Summary
La hemisección espinal torácica de rata es un modelo valioso y reproducible de lesión unilateral de la médula espinal para investigar los mecanismos neuronales de la recuperación locomotora y la eficacia del tratamiento. Este artículo incluye una guía detallada paso a paso para realizar el procedimiento de hemisección y evaluar el rendimiento locomotor en una arena de campo abierto.
Abstract
La lesión de la médula espinal (SCI) causa alteraciones en la función motora, sensorial y autonómica por debajo del nivel de la lesión. Los modelos animales experimentales son herramientas valiosas para entender los mecanismos neuronales involucrados en la recuperación locomotora después de SCI y para diseñar terapias para poblaciones clínicas. Hay varios modelos experimentales de SCI incluyendo contusiones, compresión y lesiones de transección que se utilizan en una amplia variedad de especies. Una hemisección implica la transección unilateral de la médula espinal e interrumpe todos los tratados ascendentes y descendentes en un solo lado. La hemisección espinal produce una lesión altamente selectiva y reproducible en comparación con las técnicas de contusión o compresión que es útil para investigar la plasticidad neuronal en vías salvadas y dañadas asociadas con la recuperación funcional. Presentamos un protocolo detallado paso a paso para realizar una hemisección torácica a nivel vertebral T8 en la rata que resulta en una parálisis inicial de la extremidad posterior en el lado de la lesión con recuperación espontánea calificada de la función locomotora en varios Semanas. También proporcionamos un protocolo de puntuación locomotor para evaluar la recuperación funcional en campo abierto. La evaluación locomotora proporciona un perfil de recuperación lineal y se puede realizar tanto antes como repetidamente después de una lesión con el fin de examinar con precisión a los animales en busca de puntos de tiempo adecuados para realizar pruebas conductuales más especializadas. La técnica de hemisección presentada se puede adaptar fácilmente a otros modelos y especies de transección, y la evaluación locomotora se puede utilizar en una variedad de SCI y otros modelos de lesiones para puntuar la función locomotora.
Introduction
La lesión de la médula espinal (SCI) se asocia con alteraciones graves en la función motora, sensorial y autonómica. Los modelos animales experimentales de SCI son herramientas valiosas para comprender los eventos anatómicos y fisiológicos involucrados en la patología del SCI, investigar los mecanismos neuronales en reparación y recuperación, y para detectar la eficacia y seguridad de los potenciales terapéuticos Intervenciones. La rata es la especie más utilizada en la investigaciónDeSC 1. Los modelos de ratas son de bajo costo, fáciles de reproduciry una gran batería de pruebas de comportamiento están disponibles para evaluar los resultados funcionales 2. A pesar de algunas diferencias en la ubicación del tracto, la médula espinalde la rata comparte funciones sensorimotoras similares en general con mamíferos más grandes, incluyendo primates 3,4. Las ratas también comparten consecuencias fisiológicas y conductuales análogas a SCI que se relacionan con los seres humanos5. Los modelos de primates no humanos y grandes modelos animales pueden proporcionar una aproximación más cercana a la SCI6 humana y son esenciales para probar la seguridad y eficacia del tratamiento antes de la experimentación humana, pero se utilizan con menos frecuencia debido al bienestar ético y animal consideraciones, gastos y requisitos reglamentarios7.
