Summary
协议描述为研究乳腺癌细胞的迁移，增殖和定植于人体骨组织外植体模型系统。
Abstract
骨是乳腺癌转移的最常见的部位。虽然它已被广泛接受的微环境影响癌细胞行为，知之甚少人体骨组织的天然微环境中的乳腺癌细胞的特性和行为。我们已开发的方法来跟踪，量化和的微环境中调节人乳腺癌细胞培养的人骨组织碎片从以下全髋关节置换手术丢弃股骨头隔离。使用设计用于萤光素酶和增强型绿色荧光蛋白（EGFP）表达的乳腺癌细胞中，我们能够后可重复地定量迁移和增殖型态使用生物发光成像（BLI），轨道细胞相互作用使用荧光显微镜的骨碎片内，并评估乳腺细胞定植流式细胞仪。这种模式的主要优势包括：1）一个人，建筑完好无损组织microenvironment包括有关人体的细胞类型，以及2）直接进入微环境，这有利于快速定量和定性监测和乳腺癌和骨细胞的特性，行为和交互作用扰动。一个主要的限制，目前，是组织片段，该组合限制住研究短期培养的窗口的有限的可行性。该模型系统的用途包括研究乳腺癌和其他骨寻求恶性肿瘤的基本生物学的转移性利基内，并且开发治疗策略，以有效地针对乳腺癌细胞在骨组织中。
Introduction
肿瘤微环境是目前公认的癌细胞行为乳腺癌进展和转移过程中的关键决定因素传播1-3。这里提出的方法的目标是促进人体骨组织，乳腺癌转移4-6的最频繁的部位的微环境中的乳腺癌细胞的研究。骨是由矿化和骨髓室7-9，这两个怀有细胞和分泌的因子牵连转移进展10,11。尽管广泛使用在体内小鼠模型促进转移过程12-15系统性研究，骨架内细胞的相互作用是不进行观察和直接扰动容易获得。模型系统研究和培养小鼠骨髓组织和小鼠骨髓细胞提供更好的访问，并已经取得了对串扰许多见解和机制基本乳腺癌细胞米etastasis小鼠骨骼16-22。然而，研究表明，有可能是osteotropism的物种特异性的模式为骨组织23,24。这些模式可以反映固有物种特异性在骨组织性质的差异，从改变的骨髓群体中的免疫缺陷小鼠11产生的差异，和/或小鼠的相对年轻的年龄在实验中使用的，所有这些都在骨的可能的决定因素微环境。
体外方法用于人骨共培养研究乳腺癌细胞已经典型地集中于特定骨的细胞类型，如骨髓来源的成骨细胞或基质细胞作为单层培养的或工程化的三维模型系统25-35内。虽然2维细胞培养模型已形成的在体外的支柱接近为癌症研究，人们早就认识到，细胞的行为是从根本上改变在米onolayer培养系统18,36,37。这导致了设计的微环境，模仿的3-维活组织的复杂性，包括矩阵可与天然材料，如胶原蛋白构成的支架的基于模型的开发，或合成的聚合物接种有特定的细胞类型，以创建组织样的微环境36-41。设计方案还包括使用生物反应器平台的控制和研究微18,19,41-43体内的荷尔蒙环境。虽然仿生模型和生物反应器提供了一个复杂的组织微环境中的受控环境的许多元素，并且已成功地应用到推进乳腺癌转移到骨18,19,35,42,43的研究中，工程化的模型系统一般不掺入天然骨环境中存在的细胞类型和细胞外基质组分的全谱。
直到最近，乳腺癌细胞尚未研究天然的，完整的，三维人体骨组织的微环境中。我们最近报道使用人体骨组织碎片从全髋关节置换分离（THR）的手术标本44的共培养模型的发展。这些标本既怀有必要研究潜在的微转移在短期内培养机制的矿化和骨髓车厢。在以前的工作中，我们建立了验证性原则，使用生物发光成像（BLI）监测荧光素酶表达乳腺癌细胞（MDA-MB-231-fLuc）共培养骨碎片44的扩散。在这里，我们提出详细的实验方案为研究使用人骨组织的外植体的天然微环境的上下文中乳腺细胞癌的增殖，定植，和迁移。
首先，我们提出了一个协议相邻骨骼碎片来衡量乳房共培养乳腺癌细胞使用BLI细胞增殖。在这一节中，乳腺癌细胞悬液接种作为细胞的斑点在邻近骨头碎片，这是由骨蜡件固定6孔板中。对照孔含有骨蜡，但是没有骨片段。一旦细胞斑附着，培养基，并将该板是24小时，在这之后的生物发光信号的强度（与细胞数目相关联）的测量是用BLI培养。在接下来的步骤中，我们提出直接接种到骨碎片研究定居和增殖共培养的乳腺癌细胞的方法。这里的乳房细胞悬浮液被直接吸移到所述骨组织碎片，其通过BLI和荧光显微镜在培养监测随着时间的推移追踪定植和细胞数。在该方法中，骨髓隔室可以从骨碎片被刷新为在定植乳腺癌细胞通过流式细胞分析的任何时间点术，或骨髓存活测定。
