Summary
מתוארת גישה אמינה וניתנת לשחזור להחדרה ותחזוקה של קטטר היקמן מנהור לגישה ארוכת טווח של כלי דם בחזירים. הצבת צנתר ורידי מרכזי מאפשרת דגימה יומית נוחה של דם שלם מבעלי חיים ערים ומתן תוך ורידי של תרופות ונוזלים.
Abstract
צנתרים ורידיים מרכזיים (CVC) הם מכשירים יקרי ערך במחקר בבעלי חיים גדולים מכיוון שהם מאפשרים מגוון רחב של יישומים רפואיים, כולל ניטור דם ומתן אמין של נוזלים תוך ורידיים ותרופות. באופן ספציפי, צנתר היקמן רב-לומן מנהור (HC) משמש בדרך כלל במודלים של חזירים בשל שיעורי החילוץ והסיבוכים הנמוכים יותר שלו. למרות פחות סיבוכים ביחס למחלות לב וכלי דם אחרות, תחלואה הקשורה ל-HC מהווה אתגר משמעותי, שכן היא יכולה לעכב באופן משמעותי או להשפיע לרעה באופן אחר על מחקרים מתמשכים. החדרה ותחזוקה נאותות של HCs הן בעלות חשיבות עליונה במניעת סיבוכים אלה, אך אין הסכמה על שיטות עבודה מומלצות. מטרת פרוטוקול זה היא לתאר באופן מקיף גישה להחדרה ותחזוקה של HC מנהור בחזירים המקל על סיבוכים ותחלואה הקשורים ל-HC. השימוש בטכניקות אלה ב->100 חזירים הביא לקווי פטנטים נטולי סיבוכים עד 8 חודשים וללא תמותה או זיהום הקשורים לצנתר באתר הניתוח הגחוני. פרוטוקול זה מציע שיטה למיטוב תוחלת החיים של HC והדרכה לטיפול בבעיות במהלך השימוש.
Introduction
התפקיד החיוני של צנתרים ורידיים מרכזיים (CVC) בטיפול בחולה נובע מהנוחות שלהם, פרופיל בטיחות חיובי ורבגוניות1. הפונקציות של CVC כוללות גישה אמינה לתזונה פרנטרלית כוללת, השתלת תאי גזע המטופויטיים, פלסמפרזיס / אפרזיס, וניהול יעיל של נוזלים, דם או תרופות משותפות2. ברפואה וטרינרית, CVC גם מפחיתים אי נוחות בבעלי חיים באמצעות דילול מהיר של תרופות מגרות ודגימת דם ללא ניקור חוזרונשנה 3. למרות היישומים הרחבים שלהם, השימוש ב-CVC במחקר בבעלי חיים גדולים עדיין מציב מספר אתגרים משמעותיים4.
מיקום CVC מלעורי באמצעות חוט מנחה או קטטר החדרה יכול להיות קשה עבור חוקרים שאינם וטרינריים, במיוחד בבעלי חיים עם מבנים ורידיים עמוקים5. טכניקת התקנה לא נכונה של CVC עלולה לגרום למיקום בשוגג במבנים סמוכים, מה שיחייב מיקום מונחה אולטרסאונד או רדיוגרפיה לאחר ההליך של המיקום6. עם זאת, בהשוואה לחדרי ניתוח אנושיים, אולטרסאונד אינו זמין במעבדות מחקר גדולות רבות בבעלי חיים. יתר על כן, שימוש ארוך טווח בצנתרים שוכנים עלול לגרום לקישוט קו, ניקוב, זיהום או חילוץ על ידי בעלי חיים, עם שיבוש אפשרי של טיפול בזמן, ניטור קליני ותוצאות מחקר 4,7. החלפת CVC דורשת משאבים נוספים, כולל רכישת חומרים, תזמון ניתוחים, זמן צום וגישה רדיוגרפית. סיבוכים הקשורים ל- CVC יכולים לפיכך ליצור חסמים טכניים ופיננסיים משמעותיים או הפרעה למחקר תרגומי פרודוקטיבי, במיוחד בחזירים. זיהום על ידי מזון או צואה, גירוד על קירות הכלוב ובעיטות באתרי גירוי עלולים לסכן CVC, והסיכון לסיבוכים הקשורים ל- CVC מוגבר על ידי שימוש ארוך טווח. לפיכך, תחזוקה בטוחה ולא מסובכת של CVC בחזירים דורשת שיקול דעת זהיר של בחירת CVC, מיקום, אבטחה, הגנה, תברואה ומעקב.
צנתר היקמן (HC) המשמש בפרוטוקול זה הוא CVC מנהור עם שרוול פוליאסטר ואחד עד שלושה לומן, המשמש בדרך כלל לגישה תוך ורידית ארוכת טווח בבני אדם ובבעלי חיים 1,4,8,9. גישת הצנתר המנהור נקשרה לשיעורי סיבוכים נמוכים יותר ועלויות תחזוקה נמוכות יותר ביחס לווריאציות שאינן מנהור10,11,12. השרוול מפחית את חילוץ HC על ידי שילוב ברקמות התת עוריות המקיפות את אתר היציאה של העור. העיצוב הרב-לומן מאפשר גם הפרדה בין מתן התרופות לבין שאיבת הדם, ובכך ממזער את הזיהום וחוסר הדיוק בדגימות הדם. למרות זאת, השימוש ב- HC אינו נטול אתגרים, הנפוצים שבהם כוללים שבר, נדידה, חסימה וזיהום13,14,15,16. התקנה ותחזוקה נאותות של HC הן אפוא מיומנויות חיוניות כאשר משתמשים בהן במחקר תרגומי. עם זאת, הספרות הנוכחית מציעה מעט הנחיות לגבי שיטות עבודה מומלצות לשימוש ב-HC בחזירים במהלך ניסויים ארוכי טווח 5,6,17.
מטרת מחקר זה היא להתוות גישה אופטימלית להחדרת HC לווריד הצוואר הפנימי (IJV), אבטחת העור והגנה עמידה הממזערת סיבוכים ואי נוחות ארוכי טווח הקשורים לצנתר בחזירים. נכלל דיון בשיקולים החשובים לשימוש ב-HC, אתגרים פוטנציאליים שעלולים להיתקל בהם ושינויים שעשויים לשפר את איכות הגישה הזו.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
כל ההליכים בבעלי חיים נערכו בהתאם לפרוטוקול בעלי חיים שאושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת ג'ונס הופקינס (IACUC). זנים של חזירים זכרים ונקבות שעוברים השמה HC כוללים חזירים מיניאטוריים ממושבת החזירים של בית החולים הכללי של מסצ'וסטס (MGH), חזירי יוקטן וחזירים מוצלבים מיורקשייר מרוכל חקלאי (20-40 ק"ג). גיל החזירים נע בין 3-10 חודשים כאשר הונח HC. HC עשוי להיות ממוקם בכל עת ביחס להליך הניסוי של החיה. עם זאת, מומלץ להניח אותו מראש כדי לאפשר איסוף של ערכי דם בסיסיים. כמו כן, מומלץ לתת לחזיר תקופת התאקלמות של שבוע לפחות לפני שיעבור מניפולציה ניסיונית כלשהי.
1. תכנון טרום אופרטיבי
- לפני הניתוח, בקשו מוטרינר לבצע הערכה קלינית יסודית של כל בעלי החיים.
