Triglyseridlipolyse i adipocytter er en viktig metabolsk prosess som resulterer i frigjøring av frie fettsyrer og glyserol. Her gir vi en detaljert protokoll for å måle basal og stimulert lipolyse i adipocytter og ex vivo fettvev fra mus.
Adipocytter lagrer energi i form av triglyserider i lipiddråper. Denne energien kan mobiliseres via lipolyse, hvor fettsyresidekjedene spaltes sekvensielt fra glyserolryggraden, noe som resulterer i frigjøring av frie fettsyrer og glyserol. På grunn av det lave uttrykket av glyserolkinase i hvite adipocytter er glyserolopptakshastigheten ubetydelig, mens fettsyreopptak dikteres av fettsyrebindingskapasiteten til mediekomponenter som albumin. Både glyserol- og fettsyrefrigjøring i media kan kvantifiseres ved kolorimetriske analyser for å bestemme lipolytisk hastighet. Ved å måle disse faktorene på flere tidspunkter, kan man bestemme den lineære hastigheten av lipolyse med høy tillit. Her gir vi en detaljert protokoll for måling av lipolyse i in vitro differensierte adipocytter og ex vivo fettvev fra mus. Denne protokollen kan også optimaliseres for andre preadipocyttcellelinjer eller fettvev fra andre organismer; Viktige faktorer og optimaliseringsparametere diskuteres. Denne protokollen er designet for å være nyttig for å bestemme og sammenligne graden av adipocytlipolyse mellom musemodeller og behandlinger.
Overflødig næringsstoffer lagres i hvitt fettvev i form av triglyserider i den nøytrale lipidkjernen av lipiddråper. Triglyseridbutikker mobiliseres via lipolyse, en prosess der fettsyresidekjedene spaltes sekvensielt av fettvevstriglyseridlipase (ATGL), hormonsensitiv lipase (HSL) og monoglyseridlipase (MGL), noe som resulterer i frigjøring av frie fettsyrer (FFA) og glyserolryggraden 1,2. Lipolyse aktiveres ved katekolaminsignalering i fettvevet. Sympatiske nerveterminaler frigjør lokalt katekolaminer, som binder seg til β-adrenerge reseptorer på adipocyttplasmamembranen. Ved ligandbinding aktiverer disse G-proteinkoblede reseptorene (GPCR) adenylylsyklase via Gαs. Påfølgende aktivering av proteinkinase A (PKA) ved cAMP resulterer i oppregulering av både ATGL og HSL. Fosforyleringen av perilipin-1 av PKA forårsaker dissosiasjon av ABHD5 (også kjent som CGI-58), som binder og koaktiverer ATGL3. PKA fosforylerer HSL direkte, fremmer translokasjonen fra cytosol til lipiddråpen, hvor interaksjon med fosforylert perilipin-1 ytterligere fremmer lipaseaktiviteten 4,5,6,7. Den tredje lipasen involvert i lipolyse, MGL, ser ikke ut til å være regulert av katekolaminsignalering8. Det er viktig at triglyseridsyntese i adipocytter medieres av glyserollipidsynteseveien, som ikke involverer dannelsen av monoglyserider som et mellomprodukt; I stedet katalyserer glyserol-3-fosfatacyltransferaser dannelsen av lysofosfatidsyre, som kombineres med en annen fettacyl-CoA for å danne fosfatidsyre, og deretter isomeriseres til diglyserider før den endelige syntesen av triglyserider (figur 1) 9,10,11.
Figur 1: Lipolyse og glyserollipidsynteseveier. Øverst: Lipolytisk vei; enzymer vist i rødt: fettvevstriglyseridlipase (ATGL), hormonsensitiv lipase (HSL) og monoglyseridlipase (MGL). Bunn: glyserollipidsyntesevei; enzymer vist i grønt: diglyseridacyltransferase (DGAT), fosfatidsyrefosfatase (PAP), lysofosfatidsyreacyltransferase (LPAT, også kjent som LPAATs) og glyserol-3-fosfatacyltransferase (GPAT). Lipider: triglyserid (TG), diglyserid (DG), monoglyserid (MG), fri fettsyre (FFA), fettacyl-CoA (FA-CoA), lysofosfatidsyre (LPA) og fosfatidsyre (PA). Andre metabolitter: uorganisk fosfat (Pi) og glyserol 3-fosfat (G3P). Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.
