We beschrijven een stapsgewijze protocol voor tandem chromatine immunoprecipitation sequencing (tChIP-Seq) waarmee de analyse van cel-type-specifieke genoom-brede Histon wijziging.
Epigenetische regulatie speelt een centrale rol in genexpressie. Aangezien Histon wijziging werd ontdekt in de jaren 1960, zijn de functies van de fysiologische en pathologische uitvoerig bestudeerd. Inderdaad, de komst van de volgende generatie diepe Sequencen en chromatine immunoprecipitation (ChIP) via specifieke Histon wijziging antistoffen heeft een revolutie teweeggebracht in onze visie op de Epigenetische regulatie over het genoom. Omgekeerd, weefsels bestaan meestal uit diverse celtypes, en hun complex mengsel vormt analytische uitdagingen op het onderzoek naar de epigenome in een bepaald celtype. Om aan te pakken de cel type-specifieke chromatine staat in een genoom-brede manier, ontwikkeld we onlangs tandem chromatine immunoprecipitation sequencing (tChIP-Seq), die is gebaseerd op de selectieve zuivering van de chromatine tagged kern Histon eiwitten uit cel typen van belang, gevolgd door ChIP-Seq. Het doel van dit protocol is de invoering van beste praktijken van tChIP-Seq. Deze techniek biedt een veelzijdig instrument voor weefsel-specifieke epigenome onderzoek in diverse histone modificaties en modelorganismen.
Weefsels van dieren bestaan uit diverse celtypes. De genregulatie in elke cel definieert het celtype. Wijzigingen van de chromatine – DNA methylering en Histon modificatie – ten grondslag liggen aan de specificiteit van de cel-type van de genexpressie. Dus de meting van de Epigenetische regulatie in elk celtype heeft al verlangd, maar het is een technische uitdaging geweest.
Om te onderzoeken de epigenetica in een bepaald celtype, was tandem chromatine immunoprecipitation sequencing (tChIP-Seq) onlangs ontwikkelde ()Figuur 1)1. In tChIP, epitoop-gelabeld kern Histon eiwit H2B uitgedrukt van een cel-type-specifieke promotor. Deze functie kan de isolatie van de chromatins uit de cellen van belang, hoewel het materiaal uit een mengsel van verschillende celtypes begint. Volgende ChIP-Seq — chromatine zuivering via een bewerkt-Histon mark en de volgende generatie diepe sequentiebepaling van geïsoleerd DNA — wij de epigenetische status van de gerichte celtype in een genoom-brede manier kunnen controleren.
Met behulp van deze techniek, we onlangs onderzocht neuron-specifieke trimethylation van Histon H3 eiwit op lysine 4 (H3K4me3) merken. In deze studie ontwikkelden we een knock-in muis in welke C-terminaal vlag-gelabeld H2B eiwit werd uitgedrukt op Cre-gemedieerde recombinatie (Rosa26CAG floxed-pA H2B-vlag). Door kruising met een muis bezitten van het Cre-endoplasmic reticulum (ER) gen onder de controle van de promotor van de CamK2a, geïnduceerde de lijn verkregen muis H2B-vlag in actieve neuronen op tamoxifen injectie (Camk2aH2B-vlag)1. Vanaf de hersenen van de gevestigde muis lijn, we tChIP-Seq met anti-H3K4me3 antistof uitgevoerd. Aangezien H3K4me3 merken komen vaak met promotor regio’s overeen, kunnen we honderden mRNAs specifiek uitgedrukt in neuronen1ontdekken.
Hier beschrijven we een typisch tChIP-Seq methode dat betrekking heeft op de stappen van weefsel dissectie naar bibliotheek bouw ()Figuur 1). Het uiteindelijke doel van dit protocol is het delen van onze best practices voor de prestaties van tChIP-Seq en de toekomstige toepassing van deze methode op andere celtypes en histone modificaties.
Ons protocol is geoptimaliseerd voor de neuronen van de hersenen van de muis, waarin de uitdrukking van vlag-gelabeld H2B wordt veroorzaakt door tamoxifen injectie. Initiatiefnemers gebruikt voor H2B expressie, uitgangsmateriaal weefsel, en het bedrag van de weefsels worden centrale parameters voor succesvolle tChIP-Seq. Dus, de optimalisatie van deze factoren moet worden beschouwd als voor elk celtype van belang.
