Summary

एग्रोबैक्टीरियम राइजोजीनद्वारा बालों की जड़ों को प्रेरित करना - ताररी अनाज में मध्यस्थता परिवर्तन (फेगोपिरम तार्टीकम)

Published: March 11, 2020
doi:

Summary

हम एग्रोबैक्टीरियम राइजोजीनद्वारा बालों की जड़ों को प्रेरित करने की एक विधि का वर्णन करते हैं – ताररी अनाज(फेगोपिरम तारिकुम)में मध्यस्थता परिवर्तन। इसका उपयोग जीन कार्यों और तीखाअनाज में माध्यमिक मेटाबोलिट्स के उत्पादन की जांच करने के लिए किया जा सकता है, किसी भी आनुवंशिक परिवर्तन के लिए अपनाया जा सकता है, या सुधार के बाद अन्य औषधीय पौधों के लिए उपयोग किया जा सकता है।

Abstract

तारक अनाज (टीबी) [फेगोपिरम तार्टिक्यूम (एल.) गेटर्न] के पास विभिन्न जैविक और औषधीय गतिविधियां हैं क्योंकि इसमें फ्लेवोनॉइड, विशेष रूप से रूटिन जैसे प्रचुर मात्रा में द्वितीयक मेटाबोलाइट्स होते हैं। जीन कार्यों की जांच करने और माध्यमिक मेटाबोलाइट्स की उपज को बढ़ाने के लिए औषधीय पौधों में बालों वाली जड़ों को प्रेरित करने के लिए दुनिया भर में एग्रोबैक्टीरियम राइजोजीन का धीरे-धीरे उपयोग किया गया है। इस अध्ययन में, हमने टीबी में ए राइजोजीन-मध्यस्थताबालों वाली जड़ों को उत्पन्न करने के लिए एक विस्तृत विधि का वर्णन किया है। 7-10 दिनों में कोटाइलेडन और हाइपोकोटिलालोनी एक्सिस को एक्सप्लांट ्स के रूप में चुना गया और बाइनरी वेक्टर ले जाने वाले ए राइज़ोजीन से संक्रमित किया गया, जिसने 1 सप्ताह के बाद दिखाई देने वाली साहसी बालों वाली जड़ों को प्रेरित किया। उत्पन्न बालों वाले रूट परिवर्तन की पहचान आकृति विज्ञान, प्रतिरोध चयन (कनकसिन) और रिपोर्टर जीन अभिव्यक्ति (ग्रीन फ्लोरोसेंट प्रोटीन) के आधार पर की गई थी। बाद में, बदल बालों वाली जड़ों को आवश्यकतानुसार स्वयं प्रचारित किया गया। इस बीच, एक myeloblastosis (MYB) प्रतिलेखन कारक, FtMYB116,टीबी जीनोम में बदल गया था ए rhizogenes-मध्यस्थताबालों वाली जड़ों का उपयोग करने के लिए synthesizing flavonoids में FtMYB116 की भूमिका को सत्यापित करने के लिए । परिणामों से पता चला है कि फ्लेवोनॉयड से संबंधित जीन की अभिव्यक्ति और फ्लेवोनॉइड यौगिकों (रूटिन और क्वेर्केटिन) की उपज को FtMYB116द्वारा प्रचारित (पी एंड एलटी; 0.01) काफी था, जो यह दर्शाता है कि ए राइजोजीन-मध्यस्थताबालों वाली जड़ों को जीन कार्यों और माध्यमिक मेटाबोलिट्स के उत्पादन की जांच करने के लिए एक प्रभावी वैकल्पिक उपकरण के रूप में इस्तेमाल किया जा सकता है। बालों की जड़ों को पैदा करने के लिए इस अध्ययन में वर्णित विस्तृत कदम-दर-कदम प्रोटोकॉल समायोजन के बाद किसी भी आनुवंशिक परिवर्तन या अन्य औषधीय पौधों के लिए अपनाया जा सकता है।

