpt med en NIH-NCRR award (1S10RR027957).

Materials

Product Company
CellStar culture dishes Greiner Bio-one
FluroDish glass bottom dishes World Precision Instruments, Inc.
MEM media GIBCO
Non-essential amino acids GIBCO
Amino acids GIBCO
Vitamins GIBCO
Sodium Pyruvate Invitrogen
Penicillin/Streptomycin HyClone
Fetal Bovine Serum GIBCO
N-Myc-53BP1 WT pLPC-Puro;
plasmid 19836
Addgene
pCLNR-H2BG; plasmid 17735 Addgene
SuperFect Qiagen
Zeiss Cell Observer SD Imaging system Zeiss
AxioVision (release 4.8.2) Zeiss
Zeiss Immersol W Oil Zeiss
Volocity software (version 6.0) PerkinElmer

References

  1. Botuyan, M. V., Lee, J., Ward, I. M., Kim, J. E., Thompson, J. R., Chen, J., Mer, G. Structural basis for the methylation state-specific recognition of histone H4-K20 by 53BP1 and Crb2 in DNA repair. Cell. 127, 1361-1373 (2006).
  2. Dimitrova, N., Chen, Y. C., Spector, D. L., de Lange, T. 53BP1 promotes non-homologous end joining of telomeres by increasing chromatin mobility. Nature. 456, 524-528 (2008).
  3. Feuerhahn, S., Egly, J. M. Tools to study DNA repair: what’s in the box. Trends Genet. 24, 467-474 (2008).
  4. Giunta, S., Belotserkovskaya, R., Jackson, S. P. DNA damage signaling in response to double-strand breaks during mitosis. J. Cell Biol. 190, 197-207 (2010).
  5. Giunta, S., Jackson, S. P. Give me a break, but not in mitosis: the mitotic DNA damage response marks DNA double-strand breaks with early signaling events. Cell Cycle. 10, 1215-1221 (2011).
  6. Golding, S. E., Morgan, R. N., Adams, B. R., Hawkins, A. J., Povirk, L. F., Valerie, K. Pro-survival AKT and ERK signaling from EGFR and mutant EGFRvIII enhances DNA double-strand break repair in human glioma cells. Cancer Biol. Ther. 8, 730-738 (2009).
  7. Huyen, Y., Zgheib, O., Ditullio, R. A., Gorgoulis, V. G., Zacharatos, P., Petty, T. J., Sheston, E. A., Mellert, H. S., Stavridi, E. S., Halazonetis, T. D. Methylated lysine 79 of histone H3 targets 53BP1 to DNA double-strand breaks. Nature. 432, 406-411 (2004).
  8. Jackson, S. P., Bartek, J. The DNA-damage response in human biology and disease. Nature. 461, 1071-1078 (2009).
  9. Kanda, T., Sullivan, K. F., Wahl, G. M. Histone-GFP fusion protein enables sensitive analysis of chromosome dynamics in living mammalian cells. Curr. Biol. 8, 377-385 (1998).
  10. Massignani, M., Canton, I., Sun, T., Hearnden, V., Macneil, S., Blanazs, A., Armes, S. P., Lewis, A., Battaglia, G. Enhanced fluorescence imaging of live cells by effective cytosolic delivery of probes. PLoS One. 5, e10459 (2010).
  11. Nakamura, K., Sakai, W., Kawamoto, T., Bree, R. T., Lowndes, N. F., Takeda, S., Taniguchi, Y. Genetic dissection of vertebrate 53BP1: a major role in non-homologous end joining of DNA double strand breaks. DNA Repair (Amst). 5, 741-749 (2006).
  12. Schultz, L. B., Chehab, N. H., Malikzay, A., Halazonetis, T. D. p53 binding protein 1 (53BP1) is an early participant in the cellular response to DNA double-strand breaks. J. Cell. Biol. 151, 1381-1390 (2000).
  13. Valerie, K., Povirk, L. F. Regulation and mechanisms of mammalian double-strand break repair. Oncogene. 22, 5792-5812 (2003).
  14. Wang, B., Matsuoka, S., Carpenter, P. B., Elledge, S. J. 53BP1, a mediator of the DNA damage checkpoint. Science. 298, 1435-1438 (2002).
  15. Ward, I. M., Minn, K., Jorda, K. G., Chen, J. Accumulation of checkpoint protein 53BP1 at DNA breaks involves its binding to phosphorylated histone H2AX. J. Biol. Chem. 278, 19579-19582 (2003).
check_url/4251?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Beckta, J. M., Henderson, S. C., Valerie, K. Two- and Three-Dimensional Live Cell Imaging of DNA Damage Response Proteins. J. Vis. Exp. (67), e4251, doi:10.3791/4251 (2012).

View Video