Een kritieke stap onder de procedures die in dit protocol is het DNA Schuintrekk…
The authors have nothing to disclose.
Wij danken alle leden van de lab Iwasaki voor kritische lezing van het manuscript. Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door een Grant-in-Aid voor wetenschappelijkonderzoek op innovatieve gebieden (#26113005 S.N. te JP17H05679 naar S.I.); een Grant-in-Aid voor jonge wetenschappers (A) (JP17H04998 naar S.I.) van het ministerie van onderwijs, wetenschap, sport en cultuur van Japan (MEXT); en de exploratie-projecten “Cellulaire evolutie” en alle RIKEN project “Ziekte en Epigenome” van RIKEN (aan S.N. en S.I.).
Protein LoBind tube, 2 mL | Eppendorf | No. 0030108132 | For cell lysis |
Protein LoBind tube, 1.5 mL | Eppendorf | No. 0030108116 | For ChIP and library preparation |
DNA LoBind tube, 1.5 mL | Eppendorf | No. 0030108051 | For ChIP and library preparation |
8-strip PCR tube | BIO-BIK | 3247-00 | For ChIP and library preparation |
SK Mill | TOKKEN | SK-200 | Handy cryogenic grinder to make cell powder for fixation |
Metal bullet | TOKKEN | SK-100-DLC10 | Accessory of SK Mill |
2 mL stainless steel tube | TOKKEN | TK-AM5-SUS | An option for cell lysis |
2 mL stainless steel tube holder | TOKKEN | SK-100-TL | An option for cell lysis |
16% formaldehyde (w/v), methanol-free | Pierce | 28906 | To fix cells. Prepare 1% solution before use. |
Glycine | Nacalai Tesque | 17109-35 | Prepare 2.5 M stock |
D-PBS (-)(1x) | Nacalai Tesque | 14249-24 | For washing lysate and purified DNA |
HEPES | Nacalai Tesque | 02443-05 | For Lysis buffer 1. Prepare 1 M, pH 7.5 stock. |
5 M NaCl, molecular biology grade | Nacalai Tesque | 06900-14 | For Lysis buffer 1, Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer |
0.5 M EDTA, molecular biology grade | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 311-90075 | For Lysis buffer 1, Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer |
Glycerol | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 072-04945 | For lysis buffer 1 |
NP-40 | Nacalai Tesque | 25223-75 | For lysis buffer 1 |
Triton X-100, molecular biology grade | Nacalai Tesque | 12967-32 | For Lysis buffer 1 |
Tris | Nacalai Tesque | 35406-91 | For Lysis buffer 2, ChIP Elution Buffer, and Tris-EDTA-NaCl Buffer. Prepare 1 M, pH 8.0 stock. |
0.1 M EGTA pH neutral | Nacalai Tesque | 08947-35 | For Lysis Buffer 2 |
Protease inhibitor cocktail (100x) | Nacalai Tesque | 25955-24 | To block degradation of protein |
RIPA buffer | Thermo Fisher Scientific | 89900 | For cell lysis and washing |
milliTUBE 1 mL AFA Fiber | Covaris | 520130 | Sonicator tube. Accessory of Focused-ultrasonicator |
Focused-ultrasonicator | Covaris | S220 or E220 | To digest DNA into adequate size for ChIP-Seq |
UltraPure 10% SDS | Thermo Fisher Scientific | 15553-027 | For ChIP Elution Buffer |
RNase A | Nacalai Tesque | 30141-14 | To purify DNA from lysate |
Proteinase K, recombinant, PCR Grade | Sigma-Aldrich | 3115887001 | To purify DNA from lysate |
Ethanol | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 054-07225 | Make 70% solution |
Monoclonal anti-FLAG M2 antibody produced in mouse | Sigma-Aldrich | F1804 | To purify chromatin expressed in cells of interest |
Dynabead M-280 Sheep Anti-Mouse IgG | Thermo Fisher Scientific | 11201D | This can be used for anti-FLAG IP and anti-H3K4me3 IP |
Anti-tri-methyl histone H3 (K4), mouse monoclonal antibody | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 301-34811 | Any other antibody that works for ChIP analysis will work |
