Summary
Hier presenteren we een protocol waarbij genetisch gekoppelde spectraal verschillende photoactivatable en fluorescente proteïnen. Deze TL proteïne Chimaera toestaan kwantificering van de PA-FP-breuk thats photoactivated als tl, dat wil zeggen, de efficiëntie van de photoactivation. Het protocol blijkt dat verschillende vervoerswijzen photoactivation verschillende photoactivation efficiëntieverbeteringen opleveren.
Abstract
Photoactivatable en -converteerbare fluorescente proteïnen (PA-FPs) hebben in fluorescentie live-cel microscopie is gebruikt voor het analyseren van de dynamiek van cellen en eiwit ensembles. Tot nu toe geen methode beschikbaar te kwantificeren in bulk geweest en in levende cellen hoeveel van de PA-FPs uitgedrukt zijn photoactivated te lichten.
Hier presenteren we een protocol met betrekking tot interne heersers, dat wil zeggen, genetisch waaraan spectraal onderscheiden (photoactivatable) fluorescente proteïnen, ratiometrically kwantificeren van de Fractie van alle PA-FPs, uitgedrukt in een cel die zijn ingeschakeld als TL. Met behulp van dit protocol, laten we zien dat de verschillende vervoerswijzen photoactivation verschillende photoactivation efficiëntie opgeleverd. Korte high-power photoactivation met een confocale laser scanning microscoop (CLSM) resulteerde in tot viermaal lagere photoactivation efficiëntie dan honderden low-level vorderingen toegepast door CLSM of een korte puls toegepast door widefield verlichting. Terwijl het protocol heeft hier zijn geïllustreerd voor (PA-) GFP en Cherry (PA-), kan het in principe worden toegepast op elk spectraal verschillende photoactivatable of photoconvertible TL proteïne paar en een experimentele opstelling.
Introduction
In 2002, werden de eerste breed toepasbare photoactivatable (PA-GFP1) en photoconvertible (Kaede2) fluorescente proteïnen beschreven. Deze optische markeerstift fluorescente proteïnen wijzigen hun spectrale eigenschappen bij bestraling met UV-licht, dat wil zeggen, ze helder (photoactivatable fluorescerende eiwitten, dat wil zeggen, PA-FPs) of hun kleur (photoconvertible wijzigen FPs). Tot op heden, zijn verschillende omkeerbaar en onomkeerbare photoactivatable en photoconvertible fluorescerende eiwitten ontwikkelde3,4. In ensemble of bulk studies, zijn optische markeerstiften gebruikt om de dynamiek van hele cellen of eiwitten, en de connectiviteit van subcellular compartimenten te studeren. Bovendien gebaseerd optische markeerstiften ingeschakeld single-molecuul super-resolution beeldvormende technieken zoals PALM5 en FPALM6.
Hoewel de foto-chemische tijdens processen photoactivation of -conversie zijn beschreven voor vele optische markeerstiften en zelfs kristallografische structuren voor en na photoactivation / - conversie beschikbaar7 zijn aangebracht , 8, het onderliggendefysieke mechanisme van de foto van photoactivation en -conversie is niet volledig begrepen. Bovendien, tot nu toe slechts ruwe schattingen bestaan uit de efficiëntie van photoactivation en -conversie, dat wil zeggen, de Fractie van fluorescente proteïnen uitgedrukt dat is eigenlijk photoconverted of photoactivated als tl. In vitro ensemble studies hebben gemeld kwantificering van de verschuiving in de absorptiespectra en het bedrag voor native en geactiveerd proteïne in een gel9,10,11.
