生きた細胞内の個々のDNA分子を観察する方法が記載されている。技術は目的のDNAに組み換え結合部位に蛍光標識lacリプレッサータンパク質の結合に基づいています。この方法は、時間をかけて生きている細胞内の多くの組換えDNAをたどるように適応させることができる。
いくつかの天然に存在するプラスミドを、哺乳動物細胞内に保持されます。これらのうち、複数のヒト悪性腫瘍1-3引き起こすエプスタイン-バーウイルス(EBV)およびカポジ肉腫関連ヘルペスウイルス(KSHV)を含むガンマヘルペスウイルスのゲノムは、されています。これら二つのゲノムは単一のウイルス蛋白質と細胞複製機構を使用して、それぞれの、ライセンスされた方法で複製され、その欠けている伝統的なセントロメア4月8日にもかかわらず、細胞分裂の際に娘細胞に渡されます。
多くの仕事は、サザンブロッティングやin situハイブリダイゼーション(FISH) 蛍光 inなどのメソッドを使用して、これらのプラスミドゲノムの複製を特徴付けるために行われている。これらの方法は、しかし、制限されています。定量PCRおよびサザンブロットは、細胞集団における細胞あたりのプラスミド数の平均値に関する情報を提供します。 FISHは平均数とプラスミドの分布の両方を明らかに単一セルアッセイであるの細胞あたりの細胞集団でなく調べセルの親や子孫の情報を全く許さない、静的なものである。
ここでは、生きた細胞内のプラスミドを可視化するための方法を説明します。このメソッドは、関心9のプラスミド内に複数のサイトへの蛍光標識ラクトースリプレッサータンパク質の結合に基づいています。目的とするDNAをラクトースオペレーター(LACO)配列の約250タンデムリピートを含むように設計されています。 LACOは、具体的に蛍光タンパク質に融合させることができるラクトースリプレッサータンパク質(LACI)によってバインドされています。融合タンパク質は、いずれかの人工プラスミドまたはレトロウイルスベクターにより導入されたから発現させることができる。このように、DNA分子は、蛍光標識、したがって、蛍光顕微鏡を介して、目に見えるようになるされています。プラスミドが閲覧できるようになるまで融合タンパク質は、IPTGの存在下で培養することによりプラスミドDNAを結合からブロックされています。
ontentは ">このシステムは簡単にトランスフェクションし、理想的な細胞が接着されています。それらの合成の特性を明らかにし、娘細胞に分割、プラスミドは数世代を通して生きた細胞で監視することができ、大規模な核を持っているこの技術はあることを決定するために使用されていますEBV由来プラスミドの84%は、HeLa細胞に娘細胞に忠実に、各世代を合成し、新たに合成されたプラスミドパーティションの88%されており、これらのEBVプラスミドのペアがでそれらの合成の後につながまたは姉妹染色分体に関連付けられていることが観察されたS-彼らは後期10で分離された姉妹染色分として分離するのを見たまで。メソッドは現在、HeLa細胞とSLK細胞におけるKSHVゲノムの複製を研究するために使用されています。HeLa細胞は、ヒト上皮細胞を不死化され、SLK細胞が内皮ヒト不死化している段階細胞。SLK細胞はもともとKSHVの病変に由来したものの、ヒーラもSLKのセルライン自然にハーブもORS KSHVゲノム11。ウイルス複製の勉強に加えて、この可視化技術は、合成、ローカリゼーション、および他の組換えプラスミドDNAのパーティション化に様々なDNA配列の要素の追加、削除、または変異の影響を調査するために使用することができます。ここで説明する方法は、複数の世代にまたがる時間をかけて生きた哺乳動物細胞におけるプラスミドをフォローするために使用できます。励起光への曝露を制限することによって、我々は、少なくとも72時間、3細胞分裂を表す16から32細胞のコロニーを通って新しく分割ペアからセルをフォローするために、これらの技術を使用している。これらの実験は、このような定量的PCR、サザンブロッ…
The authors have nothing to disclose.
この作品は、NIHとACS、T32CA009135含む、CA133027、CA070723、およびCA022443からの補助金によって賄われていた。ビルサグデンは、アメリカ癌協会の研究教授である。
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments |
DMEM | GIBCO | 11965 | |
OptiMEM | GIBCO | 31985 | |
Fetal bovine serum | Hyclone | SH30910.03 | |
Penicillin | Sigma | P3032 | |
Streptomycin sulfate | Sigma | S9137 | |
Hygromycin | Calbiochem | 400050 | 400 μg/ml for SLK; 300 μg/ml for HeLa |
Isopropyl-b-D-thiogalactoside (IPTG) | Roche | 10 724 815 001 | Final concentration 200 μg/ml |
Lipofectamine 2000 | Invitrogen | 11668-027 | |
HEPES | GIBCO | 15630 | |
Glass-bottom dishes | MatTek | P35G-1.5-10-C | |
CultFoil | Pecon | 000000-1116-08 | |
Axiovert 200M | Zeiss | ||
Colibri | Zeiss | 423052-9500-000 | |
Neutral white LED | Zeiss | 423052-9120-000 | |
Filter Cube 75 HE | Zeiss | 489075-0000-000 | |
Plan-Apochromat 63x/1.4 objective | Zeiss | 440762-9904-000 | |
CascadeII:1024 EMCCD camera | Photometrics | B10C892007 | |
Tempcontrol mini | Zeiss/Pecon | 000000-1116-070 | |
Tempcontrol 37-2 digital | Zeiss/Pecon | 000000-1052-320 | |
CTI Controller 3700 digital | Zeiss/Pecon | 411856-9903 | |
Objective heater | Zeiss/Pecon | 440760-0000-000 | |
Stage heating insert P | Zeiss/Pecon | 411861-9901-000 | |
Stage-top Incubator S | Zeiss/Pecon | 411860-9902-000 | |
Humidifier System | Zeiss/Pecon | 000000-1116-065 |