此外，我们取消划线两种不同的方法，用于测量乳腺癌细胞迁移。在第一种方法的步骤进行了概述，用于测量朝向骨组织培养上清液迁移。在这个协议中的乳腺癌细胞接种到Transwell小室的内，上表面插入膜具有8微米的孔径（ 如图1A）。插入件，然后放入一个接收机板用含有骨组织上清液或对照培养基的孔中。超过20小时的温育期的过程中，少量的乳腺癌细胞通过插入膜迁移入下面的组织培养孔中，其中它们附着于检测通过BLI。在第二迁移方法的乳腺癌细胞接种到Transwell小室的插入件的膜的下部，外表面。骨组织碎片放入插入杯子和乳腺癌细胞向上迁移通过膜拓殖骨碎片（ 见图1B），其然后用成像BLI。
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Protocol
股骨头从择期THR手术矫形外科系在斯坦福大学医学院的患者收集。所有的组织收集的去鉴定标本按照斯坦福大学的研究合规办公室法规。
1。选择乳腺癌细胞系（S）
- 获得或转染所需的乳腺癌细胞系（S）与萤光素酶-GFP报道构建。下面实验使用的MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞系工程改造为萤火虫荧光素酶的稳定表达（fLuc）和增强型绿色荧光蛋白（EGFP）的睡美人转座子的质粒PKT2 / LuBiG进行转染和转座质粒PK / hUbiC-SB11 45,46。
注：将转染的细胞系被称为MDA-MB-231-fLuc-EGFP和MCF-7-fLuc-EGFP。
2.隔离组织˚F从股骨头ragments
- 以下THR手术，收集废弃股骨头在无菌容器中填充有生理盐水。样品转移到实验室，并在1-3小时的手术处理。注意：如果在处理的延迟，将样品在4℃下。
- 无菌手套，手术咬骨钳，镊子，烧杯，用70％异丙醇冲洗仪器，以及组织培养容器的规定如下为每个类型的实验：通过将下列项目上的吸收垫在层流组织培养罩准备的工作区域。
- 穿着无菌手术手套以保持圆形股骨头在一方面，使用咬骨钳在另一方面，提取从股骨的暴露上部轴所需的尺寸（〜2-5毫米）的小梁骨碎片。转移碎骨入培养容器（ 例如，6-，12-，或24孔组织培养板或迁移室），这取决于扩散的类型，山口onization或迁移实验中，如在步骤3，4或5所述。
注：在完成对每个具体的增殖，定植或迁移实验的最初步骤后上述骨组织碎片应该有所收获。碎片将尺寸范围， 如图2。片段可以之前或实验为标准化的目的之后被测量。
3.联合培养乳腺癌细胞毗邻碎骨来衡量乳房细胞增殖使用BLI
- 在实验前，制备含2×10 5个乳腺癌细胞/ 50微升的悬浮液，并准备骨蜡的插头用于固定骨头碎片中培养。切P200枪头到3件，并使用最大的一块的窄端的“俗套”的方式来切小（〜35毫克）的骨片蜡。使用最小片的宽端以弹出骨蜡塞到培养皿进行存储。
- 将一块骨蜡在每口井的12点钟位置，轻轻按下，用无菌手套的食指。
- 吸移管将50μl含1×10 5个乳腺癌细胞在DMEM-10％FBS +青霉素-链霉素的6孔板的每个孔的中心的细胞悬浮液。 （可替换地，种子细胞，如果需要的分散图案。）将板在37℃组织培养孵化器45分钟，以促进细胞附着。
- 放置1骨块到1片骨蜡的每个实验井并应用温和的压力与咬骨钳将其固定。一式三份，从一个给定的THR检体，使得3碎骨放入三甲孔进行实验，而在底部的三个孔中含有骨蜡仅作为对照。
- 使用5毫升吸管，轻缓地交付5毫升的DMEM-10％FBS的每个的侧面，以避免撞出乳房细胞或骨碎片。将板在3776;Ç组织培养孵化20-24小时。
- 执行生物发光成像（BLI）从培养箱取出板并添加荧光素底物（以达到300微克/ ml的浓度）至各孔中。图像使用下列参数立即将板的IVIS成像系统平台上：光圈1，小分级，1秒的曝光时间，水平D.测量每个的信号强度以及平均辐射率（光子/秒/平方厘米/球面度）。
- 使用图像处理软件来定义感兴趣区域（ROI）的地区，以定量的平均四射的所有实验和对照孔。出口平均辐射值到Excel表进行统计并生成图表。