Hier presenteren we een protocol waarbij fluorescent proteïne Chimaera om te beoordelen van de Fractie van photoactivated fluorescerende eiwitten in bulk en in levende cellen. Wanneer werkt met genetisch gecodeerde fluorescerende eiwitten, de absolute hoeveelheid eiwit uitgedrukt varieert van cel naar cel en is onbekend. Als één cel uiting van een PA-FP een helderder signaal na photoactivation dan een andere cel toont, kunnen niet worden onderscheiden als dit helderder signaal te wijten aan hogere uitdrukking van het PA-KP of een efficiënter photoactivation van het PA-KP is. Om te standaardiseren op het niveau van de expressie in cellen, introduceren we interne heersers van genetisch gekoppelde spectraal verschillende fluorescente proteïnen. Door koppeling van de genetische gegevens van een photoactivatable TL proteïne aan een spectraal verschillende altijd-op fluorescente proteïnen, interne linialen worden gemaakt die zal nog steeds worden uitgedrukt aan een onbekende totaalbedrag maar in een vaste en bekende relatieve hoeveelheid 1: 1. deze strategie staat de kwantitatieve karakterisering van verschillende UV-licht photoactivation regelingen, dat wil zeggen, de beoordeling van de relatieve hoeveelheid PA-FPs die kan worden photoactivated door de verschillende modi van photoactivation, en daardoor vergunningen definiëren van photoactivation regelingen die effectiever dan anderen zijn. Bovendien kan deze strategie in beginsel de beoordelingvan de absolute kwantificering van de photoactivated PA-FP breuk. Te dien einde is het belangrijk om te beseffen dat de gepresenteerde ensemble studies intensiteit gebaseerde waardoor de analyse meer complexe zijn zoals uiteengezet in dit protocol. Parameters bepalen de gemeten fluorescerende intensiteit, d.w.z., verschillende moleculaire helderheid, absorptie en emissie spectra en FRET effecten moeten worden overwogen bij het vergelijken van de fluorescentie intensiteiten van verschillende fluorescente proteïnen.
De kwantificering van de intensiteit gebaseerde van de gepresenteerde ratiometric van photoactivation-efficiëntie wordt geïllustreerd voor PA-GFP en PA-kers in levende cellen, maar is in principe breed toepasbare en kan worden gebruikt voor een photoactivatable fluorescerende eiwit onder experimentele conditie.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. plasmide bouw
- Twee kleuren fusion sondes te genereren. Gebruik een vector van zoogdiercellen expressie (Zie Tabel van materialen) in welke mCherry112 en13 van de PA-mCherry1 zijn ingevoegd met de beperking sites AgeI en BsrGI.
- Aangepaste oligo-nucleotiden aan het versterken van de monomere varianten van eGFP en PA-eGFP met de A206K mutatie, dat wil zeggen, mEGFP en PA-mEGFP14 zonder een stop codon als een fragment SalI-BamHI bestellen Gebruik van de primer N-terminal 5'-AAT TAA CAG TCG ACG ATG GTG AGC AAG GGC GAG G 3' en de C-terminal primer 5'-AAT ATA TGG ATC CCG CTT GTA CAG CTC GTC CAT GC 3' en dit SalI-BamHI -fragment invoegen de site meerdere klonen van de expressie-vector. Dit zal leiden tot de vijf aminozuur linker RNPPV tussen de groene en rode fluorescerende proteïne. We noemen het fluorophore Chimaera GFP — Cherry, PA-GFP — Cherry en GFP — PA-Cherry voor de rest van dit artikel.
Opmerking: De koppeling van fluorophores en oprichting van interne linialen te beoordelen van de efficiëntie van de photoactivation kunnen worden gedaan met elk paar spectraal verschillende fluorophore, bijvoorbeeld superfolder PA-GFP 15/ PA-TagRFP 16, enz. Veel van de photoactivatable fluorescerende eiwitten zijn afgeleid van GFP. Vandaar, kan de volgorde van de primer hierboven worden gebruikt voor vele fluorescente proteïnen voor de bouw van een hersenschim van de fluorophore in een vector van zoogdiercellen expressie.
