Denne protokollen presenterer en detaljert prosedyre for å forberede biologiske kryompler for synkrotronbaserte røntgenabsorpsjonsspektroskopieksperimenter. Vi beskriver alle trinnene som kreves for å optimalisere prøvepreparering og kryopreservering med eksempler på protokollen med kreft og planteplanktonceller. Denne metoden gir en universell standard for prøvekryo-forberedelse.
Studiet av elementer med røntgenabsorpsjonsspektroskopi (XAS) er av spesiell interesse når man studerer metallenes rolle i biologiske systemer. Prøvepreparering er en viktig og ofte kompleks prosedyre, spesielt for biologiske prøver. Selv om røntgenspesifisieringsteknikker er mye brukt, er det ennå ikke formidlet noen detaljert protokoll for brukere av teknikken. Videre er kjemisk tilstandsmodifisering bekymringsfull, og kryobaserte teknikker anbefales å analysere de biologiske prøvene i deres nesten innfødte hydrerte tilstand for å gi maksimal bevaring av kjemisk integritet av cellene eller vevene. Her foreslår vi en cellulær forberedelsesprotokoll basert på kryo-bevarte prøver. Det er demonstrert i en høy energioppløsning fluorescens oppdaget røntgenabsorpsjon spektroskopi studie av selen i kreftceller og en studie av jern i planteplankton. Denne protokollen kan brukes med andre biologiske prøver og andre røntgenteknikker som kan bli skadet ved bestråling.
Studien av cellulære biotransformasjoner av essensielle eller giftige elementer krever spesieringsteknikker med høy følsomhet og bør minimere prøveprepareringstrinn som ofte er utsatt for modifikasjon av kjemiske arter.
Fysiologiske elementer som selen og jern er kjent for å være spesielt vanskelig å spekulere på grunn av deres komplekse kjemi, ulike stabiliteter av selen eller jernarter, og deres lave konsentrasjon i ppm (mg / kg) eller til og med sub-ppm-serien. Dermed kan studiet av spesiering av disse elementene av XAS være ekstremt utfordrende. Synchrotron XAS og spesielt høy energioppløsning fluorescens oppdaget XAS (HERFD-XAS), som tillater et svært lavt signal-til-bakgrunn-forhold1, er tilgjengelige ved synkrotronkilder for å spekulere høyt fortynnede elementer i komplekse biologiske matriser 2,3. Konvensjonelle fluorescens-XAS-målinger kan utføres ved hjelp av en energiavklart SSD-detektor (solid state detektor) med energibåndbredde ~ 150-250 eV, på CRG-FAME-strålelinjen ved European Synchrotron Radiation Facility (ESRF)4, mens HERFD-XAS-målinger trenger et krystallanalysatorspektrometer (CAS), med en energibåndbredde ~ 1-3 eV, på CRG-FAME-UHD-strålelinjen ved ESRF2 . Fluorescensfotoner diskrimineres med hensyn til deres energi med henholdsvis elektroniske eller optiske prosesser.
Prøven cryo-forberedelse er avgjørende for å bevare strukturer og opprettholde komposisjonell kjemisk integritet, og dermed tillate analyse nær den biologiske innfødte tilstand5. Videre tillater analyser utført ved kryogeniske temperaturer så lave som 10 K ved hjelp av flytende heliumkryogen kjøling (LN2), strålingsskader å bremse og bevare elementær spesiering for XAS. Selv om noen vurderinger av XAS-teknikker som brukes på biologiske prøver rapporterer nødvendigheten av å forberede og analysere prøver under kryogeniske forhold (f.eks. Sarret et al.6, Porcaro et al.7), beskriver ingen av dem tydelig den relaterte detaljerte protokollen. I denne publikasjonen er en metode for kryo-forberedelse av kreftceller og planktonmikroorganismer beskrevet for HERFD-XAS-spesiering avSe 8 og Fe9 ved kryogen temperatur.
