Summary

TChIP-Seq: יצירת פרופילים ייחודיים לסוג התא Epigenome

Published: January 23, 2019
doi:

Summary

אנו מתארים פרוטוקול צעד אחר צעד עבור טנדם כרומטין רצף immunoprecipitation (tChIP-Seq) המאפשרת הניתוח של שינוי היסטון הגנום כולו ייחודיים לסוג התא.

Abstract

תקנה epigenetic ממלא תפקיד מרכזי ביטוי גנים. מאז שינוי היסטון התגלה בשנות השישים, תפקידיה פיזיולוגיים ופתולוגיים נחקרו בהרחבה. אכן, כניסתו של רצף עמוק הדור הבא, immunoprecipitation כרומטין (ChIP) באמצעות נוגדנים שינוי היסטון ספציפי יש מהפכה התפיסה שלנו לגבי רגולציה epigenetic ברחבי הגנום. לעומת זאת, רקמות בדרך כלל מורכבים של סוגי תאים שונים, תערובת מורכבת שלהם מציב אתגרים אנליטית כדי לחקור את epigenome בסוג לתא מסוים. כדי לטפל המדינה כרומטין ייחודיים לסוג התא באופן הגנום כולו, שפיתחנו לאחרונה טנדם כרומטין immunoprecipitation רצף (tChIP-Seq), אשר מבוססת על הטיהור סלקטיבי של כרומטין על-ידי הליבה מתויג חלבוני היסטון מתא סוגי ריבית, ואחריו שבב-תת סעיף. המטרה של פרוטוקול זה הוא ההקדמה של שיטות עבודה מומלצות של tChIP-תת סעיף. טכניקה זו מספקת כלי רב-תכליתי לחקירה רקמות ספציפיות epigenome שינויים היסטון מגוונים, מודל אורגניזמים.

Introduction

ברקמות של בעלי חיים מורכבים של סוגי תאים שונים. הכונה בכל תא מגדיר את סוג התא. כרומטין שינויים – DNA מתילציה של היסטון-שינוי – ביסוד יחודיות תא-סוג של ביטוי גנים. לפיכך, המדידה של תקנה epigenetic בסוג התא כל רצונך בכך, אבל זה כבר אתגר טכני.

כדי לחקור את אפיגנטיקה בסוג לתא מסוים, היה רצף immunoprecipitation טנדם כרומטין (tChIP-Seq) פיתחה לאחרונה (איור 1)1. TChIP, מבוטא מתויג epitope הליבה היסטון חלבון ויזת עבודה H2B מ מקדם ייחודיים לסוג התא. תכונה זו מאפשרת את ניתוקה של chromatins את התאים של עניין, למרות החומר מתחיל תערובת של סוגי תאים שונים. השבב הבא-Seq — כרומטין טיהור באמצעות שינוי היסטון מארק בעלת רצף עמוק הדור הבא של מבודדים DNA – נוכל לעקוב אחר המצב epigenetic סוג התא יישוב באופן הגנום כולו.

בעזרת טכניקה זו, חקרנו לאחרונה נוירון ספציפי trimethylation של היסטון H3 חלבון-ליזין 4 (H3K4me3) סימני. במחקר זה, פיתחנו בטוק עכבר ב אילו C-סופני מתויג דגל ויזת עבודה H2B חלבון בא לידי ביטוי על רקומבינציה בתיווך Cre (Rosa26חטיבתי floxed-pA ויזת עבודה H2B-דגל…). על ידי מעבר עם עכבר אחזקת הגן רשת (ER) Cre-endoplasmic תחת השליטה של האמרגן CamK2a, הקו העכבר שהושג המושרה ויזת עבודה H2B-דגל בנוירונים פעיל עם טמוקסיפן הזרקה (Camk2aויזת עבודה H2B-דגל)1. החל מהמוח של הקו העכבר הוקמה, ביצענו tChIP-Seq עם נוגדן anti-H3K4me3. מאז H3K4me3 סימני לעיתים קרובות להתאים לאזורים יזם, נוכל לגלות מאות mRNAs במיוחד לידי ביטוי נוירונים1.