2. cel cultuur en transfectie
- Gebruik ofwel standaard cellijn zoals HeLa, NRK, Cos-7 of een specifieke cellijn moet worden gebruikt voor specifieke photoactivation experimenten. Gebruik DMEM (aangevuld met 10% foetale runderserum en 2 mM glutamine) en trypsine zonder fenol rood (Zie Tabel van materiaal) te verminderen achtergrond fluorescentie.
- Loskoppelen van de cellen van een confluente cultuur met trypsine, het aantal cellen in celsuspensie met behulp van een Neubauer kamer en zaad 5.000-10.000 cellen per putje. Anderzijds gebruiken 1 druppel uit een Pipetteer 2 mL van een 10-mL celsuspensie van een confluente celcultuur gegroeid in de kolf van een T-25-celkweek of 3 druppels van een 5-mL celsuspensie uit een confluente cultuur geteeld in de kolf van een T-12,5-celkweek.
- Groeien van cellen in 8-well kamers met #1.0 dekking glas (Zie Tabel of Materials) voor fluorescentie live-cel microscopie.
- Transfect cellen 24u na beplating met behulp van commerciële reagentia (Zie Tabel van materialen) per distributeur van protocol met het GFP-kers, PA-GFP — Cherry en GFP — PA-Cherry Chimaera.
- Afbeelding cellen na een totaal van 20 h post transfectie voor eiwit expressie, vouwen en rijping.
3. beeldvorming en Photoactivation
- De cellen van de afbeelding in een bevochtigde en verwarmde milieu kamer bij 37 graden Celsius. De cel media bij fysiologische pH buffer te maken van het CO2-onafhankelijke, 20 mM HEPES toevoegen of CO2 gas ingesteld op 5% stroom te gebruiken.
- Eerst, het beeld van cellen uiten het GFP-Cherry construct. Parameters instellen die tijd geïntegreerde laser intensiteit per pixel in een confocal image, dat wil zeggen, pixel Nadruktijd in microseconden, akoestisch-optische afstembare filter (AOTF) transmissie in procent, en digitale zoom definiëren.
Opmerking: Via een 60 x objectieve en een digitale zoom van 3 x beeldvorming van een cel in zijn geheel, terwijl het verstrekken van voldoende vergroting maakt het mogelijk. Ingesteld pixel Nadruktijd op 2-4 µs en AOTF transmissie voor de 488-nm en 561-nm laser zodat beelden een goed signaal-/ ruisverhouding zonder enige bleken tonen en geen pixels die fluorescentie intensiteit verzadiging aangeeft. - Beeld, met behulp van de set laser kracht, transmissie van AOTF, pixel Nadruktijd en digitale zoom, 15-20 cellen uiten GFP — Cherry.
- Vervolgens afbeelding met dezelfde set laser kracht, nadruktijd pixel, AOTF transmissie en digitale zoom cellen uiten GFP — PA-Cherry en PA-GFP — Cherry. Zoek voor het uitdrukken van cellen in het groene kanaal of de rode kanaal, respectievelijk. Vermijd lange blootstelling van de cellen tijdens de zoektocht voor het uitdrukken van cellen om niet bleken de fluorescente proteïnen.
- Een mini tijdreeksen met een afbeelding van de pre-activering en drie Activering achteraf afbeeldingen instellen. De beelden van de Activering achteraf zal helpen identificeren van potentiële voorbijgaande donkere Staten als gevolg van de blootstelling aan UV-licht.
Opmerking: In onze handen, veranderingen in het gedetecteerde fluorescentie intensiteit als gevolg van transiënte donkere Staten waren < 1% en kan worden verwaarloosd, maar de donkere Staten beoordeeld moeten worden voor elke experimentele opstelling. - Om te bepalen photoactivation-efficiëntie, dat wil zeggen, de Fractie van de PA-FPs die aanstaat als fluorescerende, in de specifieke photoactivation-experimenten die zijn al vastgesteld, dezelfde photoactivation instellingen toepassen op 15-20 cellen die de interne linialen geïntroduceerd hier uiten en ga verder met beeldanalyse (punt 4). Als het begint te photoactivation experimenten opzetten, vinden hier een paar verschillende instellingen op basis van onze experimentele ervaring met PA-GFP en PA-Cherry; Wijzig indien nodig.