- צום את בעלי החיים (ללא מזון מוצק) לפחות 12 שעות לפני ההליך. ספקו מים בכל עת. לשקול את החיות למתן תרופות מבוקר.
- ביום הניתוח, יש להרדים את בעלי החיים עם קטמין (20-30 מ"ג/ק"ג) וקסילזין (2-3 מ"ג/ק"ג תוך שרירית [IM]) מעורבבים במזרק יחיד. במידת הצורך, יש לתת תרופות הרגעה (קטמין וקסילזין) באיטיות תוך ורידי [IV]. השתמש משחה אופתלמית סטרילית על העיניים כדי למנוע התייבשות בזמן הרדמה.
- יש להניח צנתר תוך ורידי בווריד האוזן השולי ולתת נוזל תחזוקה במינון של 5-10 מ"ל/(ק"ג∙h) של 0.9% תמיסת מלח או רינגרים מניקים (LRS) לאורך כל ההליך.
- כאשר בעל החיים נמצא בשכיבה גבית, הניחו צינור אנדוטרכאלי בגודל מתאים, חברו אותו למכונת ההרדמה, והניחו על אוורור ידני (נשמר על איזופלורן ב 0.5-3% עם 1-2 L O2/min).
- לנהל שיכוך כאבים מונע (0.02 מ"ג / ק"ג buprenorphine IV); מתן מנות נוספות של buprenorphine תוך ניתוחית לפי הצורך. מתן אנטיביוטיקה מניעתית (20-22 מ"ג/ק"ג צפזולין IV) 10 דקות לפני תחילת הניתוח ושוב כל 90 דקות תוך ניתוחית. יש לתת פרוטוניקס (0.5-1.0 מ"ג/ק"ג IV) ומרופיטנט ציטראט (1 מ"ג/ק"ג IV) פעם אחת לפני תחילת הניתוח.
- לגלח את הצוואר הגחוני והגבי, אשר ישמש כאתר למיקום הצנתר הוורידי המרכזי. בצע הכנה ראשונית של אזור הניתוח באמצעות קרצוף chlorhexidine.
- ודא כי החזיר נמצא בתוך מישור מתאים של הרדמה כירורגית. להעריך את עומק ההרדמה על ידי בדיקת טונוס palpebral ו הלסת. במידת הצורך, להגביר את חומר ההרדמה הממסים נדיפים או לתת חומרי הרגעה נוספים (כגון קטמין) IV לאט כדי להשפיע.
- מעבירים את החזיר לשולחן הניתוחים.
2. ניטור תוך ניתוחי
- בזמן הרדמה תחזוקתית, עקוב ברציפות אחר קצב הלב והאלקטרוקרדיוגרפיה, לחץ הדם הלא פולשני, אוקסימטריית הדופק, הקפנוגרפיה וטמפרטורת הוושט או פי הטבעת, ורשם לפחות כל 15 דקות.
- ניטור לא פולשני של לחץ הדם באמצעות שרוול לחץ דם בגפיים או בזנב.
- השתמש במכונת הנשמה כדי לווסת בצורה מדויקת יותר את מתן הנשימה וההרדמה בממסים נדיפים. עבור פרמטרים של מכונות הנשמה, ודא כי נפח הגאות הוא בטווח של 5-10 מ"ל / ק"ג. להתאים את קצב הנשימה לאורך כל ההליך בתגובה לעומק ההרדמה של החיה; הגדר את מגבלת הלחץ המרבית ל- 20 מ"מ כספית.
- השתמש בשמיכה או כרית אוויר חם מווסתת טמפרטורה לאורך כל הניתוח כדי למנוע היפותרמיה.
3. הכנה כירורגית
- להגדיר לפחות שני אנשים להיות סטריליים (מנתח ועוזר) ולפחות שני אנשים להיות לא סטריליים (מחזור הדם והמרדים).
- בהרדמה כללית, מקמו את החזיר בשכיבה גחונית על שולחן הניתוחים כשרגליו מאובטחות לייצוב (איור 1).
- הכן את שדה הניתוח עם שלושה פילינג לסירוגין של כלורהקסידין ואתנול 70%, ואחריו יונופור על פני העור למשך זמן מגע מינימלי של 10 דקות. בצע הכנה סטרילית של שני התחומים הבאים:
- בצד הגחון, להאריך מן הזווית של הלסת לאמצע עצם החזה ולהרחיב דו צדדית לגבול לרוחב של sternocleidomastoid. הניחו מגבות סטריליות לאורך גבולות האזור הסטרילי.
- בצד הגבי, להכין את הצוואר הדורסולטרלי ipsilateral כדי IJV המטרה. הניחו מגבות סטריליות מתחת לצוואר הגבי ומעל השדה הגבי כדי לשמור על סטריליות בזמן העבודה בשדה הגחון.
- מניחים וילון סטרילי מעל החזיר. חותכים אזור מלבני בווילונות כדי לחשוף את שדה הגחון.
- על שולחן סטרילי נפרד, חברו את הלומן הכפול HC לחתיכת היכרות ארוכה.
- הברגים מובלעים למתאמי נעילת פיתוי בסוף כל קו לומן (רחב: אדום; צר: לבן). לשטוף את הקווים האדומים והלבנים עם 10 מ"ל של 0.9% מלוחים. לאחר מכן, הדקו את שני הקווים.
4. זיהוי והכנה פנימיים של ורידים ג'וגולריים
- בשדה הגחון, בצעו חתך של 4 ס"מ בין קנה הנשימה לבין הגבול המדיאלי של הסטרנוקלידומסטואיד (איור 2). מחלקים את הפלטיזמה ומנתחים את רקמת החיבור כדי לחשוף את ה- IJV על הגבול הלטרלי של שריר הסטרנוקלידומסטואיד.
- בודדו 3-4 ס"מ מה-IJV על ידי חלוקת ענפיו עם 4-0 קשרי תפרים מצופים וקלועים שאינם נספגים. יש לנתח באופן היקפי הרחק מרקמת החיבור שמסביב. צרו שני תפרים מצופים וקלועים שאינם נספגים כדי להשהות ולייצב את ה-IJV במהלך החדרת הצנתר (איור 3).
- בקצה הגולגולת של ה-IJV, מעבירים פעמיים מתחת לכלי כדי ליצור סביבו לולאה מצופה וקלועה שאינה נספגת.
- בקצה הקאודלי של ה- IJV, העבירו קשירת תפר מצופה וקלועה שאינה נספגת פעם אחת מתחת לכלי כדי ליצור קלע.
- שחררו את המתיחה מקשרי התפרים. מניחים גזה סטרילית ספוגה במי מלח באתר הניתוח כדי להגן על כלי הדם ולשמור על מיקום הקשירה.
5. הכנת אתר יציאת הצנתר
- מקם מחדש את החזיר באמצעות הטיה צידית לכיוון הצד הלא ניתוחי כדי לחשוף את שדה הניתוח הגבי האיפסילטרלי. אבטחו מחדש את הגפיים (איור 4).
- בעזרת אזמל להב #10, בצע ניקוב של 0.5 ס"מ בעור באתר יציאת הצנתר הרצוי - 3 ס"מ לרוחב עמוד השדרה ו-5 ס"מ קאודלי לראש (איור 5).
6. החדרה ומנהור של הצנתר
- בשדה הגחון, להסיר את הגזה הרטובה ולזהות מחדש את קטע IJV מבודד. בחר אתר הזנת מטרה כדי להכניס את הצנתר תת עורית. ודאו שזה באותו עומק כמו ה-IJV, עמוק יותר מהסטרנוקליידומסטואיד, ובין שני קשרי התפרים המצופים והקלועים שאינם נספגים (איור 6).
