Summary
Dieses Protokoll demonstriert die genaue und reproduzierbare Messung des Sauerstoffverbrauchs in nichtmenschlichen Pankreasinseln. Die Beladetechniken der Isleten und die Beschichtung der Mikroplatte bieten einen Rahmen für eine effiziente Messung der Atmung in anderen Arten von kultivierten Sphäroiden.
Abstract
Die Messung des Sauerstoffverbrauchs in Sphäroid-Clustern von Zellen, wie ex vivo Pankreasinseln, war historisch eine Herausforderung. Wir demonstrieren die Messung des Sauerstoffverbrauchs der Islet enmitieren mit einer 96-Well-Mikroplatte, die für die Messung des Sauerstoffverbrauchs in Sphäroiden entwickelt wurde. In diesem Test werden Sphäroid-Mikroplatten am Tag vor dem Test mit einem Zell- und Gewebekleber beschichtet. Wir verwenden ein kleines Volumen an Klebstofflösung, um die Befolgung der Leten nur an der Unterseite des Brunnens zu fördern. Am Tag des Assays werden 15 Inselchen mit einer Technik, die eine optimale Positionierung der Inselchen und eine genaue Messung des Sauerstoffverbrauchs gewährleistet, direkt in die Basis jedes Brunnens geladen. Verschiedene Aspekte der mitochondrialen Atmung werden pharmakologisch in nichtmenschlichen Primateninseln untersucht, einschließlich ATP-abhängiger Atmung, maximaler Atmung und Protonenleck. Diese Methode ermöglicht konsistente, reproduzierbare Ergebnisse mit nur einer kleinen Anzahl von Inselchen pro Bohrplatz. Es kann theoretisch auf alle kultivierten Sphäroide ähnlicher Größe angewendet werden.
Introduction
Um den normalen Blutzuckerspiegel aufrechtzuerhalten, muss die Pankreas-Zelle Erhöhungen in Glukose spüren und Insulin entsprechend absondern. Die Kopplung der Insulinsekretion mit dem Glukosespiegel ist direkt mit dem Glukosestoffwechsel und der Produktion von ATP durch mitochondriale oxidative Phosphorylierung verbunden. Daher spielen Mitochondrien eine entscheidende Rolle bei der Stimulus-Sekretionskopplung1. Die Beurteilung der mitochondrialen Funktion der Zelle kann Defekte aufdecken, die zu einer beeinträchtigten Insulinsekretion führen. Die Sekretion von Glucagon durch Pankreaszellen ist ebenfalls eng mit der mitochondrialen Funktion2verbunden. Obwohl sich verewigte Inselzelllinien für einige Arten von Assays als nützlich erwiesen haben, rekapituliert die Physiologie dieser Zellen die Funktion der ganzen Insel inselnicht genau, wie die Potenzierung der Insulinsekretion durch Glucagon3,4 und die Hemmung der Glucagonsekretion durch Insulin/Somatostatin5,6 in intakten Inselchen zeigt. Dies zeigt die Notwendigkeit, den Sauerstoffverbrauch mit ganzen, intakten Inseln zu messen.
Techniken zur Messung der Isletzell-Respirometrie haben sich im Laufe der Zeit weiterentwickelt, von der Verwendung von sauerstoffempfindlichen Fluoreszenzfarbstoffen7 bis hin zu Festkörpersensoren, die den Sauerstoffverbrauch direkt messen8. Ursprünglich für monolayer, haftende Zellen entwickelt, haben sich häufig verwendete Zellkulturplattensysteme als unwirksam für Pankreasinseln erwiesen. Da Inselchen nicht natürlich an den Brunnen haften, neigen sie dazu, an die Peripherie der Kultur brunnen geschoben zu werden, was zu einer ungenauen Messung des Sauerstoffverbrauchs9führt. Um dieses Problem zu bekämpfen, wurden spezialisierte 24-Well-Platten mit einer zentralen Depression entwickelt, die Inselchen enthalten könnte9. Das 24-Well-Plattensystem wurde jedoch durch die große Anzahl der benötigten Inseln (50-80 pro Brunnen) und die Anzahl der Bedingungen, die gleichzeitig getestet werden konnten,10begrenzt. Die jüngste Entwicklung von 96-Well-Mikroplatten, die speziell für die extrazelluläre Flussflussanalyse in Sphäroiden entwickelt wurden, hat diese Barrieren überwunden und ermöglicht die Messung der Inselrespirometrie mit 20 oder weniger Inselchen pro Brunnen10.
