Summary

Deteção de um painel personalizado de MicroRNA circulantes em pacientes com câncer colorretal metastático

Published: March 14, 2019
doi:

Summary

Apresentamos um protocolo para avaliar os níveis de expressão de microRNA (miRNAs) em circulação em amostras de plasma de pacientes com câncer. Em particular, usamos um kit comercialmente disponível para circulação miRNA extração e transcrição reversa. Finalmente, analisamos um painel de 24 miRNAs selecionados usando placas personalizadas em tempo real sonda pre-manchado.

Abstract

Existe uma crescente interesse na biópsia líquida para câncer diagnóstico, prognóstico e monitorização terapêutica, criando a necessidade de biomarcadores confiáveis e úteis para a prática clínica. Aqui, apresentamos um protocolo para extrair, reverso transcrever e avaliar os níveis de expressão de miRNAs de amostras de plasma de pacientes com câncer colorretal (CRC) em circulação. microRNAs (miRNAs) são uma classe de RNA não-codificante de 18-25 nucleotides no comprimento que regulam a expressão de genes-alvo a nível translacional e desempenham um papel importante, incluindo o da função de pro – e antiangiogênico, na fisiopatologia da vários órgãos. os miRNAs são estáveis em fluidos biológicos, tais como soro e plasma, que processa-los ideal circulando biomarcadores para tomada de decisão diagnóstico, prognóstico e tratamento do câncer e monitoramento. Extração de miRNA de circulação foi realizada usando um método rápido e eficaz que envolve metodologias orgânicas e baseados em colunas. Para miRNA retrotranscription, foi utilizado um processo de várias etapa que considera poliadenilação 3′ e a ligadura de um adaptador em 5′ dos miRNAs maduros, seguidos de Pre-amplificação aleatória miRNA. Selecionamos um painel personalizado 24-miRNA para ser testado por reação em cadeia da polimerase em tempo real quantitativa (qRT-PCR) e avistou as sondas de miRNA em placas personalizadas de matriz. Realizamos qRT-PCR placa é executado em um sistema de PCR em tempo real. Os miRNAs limpeza para normalização foram selecionados usando o software GeNorm (v. 3.2). Os dados foram analisados utilizando o software suite de expressão (v 1.1) e análises estatísticas foram realizadas. O método mostrou-se tecnicamente robusto e confiável e pode ser útil para avaliar os níveis de biomarcador em amostras líquidas, tais como o plasma ou soro.

Introduction

CRC representa o terceiro mais frequentemente diagnosticado malignidade e a quarta causa de morte relacionada com câncer em todo o mundo. Até à data, bevacizumab (B), um anticorpo monoclonal dirigido contra o fator de crescimento vascular endotelial (VEGF) e cetuximab (C) ou panitumumab (P), anticorpos monoclonais dirigidos contra o receptor do fator de crescimento epidérmico (EGFR), foram aprovados para tratamento de primeira linha, em combinação com regimes de quimioterapia (CT).

Mutações nos genes K-RAS e N-RAS são os biomarcadores clinicamente útil única capazes de identificar os pacientes que são menos susceptíveis de beneficiar de anti EGFR-baseado em CT. Embora vários estudos têm sido conduzidos para procurar biomarcadores que são preditivos da resposta ao CT B-baseado, há ainda uma falta substancial de drogas confiáveis e eficazes para a prática clínica1.

os miRNAs são pequenos RNAs (18-25 nucleotides no comprimento) que regulamentam a tradução de genes-alvo e desempenham um papel crucial em inúmeros processos fisiopatológicos, incluindo embriogénese e carcinogénese. Estas moléculas são altamente estáveis em fluidos biológicos como plasma/soro, urina e escarro, que processa-los robustos biomarcadores para usar para a amostragem não-invasivo2. Usando um painel de miRNAs envolvidos na via angiogênico, tivemos como objetivo identificar circulando nova biomarcadores capazes de prever resultados clínicos em pacientes com metástase CRC (mCRC) tratados com um regime de CT B-baseado.

Analisamos uma série de 52 mCRC pacientes tratados com CT B-baseado dentro o multicêntrico prospectivo randomizado de fase III trial “italiano experimental em avançado câncer colorretal” (ITACa). O presente protocolo foi aprovado pelo Comitê de ética Local (Comitato Etico área Vasta e Istituto Scientifico Romagnolo por lo dei Tumori (IRST) IRCCS, n. º 674 Cura la do e Studio) em 19th de setembro de 2007. Todos os pacientes deram consentimento informado antes da coleta de amostra de sangue. Para cada paciente, amostras de sangue venoso foram coletadas antes do tratamento e na primeira avaliação clínica (após 8 semanas) para avaliar a expressão de miRNA de linha de base e sua modulação durante o tratamento em relação ao resultado do paciente.