הערה: תבניות תת עוריות צריכות להיות קשרי תפרים קבורים מתחת לעור. מכיוון שהתפרים העוריים העמוקים קשורים מספר פעמים כדי להבטיח יציבות ותחזוקה, הם תופסים לעיתים מקום גדול יותר מהרצוי ועלולים להיחשף דרך העור. שטח קטן זה של חשיפה אינו מדאיג באופן משמעותי, והעור צריך להחלים כראוי למרות שטח קטן זה של חשיפה. - מקם את היד הדומיננטית בשדה הניתוחי הגבי ואת היד הלא דומיננטית בשדה הכירורגי הגחוני. החזק את מבוא HC בתחום הכירורגי הגבי. יש להשהות את יתרת אורכו של הצנתר באוויר מעל השדה הסטרילי.
- הכנס את המבוא לאתר ניקוב היציאה עם היד הדומיננטית, והפנה את קצה המכשיר לעבר היד הלא דומיננטית בשדה הגחון.
- לדחוף את קצה המבוא באופן שטחי ומדיאלי כדי לנתב את הצנתר דרך רקמת השומן, מרגיש את הופעתו של קצה עם היד הלא דומיננטית. ברגע שהקצה מגיח באתר הכניסה למטרה, משוך את המחדיר והצנתר דרך התעלה התת עורית עד שהשרוול של הקו הראשי נמצא ממש מתחת לפני השטח של העור בשדה הגבי.
- חותכים את המבוא מהקו. החלף את הגזה הרטובה באתר כירורגי הגחון.
7. החדרת הצנתר
- מקם מחדש את החזיר במצב שכיבה. לאבטח מחדש את הגפיים, להחליף כפפות סטריליות, ולהסיר את הגזה מאתר כירורגי הגחון.
- מהדקים את קצות קשרי התפרים המצופים הגולגולתיים והקאודליים וקלועים שאינם נספגים. הניחו את המלחציים על הווילונות, כך שקטע ה- IJV מוגבה מעט.
- חתכו את קצה הצנתר בערך לאורך שבו הוא יגיע עד 1/3 מאורך עצם החזה של החזיר.
הערה: מזער את המניפולציה של קצה הצנתר על ידי מעבר הקצה עם חתך יחיד בניצב לקו כדי למנוע פיצול או סתימה של הקו. לאחר החדרתו, ה-HC אמור להימצא בתוך הווריד הנבוב העליון, מיד גולגולתי לאטריום הימני (איור 7). - בעזרת מלקחיים אדסון-בראון, תפסו את אמצע קטע ה-IJV המבודד. באותה נקודה, בצע חיתוך באמצע הכלי עם מספריים מעוקלים של מצנבאום.
- תוך כדי החזקת מקטע ה-IJV עם מלקחיים אדסון-בראון, הכניסו את בוריד הווריד למקטע הקאודלי של כלי הדם (איור 6). תוך שמירה על מתח על קשר התפר הגולגולתי, הכנס והשחיל את קצה הצנתר לתוך כלי הדם באופן קאודלי. לאחר החדרת הצנתר במלואו, קשרו את קשר התפר הקאודלי פעם אחת כדי לאבטח זמנית את ה-HC.
- בדוק את הפטנט של שני הקווים מחוץ לשדה הסטרילי באמצעות שאיבת דם ושטיפה באמצעות 3-5 מ"ל של 0.9% מלוחים רגילים ואחריו 5 מ"ל של 100 יחידות USP / מ"ל מלח הפריני.
- לאחר אישור הפטנט, קשרו את התפר הקאודלי פי אחד או שניים יותר כדי לאבטח את מקטע ה-IJV הדיסטלי סביב הצנתר התוך-ורידי. קשרו את תפר הגולגולת פעם אחת כדי לחסום את זרימת הדם במקטע IJV.
- סגור את אתר הניתוח הגחוני בשכבות: תפרים קטועים פשוטים עם תפר נספג 3-0, ותפרי ריצה תת עוריים עם תפר נספג מונופילמנט 3-0.
8. אבטחת הצנתר
- לנטרל את החזיר ולמקם מחדש בשכיבה הגבית. אבטחו מחדש את הגפיים.
- הצמידו את ההיפוקמפוס לעור החיה ביותר משלוש נקודות כדי למנוע היפרדות צנתר (איור 8).
- לכוון את HC כך שהוא יוצר צורה "U".
- זהה את הנקודות: ודא שהנקודה הראשונה נמצאת בטווח של 2 ס"מ מאתר היציאה, הנקודה השנייה נמצאת מעל החלק המפוצל של הצנתר, היכן שהקווים האדומים והלבנים מתפצלים, והנקודה השלישית נמצאת בראש ה- "U" בין שתי הנקודות הראשונות.
- בכל נקודה, הניחו חתיכה של ~3 ס"מ של סרט רפואי בגודל 1 אינץ' מעל הצנתר כדי ליצור כנף בכל צד. עם תפר פוליפרופילן סינתטי 0, מונופילמנט, שאינו נספג, מהדק כל כנף לעור באמצעות תפר קטוע פשוט אחד. בנקודה השנייה מעל החלק המפוצל, מוסיפים תפר קטוע יחיד דרך הרווח בין שני הקווים ומוודאים שהקשר מונח על גבי הסרט כדי למנוע גירוי.
הערה: בהתאם לגודל אתר ניקוב הצוואר הגבי, ניתן להציב תפר פשוט קטוע כדי להקטין את הגודל ולמזער את הסיכון לתזוזת קטטר בשוגג מהעור. יש לוודא שהשרוול סביב הצנתר נשאר תת עורי. - בדוק את הפטנט של הקו הלבן והקו האדום מחוץ לשדה הסטרילי באמצעות שאיבת דם ושטיפה באמצעות 10 מ"ל של 0.9% מלח רגיל ו -10 מ"ל של מי מלח הפריניזציה.
- צרו צווארון מגן.
- יש לעטוף 4 בריפוד כותנה סביב הצוואר שלוש עד ארבע פעמים באופן הבא:
- מתחילים בצוואר הגבי בפינה השמאלית-גולגולתית, עוטפים באלכסון לכיוון הפינה הימנית-קאודלית, מעל או מתחת לקווים האדומים והלבנים. עוטפים מתחת לצוואר לכיוון הפינה השמאלית-קאודלית. גלשו באלכסון לכיוון פינת הגולגולת הימנית, מעל או מתחת לקווים האדומים והלבנים, ולאחר מכן גלשו לנקודת ההתחלה בפינה השמאלית של הגולגולת. מעבר לסירוגין מעל ומתחת לקווים האדומים והלבנים עם כל עטיפה עוקבת.
הערה: הקולר צריך לכסות לחלוטין את אתרי חיבור העור ואת הקו הראשי של HC. יש להשאיר רק את הקווים האדומים והלבנים בחוץ ולהנגיש.
- מתחילים בצוואר הגבי בפינה השמאלית-גולגולתית, עוטפים באלכסון לכיוון הפינה הימנית-קאודלית, מעל או מתחת לקווים האדומים והלבנים. עוטפים מתחת לצוואר לכיוון הפינה השמאלית-קאודלית. גלשו באלכסון לכיוון פינת הגולגולת הימנית, מעל או מתחת לקווים האדומים והלבנים, ולאחר מכן גלשו לנקודת ההתחלה בפינה השמאלית של הגולגולת. מעבר לסירוגין מעל ומתחת לקווים האדומים והלבנים עם כל עטיפה עוקבת.