直接种植于碎骨4.联合培养乳腺癌细胞研究殖民化和细胞数量
- 使用镊子直接将骨碎片在24孔组织培养板的空孔中（1片段/孔）。
- 果仁ETTE的DMEM-10％FBS的含有直接在各个骨片段的顶部1×10月3日至6日的乳 腺癌细胞的50微升细胞悬浮液液滴。将板在37℃组织培养孵化器45分钟，以促进细胞附着。轻轻加1-2毫升的DMEM-10％FBS的成的各孔，例如在一侧的片段是完全浸没在介质。孵育所述板在37℃组织培养箱为20-24小时。
- 温育后，用钳子向每个骨组织片段转移到新鲜的24孔板中含有1ml的DMEM-10％FBS的每个孔中。要执行BLI，按照上面的步骤3.6-3.7。此外，片段可使用荧光显微镜进行观察，或冲刷如在步骤6中所述，得到的骨髓人口为乳腺癌细胞数量和性质进行分析。
- 通过荧光显微镜下BLI，吸管5微升荧光标记的双膦酸盐溶液（预做准备完整的片段进行定性评估根据制造商的说明缩减）到每个孔来标记碎骨的矿化骨针。孵育板在组织培养培养箱中另外24小时。
- 以下培养中的荧光标记的双膦酸盐溶液中的24小时后，用钳子向片段转移到含有酚红的培养基，并查看使用配置以图像的GFP（485纳米）和二膦酸标签（680 nm）的荧光显微镜组织培养板中。
5.测量乳腺癌细胞移植到骨组织碎片和养殖骨头碎片上清
- 迁移朝向骨组织培养上清液。
注：以一式三份进行实验，从一个给定的样品THR使得3个片段被用来产生3上清。对于每个试验，迁移横跨含有骨上清液与仅含对照培养基三口井三口井相比。- 生成骨炎通过将骨碎片成12孔板每孔含有2.2毫升的DMEM-10％FBS中的孔中的上清液告。文化在37℃组织培养孵化24小时。退出介质在24小时，更换2.2毫升新鲜的DMEM-10％FBS。治疗对照孔含有DMEM-10％FBS的方式相同。
注：该介质是在24小时变更为除去分泌响应于组织创伤手术产生的因素。因为在生成骨组织上清FBS含含含FBS中只包括以控制FBS的乳腺癌细胞迁移的贡献中，水井。 - 在48小时后，收集0.9毫升每种上清液/控制介质和吸管的一部接收机板的孔中。刀片将在后面被放入这些孔中。孵育接收板在组织培养孵化器同时播种的刀片。注意：剩余的上清液（〜蒸发后的1毫升）中，可收集的分泌组实际分析RS如果需要44。
- 种子的Transwell小室，将它们放入一个标准的，空的24孔培养板。吸移管350微升细胞悬浮液含1×10 5个乳腺癌细胞在DMEM-10％FBS的到各刀片的上部，内膜表面， 如图1A所示 。放置含种子插入到37℃组织培养箱中在24孔板45分钟，以促进附着。
- 一旦细胞已附连到插入件中，使用镊子根据制造商的说明将插入传送到接收器板。角度放置到接收器以及防止插入膜和接收机以及上清液之间形成气泡时每次插入。孵育接收机板与刀片20小时在37℃组织培养孵化器。
注意：检查接收板的底侧为插入膜和接收机以及supernatan之间的气泡吨。如果气泡是可见的，删除特定的插件，并再次将它们插入接收机很好，直到无气泡存在。 - 经过20小时的使用镊子从接收机板取出刀片。在步骤使用程序3.6-3.7执行BLI图像已经迁移入并连接到接收器板孔底部的细胞。
- 生成骨炎通过将骨碎片成12孔板每孔含有2.2毫升的DMEM-10％FBS中的孔中的上清液告。文化在37℃组织培养孵化24小时。退出介质在24小时，更换2.2毫升新鲜的DMEM-10％FBS。治疗对照孔含有DMEM-10％FBS的方式相同。
- 移民对骨组织碎片。
注：以一式三份进行实验，从一个给定的样品THR使得3个片段被放入3个独立的刀片，和图3的玻璃珠放入3个独立的刀片作为对照。- 吹打0.9毫升的DMEM-10％FBS的入每个孔制备接收机板。将其放入组织培养的孵化器而准备的刀片。
- 种子的插入，颠倒它们的塑料离心管中，有一个盖的表面上。吸取的DMEM-10％FBS的含1×10 5个乳腺癌细胞D的50微升细胞悬浮液的液滴irectly到每个插入膜外，底表面（其朝上的反相插入）。覆盖离心管箱与盖裂了开，并将其传输到37℃组织培养箱中45分钟，以促进细胞附着。