Los modelos de SCI de transección de ratas se realizan mediante la interrupción dirigida de la médula espinal con una lesión selectiva utilizando un cuchillo de disección o tijeras de iridectomía después de una laminectomía. En comparación con una transección completa, la transección parcial en la rata resulta en una lesión menos grave, un cuidado animal postoperatorio más fácil, una recuperación locomotora espontánea y modelos más de cerca de SCI en humanos que es predominantemente incompleta con tejido que conecta la médula espinal y las estructuras supraespinales8. Una hemisección unilateral interrumpe todos los tratados ascendentes y descendentes de un solo lado, y produce déficits locomotoras cuantificables y altamente reproducibles, mejorando la exploración de los mecanismos biológicos subyacentes. La consecuencia funcional más prominente de la hemisección es una parálisis inicial de las extremidades en el mismolado y por debajo del nivel de la lesión con recuperación espontánea calificada de la función locomotora durante varias semanas 9,10, 11 , 12. El modelo de hemisección es particularmente útil para investigar la plasticidad neuronal de los tractoes y circuitos dañados y residuales asociados con la recuperación funcional9,11,12, 13,14,15,16,17,18. Específicamente, la hemisección realizada a nivel torácico, es decir, por encima de los circuitos espinales que controlan la locomoción de las extremidades posteriores, es particularmente útil para investigar cambios en el control locomotor. Dado que existe una relación no lineal entre la gravedad de la lesión y la recuperación locomotora después de SCI19,las pruebas de comportamiento adecuadas para evaluar los resultados funcionales son primordiales en modelos experimentales.
Una batería completa de pruebas de comportamiento están disponibles para evaluar aspectos específicos de la recuperación locomotora funcional en la rata2,20. Muchas pruebas de locomotoras no proporcionan medidas confiables temprano después de SCI, ya que las ratas están demasiado discapacitadas para soportar su peso corporal. Una medida de rendimiento locomotor espontáneo que es sensible a los déficits temprano después de la lesión, y no requiere entrenamiento preoperatorio o equipo especializado, es beneficiosa para monitorear la recuperación locomotora para los puntos de tiempo adecuados en los que complementar las pruebas de comportamiento especializadas. La puntuación de evaluación de campo abierto de Martínez10, desarrollada originalmente para evaluar el rendimiento locomotor después de SCI cervical en la rata, es una puntuación ordinal de 20 puntos que evalúa el rendimiento locomotor global durante la locomoción terrestre espontánea en un campo abierto. La puntuación se lleva a cabo por separado para cada extremidad utilizando una rúbrica que evalúa los parámetros específicos de una serie de medidas locomotoras, incluyendo el movimiento de las extremidades articulares, el soporte de peso, la posición del dígito, las habilidades de escalonamiento, la coordinación de las extremidades anteriores y posteriores, y la cola Posición. La puntuación de evaluación se deriva de la escala de clasificación de campo abierto Basso, Beattie y Bresnahan (BBB) diseñada para evaluar el rendimiento locomotor después de la contusión torácica21. Está adaptado para evaluar con precisión y fiofaidad la función locomotora de las extremidades anteriores y posteriores, permite una evaluación independiente de los diferentes parámetros de puntuación que no es susceptible con la puntuación jerárquica del BBB, y proporciona una recuperación lineal perfil10. Además, en comparación con el BBB, la puntuación de evaluación es sensible y fiable en los modelos de lesiones más graves10,11,20,22. La puntuación de evaluación se ha utilizado para evaluar el deterioro locomotor en la rata después de la cera cervical10,12 y torácica9 SCI solo y en combinación con lesión cerebral traumática23.
Presentamos aquí un protocolo detallado paso a paso para realizar un Hemisección Torácica SCI a nivel vertebral T8 en la hembra Long-Evans, y para evaluar la recuperación del locomotor de las extremidades posteriores en el campo abierto.
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Protocol
Los experimentos descritos en este artículo se realizaron de conformidad con las directrices del Consejo Canadiense de Cuidado de Animales y fueron aprobados por el comité de ética de la Universidad de Montreal.
1. Cirugía de hemisección torácica
- Use el equipo de protección adecuado (guantes, máscara y bata) para mantener un ambiente aséptico para la cirugía. Limpie el área quirúrgica con toallitas de alcohol y coloque cortinas quirúrgicas estériles sobre el campo quirúrgico. Esterilice las herramientas quirúrgicas y colóquelas en el campo quirúrgico.