- עטפו 3 או 4 בסרט הדבקה אלסטי סביב הצוואר שלוש או ארבע פעמים באותו אופן כמו ריפוד הכותנה (שלב 8.4.1). אם התחבושת מכסה את הקווים, צרו חריץ בתחבושת כדי להכיל אותם.
הערה: יש להקפיד לא לעטוף שכבה זו חזק מדי - אצבע אמורה להיות מסוגלת להחליק בקלות מתחת לצווארון המגן באופן היקפי. - עם תפר פוליפרופילן סינתטי 0, מונופילמנט, שאינו נספג, תופרים כל פינה בקצה התחבושת לשכבות שמתחתיה כדי לשמור על מיקומה.
- עם תפר פוליפרופילן סינתטי 0, מונופילמנט, שאינו נספג, מהדק את הצווארון לעור על ידי קשירת תפר מזרן אופקי לרוחב עמוד השדרה הן בקצה הגולגולתי והן בקצה הקאודלי. ודא כי הקשרים מונחים על גבי התחבושת.
- צרו שקית צנתר כדי להגן ולאחסן את הקווים האדומים והלבנים (איור 9).
- חותכים חתיכת סרט דבק אלסטי באורך ~100 ס"מ וברוחב ~7.5 ס"מ.
- מדוד קטע ~ 16 ס"מ של קלטת. קפלו את סרט הדבק על עצמו כך שדפנות הדבק פונות זו לזו ליצירת דש בקוטר 16 ס"מ עם שתי שכבות נייר דבק. עם הקלטת הנותרת, חזרו על התהליך הזה פעמיים נוספות כדי ליצור שלושה דשים באורך שווה בצורת "W" (איור 10).
- קפלו את זנב הסרט הנותר על קצה שלושת הדשים. כאשר הזנב מכוון למעלה, מספר את הדשים 1-3 מלמעלה למטה. מספר את הצדדים 1-4, החל מקצה הזנב ונע בכיוון השעון.
- בצד 4, הסירו רסיס באורך מדש 2, למעט 1 ס"מ משני קצותיו. ודא שרוחב הרסיס הוא ~ 1 ס"מ.
- שימוש בתפר 0 מצופה וקלוע שאינו נספג לביצוע תפרי ריצה: תפירת דשים 1 ו-3 יחד בצד 4, דשים 1, 2 ו-3 יחד בצד 3, ודשים 1 ו-2 יחד בצד 2. חותכים חור של 2 ס"מ דרך מרכז דש 1.
- כאשר דש 1 פונה כלפי מטה, יישרו את החור עם הנקודה שבה הקווים יוצאים מהצווארון, וכוונו את השקית כך שהפתח יהיה קאודלי. ודאו שהפאוץ' נמצא בקו האמצע או מעט לרוחב לצוואר הגבי.
- משוך את הקווים האדומים והלבנים דרך החור בדש 1. ודאו שהקווים שטוחים בין דש 1 ל-2, כאשר דש 3 פונה כלפי מעלה (איור 8).
- באמצעות תפר פוליפרופילן סינתטי 0, מונופילמנט, שאינו נספג, מהדק את השקית לצווארון עם תפר פשוט קטוע בכל פינה ובאמצע לאורך כל קצה. אין לתפור דרך העור.
- יש לעטוף 4 בריפוד כותנה סביב הצוואר שלוש עד ארבע פעמים באופן הבא:
9. טיפול לאחר הניתוח
- לאחר התאוששות מההרדמה, יש להחזיר את החזיר לכלוב הביתי שלו. בשל אופי הלעיסה של החזיר, יש לוודא שהחזיר שוכן ביחידות כדי למנוע הוצאת קטטר על ידי חזיר ספציפי. אם אתם נמצאים ליד חזירים אחרים, הניחו מחסום למניעת לעיסת הצנתר בין הכלובים.
- במהלך התקופה המיידית שלאחר הניתוח, לפקח על החיה לפחות מדי יום עבור סימנים של כאב, זיהום, וריפוי. קצב הנשימה, קצב הלב, הטמפרטורה, האנרגיה, התיאבון וצריכת המים הם אינדיקטורים בריאותיים טובים בתקופה זו. יש לתת מינונים נוספים של משכך כאבים (למשל, 0.12 מ"ג/ק"ג שחרור מתמשך של בופרנורפין [SR] LAB כל 48 שעות) אם מתפתחים סימני כאב. ביצוע תחזוקת קטטר (שלב 10) ובדיקה חזותית של אתר הניתוח מדי יום, החל מהיום שלאחר הניתוח (POD) 1.
הערה: חוקרים הבוחרים לאמץ טכניקת החדרת צנתר היקמן זו יכולים לשנות הליך זה עם שיכוך כאבים רב-מודאלי; עם זאת, NSAIDs עשויים לשנות את ממצאי המחקר בהתאם לאלמנטים אחרים של תכנון הניסוי. זה צריך להיחשב לפני תכנון משטר שיכוך כאבים. - לאחר החלמת מקום הניתוח של הצנתר, יש לבצע בדיקות ניטור תחזוקה של בעל החיים: לבצע מדידות משקל גוף שבועיות ולבצע בדיקות חזותיות במהלך תחזוקת הצנתר היומי. יש להתייעץ עם וטרינר אם מתפתחים סימנים של זיהום, כגון ירידה בתיאבון או ירידה באנרגיה. אם יש צורך בספירת דם מלאה, יש לאסוף דם מהקו האדום.
הערה: לויקוציטוזיס המאופיין בנויטרופיליה נצפה לעתים קרובות בבעלי חיים עם זיהום.
10. תחזוקת צנתרים
- ייעד את הקו האדום הרחב יותר אך ורק לשאיבת דם ואת הקו הלבן הצר יותר אך ורק למתן תרופות. תמיד לטפל בצנתר עם כפפות ידיים.
הערה: תפקידים אלה עשויים להיות שונים בהתאם לעיצוב המחקר. - יש לשטוף את הקו האדום (שאיבת הדם הייעודית) מדי יום כדי להעריך את הפטנט ולמנוע קרישה, באופן הבא:
- השתמשו בטכניקה אספטית: נגבו את הקלאווה ואת קצה המזרק עם פד אלכוהול בין כל שלב. אם הקלאווה או המזרק הופכים לא סטריליים, החליפו את החומר המזוהם לפני שתמשיכו.
- לשטוף 1 מ"ל של 0.9% מלוחים לתוך הקו. ודא שהנוזל מסוגל לשטוף ללא כוח מוגזם על מנת למנוע דחיפת קרישי דם מהקו לתוך החיה.
- משוך לאחור 2 מ"ל של נוזל. אשר את פטנטיות הקו על ידי התבוננות בנוזל שנסוג לאחור הוא דם אדום כהה.
- אם יש צורך בשאיבת דם, חברו מזרק ריק כדי למשוך בחזרה את כמות הדם המתאימה.
הערה: אם נלקח דם עודף, ניתן להחזיר דם לחיה על ידי דחיפתו חזרה דרך הקו כדי להפחית את איבוד הדם. זה צריך להיעשות רק אם מזרק המכיל דם המשיך להיות מטופל באמצעות טכניקה אספטית. אין להחזיר דם מזוהם לקו המרכזי. - יש לשטוף את הקו ב-5 מ"ל של 100 USP/מ"ל מי מלח שעברו הפריניזציה, או כמות הדרושה לשטיפת הקו כולו. מהדקים את הקו. מחזירים את הקו לנרתיק המגן, נזהרים לא לקשקש או לקשור את הקו.