10x Blocking Reagent | Sigma-Aldrich | 11096176001 | For blocking during affinity purification |
Denhardt’s solution | Nacalai Tesque | 10727-74 | For blocking during affinity purification |
Glycogen (5 mg/ml) | Thermo Fisher Scientific | AM9510 | To purify DNA from lysate |
Qubit 2.0 Fluorometer | Thermo Fisher Scientific | Q32866 | For quantification of isolated DNA |
Qubit dsDNA HS Assay Kit | Thermo Fisher Scientific | Q32851 | For quantification of isolated DNA |
0.5 mL tube | Axygen | 10011-830 | For quantification by Qubit |
Phenol/chloroform/isoamyl alcohol (25:24:1) | Nacalai Tesque | 25970-56 | To purify DNA from lysate |
AMPure XP beads | Beckman Coulter | A63881 | SPRI magnetic beads for library preparation |
Metal ice rack | Funakoshi | IR-1 | To keep the cell lysate frozen |
Sample Cooler | New England Biolabs | T7771S | Helps fix cells with minimal damage |
2100 Bioanalyzer | Agilent Technologies | G2939BA | To check the quality of isolated DNA fragments. Another fragment analyzer can be used. |
Bioanalyzer 2100 Expert Software | Agilent Technologies | G2946CA | Supplied with the Bioanalyzer |
High Sensitivity DNA Kit | Agilent Technologies | 5067-4626 | To check the quality of the isolated DNA fragments |
KAPA LTP Library Preparation Kit | Roche | 07961898001 | Supplied with 10x KAPA End Repair Buffer, KAPA End Repair Enzyme Mix, KAPA A-Tailing Buffer, KAPA A-Tailing Enzyme, KAPA Ligation Buffer, KAPA DNA Ligase, and PEG/NaCl solution |
NEXTflex DNA Barcodes | BIOO Scientific | NOVA-514101 | Adapter for library preparation. Supplied with DNA Barcode Adapters and Primer Mix. |
KAPA Real-Time Library Amplification Kit | Roche | 07959028001 | Supplied with 2x KAPA HiFi HS real-time PCR Master Mix, PCR Primer Mix, and Fluorescent Standards |
2x KAPA HiFi HotStart ReadyMix | Roche | KM2602 | For library preparation. Additionally, this enzyme may be required for the KAPA Real-Time Library Amplification Kit |
Buffer EB | Qiagen | 19086 | 10 mM Tris-Cl, pH 8.5 for elution of DNA |
386-well qPCR plate | Thermo Fisher Scientific | 4309849 | For real-time PCR |
QuantStudio 7 Flex Real-Time PCR System | Thermo Fisher Scientific | 4485701 | To quantify DNA |
MicroAmp Optical Adhesive Film | Thermo Fisher Scientific | 4311971 | For real-time PCR |
MicroAmp Clear Adhesive Film | Thermo Fisher Scientific | 4306311 | For plate sealing |
End-repair master mix | Combine 1.4 µL of 10x KAPA End Repair Buffer, 1 µL of KAPA End Repair Enzyme Mix, and 1.6 µL of H2O | ||
A-taling master mix | Combine 1 µL of KAPA A-Tailing Buffer, 0.6 µL of KAPA A-Tailing Enzyme, and 8.4 µL of H2O | ||
Ligation buffer mix | Combine 2 µL of KAPA ligation buffer and 6 µL of H2O | ||
Real-time PCR master mix | Combine 5 µL of 2x KAPA HiFi HS real-time PCR Master Mix, 0.35 µL of PCR Primer Mix (10 µM each of forward primer AATGATACGGCGACCACCGAG and reverse primer CAAGCAGAAGACGGCATACGAG), and 3.15 µL of H2O | ||
PCR master mix | Combine 10 µL of 2x KAPA HiFi Ready Mix, 0.9 µL of PCR Primer Mix, and 0.6 µL of H2O | ||
Integrative Genomics Viewer | Broad Institute | IGV_2.3.88 | Genome browser to visualize sequencing data |
DNA olgionucleotide: 5′-GCCTACGCAGGTCTTGCTGAC-3′ | Eurofins Genomics | A primer to amplify the promoter region of GAPDH | |
DNA olgionucleotide: 5′-CGAGCGCTGACCTTGAGGTC-3′ | Eurofins Genomics | A primer to amplify the promoter region of GAPDH | |
SYBR Premix Ex Taq | Takara | RR420L | To quantify the DNA corresponding to the GADPH promoter region |
Thermal Cycler Dice | Takara | TP870 | To quantify the DNA corresponding to the GADPH promoter region |