- 转移离心管方框，组织培养罩，并使用镊子打开种子插入右侧向上，并将它们传送到接收器板的孔中。吸取0.450毫升DMEM-10％FBS为每个插入杯中。使用镊子，传输一个骨组织片段（〜3毫米），为每个准备插入杯中。或者，用玻璃珠作为阴性对照额外的井。将板在组织培养培养箱中20小时。
- 为了测量迁移，制备含有每孔1ml的DMEM-10％FBS的标准的24孔组织培养板。从孵化器中取出接收器板，然后使用镊子，从每个插入转移骨头碎片和珠子到标准板的不同孔。添加荧光素衬底（达到300微克/ ml的终浓度）至每个孔，并利用在步骤3.6-3.7中的过程执行BLI。
6.附加前和后的实验分析
- 分析冲洗骨髓。
- 传送一个骨片段插入一个70微米的细胞滤网放置在50ml锥形管的顶部。使用10毫升注射器与地下25针大力冲洗片段用10ml的PBS中，以获得在锥形管骨髓细胞的悬浮液。离心细胞悬浮液3分钟，在300×g离心并21℃下，吸出上清，重悬沉淀的细胞在PBS或流式细胞其它所需的解决方案。
注：再悬浮量将取决于细胞沉淀后离心分离，和应用的大小而变化。 - 对于存活测定的PBS〜75-300微升体积是合适的，并且这些混悬剂可以分析使用市售fluorescenc根据制造商的说明ë基于活力测定法，吸移到常规血球，并且使用倒置荧光显微镜计数。
- 对于流式细胞仪分析，或基于检测GFP阳性乳腺癌细胞的分选，重悬含有2％FBS，2mM的EDTA的细胞沉淀在1ml PBS中，和10mM的HEPES，使得浓度为1×10 6个细胞/ ml。
- 传送一个骨片段插入一个70微米的细胞滤网放置在50ml锥形管的顶部。使用10毫升注射器与地下25针大力冲洗片段用10ml的PBS中，以获得在锥形管骨髓细胞的悬浮液。离心细胞悬浮液3分钟，在300×g离心并21℃下，吸出上清，重悬沉淀的细胞在PBS或流式细胞其它所需的解决方案。
- H＆E染色及免疫组化。
- 处理用于苏木精 - 伊红（H＆E）染色和/或免疫组织化学的片段，放置在塑料盒标有一个号码2铅笔的片段，并淹没在容器中填充有10％的福尔马林缓冲液24小时。
- 过程中组织进行石蜡包埋，切片和使用，其中包括一个脱钙一步占每个片段中的骨针矿化例行协议染色。
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Representative Results
从股骨头分离组织碎片
股骨头从男性和女性患者（44-90岁）在接受矫形外科系选修全髋关节置换手术在斯坦福大学医学院的数量相等收集。每个丢弃股骨头含有股骨上端，其中窝藏小梁骨组织的矿化骨针和骨髓组成的一小部分。此组织是可透过轴（图2A）的使用外科咬骨钳提取小片段的外科手术暴露的横截面。所提取的片的组织学示于图2B中 ，揭示了矿化和骨髓组件。所提取的外观件横跨从不同患者获得的股骨头，从黄色到红色，这取决于骨髓的脂肪含量而变化， 如图2C所示 。 W¯¯ë表明在短期测定法中使用这些骨组织碎片以测量与设计用于荧光素酶和绿色荧光蛋白表达的乳腺癌细胞的动态相互作用。
共培养乳腺癌细胞毗邻碎骨使用生物发光成像来测量乳房细胞增殖
将培养板安装于共同培养的MDA-MB-231-fLuc-EGFP相邻固定骨块来测量使用BLI乳腺癌细胞增殖的乳腺癌细胞中， 如图3A所示。该板在24小时的BLI是从3个实验示于图3B和BLI信号，表明在存在增强细胞增殖与缺席碎骨示于图3C。
直接接种到骨头碎片共培养乳腺癌细胞研究殖民化和细胞数量
对MCF-7-fLuc-EGFPÇ定植ELLS直接接种到骨组织片段作为通过BLI在24小时测定示于图4A中 ，显示了减少与下降的接种密度相关联的信号。的直种子片段示出在48小时的在图4B中，用荧光biphosophonate试剂标记后，作为成像用荧光显微镜以显示矿化和骨髓车厢内的乳腺癌细胞的定植。这些定植图案也揭示了处理后的实验用于免疫组织化学染色用细胞角蛋白抗体（ 图4C和4D）直接播种的片段。
测量乳腺癌细胞移植到骨组织碎片和养殖骨头碎片上清
MDA-231-fLuc-EGFP细胞朝对面骨组织培养上清液和成骨碎片多孔膜迁移的迁移检测到B李如图5，一种健壮迁移模式向从给定THR试样的三个片段衍生的培养物上清液显示在图5A中 ，它描绘了增加的迁移到含有骨组织上清与对照培养基的孔中。虽然不是所有的迁移模式是这一强劲，移民对骨上清通常比对，在大多数试验中控制更大。一个典型的迁移模式到骨片段从一个给定THR试样示于图5B中。