- Anestesiar a la rata bajo una mezcla de gas isoflurano (inducción del 3%, mantenimiento de 0,5 a 3%) y oxígeno (1 L/min). Confirme la profundidad anestésica quirúrgica adecuada verificando la ausencia de respuestas de pellizco de los dedos del dedo del tiempo y de reflejocornal. Supervise continuamente la rata durante todo el procedimiento y ajuste la cantidad de parto anestésico según sea necesario para mantener la profundidad anestésica quirúrgica.
- Afeitar el tronco dorsal entre la cadera y el cuello, colocar la rata en el campo quirúrgico, desinfectar el sitio de la incisión con toallitas de alcohol y solución de proviodina, y mantener la temperatura corporal del núcleo a 37 oC utilizando una almohadilla de calentamiento controlada por retroalimentación supervisada por rectal Termómetro.
- Coloque pomada oftálmica en los ojos para mantenerlos hidratados y volver a aplicarlos durante la cirugía según sea necesario.
- Hacer una incisión de 2,5 cm en la piel que se superpone a las vértebras T6-T10 con un bisturí. Retraiga la piel y la grasa superficial con tijeras de disección contundente.
NOTA: Los segmentos vertebrales T6-T10 pueden ser identificados ya sea rostrally por palpación suave de los segmentos dorsales de la columna vertebral desde la base del cráneo a partir de la notable protuberancia de la 2a vértebra torácica24,o caudalmente por palpación de la costilla flotante más posterior que inducirá el movimiento en las vértebras torácicas 13. - Separe los músculos paravertebrales insertando en el aspecto dorsal de las vértebras T7-T9 usando tijeras de disección contundente y un retractor auto-retenedor. Desbrida y limpia cualquier tejido restante usando fórceps finos y aplicadores con punta de algodón para exponer los procesos espinosos y las láminas vertebrales.
NOTA: Esto y los siguientes pasos están muy ayudados por la visualización microscópica (5 x 15 x ). - Corte cuidadosamente las facetas (articulaciones cigapophysial) bilateralmente en las vértebras T7 y T8 con delicados recortadores óseos. Cortar el tejido conectivo dorsal entre las láminas vertebrales T8 y T9 superficialmente con un bisturí (1 mm de profundidad) teniendo cuidado de no herir el cordón inferior.
- Retire el proceso espinoso de la vértebra T8 con recortadores óseos. Con fórceps hemostáticos curvos cuidadosamente fijados en el proceso espinoso T7, gire el extremo caudal de la lámina T8 ligeramente rostrally (20o), inserte los recortadores óseos debajo de la lámina T8 y haga un corte de línea media que se extienda a lo largo de la lámina. Continúe la laminectomía repitiendo los cortes en el lado izquierdo y derecho de la lámina vertebral medial a los procesos transversales para exponer la médula espinal.
NOTA: Tenga cuidado de eliminar todos los fragmentos óseos creados a partir de la laminectomía. - Drip lidocaína (2%, 0,1 ml) en el canal espinal expuesto y eliminar la dura superponiendo el segmento espinal T8 usando fórceps finos y tijeras de iridectomía. Repita la administración de lidocaína en el cordón expuesto e identifique la línea media del cordón mediante la visualización de una línea central creada entre los procesos espínes que se extienden entre la vértebra T7-T9 expuesta.
NOTA: Junto con los procesos espinosos en T7 y T9, los ganglios de raíz dorsal expuestos en T8 también se pueden utilizar para ayudar a la identificación de la línea media y se puede colocar una aguja de 30 G en la línea media del cordón para ayudar con la hemisección posterior. - Hemisect la médula espinal desde la línea media hacia un lado con un cuchillo diseccionante. Tenga cuidado de no cortar a través de la arteria espinal anterior en el lado ventral (no aplique presión firme sobre el cuerpo vertebral). Usando tijeras de iridectomía, corte cuidadosamente a través de cualquier tejido restante en el lado lesionado de la médula espinal para asegurarse de que el cuadrante ventrolateral se transecta adecuadamente.