כאן, אנו מתארים שיטה tChIP טיפוסי-Seq שמכסה את השלבים של רקמות לנתיחה לבנייה הספרייה (איור 1). המטרה הסופית של פרוטוקול זה היא לשתף שלנו מומלצות עבור הביצועים של tChIP-Seq לבין היישום העתידי של שיטה זו על סוגי תאים אחרים והשינויים היסטון.

Protocol

כל השיטות המתוארות במסמך זה מאושר על ידי מחלקת הבטיחות של RIKEN (H27-EP071), שנערך עם רלוונטיות הנחיות ותקנות. 1. רקמות לנתיחה לנתח את רקמות עניין לחתיכות קטנות (כ < 3 מ מ2) באמצעות מספריים אביבי נאה.הערה: שברים גדולים יותר של רקמת להתארך להקפיא, חתיכות קטנות תישא על אחסון ?…

Representative Results

כאן, אנו מתארים את רקמת לנתיחה, קיבוע, פירוק התא, טנדם טיהור של כרומטין, ספריית DNA הכנה סקוונסרים הדור הבא. במהלך ההליכים, אחד יכול לבדוק את האיכות של ה-DNA, אשר היא המפתח רצף מוצלח, על מספר השלבים (איור 2). מאז נוקלאוזום בודד מוקף בדרך כלל bp 147 דנ א 4, ?…

Discussion

פרוטוקול שלנו היה ממוטב הנוירונים במוח העכבר, שבו הביטוי של ויזת עבודה H2B מתויג דגל הנגרמת על ידי הזרקת טמוקסיפן. היזמים להשתמש בביטוי ויזת עבודה H2B, חומרים רקמת המוצא של הסכום של הרקמות הם פרמטרים מרכזי עבור מוצלחת tChIP-תת סעיף. לפיכך, אופטימיזציה של גורמים אלה להתייחס לכל סוג התא של ריבית.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לכל חברי המעבדה איוואסאקי לקריאה ביקורתית של כתב היד. עבודה זו נתמכה בחלקו על ידי מענק הסיוע למחקר מדעי בתחומים חדשניים (#26113005 כיהן ו JP17H05679 ל ס. י); מענק הסיוע מדענים ומפתחים צעירים (א) (JP17H04998 ל ס. י) מ משרד החינוך, המדע, הספורט והתרבות של יפן (MEXT); והחלוץ פרויקטים “אבולוציה סלולרית” ו RIKEN כל פרוייקט “המחלה, Epigenome” מ RIKEN (כדי כיהן, ס. י).