Hier zeigen wir die Verwendung dieses Systems zur Messung des Sauerstoffverbrauchs in Inselchen aus dem japanischen Makaken (Macaca fuscata), einem Tiermodell mit ähnlicher Inselbiologie wie Menschen11,12. In diesem Protokoll werden 15 Makakeninseln pro Brunnen analysiert. In unseren Händen produzierten 15 Inseln pro Brunnen einen höheren Ausgangssauerstoffverbrauch als weniger Inseln, mit robuster Aktivierung und Unterdrückung der Atmung als Reaktion auf pharmakologische Manipulation. Wir heben die Schritte zur Vorbereitung auf den Assay hervor, eine effektive Methode für das konsistente Laden von Inselchen in der Mitte jedes Brunnens und gemeinsame Herausforderungen bei der Durchführung dieses Assays.
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Protocol
1. Vorbereitung von Mikroplatte und Sensorpatrone am Tag vor dem Ausführen des Assays
Inselchen wurden von dreijährigen japanischen Makaken isoliert, wie zuvor beschrieben13. Diese Methode ist sehr ähnlich der, die verwendet wird, um menschliche Inselchen von Kadaverspendern zu isolieren, unterscheidet sich aber von Mäusen, bei denen Pankreata oft mit Kollagenaselösung aufgeblasen werden, während das Tier unter Sedierung und vor der Organentfernung steht. Der Islet Retrieval wurde in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) des Oregon National Primate Research Center (ONPRC) und der Oregon Health and Science University durchgeführt und vom ONPRC IACUC genehmigt. Das ONPRC hält sich an den Animal Welfare Act und die Vom Landwirtschaftsministerium der Vereinigten Staaten (USDA) durchgesetzten Vorschriften und die Politik des öffentlichen Gesundheitsdienstes zur humanen Pflege und Verwendung von Labortieren in Übereinstimmung mit dem von den National Institutes of Health veröffentlichten Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren.
- Herstellung von Spheroid Mikroplatte
- Bereiten Sie 3 ml einer 0,1M-Lösung von Natriumbicarbonat vor. Filter sterilisieren die Lösung. Wir haben einen 0,45-m-Filter (Materialtabelle )verwendet.
- In einer Zellkulturhaube 200 l Zell- und Gewebeklebstoff (Materialtabelle) zu 2,8 ml 0,1M Natriumbicarbonat hinzufügen. Fügen Sie dann 20 L dieser Lösung an den Boden jeder Bohrung der 96-Well-Sphäroid-Mikroplatte (Tabelle der Materialien) hinzu. Stellen Sie sicher, dass Luftblasen von der Pipettenspitze entfernt werden und nur der Boden der Platte abgedeckt ist. Die Beschichtung der Mikroplatte verhindert, dass sich Dieschen an den Seiten der Brunnen nach oben bewegen, wenn Medikamente hinzugefügt und während des Assays in den Brunnen gemischt werden.
HINWEIS: Es ist nur notwendig, so viele Brunnen zu beschichten, wie für Inselchen verwendet werden, wenn der Test ausgeführt wird. Wenn nur wenige Brunnen verwendet werden, kann die Zellklebstofflösung entsprechend verkleinert werden. Der im Test verwendete Zellklebstoff ist eine formulierte Proteinlösung, die aus der Meeresmuschel extrahiert wird. Alternativ können Mikroplattenbohrungen auch mit 20 l poly-D-Lysin mit 100 g/ml beschichtet werden. - Inkubieren Sie die Platte in einem 37 °C, Nicht-CO2 2-Inkubator für eine Stunde.
- In einer sterilen Umgebung, Aspirieren Zellklebstofflösung von der Platte. Waschen Sie jeden Brunnen zweimal mit 400 l 37 °C sterilem Wasser mit einer Mehrkanalpipette. Trocknen lassen.
- Nach 30-40 Minuten die Platte abdecken und über Nacht bei 4 °C lagern.