- Coloque la esponja hemostática estéril empapada en solución salina (6 x 2 mm) en la cavidad expuesta por encima de la médula espinal y sutura las capas musculares (4-0 poliglactina 910). A continuación, sutura la piel alrededor del sitio de la incisión.
- Proporcionar analgésico adecuado (buprenorfina 0,05 mg/kg subcutánea [s.c.]), antibiótico (enrofloxacino, 10 mg/kg s.c.) y reponer los líquidos perdidos con solución de anillo lactado de 5 cc (intraperitoneal [i.p.]) inmediatamente después de la cirugía.
- Retire la rata de la anestesia. Coloque la rata en un ambiente cálido debajo de una almohadilla de calentamiento o una lámpara (a 33 oC) hasta que el animal esté completamente despierto.
- Proporcionar analgesia suplementaria diariamente durante los primeros 3 días postquirúrgicos y monitorear continuamente los signos de dolor, pérdida de peso, micción inadecuada, infección, problemas con la cicatrización de heridas, o autofagia.
2. Procedimiento de prueba de campo abierto y puntuación de rendimiento locomotor
- Manipule ratas diariamente durante 1 semana y habituado a la arena durante dos sesiones de 5 minutos antes de las pruebas para aclimatarse a ser recogidos, suavemente desde el medio del tronco, mientras que en el campo abierto y para asegurar la fiabilidad de la medición durante las pruebas.
- Coloque una cámara a nivel del suelo frente a la arena circular de campo abierto de plexiglás para grabar sesiones de prueba para el análisis fuera de línea (30-60 fotogramas/s como mínimo).
- Comience la grabación de vídeo y coloque la rata en el centro de la arena bajo condiciones de luz tenue para fomentar la actividad locomotora.
- Continúe la sesión de prueba durante 4 min para asegurar una cantidad adecuada de peleas locomotoras para el análisis. Recoger y reemplazar ratas en el centro de la arena cuando permanecen estacionarias durante más de 20 s para promover la locomoción.
- Puntuar el rendimiento locomotor de la sesión de prueba registrada completando la rúbrica proporcionada enTabla 1de acuerdo con los parámetros de las siguientes subsecciones.
NOTA: Es útil puntuar cada parámetro por separado mediante la visualización repetida de la sesión de prueba grabada utilizando un software que permite una velocidad de reproducción variable y análisis fotograma a fotograma (por ejemplo, reproductor multimedia VLC).- Para los movimientos de las extremidades articulares, puntuar los movimientos articulares de las extremidades posteriores durante la locomoción espontánea por separado para el tobillo, la rodilla y la cadera como normales (más de la mitad del rango de movimiento, puntuación otorgada a 2), leve (menos de la mitad del rango de movimiento, puntuación otorgada 1) o ausente (puntuación premiada 0).
- Para el apoyo al peso, evaluar la capacidad de los músculos extensores de las extremidades posteriores para contraer y apoyar el peso corporal cargado cuando la extremidad está en el suelo por separado para cuando la rata está estacionaria, así como durante la locomoción activa. Otorgue una puntuación de 1 cuando el soporte de peso esté presente y una puntuación de 0 cuando el soporte de peso esté ausente.
NOTA: El soporte de peso estacionario se considera un perquisite para el soporte de peso activo. - Para la posición del dígito, evalúe la posición de los dígitos de las extremidades posteriores mientras la rata está estacionaria y durante la locomoción. Otorgar una puntuación de 2 cuando los dígitos de las extremidades posteriores se extienden, se separan entre sí, y tónico durante la locomoción en más del 50% del período de prueba (considerado normal). Otorgue una puntuación de 1 cuando los dígitos permanezcan predominantemente flexionados y una puntuación de 0 cuando los dígitos permanezcan predominantemente atónicos.
- Para el paso, complete este parámetro solo si la rata puede soportar su peso corporal durante el paso. Evaluar el paso por la clasificación de la orientación de la posición de la pata de la extremidad posterior en el momento del contacto inicial y en el despegue del suelo, además de la fluidez de la fase de oscilación durante el paso.