- Momentane photoactivation van PA-GFP en PA-Cherry met behulp van een confocale laser scanning microscoop (CLSM), van toepassing 90 μW van 405 nm laserlicht in 3 of 5 iteraties, respectievelijk.
Opmerking: Met onze microscopische set-up, met behulp van een 38% AOTM transmissie en een 2 µs pixel nadruktijd, we gemeten deze 405-nm laser macht in lijn-scan modus op het objectief. Met deze instellingen, kunnen ongeveer 8% en 16% van de PA-GFP en PA-Cherry uitgedrukt worden photoactivated als tl. De volledige titratie-serie met behulp van CLSM momentane photoactivation geweest publiceerde eerder17. - Als een hogere Fractie van photoactivated PA-GFP en PA-Cherry fluorophores voordelige BV is te bereiken van een hogere signaal-/ ruisverhouding en photoactivation niet hoeft te worden onmiddellijk, toepassen 40 μW van 405 nm laser licht met een 2 µs pixel Nadruktijd en 6% AOTF transmissie voor 450 iteraties. Vervolgens photoactivation zal nemen tot 4 min. in tegenstelling tot slechts 1-2 seconden zal, maar photoactivation-efficiëntie voor PA-GFP 29% in plaats van 8%, waardoor een hogere signaal-ruisverhouding.
- Momentane photoactivation van PA-GFP en PA-Cherry met behulp van een confocale laser scanning microscoop (CLSM), van toepassing 90 μW van 405 nm laserlicht in 3 of 5 iteraties, respectievelijk.
- Als een mozaïek digitale verlichting systeem waarin micro spiegel arrays in een ruimtelijke lichtmodulator beschikbaar is, kan de 405-nm laserlicht worden gebruikt voor widefield-photoactivation. Dit zorgt voor efficiënt photoactivation binnen milliseconden.
Opmerking: Met 1.6 mW laser macht zoals gemeten aan de objectief en een belichtingstijd van 250 ms, 29% van de PA-GFP kan worden photoactivated als tl. - Afbeelding met eventuele parameters instellen photoactivation 15-20 cellen uiten van PA-GFP — Cherry en GFP — PA-Cherry, respectievelijk.
- Aangezien pH, reactieve zuurstof soorten en andere omgevingsfactoren invloed kunnen zijn op photoactivation-efficiëntie, kan het belangrijk zijn te beoordelen van de efficiëntie van de photoactivation van de PA-FPs in de respectieve subcellular micromilieu waar de proteïne van belang is gelegen. Door het koppelen van de Chimaera fluorophore aan de proteïne van belang, zoals de auteurs hebben gedaan met het plasmamembraan eiwit VSVG 18, kan photoactivation-efficiëntie worden beoordeeld in het specifieke subcellular compartiment van belang.
4. beeld van de analyse en de algoritme voor Ratiometric intensiteit gebaseerde kwantificering van Photoactivation efficiëntie
- Beeldanalyse kan worden gedaan met de opensource beeldverwerking platformen ImageJ of Fiji. Het bepalen van de intensiteit van de fluorescentie achtergrond in niet-transfected cellen in het groen (B1) en rode (B2) kanaal. Vermijd perinuclear of gebieden tonen verhoogde auto-fluorescentie.
- Om te bepalen van de intensiteit van de fluorescentie in een transfected cel, een overzicht van de cel lichaam met het freehand selecties gereedschap. Nogmaals, Vermijd perinuclear of wat voor andere gebieden tonen van auto-fluorescentie.
- Aftrekken van de achtergrond van de intensiteit van de fluorescentie gemeten in elk kanaal.