Através de uma pesquisa da literatura, nós selecionamos 21 miRNAs correlacionados com o processo angiogênico que são conhecidos por serem detectáveis no plasma humano: p tem-miR-107, tem-miR-126-3, tem-miR-145-5 p, tem-miR-194-5 p, tem-miR-199a – 5p, tem-miR-200b – 3P, tem-miR-20b – 5P , tem-miR-21-5 p, tem-miR-210-3 p, tem-miR-221-3 p, tem-miR-24-3-p, tem-miR-27a – 3P, tem-miR-29oB – 3P, tem-miR-335-5 p, tem-miR-424-5 p, tem-miR-497-5 p, p tem-miR – 520d – 3P, tem-miR-92a – 3P, tem-miR-17-5 e tem-miR-155-5 p. Também selecionamos tem-miR-223-3 p… e tem-mir-484 para normalização endógena3,4,5,6e cel-miR-39 purificado de c. elegans como pico de normalização exógenos. Todas as normalizações de dados foram realizadas usando o método de ̄(ΔΔCt) 2 ̂.

A detecção de circulação miRNAs apresenta algumas dificuldades técnicas, porque as moléculas estão presentes em níveis muito baixos no plasma e sua amplificação é quimicamente um desafio, dada sua pequena sequência. Por estas razões, nós selecionamos um procedimento que considera tanto orgânica extração com fenol e uma metodologia baseada em coluna de fibra de vidro. MiRNA extração de circulação é um tema quente no campo da biópsia líquida, e nós selecionamos um kit comercial que tem demonstrado ser um dos mais confiável em termos de quantidade e qualidade dos rendimentos recuperado7,8. Nós selecionamos um protocolo para reverter transcrever os miRNAs pela adição de um adaptador em 5′ e uma cauda poli a 3′ da miRNA maduro para melhorar a seletividade e especificidade da reação.

Dada a robustez do método, projetamos placas personalizadas com sondas pre-manchadas por RT-PCR avaliar cada amostra em duplicado e analisados 2 pacientes em cada prato, como mostrado na Figura 1.

Protocol

Nota: Execute todas as etapas seguintes sob uma coifa esterilizados de acordo com boas práticas de laboratório (BPL). 1. armazenamento e coleta de plasma Colete 3 mL de amostra de sangue periférico em um tubo de EDTA K3E. Centrifugar o tubo à temperatura ambiente a 1.880 x g durante 15 min. Recupere o plasma sobrenadante em alíquotas de 450 µ l. Armazene as amostras a-80 ° C até o uso.Nota: Processo …

Representative Results

Analisou-se um painel de angiogênese relacionados miRNAs circulantes em relação a sobrevivência livre de progressão (PFS), global sobrevivência (OS) e objetiva resposta taxa (ORR) em um mCRC 52 pacientes tratados com tomografia baseada em B. A avaliação de tais biomarcadores em amostras de plasma é um desafio, devido a dificuldades técnicas. Utilizamos métodos estabelecidos para miRNA extração de amostras de plasma do paciente, transcrição reversa e pré-amplificação. Seg…

Discussion

os miRNAs são pequenos RNAs (18-25 nucleotides no comprimento) capazes de ligação 3′ UTR região do alvo do RNA mensageiro e inibindo e/ou degradante, não-codificante. Assim, podem ser considerados reguladores de expressão do gene no nível de translação. Na última década, vários miRNAs tem sido correlacionados com câncer iniciação e desenvolvimento, tornando-os úteis biomarcadores clínicos para diagnóstico, prognóstico e terapia. Protegido por RNases, miRNAs estão presentes em uma forma estável em flu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi parcialmente financiado pela Roche s.p.a. e a Agência italiana de medicamentos (AIFA).