God praksis for prøvepreparering og miljø under toppmoderne XAS-spektroskopimålinger krever 1) et oppsett; 2) en analyseprosedyre som begrenser effekten av strålingsskader så mye som mulig; og 3) en prøve (eller modellforbindelsesreferanse) så homogen som mulig med hensyn til røntgenfotonstrålestørrelsen. Det første elementet tas i betraktning ved å utføre oppkjøpet ved lav temperatur, ved hjelp av en flytende helium cryostat. Den andre gjenstanden håndteres ved å utføre hvert oppkjøp på et nytt område av prøven ved å flytte den med hensyn til bjelken. Til slutt, med tanke på den tredje tilstanden, er prøver (pellets) og referanser (pulver) betinget i presset bulkpellets for å begrense porøsiteter og inhomogeniteter så mye som mulig, og for å unngå grovhet med hensyn til strålestørrelsen på røntgensonden. Vi forklarer hvordan protokollen omhandler alle disse punktene.
Vi brukte human prostata celle linje PC-3 (høyt metastatisk potensial) og ovariecelle linje OVCAR-3 (som står for opptil 70% av alle ovariekreft tilfeller) for å undersøke antiproliferative egenskaper mot kreftceller av selen nanopartikler (Se-NPs), og Phaeodactylum tricornutum diatom som en modellart for å undersøke jern sequestration i phytoplankton.
Denne protokollen ble brukt til å studere den kjemiske formen for selen og jern i biologiske prøver ved røntgenabsorpsjonsspektroskopi. Den fokuserer på kryo-forberedelse og lagring av biologiske prøver og referanser forbindelser, samt på HERFD-XAS målinger.
Kryo-forberedelse og lagring
Kryo-preparatet av de store biologiske prøvepellets tillater bevaring av den kjemiske integriteten til artene som er tilstede i prøvene. Dette er avgjørende, fordi det er observert…
The authors have nothing to disclose.
Vi er takknemlige for økonomiske bidrag til beamline-utviklingen av CEMHTI (Orleans, Frankrike, ANR-13-BS08-0012-01) og Labex OSUG@2020 (Grenoble, Frankrike, ANR-10-LABX-0056). FAME-UHD-prosjektet støttes økonomisk av den franske “grand emprunt” EquipEx (EcoX, ANR-10-EQPX-27-01), CEA-CNRS CRG-konsortiet og INSU CNRS-instituttet. Vi er takknemlige for alle bidragene under eksperimentene, spesielt alle personene som jobber med BM30B og BM16. Forfatterne anerkjenner det europeiske synkrotronstrålingsanlegget for levering av synkrotronstrålingstråletid. Vi anerkjenner også PHYTOMET ANR-prosjekt for økonomisk støtte (ANR-16-CE01-0008) og SEDMAC-prosjekt for økonomisk støtte (INCA-Plan cancer-ASC16019CS).
Ammonium nitrate | Sigma-Aldrich | A3795 | NH4NO3, 2.66 mg/L of milliQ water |
Anaerobic chamber | Coy Laboratory, USA | equipped with Anaerobic Monitor (CAM-12) | |
Antibiotic stock | Sigma-Aldrich | A0166 for ampicillin, S9137 for streptomycin sulfate | 1 mL/L of milliQ water (ampicillin sodium and streptomycin sulfate, 100 mg/mL) |
Boron nitride powder | Sigma-Aldrich | 255475 | |
Cell counting chamber | Neubauer or Malassez | ||
Cell scraper | |||
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS) | GIBCO | 14190-094 | Without Calcium, Magnesium, Phenol Red |
Eppendorf tubes | 0.5 mL and 1.5 mL | ||
Falcon tubes | 15 mL and 50 mL | ||
Ferric citrate Fe/citrate = 1/20 | Sigma-Aldrich | F3388 | aqueous solution of FeCl3 50 mM and Na-citrate 1M pH 6.5 |