- Hydration der Sensorpatrone
- Öffnen Sie in einer sterilen Umgebung das Sensorkassettenpaket (Materialtabelle) und entfernen Sie den Inhalt. Stellen Sie die Sensorpatrone kopfüber neben die Gebrauchsschild.
- Füllen Sie jeden Brunnen der Versorgungsplatte mit 200 l sterilem Wasser und senken Sie die Sensorpatrone wieder in die Versorgungsplatte. Legen Sie montierte Sensorpatrone und Nutzplatte über Nacht in einen 37 °C, nicht CO2-Inkubator.
- Vorbereitung von Calibrant
- Aliquot 25 ml Kalibrant (Materialtabelle) in ein 50 ml konisches Rohr. Rohr über Nacht in einen 37 °C, nicht-CO2 2-Inkubator legen.
2. Protokoll zur Medienvorbereitung, Beladung von Inselchen und Beladung der Sensorpatrone am Tag des Assays
- Vorbereitung von Medien
- Auf 48,5 ml Basismedien (minimal DMEM, siehe Materialtabelle)500 l von je 1 mM Natriumpyruvat und 2 mM Glutamin hinzufügen. Zusätzlich 496 l mit 200 mg/ml Glukose hinzufügen (die Endkonzentration von Glukose in den Medien beträgt 5,5 mM).
ANMERKUNG: Die Glukosebasiskonzentration wurde für diese Experimente konstant gehalten. Jedoch, Glukose kann auch verwendet werden, um die Atmung zusätzlich zu den pharmakologischen Manipulationen beschrieben Schlag10zu stimulieren. - Bestätigen Sie, dass der pH-Wert 7,4 +/- 0,1 beträgt und bei Bedarf angepasst wird.
- Auf 48,5 ml Basismedien (minimal DMEM, siehe Materialtabelle)500 l von je 1 mM Natriumpyruvat und 2 mM Glutamin hinzufügen. Zusätzlich 496 l mit 200 mg/ml Glukose hinzufügen (die Endkonzentration von Glukose in den Medien beträgt 5,5 mM).
- Vorbereitung der Sensorpatrone
- Nehmen Sie die Sensorpatrone aus dem Inkubator, entfernen Sie den Deckel der Sensorpatrone und werfen Sie Wasser aus Brunnen aus. Legen Sie 200 ml vorgewärmten Kalibrant in jeden Brunnen und ersetzen Sie den Deckel der Sensorpatrone.
- Stellen Sie die Sensorpatrone für ca. 1 Stunde (bis erforderlich) wieder in den Inkubator ein.
- Zubereitung von Medikamenten für mitochondrialen Stresstest
- Öffnen Sie das Stresstestkit (Materialtabelle) und entfernen Sie den Inhalt. Bestands- und Arbeitslösungen für Oligomycin, Carbonylcyanid-4-(Trifluormethoxy)phenylhydrazone (FCCP) und Rotenon/Antimycin A (AA) wie folgt.
- Oligomycin: Fügen Sie 630 l montierte Medien in die Röhre ein, um 100 -M-Lager zu bilden. Dann mit Medien auf 45 m verdünnen, um eine Portkonzentration zu erhalten (endende Brunnenkonzentration nach der Injektion beträgt 4,5 m)
- FCCP: Fügen Sie 720 l montierte Medien zu Tube hinzu, um 100 -M-Lager zu machen. Verdünnung auf 10 m mit Medien, um eine Portkonzentration zu erhalten (Endbrunnenkonzentration beträgt 1 m)
HINWEIS: BSA und/oder FBS sollten nicht zu Medien hinzugefügt werden, da dies die Wirkung von mitochondrialen Entkopplern beeinflussen kann14. - Rotenone/AA: Fügen Sie 540 l montierte Medien in die Röhre ein, um 50 -M-Lager zu bilden. Verdünnung auf 25 m mit Medien, um eine Portkonzentration zu erhalten (Endbrunnenkonzentration beträgt 2,5 m)
ANMERKUNG: Die oben genannten Konzentrationen haben zu konsistenten Ergebnissen in unseren Händen geführt. Zusätzliche FCCP führte zu keiner weiteren Erhöhung der Atmung. Allerdings müssen die Wirkstoffkonzentrationen je nach Inselgröße und insbesondere bei Inselchen verschiedener Arten oder Nicht-Inselspheroide angepasst werden. Zum Vergleich: Der durchschnittliche Durchmesser einer nichtmenschlichen Primaten-Islet beträgt etwa 150 m15.