NOTA: Hay 3 puntuaciones para este parámetro descritas en las siguientes subsecciones evaluando por separado: 1) la orientación axial de la colocación de la pata en el contacto de las extremidades (colocación dorsal/plantar), 2) la orientación longitudinal de la colocación de la pata en el contacto inicial y durante la elevación (paralela al eje del cuerpo o girado interna/externamente), y 3) la calidad del movimiento de las extremidades durante la oscilación (regular o irregular).- Para la colocación de la pata en el contacto de las extremidades, puntuar la orientación axial de la colocación de la pata en el contacto de las extremidades como 0 cuando las colocaciones dorsales se producen en más del 50% de los pasos.
NOTA: La colocación plantar se considera perquisite para puntuar la orientación de la pata en contacto y elevación (paso 2.5.4.2), movimiento de oscilación (paso 2.5.4.3) y coordinación de las extremidades anteriores a las extremidades posteriores (paso 2.5.5). - Para la orientación de la pata en el contacto y elevación de las extremidades, otorgue una puntuación de 2 cuando la pata longitudinal y los ejes del cuerpo sean paralelos y una puntuación de 1 cuando la extremidad se gira externa o internamente, por separado para el contacto con las extremidades y la elevación.
- Para el movimiento de oscilación, otorgue una puntuación de 2 cuando las articulaciones de las extremidades posteriores se muevan de manera armoniosa y regular durante el swing y una puntuación de 1 cuando se produzcan movimientos bruscos o espasmódicos de las articulaciones durante el swing.
- Para la colocación de la pata en el contacto de las extremidades, puntuar la orientación axial de la colocación de la pata en el contacto de las extremidades como 0 cuando las colocaciones dorsales se producen en más del 50% de los pasos.
- Para la coordinación entre las extremidades anteriores y traseras, complete este parámetro solo si se producen 4 pasos consecutivos durante las pruebas y si las extremidades pueden soportar activamente el peso corporal. Otorgar una puntuación de 3 cuando la coordinación es consistente (>90% de los pasos), 2 cuando es frecuente (50-90% de los pasos), 1 cuando es ocasional (<50% de los pasos) o 0 cuando está ausente (0% de los pasos).
NOTA: La coordinación entre las extremidades anteriores y traseras se define como una alternancia regular al pasar entre la extremidad posterior que se está puntuando y la extremidad delantera en el mismo lado del cuerpo. - Para la posición de la cola, evalúe la posición de la cola durante la locomoción como hacia arriba (fuera del suelo, con la puntuación otorgada 1) o hacia abajo (tocando el suelo, otorgando la puntuación 0).
NOTA: Una posición elevada de la cola durante la locomoción es un indicador de la estabilidad del tronco en la rata. Después de la hemisección, la cola normalmente se mantiene cerca o tocando el suelo, ya que la estabilidad del tronco se ve afectada. - Agregue las puntuaciones individuales de cada parámetro para proporcionar un total para cada extremidad posterior de un máximo de 20 puntos.
NOTA: Una puntuación de 20 indica el rendimiento normal de la locomotora. Las puntuaciones <20 representan cantidades crecientes de deterioro locomotor y una puntuación de 0 indica parálisis de las extremidades.
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Representative Results
Las lesiones reproducibles con un alto grado de consistencia se pueden generar con la técnica de hemisección. Para evaluar y comparar el tamaño de las lesiones entre grupos experimentales, el área máxima de la lesión como porcentaje de la sección transversal total de la médula espinal se puede calcular fácilmente con la tinción histológica de las secciones de la médula espinal. La Figura 1 muestra una lesión representativa del hemicord izquierdo y una superposición de la proporción de área máxima de lesión compartida entre ratas con un tamaño medio de lesión del 47,3% a 4,0% del área del cordón transversal (n.o 6).