- יש לשטוף את הקו הלבן (טיפול תרופתי מיועד) מדי יום כדי להעריך את הפטנט ולמנוע קרישיות באופן הבא:
- השתמשו בטכניקה אספטית: נגבו את הקלאווה ואת קצה המזרק עם פד אלכוהול בין כל צעד. אם הקלאווה או המזרק הופכים לא סטריליים, החליפו את החומר המזוהם לפני שתמשיכו.
- לשטוף 1 מ"ל של 0.9% מלוחים לתוך הקו. ודא שהנוזל מסוגל לשטוף ללא כוח מוגזם על מנת למנוע דחיפת קרישי דם מהקו לתוך החיה.
- מתן תרופות באמצעות קו זה במהירות ודילול ספציפיים לתרופות. לשטוף את הקו עם 1-3 מ"ל של 0.9% מלוחים בין תרופות.
- יש לשטוף את הקו ב-5 מ"ל של 100 USP/מ"ל מי מלח שעברו הפריניזציה, או כמות הדרושה לשטיפת הקו כולו. מהדקים את הקו. מחזירים את הקו לנרתיק המגן, נזהרים לא לקשקש או לקשור את הקו.
- בדוק את המובלעות מדי יום עבור סימנים של תפקוד לקוי, שבירה, או זיהום גלוי עם דם, מזון, או צואה. אם כן, החלף את המובלעת באופן מיידי. בדוק חזותית את נרתיק היקמן ואת צווארון המגן מדי יום כדי לוודא שהתפרים שהונחו בשלבים 8.2 ו-8.3 נותרו שלמים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
מעל 100 חזירים עברו החדרה מוצלחת של HC במעבדה שלנו. ניתן למקם ולאבטח את ההיפוקמפוס בצורה בטוחה ונכונה תוך פחות משעה אחת עם מנתח, עוזר, מחזור דם ומרדים. הכנת שקית הצנתר אורכת בערך 15-20 דקות. הטכניקה פשוטה וקלה ללימוד ובוצעה על ידי וטרינרים, מתמחים כירורגיים וסטודנטים לרפואה בעקבות הוראות מפוקחות.
HCs נותרו במקומם ללא סיבוכים או תיקון במשך עד 8 חודשים. בקבוצה מייצגת שנערכה לאחרונה של 32 חזירים עם נקודות קצה שנעו בין 8 ל-132 ימים, 78.13% מהחזירים נשארו פטנט עד לנקודת הסיום של הניסוי (איור 11). מבין החזירים שהיו להם אינדיקציות קליניות שהצריכו המתת חסד ונקרופסיה אבחנתית, HC תועד עם מיקום נכון ב- IJV ללא טרומבי, פסולת או סימני זיהום. שיעורי הסיבוך שדרשו התערבות היו צנועים: 9.38% מהHCs דרשו הסרה או החלפה לפני 30 יום ו-12.5% דרשו הסרה או החלפה ב-30 יום או לאחר מכן. נוסף על כך, 9.38% מהHCs נזקקו לתיקונים קטנים בהיפוקמפוס המקורי תחת טשטוש (איור 11). לא תמיד הובהרו הסיבות לפשרות הקו, אך האטיולוגיות כללו תזוזה, ניקוב וחסימות פנימיות (טבלה 1). תיקון והחלפת קו בזמן הוכיחו שיעור הצלחה תפקודי של 100% ללא הפרעה משמעותית לאיסוף נתוני המחקר. במקרים של חשד להדבקה בקו המרכזי, החזירים עברו טיפול רפואי מתאים מיידי ללא סיבוך נוסף. לא הייתה תמותה הקשורה ל-HC בחזירים.
איור 1: חיה הממוקמת בשכיבה גחון. לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: חתך גחוני דרך העור ופלטיזמה כדי לחשוף את הווריד הצווארי הפנימי. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 3: גישה לווריד הצוואר הפנימי . (A) חתך של הפלטיזמה, החושף את הסטרנוקלידומסטואיד. (B) וריד ג'וגולרי פנימי מדיאלי לסטרנוקלידומסטואיד ולטרלי לסטרנוהיואיד. (C) קשרי תפר מצופים וקלועים שאינם נספגים ממוקמים בקצוות הקאודליים והגולגולתיים של החלק המבודד של ה-IJV. (D) גזה רטובה ממוקמת בחתך כדי לשמור על כלי הדם מוגן ולשמור על מיקום התפר המצופה וקלוע שאינו נספג בעת מיקום מחדש של החזיר. קיצורים: SCM = sternocleidomastoid; IJV = וריד הצוואר הפנימי; SH = sternohyoid. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 4: בעל חיים ממוקם בהטיה צידית כדי לאפשר גישה גם לאתר היציאה של הצנתר הגבי וגם לחתך הגחוני. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 5: ניקוב גבי דרך העור כדי לשמש כאתר יציאת הצנתר. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 6: מיקום הצנתר . (A) ניקוב העור במקום יציאת הצנתר בצוואר הדורסולטרלי איפסילטרלי ליעד IJV. (B) צנתר הנכנס לאתר הניתוח לרוחב ל-IJV. (C) החדרת הצנתר לקצה הדיסטלי של ה-IJV בעזרת פיק ורידים. (D) הווריד מאובטח סביב הצנתר באופן מרוחק והמקטע הפרוקסימלי מוסתר בקשירת תפר מצופה וקלועה שאינה נספגת. (ה) סגירת הפלטיזמה. (F) סגירת העור. קיצור: IJV = וריד הצוואר הפנימי. יש לציין כי תפרים גביים עמוקים הקשורים בהרחבה לביטחון עשויים לבלוט דרך הסגר; זה לא אמור להפריע לריפוי פצעים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 7: צילום רנטגן לטרלי של מיקום צנתר היקמן. החץ מדגים את מיקומו הנכון מעל האטריום הימני. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 8: אבטחת צווארון הצנתר והתחבושת . (A) הצנתר דחוק בין שכבות של 1 בסרט רפואי ובמזלג שבו שני הלומן מתחלקים. (B) גליל כותנה כרוך סביב הצוואר, לסירוגין בין גולגולתי וקאודלי ללומן. (C) תחבושת הדבק האלסטית נכרכת סביב הצוואר עם חריצים חתוכים כדי לאבטח את הלומן באופן מרכזי. (D) שני הלומנים מתוחים דרך החור בשקיק הצנתר והשקית מאובטחת לתחבושת הדבק האלסטית. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 9: נרתיק קטטר . (A) החלק העליון של השקית. (B) דש עליון (דש 3) מורם כדי להראות דש אמצעי (דש 2). החלק העמוק של הכיס מראה את הקצה החתוך של דש 2. (C) תחתית השקית עם חור בדש התחתון (דש 1) כדי לחשוף את דש 2. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 10: תכנון והרכבה של נרתיק הצנתר . (A) רצועה ארוכה של סרט תחבושת אלסטי מקופלת ליצירת שלושה דשים באורך שווה, עם שאריות זנב רופפות. (B) הזנב מקופל מעל קצה השקית כדי לאבטח את הקפלים הדביקים החשופים. (C) עם הזנב למעלה, הדשים ממוספרים 1-3 מלמעלה למטה. חותכים רצועה מהקצה הארוך של הדש האמצעי (דש 2) ליצירת כיס פנימי. (D) משתמשים בתפרים לחיבור הדשים בהתאם למספרים ולתנוחות התפרים סביב השקית. (E) חור נחתך באמצע דש 3. (ו) החלק העליון של השקית. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 11: תוצאות צנתר היקמן בחזירים. N = 32. נקודות הקצה הניסיוניות נעו בין 8 ל-132 ימים. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.