Introduction

तारक अनाज (टीबी)(Fagopyrum tataricum (एल.) Gaertn) जीनस Fagopyrum और बहुभुजों की पारिवारिक1से संबंधित डाइकोटिलेडन का एक प्रकार है । चीनी दवा के एक प्रकार के रूप में, टीबी अपनी विशिष्ट रासायनिक संरचना और रोगों के खिलाफ विविध जैव गतिविधियों के कारण काफी रुचि प्राप्त कर रहा है । टीबी मुख्य रूप से कार्बोहाइड्रेट, प्रोटीन, विटामिन और कैरोटेनॉइड के साथ-साथ पॉलीफेनॉल जैसे फेनोलिक एसिड और फ्लेवोनॉइड1में समृद्ध है। फ्लेवोनॉइड की विभिन्न जैविक और औषधीय गतिविधियों, जिनमें एंटीऑक्सीडेटिव, एंटीहाइपरटेंसिव2और एंटी-भड़काऊ के साथ-साथ एंटीकैंसर और एंटीडायबिटिक गुणों का प्रदर्शन किया गया है,3का प्रदर्शन किया गया है ।

एग्रोबैक्टीरियम राइजोजीन एक मिट्टी जीवाणु है जो घाव साइटों4,,5को संक्रमित करके कई उच्च पौधों, विशेष रूप से डाइकोटिलेडोन में बालों वाली जड़ रोग के विकास में योगदान देता है। यह प्रक्रिया रूट-उत्प्रेरण (आरआई) प्लाज्मिड5,,6 में टी-डीएनए के हस्तांतरण द्वारा शुरू की जाती है और आमतौर पर री प्लाज्मिड से एक एक्सोजेनस जीन के एकीकरण और अभिव्यक्ति और बालों वाले रूट फेनोटाइप7को उत्पन्न करने के बाद के चरणों के साथ होती है। ए राइजोजीन-मध्यस्थताट्रांसजेनिक बालों वाली जड़ें, पौधे जैव प्रौद्योगिकी के क्षेत्र में एक शक्तिशाली उपकरण के रूप में, एक छोटी अवधि में उनके स्थिर और उच्च उत्पादकता और आसान प्राप्त करने के कारण सबसे व्यापक रूप से उपयोग की गई हैं। इसके अलावा, ए राइजोजीन द्वारा प्रेरित बालों वाली जड़ें कुशलतापूर्वक उनके साहित्यिक जड़ विकास और हार्मोन मुक्त मध्यम8में अत्यधिक शाखाओं में बंटी वृद्धि से प्रतिष्ठित हैं। इनका उपयोग कृत्रिम बीज उत्पादन, रूट नोड्यूल अनुसंधान सहित अनुसंधान के कई क्षेत्रों में किया जा सकता है, और अन्य जीवों जैसे माइकोरिज़ल कवक, सूत्रकृमि और रूटरोगजनक7,,9के साथ बातचीत का अध्ययन करने में। इसके अलावा, बालों वाले रूट परिवर्तन संस्कृतियों को जैव रासायनिक रास्तों और रासायनिक सिग्नलिंग की जांच करने और फार्मास्यूटिकल्स, सौंदर्य प्रसाधन और खाद्य योजक8,,10के रूप में उपयोग किए जाने वाले पौधे माध्यमिक मेटाबोलाइटिस का उत्पादन करने के लिए एक प्रयोगात्मक प्रणाली के रूप में बड़े पैमाने पर उपयोग किया गया है। इंडोल एल्कलॉइड, एकोनिट्स, ट्रोपेन एल्कलॉइड, टेर्पेनॉइड और फ्लेवोनॉइड सहित मूल्यवान माध्यमिक मेटाबोलाइट्स, जंगली प्रकार की बालों वाली जड़ों में संश्लेषित कई दशकों से जांच की गई है,2,जैसे पैनाक्स जिनसेंग11में जिनसेनोसाइड, अम्मी मज़स12 में कोमरीन12,और फिनोलिक यौगिक शामिल हैं