Materials

Protein LoBind tube, 2 mL Eppendorf No. 0030108132 For cell lysis
Protein LoBind tube, 1.5 mL Eppendorf No. 0030108116 For ChIP and library preparation
DNA LoBind tube, 1.5 mL Eppendorf No. 0030108051 For ChIP and library preparation
8-strip PCR tube BIO-BIK 3247-00 For ChIP and library preparation
SK Mill TOKKEN SK-200 Handy cryogenic grinder to make cell powder for fixation
Metal bullet TOKKEN SK-100-DLC10 Accessory of SK Mill
2 mL stainless steel tube TOKKEN TK-AM5-SUS An option for cell lysis
2 mL stainless steel tube holder TOKKEN SK-100-TL An option for cell lysis
16% formaldehyde (w/v), methanol-free Pierce 28906 To fix cells. Prepare 1% solution before use.
Glycine Nacalai Tesque 17109-35 Prepare 2.5 M stock
D-PBS (-)(1x) Nacalai Tesque 14249-24 For washing lysate and purified DNA
HEPES Nacalai Tesque 02443-05 For Lysis buffer 1. Prepare 1 M, pH 7.5 stock.
5 M NaCl, molecular biology grade Nacalai Tesque 06900-14 For Lysis buffer 1, Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer
0.5 M EDTA, molecular biology grade Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 311-90075 For Lysis buffer 1, Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer
Glycerol Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 072-04945 For lysis buffer 1
NP-40 Nacalai Tesque 25223-75 For lysis buffer 1
Triton X-100, molecular biology grade Nacalai Tesque 12967-32 For Lysis buffer 1
Tris Nacalai Tesque 35406-91 For Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer. Prepare 1 M, pH 8.0 stock.
0.1 M EGTA pH neutral Nacalai Tesque 08947-35 For Lysis Buffer 2
Protease inhibitor cocktail (100x) Nacalai Tesque 25955-24 To block degradation of protein
RIPA buffer Thermo Fisher Scientific 89900 For cell lysis and washing
milliTUBE 1 mL AFA Fiber Covaris 520130 Sonicator tube. Accessory of Focused-ultrasonicator
Focused-ultrasonicator Covaris S220 or E220 To digest DNA into adequate size for ChIP-Seq
UltraPure 10% SDS Thermo Fisher Scientific 15553-027 For ChIP Elution Buffer
RNase A Nacalai Tesque 30141-14 To purify DNA from lysate
Proteinase K, recombinant, PCR Grade Sigma-Aldrich 3115887001 To purify DNA from lysate
Ethanol Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 054-07225 Make 70% solution
Monoclonal anti-FLAG M2 antibody produced in mouse Sigma-Aldrich F1804 To purify chromatin expressed in cells of interest
Dynabead M-280 Sheep Anti-Mouse IgG Thermo Fisher Scientific 11201D This can be used for anti-FLAG IP and anti-H3K4me3 IP
Anti-tri-methyl histone H3 (K4), mouse monoclonal antibody Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 301-34811 Any other antibody that works for ChIP analysis will work
10x Blocking Reagent Sigma-Aldrich 11096176001 For blocking during affinity purification
Denhardt’s solution Nacalai Tesque 10727-74 For blocking during affinity purification
Glycogen (5 mg/ml) Thermo Fisher Scientific AM9510 To purify DNA from lysate
Qubit 2.0 Fluorometer Thermo Fisher Scientific Q32866 For quantification of isolated DNA
Qubit dsDNA HS Assay Kit Thermo Fisher Scientific Q32851 For quantification of isolated DNA
0.5 mL tube Axygen 10011-830 For quantification by Qubit
Phenol/chloroform/isoamyl alcohol (25:24:1) Nacalai Tesque 25970-56 To purify DNA from lysate
AMPure XP beads Beckman Coulter A63881 SPRI magnetic beads for library preparation
Metal ice rack Funakoshi IR-1 To keep the cell lysate frozen
Sample Cooler New England Biolabs T7771S Helps fix cells with minimal damage
2100 Bioanalyzer Agilent Technologies G2939BA To check the quality of isolated DNA fragments. Another fragment analyzer can be used.
Bioanalyzer 2100 Expert Software Agilent Technologies G2946CA Supplied with the Bioanalyzer
High Sensitivity DNA Kit Agilent Technologies 5067-4626 To check the quality of the isolated DNA fragments
KAPA LTP Library Preparation Kit Roche 07961898001 Supplied with 10x KAPA End Repair Buffer, KAPA End Repair Enzyme Mix, KAPA A-Tailing Buffer, KAPA A-Tailing Enzyme, KAPA Ligation Buffer, KAPA DNA Ligase, and PEG/NaCl solution
NEXTflex DNA Barcodes BIOO Scientific NOVA-514101 Adapter for library preparation. Supplied with DNA Barcode Adapters and Primer Mix.
KAPA Real-Time Library Amplification Kit Roche 07959028001 Supplied with 2x KAPA HiFi HS real-time PCR Master Mix, PCR Primer Mix, and Fluorescent Standards
2x KAPA HiFi HotStart ReadyMix Roche KM2602 For library preparation. Additionally, this enzyme may be required for the KAPA Real-Time Library Amplification Kit
Buffer EB Qiagen 19086 10 mM Tris-Cl, pH 8.5 for elution of DNA
386-well qPCR plate Thermo Fisher Scientific 4309849 For real-time PCR
QuantStudio 7 Flex Real-Time PCR System Thermo Fisher Scientific 4485701 To quantify DNA
MicroAmp Optical Adhesive Film Thermo Fisher Scientific 4311971 For real-time PCR
MicroAmp Clear Adhesive Film Thermo Fisher Scientific 4306311 For plate sealing
End-repair master mix Combine 1.4 µL of 10x KAPA End Repair Buffer, 1 µL of KAPA End Repair Enzyme Mix, and 1.6 µL of H2O
A-taling master mix Combine 1 µL of KAPA A-Tailing Buffer, 0.6 µL of KAPA A-Tailing Enzyme, and 8.4 µL of H2O
Ligation buffer mix Combine 2 µL of KAPA ligation buffer and 6 µL of H2O
Real-time PCR master mix Combine 5 µL of 2x KAPA HiFi HS real-time PCR Master Mix, 0.35 µL of PCR Primer Mix (10 µM each of forward primer AATGATACGGCGACCACCGAG and reverse primer CAAGCAGAAGACGGCATACGAG), and 3.15 µL of H2O
PCR master mix Combine 10 µL of 2x KAPA HiFi Ready Mix, 0.9 µL of PCR Primer Mix, and 0.6 µL of H2O
Integrative Genomics Viewer Broad Institute IGV_2.3.88 Genome browser to visualize sequencing data
DNA olgionucleotide: 5′-GCCTACGCAGGTCTTGCTGAC-3′ Eurofins Genomics A primer to amplify the promoter region of GAPDH
DNA olgionucleotide: 5′-CGAGCGCTGACCTTGAGGTC-3′ Eurofins Genomics A primer to amplify the promoter region of GAPDH
SYBR Premix Ex Taq Takara RR420L To quantify the DNA corresponding to the GADPH promoter region
Thermal Cycler Dice Takara TP870 To quantify the DNA corresponding to the GADPH promoter region