Ik,G = IGreen_measured -B1
IkR = IRed_measured -B2 - Gebruik het GFP-Cherry construct corrigeren voor donor-blussen door fluorescentie resonance energy transfer (FRET) te berekenen van de verhouding rood-met-groen (RtoGr). De efficiëntie van de FRET E was vastbesloten om te worden 0.3 in eerdere experimenten voor het GFP-Cherry constructie met behulp van de dezelfde aminozuur linker tussen de twee fluorophores18.
RtoGr = (ikRed_measured – B2) / (ikGreen_measured -B-1)
RtoGrcorr = RtoGr * (1-E)
Opmerking: In deze intensiteit gebaseerde benadering, donor blussen voor mEGFP en PA-mGFP mogelijk anders gegeven mogelijk verschillende spectrale eigenschappen die niet gekenmerkt. Het tempo van de FRET (kET) en de afstand Foerster (R0) is afhankelijk van het quantumrendement van de donor die niet voor mEGFP en PA-mGFP is vastgesteld. - Gebruik de GFP — PA-Cherry construct te beoordelen van de Fractie van photoactivated PA-Cherry. De intensiteit van de verwachte fluorescentie van PA-Cherry bepalen door te vermenigvuldigen met de intensiteit van de gemeten ongelest groene fluorescentie van het GFP — PA-Cherry construeren voorafgaande aan de photoactivation met de gecorrigeerde rood-met-groen-ratio (RtoGrcorr ).
IkRed_expected = (IGreen_measured -B1) * RtoGrcorr
Opmerking: Zoals hierboven aangegeven, de moleculaire helderheid van de FP altijd-op en de photoactivatable FP kan afwijken. Zie het onderwerp voor meer informatie over de wijze waarop deze verschillen. - Berekenen van de efficiëntie van de photoactivation PA-Cherry als een breuk van de gemeten rode fluorescentie intensiteit na photoactivation en de intensiteit van de verwachte fluorescentie in het rode kanaal.
(FPA-Cherry) = (ikRed_measured – B2) / ikRed_expected - Gebruik van de PA-GFP — Cherry construct te beoordelen van de Fractie van photoactivated PA-GFP. Bepalen van de intensiteit van de verwachte fluorescentie van PA-GFP door het verdelen van de intensiteit van de gemeten rode fluorescentie van de PA-GFP — Cherry construeren voorafgaande aan de photoactivation door de rood-met-groen-ratio (RtoGr). De RtoGr hoeft hier niet te worden gecorrigeerd voor de donor blussen, omdat GFP en PA-GFP zijn onderworpen aan donor blussen tot hetzelfde bedrag.
IkGreen_expected = (ikRed_measured – B2) / RtoGr - Berekenen van de efficiëntie van de photoactivation PA-GFP als een breuk van de gemeten groene fluorescentie intensiteit na photoactivation en de intensiteit van de verwachte fluorescentie in het groene kanaal.
(FPA-GFP) = (ikGreen_measured – B1) / ikGreen_expected
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Het hier gepresenteerde protocol toont de kwantificering van de ratiometric van de Fractie van fluorescente proteïnen toe die photoactivated als tl (Figuur 1). Deze fractie verschilt afhankelijk van de wijze van photoactivation.
Een typisch resultaat met behulp van korte tijd high-power photoactivation met een confocale laser scanning microscoop (CLSM) wordt weergegeven in Figuur 2 c. Na het titrating van de kracht van de laser op het objectief gemeten door pixel stilstaan tijd en ATOF transmissie, het maximale photoactivation-efficiëntie voor PA-GFP ongeveer 8 was % en voor PA-Cherry ongeveer 16%. De efficiëntie van de relatief lage photoactivation van PA-GFP en PA-Cherry kan worden verklaard door de gelijktijdige photoactivation en -vernietiging wanneer blootgesteld aan een continu deterministische stroom van fotonen door CLSM. De kortere levensduur van de fluorescentie en de verschillende, recht-verschoven absorptiespectra van de rode PA-FPs kan bijdragen aan de hogere efficiëntie van de photoactivation van PA-kers in vergelijking met PA-GFP.