बालों की जड़ों का उत्पादन किया गया है २७ परिवारों से ७९ पौधों की प्रजातियों में ए rhizogenes का उपयोग कर14। उदाहरण के लिए, सोयाबीन15,,16, साल्विया17, प्लंबागो इंडिका18, लोटस जैपोन्कस19,और कासनी(सिकोरियम इंटिबस एल) में ए राइजोजीन-मध्यस्थताबालों वाले जड़ परिवर्तन की सूचना दी गई है। 20. टीबी बालों वाले रूट ट्रांसफॉर्मेशन की भी जांच की गई है2. कुछ विस्तृत प्रोटोकॉल ए राइजोजीन द्वारा मध्यस्थता की गई बालों वाली जड़ों के विकास के बारे में उपलब्ध हैं या तो बाइनरी वेक्टर ले जाते हैं या नहीं। उदाहरण के लिए, सैंड्रा एट अल.21 ने जंगली प्रकार की शूटिंग में निरंतर ट्रांसजेनिक आलू बालों वाली जड़ों के उत्पादन की एक विधि पेश की। पूरी तरह से विकसित बालों वाली जड़ों को आलू के पौधों के स्टेम इंटरनोड्स में गस रिपोर्टर जीन ले जाने वाले ए राइजोजीन के इंजेक्शन के 5-6 सप्ताह बाद कल्पना की जा सकती है । एक अन्य अध्ययन में जूट(कोर्कोरस शिमला मिर्च एल) में गुसा रिपोर्टर जीन को शरण देने वाले ए राइजोजीन द्वारा प्रेरित ट्रांसजेनिक बालों वाली जड़ प्रणाली की भी सूचना दी गई थी । 22.इसके अलावा, सुपार्ट एट अल.23 ने टीएचसीए का उत्पादन करने के लिए 1-टेट्राहाइड्रोकैनाबिनोलिक1एसिड (THCA) सिंथेस के जीन को ले जाने वाली अभिव्यक्ति वेक्टर pBI121 के साथ बदल ए राइजोजीन का उपयोग करके ट्रांसजेनिक तंबाकू बालों की जड़ें प्राप्त कीं।

हालांकि, बालों वाले जड़ परिवर्तन की एक प्रभावी पीढ़ी के लिए एक कदम दर कदम प्रक्रिया, विशेष रूप से टीबी में, अपेक्षाकृत कम प्रदर्शन किया गया है । इस अध्ययन में, हमने टीबी में बालों वाले रूट जेनेटिक ट्रांसफॉर्मेशन उत्पन्न करने के लिए रिपोर्टर जीन(जीएफपी),एक चयनात्मक मार्कर(कान),और ब्याज के जीन(b4),हमारे समूह से पहचाने गए लेकिन बुनियादी हेलिक्स-लूप-हेलिक्स(बीएचएलएच)परिवार से अप्रकाशित जीन) को ले जाने वाले ए राइज़ोजीन का उपयोग करके एक विस्तृत प्रोटोकॉल का वर्णन किया है । प्रयोग 5-6 सप्ताह तक चला, बीजों के टीका से बालों वाली जड़ों के उत्पादन के लिए, एक्सप्लांट तैयारी, संक्रमण, coculturing, क्षत- भंग, और बाद में प्रचार शामिल है । इसके अलावा, ए राइजोजीन जिसमें एक बाइनरी प्लाज्मिड होता है जो माइलोप्लास्टिसिस ट्रांसक्रिप्शन फैक्टर 116(FtMYB116)के टीबी ट्रांसजीन को ले जाता है, यह निर्धारित करने के लिए उपयोग किया गया था कि क्या FtMYB116 टीबी बालों वाले रूट परिवर्तन के माध्यम से जीन और मेटाबोलिक स्तर पर टीबी में फ्लेवोनॉइड, विशेष रूप से रूटिन के संचय को बढ़ावा दे सकता है। FtMYB116,जो एक प्रकाश-प्रेरित प्रतिलेखन कारक है, विभिन्न प्रकाश स्थितियों5के तहत रुटिन के संश्लेषण को नियंत्रित करता है। चालकोन सिंथासे(सीएचएस),फ्लेवनोन-3-हाइड्रोक्सीलेस(एफ 3एच),फ्लेवोनॉइड-3′-हाइड्रोक्सीलेस(F3’H),और फ्लेवोनोल सिंथासे(FLS)24 रूटिन बायोसिंथेसिस के मेटाबोलिक मार्ग में शामिल प्रमुख एंजाइम हैं।H इसलिए, यह अध्ययन टीबी बालों वाली जड़ों में FtMYB116 की अतिअभिव्यक्ति और प्रमुख एंजाइम जीन की अभिव्यक्ति के साथ-साथ रूटिन की सामग्री और क्वेरसेटिन जैसे अन्य फ्लेवोनॉइड को दर्शाता है।