טבלה 1: תוצאות צנתר היקמן וסיבוכים בחזירים. קיצור: HC = צנתר היקמן. אנא לחץ כאן כדי להוריד טבלה זו.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
בעוד CVC משרתים מגוון רחב של פונקציות במחקר גדול בבעלי חיים, הספרות הנוכחית חסרה גישה מוסכמת לשימוש בטוח ובר קיימא בניסויים ארוכי טווח במשך 30 יום. ההליך ההדרגתי של פרוטוקול זה להחדרת HC, אבטחת העור ואחסון בשקיק בעבודת יד עבר התאמות משמעותיות לשיפור האיכות. ככזה, פרוטוקול זה מציג טכניקה לשימוש ב-HC המאפשרת גישה יעילה ויעילה לעירוי תוך ורידי תוך הבטחת רווחת בעלי החיים ומזעור סיבוכים.
יישומים קליניים ומחקריים של פרוטוקול זה
חזירים משמשים בתחומים רבים של מחקר ביו-רפואי, והשימוש בהם כמודלים פרה-קליניים גדל באופן דרמטי מאז תחילת שנות השמונים18. יש לציין כי מאפיינים אנטומיים ופיזיולוגיים רבים של חזירים דומים מאוד לבני אדם, מה שהופך אותם למודל מתאים למחלות רבות ולמין דומיננטי של חיות מעבדה לפרוטוקולים כירורגיים והתערבותיים19. מערכת הלב וכלי הדם, הכסות, השתן, העיכול והכליות הם המודלים הנפוצים ביותר בחזירים בשל החפיפה ההשוואתית עם בני אדם. חזירים הם אחד המודלים העיקריים להכשרה כירורגית בטכניקות לפרוסקופיות ואנדוסקופיות, השתלת איברים, טוקסיקולוגיה, רוקחות והערכת מכשור ביו-רפואי 18,20,21,22. הרבגוניות של HC הופכת אותו לכלי רב ערך במסגרות קליניות ומחקריות אלה. הם מאפשרים גישה אמינה לבדיקות דם סדרתיות ומהווים אמצעי יעיל למתן נוזלים תוך ורידי ותרופות4, המונעים טשטושים מרובים שיכולים להכניס משתנים מבלבלים למחקרים ולפגוע בבריאות הנבדק. מחקרים רבים הראו גם את יעילותם בניטור קבוע של רמות התרופות בדם, כגון ערכי טקרולימוס בפרוטוקולי דיכוי חיסוני23. לחלק מהחזירים שנכללו בפרוטוקול זה היו HCs לניטור רמת התרופות לדיכוי מערכת החיסון ומתן תוך ורידי של תרופות מדכאות חיסון ו/או אימונומודולטוריות בחזירים שעברו הליכי השתלת כלי דם מרוכבים (VCA), כולל מודל השתלת גפיים אחוריות הטרוטופיות24, מודל דיסקציה והשתלה של שתל המיפצייס חזירי, ומודל השתלה עצמית של כליות.
שלבים קריטיים בפרוטוקול
אורך קו מתאים וטיפול קו אמין חיוניים להארכת חיי HC. יש לחתוך את הצנתר במקום שבו הוא מגיע לשליש מאורך עצם החזה (פרוטוקול שלב 7.4), שכן קווים קצרים יותר נמצאים בסכנת תזוזה וקווים ארוכים יותר נמצאים בסיכון לפגוע בדופן כלי הדם. כדי לשמור על הפטנט ולמנוע חסימות, יש לשטוף את שני הקווים מדי יום במי מלח רגילים והפרינים (פרוטוקול שלבים 9.2-9.3). כמו כן, יש לזהות את הקווים באופן שיטתי לפי צבע לפני כל שימוש, כדי להימנע מהחלפת התפקידים של הקווים האדום (משיכת דם) ולבן (מתן תרופות) כדי למנוע נזק. לדוגמה, לחץ שלילי גבוה במהלך שאיבת הדם יכול למוטט את הקו הלבן ולגרום לקרישה, בעוד מתן תרופות דרך הקו האדום יכול לגרום לשאריות התרופה להישאר בתוך הקו או הקלאווה, ובכך להעלות באופן מלאכותי את תכולת התרופה הנמדדת של הדם הנשאב. למרות טכניקת ההלבשה המאובטחת המפורטת בכתב יד זה, חזירים מצליחים לעיתים להגיע לקווים ולגרום לנזק מכני, כגון לעיסה או שריטה. אם אחד הקווים הופך לבלתי שמיש, יש להסתיר היטב את הקו הלא מתפקד על ידי קשירת קשר כפול בקו שאחרי המזלג (כדי לשמור על גישה לקו הפטנט הנותר) כדי למנוע שימוש מקרי או עקירה של החסימה למחזור. ניתן להשתמש בקו הפטנטים הנותר כדי למלא את שני תפקידי הקו באופן זמני, אך יש להחליף את הקו הלא מתפקד בהקדם האפשרי באמצעות ערכת תיקון של היקמן. חשוב גם להגן על הקווים על ידי אחסונם בבטחה בשקית (שלב פרוטוקול 8.3.5) לאחר כל שימוש. כדי להבטיח קיבוע נכון של השקית, יש להצמיד את הצווארון לעור הן בקצה הגולגולתי והן בקצה הקאודלי (שלב פרוטוקול 8.3.4), ואת השקית המאובטחת לצווארון לאורך כל קצה (שלב פרוטוקול 8.3.8). תפרים שבורים יש להחליף במהירות.
אתגרים ופתרונות פרוטוקול
סיבוכים הקשורים ל- HC כוללים הגירה, עקירה וזיהום בקו המרכזי. אם יש חשד שהקצה הפנימי של הצנתר נדד באופן מרוחק כדי ללחוץ על דופן האטריום הימנית, צילומי רנטגן פשוטים יכולים לסייע באיתור קצה הצנתר. סיבוך זה מנוהל עם הסרה והחלפה של HC באמצעות IJV contralateral. בחזירים שיש להם HCs שהונחו על פי פרוטוקול זה, השימוש ב- IJV הנגדי לא גרם לסיבוכים כלשהם הקשורים לבריאות בעלי חיים או לתוצאות מחקר. סביר להניח שהסיבה לכך היא שלחזירים יש רשת ורידי תוך גולגולתית ופנים חזקה המאפשרת ניקוז של הראש דרך ורידים ג'וגולריים חיצוניים דו-צדדיים, בעוד של- IJV יש תרומה מינורית יחסית לניקוז הראש25,26. במקרים אחרים בהם HC נעקר ממקומו הניתוחי עקב התרופפות של הצנתר או חיבורי הצווארון לעור, יש להחליף מיד תפרים שבורים. אם השרוול התת עורי יוצא מהעור, יש להחליף את HC. לגבי זיהום בקו המרכזי, סימנים ותסמינים בחזירים עשויים לכלול עייפות, התפרצות חדשה של שיעול, ירידה בתיאבון, פירקסיה, לויקוציטוזה, ו petechiae מורם או לא מורם. כל סימן של זיהום צריך להיות מטופל מיד עם אנטיביוטיקה בהנחיית וטרינר, תרבית של כל נוזל מורסה יש לשקול אם החיה היא על טיפול דיכוי חיסוני. הסיכונים לזיהום בקו מרכזי מופחתים על ידי יצירת שקיות קטטר מאובטחות, חיטוי ושטיפה קבועים של הקווים, שימוש בפרקטיקות סטריליות וערנות בזיהוי סימנים עדינים או מוקדמים של תפקוד לקוי של HC. אלה כוללים דליפת קווים, בועות במהלך שאיבת דם, וקושי גובר לשטוף קווים.