- Öffnen Sie das Stresstestkit (Materialtabelle) und entfernen Sie den Inhalt. Bestands- und Arbeitslösungen für Oligomycin, Carbonylcyanid-4-(Trifluormethoxy)phenylhydrazone (FCCP) und Rotenon/Antimycin A (AA) wie folgt.
- Herstellung von Sphäroidplatte und Transfer von Inselchen
- Handpflücken Sie Pankreasinseln in eine 60 mm x 15 mm Zellkulturschale mit montierten Medien, um nahezu 100% Reinheit zu erhalten.
HINWEIS:Inselchen sollten gerundet, mit einer klar definierten Peripherie erscheinen und dichter erscheinen als exokrine Gewebeverunreinigungen. Vermeiden Sie Inselchen, die beschädigt oder ausgefranst erscheinen. In diesem Experiment wurde die Inselgröße nicht direkt gemessen, obwohl wir versuchten, Für jeden Brunnen und jede Probe Inseln von ungefähr gleicher Größe zu pflücken. - Laden Sie jede Bohrung mit Sphäroid-Mikroplatte mit 175 l montierten Medien mit einer Mehrkanalpipette.
- Mit einer P20-Pipette, die auf 15 l eingestellt ist, 15 Inselchen aus der Zellkulturschale aspirieren. Inselchen sollten in der Pipettenspitze mit bloßem Auge sichtbar sein.
- Um Inselchen auf sphäroide Mikroplatte zu übertragen, niedrigere Pipette Spitze auf den Boden des Brunnens, kaum heben, und langsam Pipette aus einem sehr kleinen Volumen (ca. 5 l). Vergewissern Sie sich, dass alle Inselchen die Pipettenspitze verlassen haben. Jeder Brunnen sollte 15 Inseln erhalten. Überprüfen Sie gelegentlich sphäroide Mikroplatte unter dem Mikroskop, um zu überprüfen, ob sich die Inselchen an der Unterseite jedes Brunnens befinden, anstatt an den Seiten zu kleben.
HINWEIS: Vermeiden Sie das Laden der Eckbrunnen mit Inselchen. Sauerstoff und pH-Fluss aus dem Kunststoff können während des Testes auftreten, und dies wird in den vier Eckbrunnen verschärft. - Sobald alle Inselchen auf die Sphäroid-Mikroplatte übertragen wurden, inkubieren Sie die Mikroplatte in einem 37 °C, nicht-CO2-Inkubator, während Sie die folgenden Schritte ausführen.
- Handpflücken Sie Pankreasinseln in eine 60 mm x 15 mm Zellkulturschale mit montierten Medien, um nahezu 100% Reinheit zu erhalten.
- Laden der Sensorpatrone und Ausführen des Assays
- Entfernen Sie die Sensorpatrone aus dem Inkubator. Ports A-C für jeden Brunnen müssen entweder mit Drogen oder Medien geladen werden. Brunnen mit Inselchen und die vier Eckbrunnen sollten mit Drogen beladen werden. Nicht-Eckbrunnen ohne Inselchen sollten mit Medien beladen werden. Port D kann leer gelassen werden. Lastanschluss A (oben links von jedem Sensor) mit 20 l Oligomycin oder Medien. Ladeanschluss B (oben rechts) mit 22 L FCCP oder Medien. Lastanschluss C (unten links) mit 25 L Rotenon/AA oder Medien.
- Programmieren Sie einen extrazellulären Flussanalysator-Assay für eine 30-minütige Baseline-Atmungsphase (5 Zyklen mit 3-Minuten-Mix, 3-Minuten-Messung), 42-minütige Oligomycin-Messperiode (7 Zyklen 3-Minuten-Mix, 3-Minuten-Messung), 30 Minuten FCCP (5 Zyklen 3-Minuten-Mix, 3-Minuten-Messung) und 30 Minuten Rotenone/AA (5 Zyklen 3-Minuten-Mischung, 3-Minuten-Messung).