Fetal Bovine Serum | GIBCO | A31604-02 | Performance Plus, certified One Shot format, US origin |
Flasks | Sigma-Aldrich | Z707503 | TPP 150 cm2 area |
Growth chamber | Sanyo | Sanyo MLR-352 | at 20 °C and under a 12:12 light (3,000 lux) dark regime |
HEPES buffer | Sigma-Aldrich | H4034 | 1 g/L of milliQ water HEPES |
High grade serous, OVCAR-3 | ATCC, Rockville, MD | HTB-161 | Storage temperature: liquid nitrogen vapor temperature |
Incubator | Incubator at 37°C, humidified atmosphere with 5% CO2 | ||
Insulin solution from bovine pancreas | Sigma-Aldrich | I0516 | 10 mg/mL insulin in 25mM HEPES, pH 8.2, BioReagent, sterile-filtered, suitable for cell culture |
Manual hydraulic press | Specac, USA | ||
Marine diatom Phaeodactylum tricornutum | Roscoff culture collection | RCC69 | http://roscoff-culture-collection.org/rcc-strain-details/69 |
Morpholinepropanesulfonic acid | Sigma-Aldrich | M3183 | MOPS, 250 mg/L of milliQ water (pH 7.3) |
Optical microscope | |||
PC-3 | ECCAC, Salisbury, UK | 90112714 | Storage temperature: liquid nitrogen vapor temperature |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | P4333 | Solution stabilized, with 10,000 units penicillin and 10 mg streptomycin/mL, sterile-filtered, BioReagent, suitable for cell culture |
Pipette-boy | 25mL-, 10mL-, and 5mL sterile plastic-pipettes | ||
Plankton culture products, Mf medium: Sea salts | Sigma-Aldrich | S9883 | 40g/L of milliQ water. Composition: Cl- 19.29 g, Na+ 10.78 g, SO42- 2.66 g, Mg2+ 1.32 g, K+ 420 mg, Ca2+ 400 mg, CO32- /HCO3- 200 mg, Sr2+ 8.8 mg, BO2- 5.6 mg, Br- 56 mg, I- 0.24 mg, Li+ 0.3 mg, F- 1 mg |
Plastic tweezers | Oxford Instrument | AGT 5230 | |
RPMI MEDIUM 1640 (ATCC Modification) | GIBCO | A10491-01 | Solution with 4.5 g/L D-glucose, 1.5 g/L Sodium Bicarbonate, 110 mg/L (1 mM) Sodium Pyruvate, 2.388 g/L (10 mM) HEPES buffer and 300 mg/L L-glutamine for research use |
Selenium nanoparticles (Se-NPs), BSA coated, 2 mg/mL | NANOCS Company, USA | Se50-BS-1 | BSA stabilized Se-NPs solution. Average size about 30 nm. Stored at 4°C in the dark, protected from the light. |
Selenium nanoparticles (Se-NPs), Chitosan coated, 2 mg/mL | NANOCS Company, USA | 11. Se50-CS-1 | Chitosan stabilized Se-NPs solution. Average size about 30 nm. Stored at 4°C in the dark, protected from the light. |
Sodium metasilicate pentahydrate | Sigma-Aldrich | 71746 | Na2SiO3.5H2O, 22.8 mg/L of milliQ water |
Sodium nitrate | Sigma-Aldrich | S5022 | NaNO3, 75 mg/L of milliQ water |
Sodium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | S5011 | NaH2PO4, 15 mg/L of milliQ water |
T-75 flasks | |||
Tissue culture hood | |||
Trace metal stock | Sigma-Aldrich | M5005, Z1001, M1651, C2911, 450243, 451193, 229857 | 1 mL/L of milliQ water (MnCl2.4H2O 200 mg/L, ZnSO4.7H2O 40 mg/L, Na2MoO4.2H2O 20mg/L, CoCl2.6H2O 14 mg/L, Na3VO4.nH2O 10 mg/L, NiCl2 10 mg/L, H2SeO3 10 mg/L) |
Trypan Blue Solution (0.4%) | GIBCO | 15250061 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | GIBCO | 25300-054 | |
Vitamin stock | Sigma-Aldrich | T1270 for thiamine, B4639 for biotin, V6629 for B12 | 1 mL/L of milliQ water (thiamine HCl 20 mg/L, biotin 1 mg/L, B12 1 mg/L) |
Water bath 37°C |