Met behulp van lage laser macht en honderden iteraties, kan een hogere efficiëntie van de photoactivation worden bereikt. 450 iteraties van UV-licht spreekt zich uit met een CLSM over een totaal van 4 min leverde een photoactivation efficiëntie van 29% voor PA-GFP (Figuur 3 c). De hogere efficiëntie van de photoactivation met herhaalde blootstelling aan UV-licht fotonen kan suggereren een scriptingregel photoactivation proces. Als alternatief, de toegepaste UV-licht is sterk genoeg om te photoactivate, maar niet genoeg om photodestruct die na verloop van tijd cumulatieve tot een hogere Fractie van fluorescente proteïnen van de photoactivated leidt.
Met widefield verlichting, de fluorophores stochastically meer en repetitively blootstaan aan 405-nm fotonen. Blootstelling voor slechts 250 ms leverde hier, een 29% photoactivation efficiëntie voor PA-GFP.
Figuur 1: Concept van het bepalen van de efficiëntie van de photoactivation in bulk en in levende cellen. Koppeling spectraal verschillende fluorescente proteïnen, worden interne linialen gemaakt waarmee voor de evaluatie van de intensiteit op basis van de ratiometric van photoactivation-efficiëntie. Gemeten intensiteiten van PA-Cherry en PA-GFP hielden verband met de verwachte intensiteiten. Verwachte intensiteiten waren afgeleid van het bepalen van de intensiteit van de fluorescentie van de altijd-op fluorescerend eiwitten in het GFP-Cherry, GFP-PA-Cherry of PA-GFP-Cherry Chimaera voorafgaand aan photoactivation. Figuur van Renz en Wunder 201717gewijzigd. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 2: photoactivation van PA-GFP-kers (a) en GFP-PA-Cherry Bulk (b) zo onmiddellijk en volledig mogelijk met behulp van een confocale laser scanning microscoop in levende cellen. 8% van de PA-GFP uitgedrukt was photoactivated met een pixel Nadruktijd van 2 µs en een transmissie van de AOTF van 38%, waardoor de kracht van de laser van 90 μW, zoals gemeten bij het objectief en 3 iteraties (c). Vergroten van de kracht van 405 nm laser photoactivation efficiëntie niet te verhogen. Figuur van Renz en Wunder 201717gewijzigd. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 3: iteratieve spaarstand photoactivation met een confocale laser scanning microscoop (a) en korte high-power widefield verlichting (b) opbrengst hogere photoactivation rendementen. 29% van de PA-GFP werd photoactivated met een pixel Nadruktijd van 2 µs en de transmissie van een AOTF van 6%, waardoor de kracht van de laser van 40 μW, zoals gemeten bij het objectief en 450 iteraties (c). Figuur van Renz en Wunder 201717gewijzigd. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Tot nu toe bestond geen methode om te bepalen in de bulk van de Fractie van de PA-FPs uitgedrukt in levende cellen die photoactivated als tl. Het gepresenteerde protocol kan worden gebruikt voor elk paar spectraal verschillende fluorescente proteïne. Terwijl geïllustreerd hier voor de onomkeerbare PA-FPs PA-GFP en PA-Cherry, is deze aanpak in principe van toepassing op photoconvertible eiwitten zo goed. De spectraal verschillende fluorescente proteïne, echter moet worden geselecteerd zorgvuldig om te minimaliseren van spectrale overlap, gezien het feit dat photoconvertible fluorescerende eiwitten hun absorptie en emissie spectra, bijvoorbeeld van groen naar rood fluorescentie verschuiven.