- Führen Sie den Test aus und befolgen Sie die Anweisungen auf dem Bildschirm, um den Sensor zu kalibrieren und die Mikroplatte einzulegen.
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Representative Results
Um Inselchen in Mikroplatten zu laden, sollten 15 Inselchen in 15 l Medien angesaugt werden, wie in Abbildung 1Adargestellt. Inselchen werden sich natürlich innerhalb weniger Sekunden zur Unterseite der Pipettenspitze absetzen. Dann wird die Pipettenspitze auf den Boden des Brunnens abgesenkt. Die Spitze ist sehr leicht angehoben, und ein kleines Volumen (ca. 5 l) wird zusammen mit den Inselchen herausgepfetet. Diese Technik führt zu einer konsistenten Platzierung der Islet an der Unterseite des Mikroplattenbrunnens (Abbildung 1B), die genaue Messungen des Sauerstoffverbrauchs ermöglicht.
Abbildung 2 zeigt repräsentative Ergebnisse nach einzelnen Brunnen für den Sauerstoffverbrauch während des gesamten Testes. Dieses spezielle Experiment zeigt, was passieren kann, wenn Brunnen schlecht beladen sind, mit vielen Inselchen, die an den Seiten des Brunnens und nicht am Boden des Brunnens stecken. Dies kann dadurch verursacht werden, dass zu viele Medien in den Brunnen geleitet werden, nachdem die Inselchen bereits aus der Spitze pipettiert wurden. Der Fluss zusätzlicher Medien schiebt die Inselchen aus dem Boden des Brunnens. Wenn dies geschieht, wird der Grundwert des Sauerstoffverbrauchs sehr niedrig sein, und dieser Brunnen wird wenig bis keine Reaktion auf FCCP zeigen. Die fettgedruckte Zeile in Abbildung 2 zeigt dieses Phänomen.
Abbildung 3 zeigt ein anderes Experiment, bei dem die meisten Brunnen eine signifikante Grundatmung und Reaktion auf Medikamente zeigten. Zwei Brunnen (mit fetten Linien) zeigten jedoch keine Reaktion auf Rotone/AA. Dies deutet darauf hin, dass das Medikament nicht richtig in den Brunnen freigesetzt wurde. In diesem Fall können diese Brunnen, wie bei keinem Sauerstoffverbrauch, von der weiteren Analyse ausgeschlossen werden.
Abbildung 4 zeigt die Ergebnisse eines erfolgreichen Assays. Hier zeigen wir ein Beispiel für zusammenfassende Daten aus einem separaten Experiment, bei dem Brunnen ordnungsgemäß mit Inselchen beladen und richtig mit Medikamenten injiziert wurden. Der ATP-abhängige mitochondriale Sauerstoffverbrauch wurde durch Oligomycin effektiv gehemmt, die maximale Atmung deutlich über den Basalspiegeln wurde durch FCCP induziert, und die mitochondriale Atmung wurde durch Hemmung der Elektronentransportkette mit Roton/AA vollständig unter die Oligomycinspiegel heruntergefahren.
Abbildung 1: Pipettiertechnik zum Laden von Inselchen in Mikroplatten. (A) Ungefähr 15 Inselchen (roter Pfeil) mit 15 l Medien pipetiert. (B) Inselchen, die an der Unterseite der Sphäroid-Mikroplatte zentriert sind. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 2: Gut zu belastbarkeit aufgrund unterschiedlicher Isletbelastung. Brunnen, die unsachgemäß geladen wurden (fette blaue Linie) zeigen wenig bis gar keinen Basalsauerstoffverbrauch und minimale Reaktion auf Zellstresstest-Medikamente. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 3: Versagen der Arzneimittelinjektion. Zwei Brunnen (fette blaue Linien) wurden nicht mit Roton/AA injiziert und zeigen keine signifikante Abnahme des Sauerstoffverbrauchs. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 4: Durchschnittliche Daten über alle Brunnen in einem Experiment nach Ausschluss von schlecht geladenen oder injizierten Brunnen. Durchschnittlicher Sauerstoffverbrauch während des zellbelasteten Testes in einem separaten Experiment mit 16 technischen Replikationen. Fehlerbalken zeigen Standardabweichung für n = 16 Brunnen an. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
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Discussion
Die Untersuchung des Sauerstoffverbrauchs der Insel wurde bisher durch die kugelförmige Form von Inselchen, deren mangelnde Haftung an Kulturoberflächen und die Anzahl der pro Brunnen benötigten Inselchen behindert. In diesem Protokoll unterstreichen wir die Wirksamkeit der 96-Well-Sphäroid-Mikroplatte zur Messung des Sauerstoffverbrauchs von Inselchen auf einer kleinen Anzahl von Inselchen und zeigen eine Technisch machbare und konsistente Technik zum Um- und Laden von Inselchen Ergebnisse.