Protocol

इस अध्ययन में उपयोग की जाने वाली टीबी को BT18 नाम दिया गया था, जो शांक्सी एकेडमी ऑफ एग्रीकल्चरल साइंस के छोटे विविध अनाज के अनुसंधान केंद्र द्वारा खेती की गई “जिंकिओ नंबर 2” की नस्ल से उत्पन्न हुआ था । इस प्र?…

Representative Results

एग्रोबैक्टीरियम राइजोजीन-मध्यस्थता टीबी बालों वाले रूट ट्रांसफॉर्मेशनयह अध्ययन कदम-दर-कदम प्रोटोकॉल का वर्णन करता है जो ए राइजोजीनका उपयोग करके आनुवंशिक रूप से रूप से रूपांतरित बालो…

Discussion

टीबी का उपयोग जेनेटिक और मेटाबोलिक स्तर1,2,5,,27,,28पर माध्यमिक मेटाबोलिट्स से संबंधित कई अध्ययनों में किया गया है . बालों वाली जड़ संस्कृति, मेट?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को केंद्रीय लोक कल्याण अनुसंधान संस्थानों ZXKT17002 के लिए मौलिक अनुसंधान कोष द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

2*Taq PCR MasterMix Aidlab, China PC0901
Agar powder Solarbio Life Science, Beijing, China A8190
Applied Biosystems 2720 thermo cycler ThermoFisher Scientific, US A37834
AS Solarbio Life Science, Beijing, China A8110 Diluted in DMSO, 100 mM
binary vectors ThermoFisher Scientific (invitrogen), US / pK7WG2D/pK7GWIWG2D (II)
Cefotaxime,sodium Solarbio Life Science, Beijing, China C8240 Diluted in Water, 200 mg/mL
CF15RXII high-speed micro Hitachi, Japan No. 90560201
Diposable Petri-dish Guanghua medical instrument factory, Yangzhou, China /
DYY-6C electrophoresis apparatus Bjliuyi, Beijing China ECS002301
EASYspin Plus Plant RNA Kit Aidlab, China RN38
ELGA purelab untra bioscience ELGA LabWater, UK 82665JK1819
Epoch Microplate Spectrophotometer biotek, US /
Gateway BP/LR reaction enzyme ThermoFisher Scientific (invitrogen), US 11789100/11791110
HYG-C multiple-function shaker Suzhou Peiying Experimental Equipment Co., Ltd. China /
Kan Solarbio Life Science, Beijing, China K8020 Diluted in Water, 100 mg/mL
MLS-3750 Autoclave sterilizer Sanyo, Japan /
MS salts with vitamins Solarbio Life Science, Beijing, China M8521
NaCl Solarbio Life Science, Beijing, China S8210
Other chemicals unstated Beijing Chemical Works, China ethanol, mercury bichloride, etc.
PHS-3C pH meter Shanghai INESA Scientific Instrument Co., Ltd, China a008
Plant Genomic DNA Kit TIANGEN BIOTECH (BEIJING) CO., LTD DP305
Rifampin Solarbio Life Science, Beijing, China R8010 Diluted in DMSO, 50 mg/mL
Spectinomycin Solarbio Life Science, Beijing, China S8040 Diluted in Water, 100 mg/mL
Sucrose Solarbio Life Science, Beijing, China S8270
Trans2K DNA Marker TransGen Biotech, Beijing, China BM101-01
Tryptone Solarbio Life Science, Beijing, China LP0042
Whatman diameter 9 cm Filter paper Hangzhou wohua Filter Paper Co., Ltd /
Yeast Extract powder Solarbio Life Science, Beijing, China LP0021