Zoals hierboven beschreven, is het belangrijk om te vermelden dat de gepresenteerde benadering ratiometric is en intensiteit gebaseerde. Het kan worden gebruikt voor het standaardiseren van het niveau van de onbekende expressie in cellen en definiëren van de relatieve verschillen in photoactivation-efficiëntie door verschillende takken van photoactivation. Het protocol kan ook worden gebruikt ter beoordeling van het absolute deel van photoactivated PA-FPs. Dan, verschillende spectrale eigenschappen van verschillende FOD moeten rekening worden gehouden.
De moleculaire helderheid (MB) is het product van quantumrendement (QY), uitsterven coëfficiënt (EG) en procent absorptie bij de golflengte van de gegeven excitatie ten opzichte van de extinctie piek. Voor Cherry12 en13van de PA-Cherry, zijn respectieve waarden van QY en EG gepubliceerd. Het percentage absorptie bij de golflengte van de gegeven excitatie van 543 nm relatieve extinctie piek is 0,5 en 0,7, respectievelijk.
MBCherry 0.22 * 72.000 * 0,5 = 7,920 =
MBPA-Cherry = 0,46 * 18.000 * 0.7 = 5,796
Dus, de lagere moleculaire helderheid van PA-Cherry Cherry t.o.v. kan rekening worden gehouden door te delen ikRed_expected door 1,37 (afgeleid van 7,920/5,796).
Het is echter onbekend onder welke voorwaarden van de photoactivation de gepubliceerde moleculaire helderheid van PA-Cherry is vastgesteld. Dit is belangrijk, aangezien we hier laten zien dat de wijze van de photoactivation de gemeten Fractie van photoactivated PA-FPs verandert. Bovendien, voor de monomere versies bestaande uit de A206K mutatie. dat wil zeggen, mEGFP en PA-mEGFP, geen moleculaire helderheid is gepubliceerd.
In deze ratiometric intensiteit gebaseerde benadering, de moleculaire helderheid van de PA-FPs en de altijd-op FP tegenhangers in een eerste benadering hebben beschouwd als identiek. We besloten op deze benadering, omdat (i) voor sommige FPs geen moleculaire helderheid is gemeld, en (ii) het is tot nu toe niet duidelijk hoe veel verschillende vervoerswijzen photoactivation invloed kunnen zijn op de moleculaire helderheid van de PA-FPs gemeld in de literatuur. Bovendien, (iii) voor een vergelijkende analyse van de kennis van de moleculaire helderheid niet noodzakelijk is; het is alleen nodig voor de intensiteit gebaseerde bepaling van het absolute deel van photoactivated PA-FPs die kan worden berekend zoals hierboven.
Onze benadering waarbij fluorescent proteïne chimaera als interne linialen toont dat verschillende blootstelling aan UV-licht de efficiëntie van de verschillende photoactivation levert. Daarmee het definieert opties zoals hoe naar photoactivate een grotere PA-FP breuk en bereiken van een beter signaal-/ ruisverhouding. Bovendien biedt het mogelijkheden aan differentieel photoactivate verschillende PA-FPs in dezelfde cel aan UV-licht of differentieel photoactivate de dezelfde PA-FP in verschillende subcellular compartimenten hun differentiële antwoord gegeven door het bloot te leggen anders aan UV-licht. Kortom, zal ons protocol verder helpen de kwantitatief begrip van cellulaire processen met behulp van PA-FPs in live-cel microscopie.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
De auteurs hebben niets te onthullen.