Figura 1: Lesiones espinales representativas. (A) Microfotografía de una sección espinal coronal en el epicentro de la lesión de una rata hemisectizada manchada con cresílo violeta (cuerpos celulares, púrpura) y luxol azul rápido (mielina, azul) que indica daño a la materia gris y blanca concentrada a la izquierda Hemicord. D, dorsal; V, ventral; L, a la izquierda; R, claro. Barra de escala:1 mm. (B ) Superposición esquemática de la proporción compartida del área máxima de la lesión en un grupo de ratas (n.o 6). La ubicación del tracto corticoespinal cruzado en el funículo dorsal en el lado derecho está sombreada en negro. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
La principal consecuencia de la hemisección es una parálisis inicial de la extremidad posterior en el lado de la lesión durante los primeros dos a tres días postoperatorios. El rendimiento locomotor de la extremidad posterior más afectada mejora rápidamente en la rata después de la hemisección durante las primeras semanas después de la lesión. Los pequeños déficits en la extremidad posterior opuesta se observan comúnmente inicialmente después de la hemisección que puede reflejar la compensación por la extremidad más afectada, o déficits resultantes de la falta de estabilidad postural, soporte de peso, y paso consistente. Un déficit grande y persistente en la extremidad posterior opuesta indicaría una lesión bilateral que se extiende hacia el hemicord opuesto.
En la Tabla 1 se proporciona una muestra de rúbrica de puntuación de rendimiento locomotor.
Tabla 1: Hoja de puntuación de muestra. Muestra de rúbrica de puntuación de rendimiento locomotor. Para cada parámetro, las puntuaciones posibles se indican entre paréntesis. Yo, interno; E, externo; P, paralelo; FL-HL, extremidad anterior-hind. Haga clic aquí para descargar este archivo.
El curso de tiempo de los cambios representativos en el rendimiento locomotor en estado intacto y durante las primeras cinco semanas después de una hemisección del lado izquierdo en grupos separados de ratas (n.o 6 por grupo) se muestra en la Figura2.
Figura 2: Curso de tiempo representativo de cambios en el rendimiento locomotor de las extremidades posteriores en el campo abierto en el estado intacto y durante cinco semanas después de una hemisección torácica del lado izquierdo. El rendimiento de la extremidad posterior izquierda (A) se ve significativamente afectado por los valores intactos durante las tres primeras semanas después de la hemisección, y de la extremidad posterior derecha (B) durante la primera semana después de la hemisección. Los datos se trazan como la media del grupo: desviación estándar (SD; n a 6 por grupo). Se realizaron análisis estadísticos con pruebas no paramétricas Kruskal-Wallis complementadas con las múltiples pruebas de comparación de Dunn para evaluar las diferencias de grupo entre los puntos de tiempo. *p < 0.05, ***p < 0.001. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
Una de las principales fortalezas de la técnica de hemisección es la selectividad y reproducibilidad de la lesión, lo que reduce la variabilidad en fenotipos histológicos y conductuales entre animales25. Con el fin de garantizar una lesión unilateral en el nivel espinal adecuado, la identificación precisa tanto del segmento vertebral adecuado como de la línea media de la médula espinal es crítica. Como puede haber una tendencia a que la médula espinal gire en la dirección del corte durante el procedimiento de hemisección, puede ser beneficioso estabilizar el cordón delicadamente con fórceps finos colocados a ambos lados durante el procedimiento. Colocar la rata en un marco estereotaxico con la cola suavemente pegada bajo tensión de luz puede ayudar con la estabilidad y la alineación vertebral adecuada durante el procedimiento. Una abrazadera espinal unida al marco estereotaxico y un proceso espinoso también se puede utilizar para mejorar la estabilidad de la columna vertebral, pero encontramos que su presencia puede restringir el acceso a la cuerda con herramientas quirúrgicas y requiere ángulos de aproximación incómodos durante el Cirugía. También es esencial eliminar los fragmentos óseos que quedan en el canal espinal de la laminectomía, ya que pueden causar lesiones de compresión no deseadas en el cordón y promover daños secundarios.