脸也红骨髓分析
此外，我们说明了骨髓细胞可以从定植片段被刷新，并可以将这些细胞通过流式细胞术（ 图6B），BLI（图6C）中被检测到冲洗乳腺癌细胞，和/或荧光显微镜（ 图6D） 。
测量可行性
图1：设置迁移实验。 （A）在“向前迁移”的实验中，接收器板孔填充有先前生成的骨组织培养上清。被接种到Transwell小室的膜的内，上表面在含有DME-10％FBS的插入杯乳腺癌细胞通过膜迁移并附着到孔的通过BLI底部进行检测。 
图2：从股骨头隔离组织碎片。片段从股骨组织提取后立即固定的（A）中提取使用外科咬骨钳，骨小梁的片段。（B）的组织学显示矿化（白色箭头）和骨髓（黑色箭头）的室中。（C）的松质骨碎片从两个不同的萃取股骨头展示变化的红色与黄色的骨髓内容。 
图3：相邻骨块使用生物发光成像来测量乳房细胞增殖共培养乳腺癌细胞。 （A）的培养板设置为共同培养的MDA-MB-231-fLuc-EGFP相邻固定骨块乳腺癌细胞，如箭头所示：细胞斑点（蓝色），骨蜡（黑色），和骨碎片（红）。骨蜡的位置还注意到由黑色虚线圆。该板被加入培养基前所示。顶部3的孔含有碎骨拴骨蜡和底部的三个孔中包含该板的骨蜡仅。（B）的 BLI在24小时（C）的定量BLI信号对MDA-MB-231-fLuc-EGFP细胞在存在（紫色条）与不断增长的情况下（绿色条）片段三所描述THR标本培养。对于每个THR标本条代表在3个片段含实测平均BLI的价值观 - 对3对照孔。该结果表明，在存在与不存在的骨碎片更高水平的增殖。误差条代表标准误差（P <0.01）。本文转载44。 
图4：检测直接接种到骨碎片乳腺癌细胞。 （A）中的定殖的MCF-7-fLuc-EGFP细胞BLI在24小时为检测直接接种到骨组织碎片，呈现出下降的接种密度相关的信号（B）的在48小时接种后降低。直接播种的片段，并24小时后标记荧光biphosophonate试剂。荧光显微镜揭示EGFP +乳腺癌细胞sociated用矿化骨针（绿色箭头），并与脂肪细胞在骨髓隔室（白色箭头）。这些殖民模式还透露在处理的免疫组化染色与以下72小时共培养（C）和（D）的AE1 / AE3泛细胞角蛋白抗体直接种子片段。在（C）的细胞角蛋白阳性的乳腺癌细胞，箭头所示，是观察到的相邻的骨髓室脂肪细胞。在（D）一种细胞角蛋白阳性的乳腺癌细胞观察附着到矿化骨针。（C）和（D）的再现的许可44。 
图5：测量的乳腺癌细胞迁移到骨组织片段和培养的骨碎片的上清液迁移的MDA-MB-231-fLuc-EGFP细胞朝对面骨组织培养上清液进入，截至24小时与BLI检测碎骨多孔膜迁移。（A）BLI信号增强透出对从给定THR得到培养上清移民标本与控制媒体。（B ）BLI信号表明乳腺癌细胞的迁移模式为从单个THR试样3的骨碎片。骨组织片段通过白色虚线圆表示。含玻璃珠的对照孔示于底部。 
图6：骨髓的检测MDA-MB-231fLUC-EGFP细胞在骨髓从定植片段冲洗的（A）的片段，而不（左）和具有（右）定植乳腺癌细胞，通过BLI作为检测（B）的分析冲洗从片段（A）为f小仪。在骨髓从BLI阳性片段冲洗检测EGFP阳性乳腺癌细胞，但不是BLI阴性片段。（℃）BLI检测从骨髓中从一个BLI阳性片段冲洗培养所得乳腺癌细胞集落。骨髓隔室从BLI阳性片段通红，表示在骨髓细胞中的场的MDA-MB-231fLUC-EFGP细胞（D）的荧光显微镜。 
图7：测量存活率存活率为从组织碎片从4 THR分离冲洗骨髓细胞采集后和在立即标本24，48，72小时和6天培养在DMEM-10％FBS中。培养基在24和72小时变化。
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Discussion