Damit Die Inselchen am Boden der Mikroplatte haften und während der Mischschritte während des gesamten Assays ungestört werden, wird die 96-Well-Mikroplatte am Tag vor dem Test mit einer Zellklebstofflösung beschichtet. Während dies im Allgemeinen vorteilhaft ist, wenn Inselchen nicht richtig geladen werden, sind sie geeignet, an der Seite des Brunnens und nicht an der Unterseite zu bleiben, wodurch eine genaue Messung beeinträchtigt oder ausgeschlossen wird. Um dies zu bekämpfen, empfehlen wir, Brunnen mit einem sehr geringen Volumen von Klebstofflösung-nur 20 l zu beschichten. Darüber hinaus stellt die Pipettiertechnik, die wir demonstrieren, sicher, dass Inselchen auf den Boden des Brunnens geladen werden und nicht durch den Fluss zusätzlicher Medien an den Seiten nach oben geschoben werden. .
Die 96-Well-Sphäroid-Mikroplatte hat frühere Einschränkungen bei der Messung des Sauerstoffverbrauchs von Inselchen überwunden, einschließlich der hohen Anzahl der benötigten Inselchen und der Anzahl der Bedingungen, die gleichzeitig getestet werden können. Tatsächlich hat eine aktuelle Studie10 die Verwendung dieses Systems mit einer einzigen menschlichen Letin pro Brunnen gezeigt. Die Messung des Sauerstoffverbrauchs mit Einzelneninseln führte jedoch zu sehr niedrigen Basalmessungen des Sauerstoffverbrauchs, die nur auf den größten Inselchen (Durchmesser über 290 m) deutlich über dem Hintergrund lagen. NHP-Inseln sind tendenziell kleiner als menschliche Inselchen, mit einem durchschnittlichen Durchmesser von nur 150 m15. In unseren Händen zeigten 15 NHP-Inseln pro Brunnen eine höhere Ausgangsbasis und ein reaktionsschnelleres Profil während des Zellstresstests als weniger Inselchen. Wir testeten auch fünf und zehn Inseln pro Brunnen, fanden aber heraus, dass der Sauerstoffverbrauch und das Signal an Lärm deutlich reduziert wurden.
Zusätzlich zu der Möglichkeit, eine geringe Anzahl von Inseln pro Bohrgut zu verwenden, ermöglicht die 96-Well-Mikroplatte das Gleichzeitige Testen mehrerer verschiedener Bedingungen. Dies ist vorteilhaft in Fällen, in denen Inselchen mit verschiedenen Verbindungen behandelt oder genetisch manipuliert werden. Beim Vergleich von Gruppen menschlicher oder nichtmenschlicher Primateninseln, die aus verschiedenen Quellen stammen (z. B. diabetische und nicht diabetische Inselchen), werden Proben häufig an verschiedenen Tagen empfangen. In diesen Fällen ist es daher nicht möglich, dieses System voll auszuschöpfen.
Um verschiedene Aspekte des mitochondrialen Sauerstoffverbrauchs zu quantifizieren, haben wir verschiedene Aspekte der Atmung pharmakologisch manipuliert. Die verwendeten Arzneimittelkonzentrationen basierten auf einer durchdringenden Studie an menschlichen Inselchen10. Die Dosis von FCCP wurde optimiert, um maximale mitochondriale Atmung in unseren Händen zu induzieren. Insbesondere betrug die Konzentration von Oligomycin 4,5 m, der FCCP 1 m und das Roton/AA 2,5 m. Diese Konzentrationen müssen jedoch wahrscheinlich für verschiedene Anwendungen dieses Protokolls kalibriert werden.