Acknowledgments
Wij wil het Dorigo laboratorium en de neurowetenschappen Imaging Service aan Stanford University School of Medicine bedanken voor het verstrekken van apparatuur en ruimte voor dit project.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| pEGFP-N1 mammalian cell expression vector | Clontech | ||
| DMEM w/o phenol red | Thermo Fisher Scientific | 11054020 | |
| Trypsin w/o phenol red | Thermo Fisher Scientific | 15400054 | |
| L-Glutamine (200 mM) | Thermo Fisher Scientific | 25030081 | |
| HEPES | Thermo Fisher Scientific | 15630080 | |
| LabTek 8-well chambers #1.0 | Thermo Fisher Scientific | 12565470 | |
| Fugene 6 | Promega | E2691 |
References
- Patterson, G. H., Lippincott-Schwartz, J. A photoactivatable GFP for selective photolabeling of proteins and cells. Science. 297 (5588), 1873-1877 (2002).
- Ando, R., Hama, H., Yamamoto-Hino, M., Mizuno, H., Miyawaki, A. An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (20), 12651-12656 (2002).
- Renz, M., Lippincott-Schwartz, J. Ch. 9. The Fluorescent Protein Revolution Series in Cellular and Clinical Imaging. Day, R. N., Davidson, M. W. , CRC Press. 201-228 (2014).
- Shcherbakova, D. M., Sengupta, P., Lippincott-Schwartz, J., Verkhusha, V. V. Photocontrollable fluorescent proteins for superresolution imaging. Annual Review of Biophysics. , 303-329 (2014).
- Betzig, E., et al. Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution. Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).
- Hess, S. T., Girirajan, T. P., Mason, M. D. Ultra-high resolution imaging by fluorescence photoactivation localization microscopy. Biophysical Journal. 91 (11), 4258-4272 (2006).
- Henderson, J. N., et al. Structure and mechanism of the photoactivatable green fluorescent protein. Journal of the American Chemical Society. 131 (12), 4176-4177 (2009).
- Subach, F. V., et al. Photoactivation mechanism of PAmCherry based on crystal structures of the protein in the dark and fluorescent states. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (50), 21097-21102 (2009).
- Wiedenmann, J., et al. EosFP, a fluorescent marker protein with UV-inducible green-to-red fluorescence conversion. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (45), 15905-15910 (2004).
- Habuchi, S., Tsutsui, H., Kochaniak, A. B., Miyawaki, A., van Oijen, A. M. mKikGR, a monomeric photoswitchable fluorescent protein. PLoS One. 3 (12), e3944 (2008).
- McKinney, S. A., Murphy, C. S., Hazelwood, K. L., Davidson, M. W., Looger, L. L. A bright and photostable photoconvertible fluorescent protein. Nature Methods. 6 (2), 131-133 (2009).
- Shaner, N. C., et al. Improved monomeric red, orange and yellow fluorescent proteins derived from Discosoma sp. red fluorescent protein. Nature Biotechnology. 22 (12), 1567-1572 (2004).
- Subach, F. V., et al. Photoactivatable mCherry for high-resolution two-color fluorescence microscopy. Nature Methods. 6 (2), 153-159 (2009).
- Zacharias, D. A., Violin, J. D., Newton, A. C., Tsien, R. Y. Partitioning of lipid-modified monomeric GFPs into membrane microdomains of live cells. Science. 296 (5569), 913-916 (2002).
- Slocum, J. D., Webb, L. J. A Double Decarboxylation in Superfolder Green Fluorescent Protein Leads to High Contrast Photoactivation. Journal of Physical Chemistry Letters. 8 (13), 2862-2868 (2017).
- Subach, F. V., Patterson, G. H., Renz, M., Lippincott-Schwartz, J., Verkhusha, V. V. Bright monomeric photoactivatable red fluorescent protein for two-color super-resolution sptPALM of live cells. Journal of the American Chemical Society. 132 (18), 6481-6491 (2010).
- Renz, M., Wunder, C. Internal rulers to assess fluorescent protein photoactivation efficiency. Cytometry A. , (2017).
- Renz, M., Daniels, B. R., Vamosi, G., Arias, I. M., Lippincott-Schwartz, J. Plasticity of the asialoglycoprotein receptor deciphered by ensemble FRET imaging and single-molecule counting PALM imaging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (44), E2989-E2997 (2012).