References

  1. Fabjan, N., et al. Tartary Buckwheat ( Fagopyrum tataricum Gaertn .) as a Source of Dietary Rutin and Quercitrin. Agricultural and Food Chemistry. 51, 6452-6455 (2003).
  2. Kim, Y. K., et al. Production of Phenolic Compounds in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Journal of Crop Science & Biotechnology. 12 (1), 53-57 (2009).
  3. Yao, Y., et al. D-chiro-inositol-enriched tartary buckwheat bran extract lowers the blood glucose level in KK-Ay mice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (21), 10027-10031 (2008).
  4. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  5. Zhang, D., et al. The light-induced transcription factor FtMYB116 promotes accumulation of rutin in Fagopyrum tataricum. Plant, Cell & Environment. 42, (2018).
  6. Chilton, M. -. D., et al. Agrobacterium thizogenes inserts T-DNA into the genomes of the host plant root cells. Nature. 295 (4), 129 (1982).
  7. Guillon, S., Trémouillaux-Guiller, J., Kumar Pati, P., Gantet, P. Hairy Roots: a Powerful Tool for Plant Biotechnological Advances. Bioactive Molecules and Medicinal Plants. , 271-283 (2008).
  8. Srivastava, S., Srivastava, A. K. Hairy root culture for mass-production of high-value secondary metabolites. Critical Reviews in Biotechnology. 27 (1), 29-43 (2007).
  9. Veena, V., Taylor, C. G. Agrobacterium rhizogenes: Recent developments and promising applications. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (5), 383-403 (2007).
  10. Ramachandra Rao, S., Ravishankar, G. A. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology Advances. 20 (2), 101-153 (2002).
  11. Palazón, J., et al. Growth and Ginsenoside Production in Hairy Root Cultures of Panax ginseng using a Novel Bioreactor. Planta Med. 69 (04), 344-349 (2003).
  12. Staniszewska, I., Królicka, A., Maliński, E., Łojkowska, E., Szafranek, J. Elicitation of secondary metabolites in in vitro cultures of Ammi majus L. Enzyme and Microbial Technology. 33 (5), 565-568 (2003).
  13. Uddin, M. R., Li, X., Won, O. J., Park, S. U., Pyon, J. Y. Herbicidal activity of phenolic compounds from hairy root cultures of Fagopyrum tataricum. Weed Research. 52, 25-33 (2011).
  14. Christey, M. C., Braun, R. H. Production of hairy root cultures and transgenic plants by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Methods in Molecular Biology. 286, 47-60 (2005).
  15. Olhoft, P. M., et al. A novel Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation method of soybean [Glycine max (L.) Merrill] using primary-node explants from seedlings. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (6), 536-549 (2007).
  16. Kereszt, A., et al. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of soybean to study root biology. Nature Protocols. 2 (4), (2007).
  17. Pistelli, L., et al. . Bio-Farms for Nutraceuticals: Functional Food and Safety Control by Biosensors. , (2010).
  18. Gangopadhyay, M., Sircar, D., Mitra, A., Bhattacharya, S. Hairy root culture of Plumbago indica as a potential source for plumbagin. Biologia Plantarum. 52 (3), 533-537 (2008).
  19. Okamoto, S., Yoro, E., T, S., K, M. Division Hairy Root Transformation in lotus Japonicus. Bio-Protocol. 3 (12), 14-17 (2013).
  20. Fathi, R., Mohebodini, M., Chamani, E. High-efficiency Agrobacterium rhizogenes-mediated genetic transformation in Cichorium intybus L. via removing macronutrients. Industrial Crops and Products. 128, 572-580 (2019).
  21. Fernández-piñán, S., et al. Transformation of Potato and the Promoter Activity of a Suberin Gene by GUS Staining. Journal Of Visualized Experiments. , e1 (2019).
  22. Chattopadhyay, T., Roy, S., Mitra, A., Maiti, M. K. Development of a transgenic hairy root system in jute (Corchorus capsularis L.) with gusA reporter gene through Agrobacterium rhizogenes mediated co-transformation. Plant Cell Reports. 30 (4), 485-493 (2011).
  23. Sirikantaramas, S., et al. The gene controlling marijuana psychoactivity. Molecular cloning and heterologous expression of Δ1-tetrahydrocannabinolic acid synthase from Cannabis sativa L. Journal of Biological Chemistry. 279 (38), 39767-39774 (2004).