Die erzeugten Daten können entweder direkt analysiert oder mit einer Reihe von Methoden normalisiert werden. In diesem Experiment wurde für jede Probe eine gleiche Anzahl von Inselchen ähnlicher Größe verwendet, und die Daten wurden nicht nach Zellenzahl oder Inselgröße normalisiert, was schwierig zu quantifizieren sein kann. Eine alternative Methode der Normalisierung ist durch das gesamte zelluläre Protein, das lysierende Zellen nach dem Assay durchgeführt und Proteinspiegel quantifizieren. Die Daten können auch auf basale Atmungsniveaus normalisiert werden. Dies kann in bestimmten Fällen informativ sein, z. B. bei der Quantifizierung der Reservekapazität in Prozent der Basalwerte. Mit diesen und anderen Normalisierungsmethoden können jedoch Während der Normalisierung Informationen verloren gehen, wie zuvor beschrieben16.
Das hier beschriebene System bietet ein einzigartiges Werkzeug, um die Zellphysiologie besser zu verstehen. Tatsächlich wird die Bedeutung des Sauerstoffverbrauchs in der Gesundheit der Isleten durch die Beobachtung veranschaulicht, dass die Sauerstoffverbrauchsraten der Islet eng mit der Gesundheit der Isleten und der Wahrscheinlichkeit einer erfolgreichen Islettransplantation verbunden sind17. Dieses System bietet eine hervorragende Plattform für eine konsistente Quantifizierung des Sauerstoffverbrauchs von Isleten, die theoretisch auch auf alle ähnlich großen kultivierten Sphäroide angewendet werden kann.
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Disclosures
Die Autoren haben nichts zu verraten.
Acknowledgments
Die Autoren möchten den Vanderbilt High Throughput Screening Core für die Nutzung ihrer Einrichtungen, Agilent Biotechnologies, Dr. Paul Kievit (Oregon Health and Science University) für nichtmenschliche Primaten-Islet-Isolierungen und Eric Donahue (Vanderbilt University) für die Unterstützung von Abbildung 1 würdigen. J.M.E. wurde von NIGMS der National Institutes of Health unter der AuszeichnungT32GM007347 unterstützt. M.G. wurde vom NIH/NIDDK (R24DK090964-06) und dem Department of Veterans Affairs (BX003744) unterstützt.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell culture dish, 60 mm X 15 mm style | Corning | 430166 | |
| Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive | Corning | 354240 | |
| Conical tube, 50 mL | Falcon | 352070 | |
| Dextrose anhydrous | Fisher Scientific | BP350-1 | For glucose solution, 200 mg/ml, sterile filetered |
| Disposable reservoirs (sterile), 25 ML | Vistalab | 3054-1033 | for loading multichannel pipet |
| EZFlow Sterile 0.45 μm PES Syringe Filter, 13 mm | Foxx Life Sciences | 371-3115-OEM | |
| L-glutamine | Gibco | 25030-081 | 200 mM (100x) |
| Multichannel pipette tips | ThermoFisher Scientific | 94410810 | |
| Multichannel pipette, 15-1250 μL | ThermoFisher Scientific | 4672100BT | Recommended |
| P20, P200, and P1000 pipettes | Eppendorf | 2231000602 | |
| pH Probe | Hanna Instruments | HI2210-01 | |
| Pipette tips, 20 μL, 200 μL, 1000 μL | Olympus | 24-404, 24-412, 24-430 | |
| Seahorse XF Base Media | Agilent | 103334-100 | |
| Seahorse XF Cell Mito Stress Test Kit | Agilent | 103015-100 | Includes Oligomycin, FCCP, and Rotenone/Antimycin A |
| Seahorse XFe96 Analyzer | Agilent | S7800B | Including prep station with 37 °C non-CO2 incubator |
| Seahorse XFe96 Spheroid Fluxpak Mini | Agilent | 102905-100 | Includes sensor cartridge, spheroid microplate, and calibrant |
| Sodium bicarbonate | Fisher Scientific | BP328-500 | |
| Sodium pyruvate | Gibco | 11360-070 | 100 mM (100x) |
| Stereo Microscope | Olympus | SZX9 | |
| Syringe (sterile), 5 mL | BD | 309603 | For sterile filtration |
| Water (sterile) | Sigma | W3500-500mL |
References
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