Materials

Rnase-free Safe-lock 1.5 mL tubes Eppendorf 0030 123.328
Rnase-free Safe-lock 2 mL tubes Eppendorf 0030 123.344
Rnase-free 20 µL tips Starlab S1123-1810
Rnase-free 200 µL tips Starlab S1120-8810
Rnase-free 1000 µL tips Starlab S1122-1830
mirVana PARIS RNA and Native Protein Purification Kit Thermo Fisher AM1556
TaqMan Advanced miRNA cDNA Synthesis Kit Thermo Fisher A28007
100% ethanol anidrous ACS grade Carlo Erba Reagents 414605
2-mercapto-ethanol Sigma-Aldrich M3148
TaqMan Fast Advanced Master Mix Thermo Fisher 4444558
TaqMan Advanced miRNA Assays Thermo Fisher A25576
7500 Real-Time PCR System Applied Biosystems 4406984
0.2-2, 1-10, 2-20, 20-200, 100-1000 µL laboratory pipettes
Benchtop microcentrifuge
Vortex
Benchtop heating block
Fume hood
0.2 mL PCR tubes

References

  1. Luo, H. -. Y., Xu, R. -. H. Predictive and prognostic biomarkers with therapeutic targets in advanced colorectal cancer. World journal of gastroenterology. 20 (14), 3858-3874 (2014).
  2. Toiyama, Y., Okugawa, Y., Fleshman, J., Richard, C., Goel, A. MicroRNAs as potential liquid biopsy biomarkers in colorectal Cancer: A systematic review. BBA Reviews on Cancer. 5 (6), (2018).
  3. Kok, M. G. M., Halliani, A., Moerland, P. D., Meijers, J. C. M., Creemers, E. E., Pinto-Sietsma, S. J. Normalization panels for the reliable quantification of circulating microRNAs by RT-qPCR. FASEB Journal. 29 (9), 3853-3862 (2015).
  4. Marabita, F., De Candia, P., Torri, A., Tegnér, J., Abrignani, S., Rossi, R. L. Normalization of circulating microRNA expression data obtained by quantitative real-time RT-PCR. Briefings in Bioinformatics. 17 (2), 204-212 (2016).
  5. Danese, E., et al. Reference miRNAs for colorectal cancer: Analysis and verification of current data. Scientific Reports. 7 (1), 1-12 (2017).
  6. Zheng, G., et al. Identification and validation of reference genes for qPCR detection of serum microRNAs in colorectal adenocarcinoma patients. PLoS ONE. 8 (12), 1-10 (2013).
  7. Lv, W., et al. Optimization of the Original TRIzol-Based Technique Improves the Extraction of Circulating MicroRNA from Serum Samples. Clinical laboratory. 61 (12), 1953-1960 (2015).
  8. Tan, G. W., Khoo, A. S. B., Tan, L. P. Evaluation of extraction kits and RT-qPCR systems adapted to high-throughput platform for circulating miRNAs. Scientific reports. 5, 9430 (2015).
  9. Altman, D. G., McShane, L. M., Sauerbrei, W., Taube, S. E. Reporting Recommendations for Tumor Marker Prognostic Studies (REMARK): explanation and elaboration. PLoS medicine. 9 (5), (2012).
  10. Tiberio, P., Callari, M., Angeloni, V., Daidone, M. G., Appierto, V. Challenges in using circulating miRNAs as cancer biomarkers. BioMed Research International. 2015, (2015).
  11. Kroh, E. M., Parkin, R. K., Mitchell, P. S., Tewari, M. Analysis of circulating microRNA biomarkers in plasma and serum using quantitative reverse transcription-PCR (qRT-PCR). Methods (San Diego, Calif). 50 (4), 298-301 (2010).
  12. Cheng, H. H., et al. Plasma Processing Conditions Substantially Influence Circulating microRNA Biomarker Levels. PLoS ONE. 8 (6), 1-11 (2013).
  13. Moret, I., et al. Assessing an improved protocol for plasma microRNA extraction. PloS one. 8 (12), (2013).
  14. Khoury, S., Ajuyah, P., Tran, N. Isolation of small noncoding RNAs from human serum). Journal of visualized experiments JoVE. (88), e51443 (2014).
  15. Schwarzenbach, H., Nishida, N., Calin, G. A., Pantel, K. Clinical relevance of circulating cell-free microRNAs in cancer. Nature Reviews Clinical Oncology. 11 (3), 145-156 (2014).

Play Video

Cite This Article
Canale, M., Marisi, G., Passardi, A., Scarpi, E., Ulivi, P. Detection of a Circulating MicroRNA Custom Panel in Patients with Metastatic Colorectal Cancer. J. Vis. Exp. (145), e58615, doi:10.3791/58615 (2019).

View Video