Ekstracellulær adenosin er en annen viktig regulator av lipolyse, som arbeider gjennom Gs– og G i-koblede GPCRs for å påvirke adenylsyklaseaktivitet. Den dominerende adenosinreseptoren i adipocytter, ADORA1, hemmer adenylylsyklase, og dermed lipolyse gjennom aktivering av Gi12. Uttrykt i lavere nivåer, og primært i brune adipocytter, aktiverer ADORA2A lipolyse via Gs signalering13. ADORA1 påvirker både basal lipolyse og responsen på adrenerge agonister. Effekten av adenosin på lipolyse kan kontrolleres ved å tilsette adenosindeaminase for å nøytralisere adenosin, samt ADORA1-spesifikk agonist fenylisopropyladenosin14,15. Hormonell aktivering av G q-koblede GPCR kan også påvirke lipolyse via aktivering av fosfolipase C og proteinkinase C16,17,18,19. Inflammatoriske signaler påvirker også lipolytiske hastigheter. TLR4-aktivering av LPS (og andre endotoksiner) øker lipolytisk hastighet ved å aktivere ERK, som fosforylerer perilipin-1 og HSL20. TNF-α aktiverer også lipolyse via ERK- og NF-κB-aktivering, samt transkripsjonell nedregulering av fosfodiesterase PDE-3B og CIDEC21,22,23. IL-6 har også vært assosiert med økt adipocytlipolyse, spesielt i mesenterisk fettvev, hvis FFA-frigjøring påvirker leverstatose og glukoneogenese24,25,26.
Lipolyse undertrykkes i matet tilstand av insulin. AKT fosforylerer og aktiverer PDE-3B for å undertrykke cAMP-signalering og forhindre PKA-aktivering27. Insulin nedregulerer også ATGL28 transkripsjonelt. Fedme fremmer katekolaminresistens gjennom en rekke mekanismer, inkludert nedregulering av β-adrenerge reseptorer i adipocytter 29,30,31,32,33. Adipocytter uttrykker alle tre β-adrenerge reseptorer (β-1, β-2 og β-3). Mens β-1 og β-2 adrenerge reseptorer er allestedsnærværende uttrykt, er β-3 adrenerg reseptor hovedsakelig uttrykt i adipocytter hos mus34,35. Adrb3-ekspresjon induseres av C/EBPα under adipogenese36. Den β-3 adrenerge reseptoren uttrykkes sterkt i modne adipocytter. Aktiveringen av β-1 og β-2 adrenerge reseptorer er selvbegrensende på grunn av tilbakemeldingshemming ved β-arrestin37. Tilbakemeldingshemming av β-3 adrenerg reseptor medieres av andre signalveier, noe som reduserer Adrb3-ekspresjon33,38,39.
Tallrike forbindelser kan brukes til å aktivere adipocytlipolyse. Katekolaminer er store fysiologiske aktivatorer av lipolyse. Noradrenalin (eller noradrenalin) og adrenalin (eller adrenalin) aktiverer alle tre β-adrenerge reseptorer40. Noradrenalin og adrenalin påvirker også lipolyse via aktivering av α-adrenerg reseptorsignalering41. Vanlige β-adrenerge reseptoragonister inkluderer isoproterenol, som er en ikke-selektiv β-adrenerg reseptoragonist, og β-3-adrenerge reseptoragonister CL-316,243 og mirabegron42. Gitt at adipocytter hovedsakelig uttrykker β-3 adrenerg reseptor, bruker vi CL-316,243 som et eksempel her. Dens spesifisitet for β-3 adrenerg reseptor gjør den også til en relativt spesifikk aktivator av adipocytkatekolaminsignalering, som også trygt kan brukes in vivo. Merk at den vanlige konsentrasjonen på 10 μM CL-316,243 i cellekultur er størrelsesordener høyere enn ~0,1 μM-dosen som kreves for å oppnå maksimal respons33. Forskolin omgår adrenerge reseptoren, direkte aktivere adenylylsyklase og nedstrøms lipolytisk signalering. Det er mange flere aktivatorer, så vel som undertrykkere av lipolyse. Ved valg av en forbindelse for å stimulere lipolyse, bør reseptorspesifisiteten og nedstrøms signalveier vurderes nøye innenfor eksperimentell design.