References

  1. Mito, M., et al. Cell type-specific survey of epigenetic modifications by tandem chromatin immunoprecipitation sequencing. Scientific Reports. 8 (1), 1143 (2018).
  2. Kadota, M., et al. CTCF binding landscape in jawless fish with reference to Hox cluster evolution. Scientific Reports. 7 (1), 4957 (2017).
  3. Jung, Y. L., et al. Impact of sequencing depth in ChIP-seq experiments. Nucleic Acids Research. 42 (9), (2014).
  4. Becker, P. B., Workman, J. L. Nucleosome remodeling and epigenetics. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (9), a017905 (2013).
  5. Kidder, B. L., Zhao, K. Efficient library preparation for next-generation sequencing analysis of genome-wide epigenetic and transcriptional landscapes in embryonic stem cells. Methods in Molecular Biology. , 3-20 (2014).
  6. Gilfillan, G. D., et al. Limitations and possibilities of low cell number ChIP-seq. BMC Genomics. 13, 645 (2012).
  7. Schmidl, C., Rendeiro, A. F., Sheffield, N. C., Bock, C. ChIPmentation: fast, robust, low-input ChIP-seq for histones and transcription factors. Nature Methods. 12 (10), 963-965 (2015).
  8. Zhang, Y., et al. An RNA-sequencing transcriptome and splicing database of glia, neurons, and vascular cells of the cerebral cortex. Journal of Neuroscience. 34 (36), 11929-11947 (2014).
  9. Hornstein, N., et al. Ligation-free ribosome profiling of cell type-specific translation in the brain. Genome Biology. 17 (1), 149 (2016).
  10. Zhao, Y., Garcia, B. A. Comprehensive catalog of currently documented histone modifications. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7 (9), a025064 (2015).
  11. Hoffman, E. A., Frey, B. L., Smith, L. M., Auble, D. T. Formaldehyde crosslinking: a tool for the study of chromatin complexes. The Journal of Biological Chemistry. 290 (44), 26404-26411 (2015).

Play Video

Cite This Article
Mito, M., Kadota, M., Nakagawa, S., Iwasaki, S. TChIP-Seq: Cell-Type-Specific Epigenome Profiling. J. Vis. Exp. (143), e58298, doi:10.3791/58298 (2019).

View Video