梅拉等人以前描述了死后收集和骨标本分析转移性前列腺癌患者收获在尸检时，露出高质量组织和验证的使用人骨样品来研究转移过程47。在这里，我们已经描述了协议，用于收集，处理和使用从下面的THR手术在短期共培养系统来研究乳腺癌细胞的迁移，定居和增殖丢弃股骨头获得的人骨组织碎片。大约300,000髋关节置换手术是在美国（矫形外科医生的美国学院; Orthoinfo.aaos.org）每年进行的，这些标本通常被丢弃。其中最常见的适应症这种手术的是髋关节的骨关节炎，导致软骨的表面覆盖股骨头，从而导致关节疼痛的逐渐分解。在全髋关节replacem耳鼻喉科手术股骨上端的一小部分与股骨头除去沿。股骨是乳腺癌转移48的一个共同的位点，并且这些样品含有小梁骨组织，转移性乳腺癌细胞定居的部位。谁接受髋关节置换手术患者大多是50-80岁，即括号多年的高峰期乳腺癌发病年龄范围。因此，这些组织构成为研究乳腺癌的骨转移的小生的宝贵资源。
有与这些技术相关的几个关键步骤和注意事项。首先，一个良好的品质外科ronguer是用于提取小小梁骨碎片，同时保持股骨头在相反的，戴手套的手是必不可少的。钳将无法工作，因为他们没有足够的坚固提取含矿化骨针小梁组织。在这些测定中的另一个重要的考虑是关于乳腺细胞系的处理和传代，particularly在考虑到迁移测定。长期通道和/或变性的胰蛋白酶消化程序可导致顺序选择多/少顽强的细胞群，有可能改变在实验的迁移反应。另一个问题涉及到的实验的标准化，因为从不同的年龄和疾病状态的患者获得的外科组织的变性。为了解决这个问题，我们采用的被检体内的实验设计，其中所有变量都以一式三份进行测试（ 例如 ，跨越三个片段/实验孔与三个片段/对照孔），使用的片段从一个给定的患者的手术标本。变量可以采用这样的设计上从多个病人的标本进行测试，并使用配对t检验进行数据平均重复分析进行统计学显着性，和/或主体内单向ANOVA用于通过重复数据。最后，这种方法的一个主要限制因素是VIAB的短窗口外植体培养过程中ility。
我们的测量结果揭示了〜90％的骨髓存活率上收集的当天，以符合从骨髓吸出物49得到活力测量。随着时间的推移，然而，我们观察到一个逐渐下降超过天2和3，与由6天存活率的巨大的损失虽然我们未测定矿化隔室的生存能力，定性观察表明，有在的生存能力的类似下降骨衬成骨细胞和骨细胞，如在图4D所示。基于这些实验中，我们限制了我们的文化实验，在48或72小时进行短期研究。初步实验（不含税）表示，生存能力，可以使用配方市售的媒体来维持骨髓细胞提高。然而，我们还没有其特征在这些实验中的骨髓细胞群，并且不知道是否从所选择的改进的生存力的结果生长一定的骨髓细胞亚群。协议的发展，以维持和扩展这些外植体的可行性将是重要的，以促进该模型系统。
尽管这种模式被限制为短的时间段，在相对于它的主要优点的其他方法包括以下特点：1）完整的三维组织窝藏在构成人骨微环境，2）可访问到骨微环境监测有关的细胞类型和扰动动态相互作用，3）高数量每样品片段进行重复实验，并且4）低成本相比动物模型。
尽管我们已经描述测定法用于研究乳腺癌转移到骨骼，这些标本和方法可以容易地扩展到其它骨寻求恶性肿瘤如前列腺癌，以及其他骨病症的研究。虽然我们已经使用了丢弃股骨头主要作为这样组织碎片urce，这些样品也构成人骨髓，这是传统上通过骨髓穿刺从年轻志愿者中采集的额外来源。最后，尽管我们已经描述了使用设计用于生物发光和荧光的细胞系的方法，多数的程序可以被修改为与其他细胞的使用，如果这些细胞系和/或成像的平台不可用。
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Acknowledgments
这些研究提供资金，部分通过从替代研究与发展基金会（107588），美国国立卫生研究院（1U54CA136465-04S1），和加州乳腺癌研究发展计划（201B-0141）资助。我们感谢博士。安德鲁·威尔伯和R.斯科特·麦基弗的慷慨捐赠自己
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DMEM (1X) + GlutaMAX-l | Life Technologies | 10569-010 | Supplement all DMEM with 10% fetal bovine serum and 1% Pen/Strep |