השוואה לפרוטוקולי CVC אחרים בחזירים
תוארו שיטות מלעוריות להשגת גישה ורידית מרכזית בווריד הצוואר החיצוני (EJV) באמצעות ציוני דרך מוחשיים. זה מספק את היתרון של הפחתה בהפרעה ברקמות רכות וכאב לאחר הניתוח, אך יכול להוביל לסיבוכים, כגון ניקוב עורק התרדמה בשוגג והיווצרות המטומה27. בניגוד לשיטות מלעוריות, הפרוטוקול המפורט בכתב יד זה מאפשר הדמיה ישירה של מבני המטרה, אשר יכולה לסייע בהפחתת הנזק לרקמות סמוכות. בנוסף, בעוד שדווח על נהלים פתוחים לשימורים28, הגישה למבנים עמוקים יותר כגון ה-IJV והנחיות מפורטות לגבי מיקום ופתרון בעיות מוגבלות. מחקר אחר השתמש בגישה דומה של חתך פרא-טרכאלי כדי לגשת לגזע הצווארי, אך במקום זאת השתמש במכשיר יניקה לפרוסקופי כדי ליצור תעלה תת-עורית שתעבור את HC והגן על החלק החיצוני עם מעיל מותאם29. התוצאות ממחקר זה הראו שיעור זיהום גבוה יותר וסיבוכים טרומבואמבוליים בחזירים עם HCs מנהרות בהשוואה לקבוצה אחרת עם יציאת גישה תת-עורית לכלי דם. בעוד שהמקור לסיבוכים אלה הוא ככל הנראה רב-גורמי, הפרוטוקול המתואר בכתב יד זה הראה מעט סיבוכים זיהומיים ומסייע בהפחתת גורמים פוטנציאליים על ידי אבטחת הצנתר החיצוני במספר נקודות, יצירת צווארון רב שכבתי ושימוש בנרתיק צנתר להגנה על קו.
מגבלות
מחקר זה מציג כמה מגבלות. בעוד שהשימוש בשלושה זנים שונים של חזירים מדגים הצלחה בהליך HC בקבוצה מגוונת, לחזירים יש שונות אנטומית מועטה ושיעורים נמוכים של כלי דם חריגים19. ככזה, השימוש בסטרנוקלידומסטואיד ובעצם החזה כציוני דרך כירורגיים סיפק טכניקה עקבית לאורך החתך והצנתר, בהתאמה. הפיתוח של גישה אופטימלית למיקום HC, אבטחת העור ואחסון הגנה התרחש במשך מספר שנים במקביל למחקרים מבוססי פרוטוקול בחזירים. שינויים סדרתיים נעשו בתגובה לתצפיות בבעלי חיים ולפתרון בעיות יצירתי. לפיכך, דו"ח מפורט על שינויים כושלים, או על התהליך שבו נקבעה הטכניקה המוצעת, לא נכלל. יתר על כן, ניתוח הנתונים אינו כולל קבוצת ביקורת, כגון חזירים שעברו ניקור תחת טשטוש. בנוסף, כמו בכל הליך, טכניקה זו דורשת ניסיון כירורגי, תרגול והכשרה מתאימה של חברי צוות פחות מנוסים. הרכבת שקית הצנתר עשויה להיות כפופה גם לשגיאות משתמש. דיאגרמות מפורטות כלולות שמטרתן להמחיש ביעילות טכניקה זו. יתר על כן, כמו טכניקה זו כוללת אנטיביוטיקה מניעתית, זה לא יכול להיות מתאים למחקרים שיושפעו על ידי מתן אנטיביוטיקה. לבסוף, גישה זו למיקום HC ולתוצאותיו מוגבלת לשימוש בחזירים. טכניקה זו עשויה שלא להדגים את אותה יעילות בבעלי חיים גדולים אחרים עם אנטומיות שונות. בעוד HCs שימשו במינים אחרים, מחקר נוסף נדרש כדי להתאים את הטכניקה הזו לבעלי חיים אחרים.
מסקנות
HC היא שיטה יעילה של ניטור דם קבוע ומתן תרופות תוך ורידי בחזירים. מחקר זה מפרט את שיטות העבודה המומלצות שלנו להחדרת HC, לחיזוק העור ולהגנה עמידה שממזערת סיבוכים הקשורים לHC ואי נוחות בבעלי חיים. במשך שנים של שינוי טכניקה ופתרון בעיות, פרוטוקול זה מפרט גישה אופטימלית לשימוש HC בחזירים, עם יכולת שחזור גבוהה וסיבוכים מינימליים. לבסוף, הדרכה מוצעת כדי למנוע ולפתור בעיות שעלולות להתעורר במהלך החיים של HC.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
לאף אחד מהמחברים אין אינטרס כלכלי באף אחד מהמוצרים, המכשירים או התרופות המוזכרים בכתב יד זה.