Las ratas deben ser observadas constantemente durante la cirugía para monitorear los signos vitales necesarios como la temperatura del núcleo y la respiración, ya que la hipotermia es una de las principales causas de mortalidad tanto durante la administración de anestesia como inicialmente después de la cirugía. La regulación de la temperatura corporal central con una sonda rectal y una almohadilla de calentamiento controlada por retroalimentación puede evitar en gran medida complicaciones de temperatura. Un oxímetro de pulso también se puede utilizar para controlar la oxigenación de la sangre y la frecuencia cardíaca para regular la profundidad anestésica. Encontramos que la reposición de líquidos inmediatamente después de la cirugía con la solución de timbre de lactato calentada a temperatura corporal resulta en un tiempo de recuperación más rápido para que la rata despierte después de la cirugía, recupere el control autónomo de la temperatura corporal y pueda beber y comer.
El monitoreo postquirúrgico de la rata es esencial después de la cirugía de hemisección, especialmente para signos de mictura inadecuada, dolor, infección, pérdida de peso, problemas con la cicatrización de heridas, o autofagia. La consulta con el personal veterinario para su evaluación y tratamiento es crucial en situaciones de complicaciones postquirúrgicas. En particular, el shock espinal agudo o las lesiones bilaterales no intencionales pueden interferir con la micción que puede conducir a infecciones potencialmente mortales. Controle cuidadosamente la vejiga de la rata después de la cirugía y se vacía manualmente tres veces al día si está llena por una presión suave desde el lado ventral de la vejiga que desciende caudalmente. Utilizamos ratas hembra de Long-Evans, ya que tienen una uretra significativamente más corta y recta que los machos que conduce a uninicio más rápido de una vejiga urinaria automática, micción más fácil y tasas más bajas de infecciones del tracto urinario 2. También se debe controlar el peso y una pérdida >20% con respecto a la línea de base justifica la investigación de la ingesta de alimentos y agua. Los dientes deben ser revisados para la maloclusión, el abdomen para el íleo, y las ratas a las que se les dan líquidos suplementarios adecuados y nutrición como hidrogel o una dieta líquida. Rara vez se puede formar un quiste debajo del lugar de la incisión que se puede drenar de forma segura con una jeringa sin complicaciones en consulta con el personal veterinario.
El procedimiento de evaluación locomotora de campo abierto de Martínez proporciona una técnica simple que no requiere ningún equipo especializado, entrenamiento preoperatorio, o privación de alimentos del animal para realizar. La evaluación se puede realizar tan pronto como el animal se recupere de la anestesia y se puede utilizar para examinar a los animales para detectar índices de recuperación adecuados (por ejemplo, recuperación del soporte de peso corporal) cuando se pueden complementar pruebas locomomotores más rigurosas y específicas, como evaluación automatizada de la marcha de locomociónterrestre 26,27,28, análisis cinemáticos durante la locomoción de la cinta de correr29,30,31,32, rejilla caminando33, y escalera peldaño caminando9,34. Es importante destacar que, si bien se ha demostrado que la escala BBB no es lineal con la recuperación locomotora, ya que las puntuaciones tienden a agruparse alrededor de ciertos valores19,la evaluación locomotora de campo abierto de Martinez proporciona un perfil de puntuación lineal durante el proceso de recuperación 10. Para garantizar datos de comportamiento fiables, es importante minimizar el número de fundadores durante las pruebas y el análisis. Para ayudar a reducir la variabilidad durante las pruebas, las sesiones deben realizarse a la misma hora del día, en la misma sala y por el mismo experimentador. La evaluación de campo abierto sepuede realizar de forma fiable durante las sesiones repetidas 9,10,11,12,23, pero las ratas pueden habituar se tiempo y reducir su actividad durante las pruebas, lo que resulta en una cantidad inadecuada de peleas locomotoras para su análisis. Para superar la inmovilidad durante las pruebas, las ratas que permanecen estacionarias durante más de 20 segundos son recogidas y reemplazadas en el centro de la arena para promover la locomoción. Además, incluir un conespecífico en la arena durante las pruebas que se marca para la identificación puede ayudar a promover la actividad locomotora en la rata de prueba. Para garantizar la fiabilidad en la puntuación locomotor dos evaluadores, preferiblemente cegados, deben realizar los análisis como se describió anteriormente10.