| McCoy's 5A Medium (1X) | Life Technologies | 16600-082 | Supplement all McCoy's with 10% fetal bovine serum and 1% Pen/Strep |
| Fetal bovine serum | Life Technologies | 16000-044 | |
| Penicillen Streptomycin | Life Technologies | 15140-122 | |
| Blastocidin (10 mgl/ml) | InvivoGen | ant-bl | Supplement media used for transfected cell lines. |
| Falcon® Cell Culture Inserts for 24 Well Plate with Transparent PET Membrane (8.0 μm pore size) | Corning Incorporated | 353097 | |
| Falcon® 24 Well TC-Treated Polystyrene Cell Culture Insert Companion Plate | Corning Incorporated | 353504 | |
| LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit *for mammalian cells* | Invitrogen Detection Technologies | L-3224 | |
| FluoroBrite DMEM | Life Technologies | A18967-01 | |
| D-luciferin firefly, potassium salt 5 g (30 mg/ml) | Life Technologies | L-8220 | |
| Sterile Cell Strainer 70 μm | Fisher Scientific | 22363548 | |
| 6 Well TC-Treated Cell Culture Cluster | Corning Incorporated | 3516 | |
| 12 Well TC-Treated Cell Culture Cluster | Corning Incorporated | 3513 | |
| 24 Well TC-Treated Cell Culture Cluster | Corning Incorporated | 3526 | |
| Friedman-Pearson Rongeur | Fine Science Tools | 16021-14 | |
| Bone wax | Surgical Specialties Corporation | 903 | |
| IVIS 50 Imaging Platform | Caliper Life Sciences/PerkinElmer | ||
| Living Image Software Program | Caliper Life Sciences/PerkinElmer | 133026 | |
| EVOS FL Imaging System | Life Technologies | Version 4.2 | |
| OsteoSense 680 EX | PerkinElmer | NEV10020EX | |
| MCF-7 breast cancer cells | ATCC | HTB-22 | |
| MDA-MB-231 breast cancer cells | ATCC | HTB-26 | |
| Monoclonal mouse anti-human cytokeratin antibody | DAKO Cytomation | Clone (AE1/AE3) |
References
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