Acknowledgments
ברצוננו להכיר בתמיכת הצבא, הצי NIH, חיל האוויר, VA וענייני בריאות בנוגע למאמץ AFIRM II תחת הפרס CTA05: W81XWH-13-2-0052 ו- CTA06: W81XWH-13-2-0053. פעילות רכש המחקר הרפואי של צבא ארה"ב, רחוב צ'נדלר 820, פורט דטריק MD 21702-5014, היא משרד הרכש המעניק ומנהל. דעות, פרשנויות, מסקנות והמלצות הן של המחבר ואינן בהכרח מאושרות על ידי משרד ההגנה. בנוסף, ברצוננו להודות על תמיכת תוכניות המחקר הרפואי המכוונות על ידי הקונגרס של משרד ההגנה (CDMRP), תוכנית המחקר להשתלות משחזרות (RTRP), באמצעות פרסים W81XWH-17-1-0280, W81XWH-17-1-0624, W81XWH-17-1-0287 ו- W81XWH18-1-0795. ברצוננו גם להכיר במחלקה לכירורגיה פלסטית ומשחזרת ובבית הספר לרפואה של אוניברסיטת ג'ונס הופקינס. בנוסף, ברצוננו להודות לכל הצוות הווטרינרי, כולל מלאני אדמס, קארן גוס, היילי סמוט, קיילה שונביסקי וויקטוריה מנהן.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| #10 blade | Medline | MDS15110 | |
| 0.9% Sterile Sodium Chloride | Baxter | 2F7123 | |
| 0-0 Coated and Braided Nonabsorbable Suture | Covidien | S-196 | |
| 0-0 Synthetic, Monofilament, Nonabsorbable Polypropylene Suture | Ethicon | 8690H | |
| 1 inch Medical Tape | 3M | 1548S-1 | |
| 10 USP units/mL Heparin flush | Becton, Dickinson and Company | 306424 | |
| 3-0 Braided Absorbable Suture | Covidien | SL-636 (cutting needle), GL-122 (taper needle) | |
| 3-0 Monofilament Absorbable Suture | Covidien | SM-922 (cutting needle), CM-882 (taper needle) | |
| 4-0 Coated and Braided Non-absorbable Suture Ties | Ethicon | A303H | |
| 70% Ethanol | Vedco | VINV-IPA7 | |
| Adson tissue forceps | MPM Medical Supply | 132-508 | |
| Adson-Brown forceps | MPM Medical Supply | 106-2572 | |
| Air warming blanket and pad | 3M Bair Hugger | UPC 00608223595770 | |
| Backhaus towel clamp | MPM Medical Supply | 117-5508 | |
| Brown needle holder | MPM Medical Supply | 110-1513 | |
| Buprenorphine | PAR Pharmaceutical | 3003408B | |
| Cefazolin | Hikma Farmacuetica (Portugal) | PLB 133-WES/1 | |
| Chlorhexidine | Vet One | 501027 | |
| Clave | Baxter | 7N8399 | |
| Cotton Padding | Medline | NON6027 | |
| Debakey forceps | MPM Medical Supply | 106-5015 | |
| Elastic Adhesive Bandage Tape | 3M | XH002016489 | |
| Halstead mosquito forceps | MPM Medical Supply | 115-4612 | |
| Hickman Catheter | Bard Access Systems | 603710 | |
| Hickman Catheter Repair Kit, 7Fr, Red and White Connectors | Bard Access Systems | 0601690 (red), 0601680 (white), 502017 | |
| Kelly hemostatic forceps | MPM Medical Supply | 115-7014 | |
| Ketamine | Vet One | 383010-03 | |
| Lactated Ringers | Baxter | 2B2324X | |
| Maropitant Citrate | Zoetis | 106 | |
| Mayo scissors | MPM Medical Supply | 103-5014 | |
| Metzenbaum scissors | MPM Medical Supply | 132-711 | |
| Pantoprazole | JH Pharmacy | NDC 0143-9284-10 | |
| Scalpel blade handle | Medline | MDS10801 | |
| Vein Pick | SAI infusion technologies | VP-10 | |
| Veterinary Ophthalmic Ointment | Dechra | IS4398 | |
| Xylazine | Vet One | 510004 |
References
- Pontes, L., et al. Incidents related to the Hickman® catheter: identification of damages. Revista Brasileira de Enfermagem. 71 (4), 1915-1920 (2018).
- Kolikof, J., Peterson, K., Baker, A. M.
- Brainard, B. Central venous catheters: how, when, why? (Proceedings). DVM 360. , Available from: https://www.dvm360.com/view/central-venous-catheters-how-when-why-proceedings (2011).
- Abrams-Ogg, A. C., et al. The use of an implantable central venous (Hickman) catheter for long-term venous access in dogs undergoing bone marrow transplantation. Canadian Journal of Veterinary Research. 56 (4), 382-386 (1992).
- Florescu, M. C., et al. Surgical technique of placement of an external jugular tunneled hemodialysis catheter in a large pig model. The Journal of Vascular Access. 19 (5), 473-476 (2018).
- Williams, K., Linklater, A. Central Venous Catheter Placement: Modified Seldinger Technique. , Available from: https://www.cliniciansbrief.com/article/central-venous-catheter-placement-modified-seldinger-technique (2015).
- Perondi, F., et al. Bacterial colonization of non-permanent central venous catheters in hemodialysis dogs. Heliyon. 6 (1), e03224 (2020).
- Faulkner, R. T., Czajkowski, W. P., Rayfield, E. J., Hickman, R. L. Technique for portal catheterization in rhesus monkeys (Macaca mulatta). American Journal of Veterinary Research. 37 (4), 473-475 (1976).
- Moss, J. G., et al. Central venous access devices for the delivery of systemic anticancer therapy (CAVA): a randomised controlled trial. Lancet. 398 (10298), 403-415 (2021).
- Dai, C., et al. Effect of tunneled and nontunneled peripherally inserted central catheter placement: A randomized controlled trial. The Journal of Vascular Access. 21 (4), 511-519 (2020).
- Wu, X., et al. Tunneled peritoneal catheter vs repeated paracenteses for recurrent ascites: a cost-effectiveness analysis. Cardiovascular and Interventional Radiology. 45 (7), 972-982 (2022).
- Onwubiko, C., et al. Small tunneled central venous catheters as an alternative to a standard hemodialysis catheter in neonatal patients. Journal of Pediatric Surgery. 56 (12), 2219-2223 (2021).
- da Silva, S. R., Reichembach, M. T., Pontes, L., de Souza, G. deP. E. S. C. M., Kusma, S. Heparin solution in the prevention of occlusions in Hickman® catheters a randomized clinical trial. Revista Latino-Americana de Enfermagem. 29, e3385 (2021).
- Landoy, Z., Rotstein, C., Lucey, J., Fitzpatrick, J. Hickman-Broviac catheter use in cancer patients. Journal of Surgical Oncology. 26 (4), 215-218 (1984).
- Bawazir, O. A., Altokhais, T. I. Hickman central venous catheters in children: open versus percutaneous technique. Annals of Vascular Surgery. 68, 209-216 (2020).
- Cappello, M., et al. Central venous access for haemodialysis using the Hickman catheter. Nephrology Dialysis Transplantation. 4 (11), 988-992 (1989).
- Shastri, L., Kjærgaard, B., Rees, S. E., Thomsen, L. P. Changes in central venous to arterial carbon dioxide gap (PCO2 gap) in response to acute changes in ventilation. BMJ Open Respiratory Research. 8 (1), e000886 (2021).
- Smith, A. C., Swindle, M. M.
- Swindle, M. M., Makin, A., Herron, A. J., Clubb, F. J., Frazier, K. S. Swine as models in biomedical research and toxicology testing. Veterinary Pathology. 49 (2), 344-356 (2012).
- Hughes, H. C.
- Svendsen, O.
- Tumbleson, M. E., Schook, L. B. Advances in Swine in Biomedical Research. 2, Springer Science & Business Media. (1996).
- Jensen-Waern, M., Kruse, R., Lundgren, T. Oral immunosuppressive medication for growing pigs in transplantation studies. Laboratory Animals. 46 (2), 148-151 (2012).
- Ibrahim, Z., et al. A modified heterotopic swine hind limb transplant model for translational vascularized composite allotransplantation (VCA) research. Journal of Visualized Experiments. (80), e50475 (2013).
- Nordström, C. -H., Jakobsen, R., Mølstrøm, S., Nielsen, T. H. Cerebral venous blood is not drained via the internal jugular vein in the pig. Resuscitation. 162, 437-438 (2021).
- Habib, C. A., et al. MR imaging of the yucatan pig head and neck vasculature. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 38 (3), 641-649 (2013).
- Flournoy, W. S., Mani, S. Percutaneous external jugular vein catheterization in piglets using a triangulation technique. The International Journal of Laboratory Animals. 43 (4), 344-349 (2009).
- Kotsougiani, D., et al. Surgical angiogenesis in porcine tibial allotransplantation: a new large animal bone vascularized composite allotransplantation model. Journal of Visualized Experiments. (126), e55238 (2017).
- Chuang, M., et al. Comparison of external catheters with subcutaneous vascular access ports for chronic vascular access in a porcine model. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (2), 24-27 (2005).