En conclusión, describimos métodos para llevar a cabo una hemisección de la médula espinal torácica en la rata y evaluar el rendimiento espontáneo del locomotor de las extremidades posteriores en una arena de campo abierto. Aunque se describió un procedimiento para la realización de hemisecciones laterales, la técnica se puede adaptar fácilmente para realizar hemisecciones dorsales35,hemisecciones alternas escalonadas36,37o transecciones completas 38 dependiendo de la ubicación deseada de la lesión y la cantidad de inervación supraespinal descendente. Es importante destacar que la técnica también se puede utilizar en modelos animales más grandes, incluidos los gatos39,40,41 y primates no humanos6,42 con déficits comparables observados entre pequeños y animales grandes, por lo que es útil para investigar tanto los mecanismos neurobiológicos de recuperación como para las pruebas terapéuticas preclínicas.
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Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Este trabajo fue apoyado por los Institutos Canadienses de Investigación Sanitaria (CIHR; MOP-142288) a M.M. M.M. fue apoyado por un premio salarial de Fonds de Recherche Québec Santé (FRQS), y A.R.B fue apoyado por una beca de FRQS.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Baytril | CDMV | 11242 | |
| Blunt dissection scissors | World Precision Instruments | 503669 | |
| Buprenorphine hydrochoride | CDMV | ||
| Camera lens | Pentax | C31204TH | 12.5-75mm, f1.8, 2/3" format, C-mount |
| CMOS video camera | Basler | acA2000-165uc | 2/3" format, 2048 x 1088 pixels, up to 165 fps, C-mount, USB3 |
| Compressed oxygen gas | Praxair | ||
| Cotton tipped applicators | CDMV | 108703 | |
| Delicate bone trimmers | Fine Science Tools | 16109-14 | |
| Dissecting knife | Fine Science Tools | 10055-12 | |
| Dumont fine forceps (#5) | Fine Science Tools | 11254-20 | |
| Ethicon Vicryl 4/0 Violet Braided FS-2 suture (J392H) | CDMV | 111689 | |
| Feedback-controlled heating pad | Harvard Apparatus | 55-7020 | |
| Female Long-Evans rats | Charles River Laboratories | Strain code: 006 | 225-250g |
| Gelfoam | CDMV | 102348 | |
| Curved hemostat forceps | Fine Science Tools | 13003-10 | |
| Hot bead sterilizer | Fine Science Tools | 18000-45 | |
| Hydrogel | 70-01-5022 | Clear H20 | |
| Isofluorane | CDMV | 118740 | |
| Lactated Ringer's solution | CDMV | 116373 | |
| Lidocaine (2%) | CDMV | 123684 | |
| Needle 30 ga | CDMV | 4799 | |
| Open-field area | Custom | Circular Plexiglas arena 96 cm diameter, 40 cm wall height | |
| Opthalmic ointment | CDMV | 110704 | |
| Personal computer | With USB3 connectivity to record video with the listed camera | ||
| Physiological saline | CDMV | 1399 | |
| Proviodine | CDMV | 4568 | |
| Rodent Liquid Diet | Bioserv | F1268 | |
| Scalpal blade #11 | CDMV | 6671 | |
| Self-retaining retractor | World Precision Instruments | 14240 | |
| Vannas iridectomy spring scissors | Fine Science Tools | 15002-08 | |
| Veterinary Anesthesia Machine and isofluarane vaporizer | Dispomed | 975-0510-000 | |
| VLC media player | VideoLAN | videolan.org/vlc |
References
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