Graden av lipolyse i hvitt fettvev er en viktig metabolsk faktor som påvirker kuldetoleranse og næringstilgjengelighet under faste eller trening43,44,45,46. Formålet med denne protokollen er å måle graden av lipolyse i adipocytter og fettvev, noe som vil lette forståelsen av adipocyttmetabolisme og hvordan det kan påvirke den metabolske fenotypen til forskjellige murinmodeller. For å kvantifisere lipolytisk hastighet måler vi utseendet til lipolytiske produkter i media (dvs. FFA og glyserol). Metoden er avhengig av frigjøring av lipolytiske produkter fra adipocytter inn i mediet. Siden hvite adipocytter uttrykker lave nivåer av glyserolkinase, er glyserolopptakshastighetene lave47. Omvendt bør produksjon av FFA og glyserol ved andre metabolske veier enn lipolyse også vurderes. Adipocytter ser ut til å uttrykke en fosfatase med aktivitet mot glyserol-3-fosfat, noe som muliggjør produksjon av glyserol fra glyserol-3-fosfat avledet fra glukose48,49,50. Glykolyse er en kilde til glyserol-3-fosfat som brukes til FFA-reesterifisering i hvite adipocytter. Når glukosenivået er begrenset, krever glyseronogenese andre 3-karbonkilder, som laktat og pyruvat51. Kanaliseringen av FFAer frigjort av lipolyse i cellen og deres metabolske skjebne er dårlig forstått; FFA frigjort av lipolyse må omdannes til fettacyl-CoA, før de blir re-esterified eller gjennomgår β-oksidasjon. Det ser ut til at FFAer utgitt av lipolyse sannsynligvis forlater cellen før de tas opp igjen og omdannes til fettacyl-CoA 52,53,54,55,56,57,58,59,60,61,62 . FFA kan sekvestreres utenfor cellen av albumin. Det er viktig at langkjedede FFAer er kjent for å feedback-hemme lipolyse hvis de ikke er sekvestrert av albumin 63,64,65,66,67. Dermed er optimalisering av FFA-bufferkapasiteten til media under lipolyseanalysen kritisk. Prosedyren beskrevet her ligner tidligere publiserte metoder for å måle lipolytisk hastighet i adipocytter og ex vivo fettvev fra mus og mennesker 15,68,69,70,71. Denne protokollen skiller seg ut ved bruk av seriell prøvetaking; Ved å utføre seriell prøvetaking kan vi internt validere at lipolyse måles i den lineære fasen og bruke flere målinger for å beregne lipolysehastigheten, og dermed redusere målefeil for å øke tilliten til den endelige beregnede verdien. Ulempen med seriell prøvetaking er at analysen krever mer tid og reagenser; Den lengre tidsrammen reduserer imidlertid virkningen av målefeil på standardfeilen i estimatene for satsen. I tillegg måler denne protokollen både FFA- og glyserolfrigivelse, og vurderer forholdet mellom FFA: glyserolfrigivelse med målet om å oppnå et 3: 1-forhold, som forventes fra fullstendig lipolyse og frigjøring av lipolytiske produkter i media72.
Her gir vi en grunnleggende protokoll for måling av graden av lipolyse i adipocytter og ex vivo fettvev. For å kvantifisere lipolyse er det viktig å måle lipolytisk hastighet i den lineære fasen. Vi bruker en seriell prøvetakingsteknikk, der en stor del av mediene samles inn og erstattes med ferske medier med jevne mellomrom. Denne semikonservative metoden tillater tillegg av fersk BSA med FFA-bufferkapasitet og forsinker tilbakemeldingshemming, noe som forlenger varigheten av lineær lipolyse. Denne ekspe…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av US National Institutes of Health grant R01DK126944 til SMR
24-Well tissue culture treated plate | Corning Inc | 3527 | Must be tissue culture treated for adipocyte differntiation |
48-Well flat bottom plate with lid | Corning Inc | 353078 | Can be tissue culture treated |
6-Well flat bottom plate with lid | Corning Inc | 353046 | Can be tissue culture treated |
96-Well PCR Plate | USA sceintific | 1402-9100 | Any conical 0.2 mL PCR plate will be convenient |
Bovine Serum Albumin | Sigma Aldrich | A9418 | FFA free BSA such as A8806, is also commonly used. The BSA should not have detectable FFA, also lot to lot variations in BSA can impact the observed rate of lipolysis |
CL-316,243 | Sigma Aldrich | C5976 | CAS #: 138908-40-4 availaible from other suppliers |
CO2 incubator | PHCBI | MCO-170AICUVH | CO2 should ideally be set to 10% for adipose tissue, however 5% CO2 will also work |
DMEM, low glucose, no phenol red | Thermofischer | 11054020 | Any phenol red free media should work, DMEM/F12, RPMI, but should contain volatile buffering capacity, i.e. biocarbonate |
FFA-free Bovine serum albumin | Equitech-Bio, Inc, | BAH66 | |
Free Glycerol Reagent | Sigma Aldrich | F6428 | |
Glycerol Standard Solution | Sigma Aldrich | G7793 | This can also be made by diluting glycerol to the desired concentration |
HR Series NEFA Standard Solution | Fujifilm | 276-76491 | |
HR Series NEFA-HR (2) Color Reagent A | Fujifilm | 999-34691 | |
HR Series NEFA-HR (2) Color Reagent B | Fujifilm | 991-34891 | |
HR Series NEFA-HR (2) Solvent A | Fujifilm | 995-34791 | |
HR Series NEFA-HR (2) Solvent B | Fujifilm | 993-35191 | |
Microbiological Incubator | Fischer Scientific | S28668 | Any incubator at 37C can be used |
Nunc MicroWell 96-Well Plates | Thermo Scientific | 269620 | Any optically clear, flat bottom 96-well plate works |
Silicone Laboratory Benchtop Mat | VWR | 76045-300 | Glass plate can also be used. Absorbant surfaces are not recommended |
Spectrophotometer/Microplate Reader | Molecular devices | SpectraMax i3x | Any plate reader that can read at 540, 550 and 660 mm will work |
V Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | 810531 | |
WypAll X70 Wipers | Kimberly-Clark | 41200 | Any high quality paper towel will work |