  24. Zhou, M. L., et al. Characterization of Functional Genes in Buckwheat. Molecular Breeding and Nutritional Aspects of Buckwheat. , 327-331 (2016).
  25. Liang, C., et al. A Comparative Analysis of the Chloroplast Genomes of Four Salvia Medicinal Plants. Engineering. 5 (5), 907-915 (2019).
  26. Wang, J., Zhang, X., Yan, G., Zhou, Y., Zhang, K. Over-expression of the PaAP1 gene from sweet cherry (Prunus avium L.) causes early flowering in Arabidopsis thaliana. Journal of Plant Physiology. 170 (3), 315-320 (2013).
  27. Li, J., et al. Analysis of Flavonoid Metabolites in Buckwheat Leaves Using UPLC-ESI-MS/MS. Molecules. , (2019).
  28. Zhu, F. Chemical composition and health effects of Tartary buckwheat. Food Chemistry. 203, 231-245 (2016).
  29. Kaur, B., Malik, C. P. Hairy root culture -a unique source for metabolites production. Journal of Plant Science Research. 25 (2), 123-141 (2010).
  30. Thwe, A. A., et al. Metabolomic Analysis and Phenylpropanoid Biosynthesis in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat Cultivars. Plos One. 8 (6), (2013).
  31. Thwe, A. A., et al. Accumulation of Phenylpropanoids and Correlated Gene Expression in Hairy Roots of Tartary Buckwheat under Light and Dark Conditions. Applied Biochemistry and Biotechnology. 174 (7), 2537-2547 (2014).
  32. Zhang, K., et al. Jasmonate-responsive MYB factors spatially repress rutin biosynthesis in Fagopyrum tataricum. Journal of Experimental Botany. 69 (8), 1955-1966 (2018).
  33. Zhou, M., et al. FtSAD2 and FtJAZ1 regulate activity of the FtMYB11 transcription repressor of the phenylpropanoid pathway in Fagopyrum tataricum. New Phytologist. 216, (2017).
  34. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots: Recent trends and applications. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  35. Thwe, A., et al. Effect of different Agrobacterium rhizogenes strains on hairy root induction and phenylpropanoid biosynthesis in tartary buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Frontiers in Microbiology. 7, 1-10 (2016).
  36. Cheng, Q., et al. RNA interference-mediated repression of SmCPS (copalyldiphosphate synthase) expression in hairy roots of Salvia miltiorrhiza causes a decrease of tanshinones and sheds light on the functional role of SmCPS. Biotechnology Letters. 36 (2), 363-369 (2014).
  37. Huang, X., et al. Efficient Rutin and Quercetin Biosynthesis through Flavonoids-Related Gene Expression in Fagopyrum tataricum Gaertn . Hairy Root Cultures with UV-B Irradiation. Frontiers In Plant Science. 7, 1-11 (2016).
  38. Godwin, I., Todd, G., Ford-lloyd, B., Newbury, H. J. The effects of acetosyringone and pH on Agrobacterium-mediated transformation vary according to plant species. Plant Cell Reports. 9, 671-675 (1991).
  39. Stachel, S. E., Messens, E., Van Montagiu, M., Zambryski, P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens. Nature. 318 (19), (1985).
  40. Bolton, G. W., Nester, E. W., Gordon, M. P. Plant Phenolic Compounds Induce Expression of the Agrobacterium tumefaciens loci needed for virulence. Science. 232 (10), 983-985 (1986).
  41. Ferri, M., et al. Chitosan treatment induces changes of protein expression profile and stilbene distribution in Vitis vinifera cell suspensions. Proteomics. 9 (3), 610-624 (2009).
  42. Bourgaud, F., Gravot, A., Milesi, S., Gontier, E. Production of plant secondary metabolites: a historical perspective. Plant Science. 161 (5), 839-851 (2001).
  43. Kumagai, H., Kouchi, H. Gene Silencing by Expression of Hairpin RNA in Lotus japonicus Roots and Root Nodules. Molecular Plant-Microbe Interactions. 16 (8), 663-668 (2003).
  44. Sunil Kumar, G. B., Ganapathi, T. R., Srinivas, L., Revathi, C. J., Bapat, V. A. Expression of hepatitis B surface antigen in potato hairy roots. Plant Science. 170 (5), 918-925 (2006).

Play Video

Cite This Article
Mi, Y., Zhu, Z., Qian, G., Li, Y., Meng, X., Xue, J., Chen, Q., Sun, W., Shi, Y. Inducing Hairy Roots by Agrobacterium rhizogenes-Mediated Transformation in Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum). J. Vis. Exp. (157), e60828, doi:10.3791/60828 (2020).

View Video