ERRATUM NOTICE
Important: There has been an erratum issued for this article. Read more …
Summary
En este trabajo se describe un método de cromatografía de gases-espectrometría de masas cuadrupolar en tándem (HS-GC-MS/MS) adecuado para la determinación de trimetilamina (TMA) en medicamentos de origen animal. El protocolo incluye el pretratamiento de la muestra, el tratamiento del espacio de cabeza, las condiciones de análisis, la validación metodológica y la determinación de TMA en medicamentos de origen animal.
Abstract
Los medicamentos de origen animal tienen características distintivas y efectos curativos significativos, pero la mayoría de ellos tienen un olor obvio a pescado, lo que resulta en un cumplimiento deficiente de los pacientes clínicos. La trimetilamina (TMA) es uno de los componentes clave del olor a pescado en la medicina de origen animal. Es difícil identificar la TMA con precisión utilizando el método de detección existente debido al aumento de la presión en el vial del espacio de cabeza causado por la rápida reacción ácido-base después de la adición de lejía, lo que hace que la TMA escape del vial del espacio de cabeza, deteniendo el progreso de la investigación del olor a pescado de la medicina de origen animal. En este estudio, propusimos un método de detección controlada que introdujo una capa de parafina como capa de aislamiento entre el ácido y la lejía. La tasa de producción de TMA podría controlarse de manera efectiva licuar lentamente la capa de parafina a través del calentamiento termostático del horno. Este método mostró linealidad satisfactoria, experimentos de precisión y recuperaciones con buena reproducibilidad y alta sensibilidad. Prestó apoyo técnico para la desodorización de medicamentos de origen animal.
Introduction
El tratamiento de las enfermedades humanas mediante la utilización de productos derivados de partes de animales y/o sus subproductos (denominados aquí medicamentos de origen animal) está recibiendo cada vez más atención. Desempeñan un papel importante en el tratamiento del cáncer, las enfermedades cardiovasculares, la cirrosis hepática, la mastitis y otras enfermedades, con las ventajas de un efecto fuerte, una dosis pequeña y una eficacia clínica significativa y específica. Sin embargo, los medicamentos de origen animal generalmente tienen un olor a pescado prominente, lo que afecta en gran medida el cumplimiento de los pacientes y son especialmente desfavorables para los niños 1,2. El olor a pescado proviene principalmente de las proteínas, aminoácidos, grasas y otras sustancias contenidas en el medicamento, que se descomponen a través de la oxidación de ácidos grasos, la degradación de aminoácidos y otras formas de producir una variedad de sustancias con olor a pescado 2,3,4. Entre ellos, la trimetilamina (TMA) es un gas volátil con olor a pescado que existe ampliamente en alimentos de origen animal podridos o podridos5.
Hasta ahora, la cromatografía de gases (GC), la cromatografía líquida (LC), la cromatografía iónica, la espectrofotometría, la cromatografía líquida-espectrometría de masas (LC-MS) y los métodos de sensores se han utilizado comúnmente para detectar TMA en el medio ambiente, los alimentos y la orina 6,7,8,9. En vista de la baja contaminación de la columna de GC y del sistema de inyección, así como de la alta sensibilidad, reproducibilidad y bajo límite de detección (0,1-1 mg/kg), se prefirió el método de cromatografía de gases-espectrometría de masas en el espacio de cabeza (HS-GC-MS) para el análisis alimentario y biológico8. En la actualidad, solo China ha establecido un estándar nacional para TMA en alimentos, y HS-GC-MS es el primer método en el estándar GB5009.179-201610. Por lo tanto, se seleccionó el método HS-GC-MS anterior para detectar TMA en medicina de origen animal. En la etapa inicial, nuestro grupo de investigación descubrió que el estándar de detección HS-GC-MS para TMA en alimentos podría detectar el olor a pescado en varios medicamentos de origen animal. Combinado con los resultados de los estudios11,12, se pudo demostrar que la TMA es la sustancia clave común del olor a pescado en los medicamentos de origen animal. Sin embargo, se encontró que la reproducibilidad de los resultados experimentales era pobre, y existían problemas como el escape de TMA y la poca estabilidad, los cuales no pudieron ser verificados por la metodología. Esto podría deberse al hecho de que la lejía se inyectó en el vial del espacio de cabeza y la rápida reacción ácido-base condujo a un aumento de la presión en el vial, por lo que la TMA escapó del poro de inyección, lo que impidió la detección estable y precisa de la TMA. Por lo tanto, este estudio propuso un método mejorado de detección de cromatografía de gases en el espacio de cabeza-espectrometría de masas cuadrupolar en tándem (HS-GC-MS/MS) para abordar estos problemas.
El protocolo mejora el pretratamiento de la muestra al separar los reactivos ácido-base en el pretratamiento con la ayuda de parafina sólida, un buen material de cambio de fase sólido-líquido. A medida que la parafina se licuaba lentamente con el aumento de temperatura del horno termostático, la TMA también se liberaba lentamente en el vial sellado del espacio de cabeza, evitando el aumento de presión causado por la violenta y rápida reacción ácido-base y asegurando una detección estable y precisa de la TMA. Además, la inyección de espacio de cabeza combinada con los modos de monitoreo de reacciones múltiples (MRM) en GC-MS/MS suprimió eficazmente la interferencia química de la matriz y garantizó la confiabilidad de los resultados. Los resultados de la validación metodológica demostraron que la linealidad, la prueba de precisión y la tasa de recuperación del método de detección mejorado podían cumplir con los requisitos, con buena reproducibilidad y alta sensibilidad.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Ver Tabla 1 para información sobre los materiales medicinales de Pheretima, Periplaneta americana e Hirudo. Fueron identificados por el profesor Xu Runchun, de la Universidad de Medicina Tradicional China de Chengdu, como los cuerpos secos de Pheretima aspergillum (E. Perrier), Periplaneta americana L . y Whitmania pigra Whitman.
1. Extracción de muestras
- Triture Pheretima, Periplaneta americana e Hirudo con un molinillo de hierbas (ver Tabla de materiales), tamice el polvo medicinal a través de los tamices de medicamentos estándar No. 2 (abertura del tamiz: 0.8 mm) y No. 4 (apertura del tamiz: 0.25 mm), y recoja el polvo entre los dos tamices para obtener el polvo de muestra requerido.
NOTA: La Pheretima es esponjosa después de la trituración, por lo que no es necesario tamizar su polvo. - Tome 1 g de polvo (con una precisión de 0,001 g) en un tubo de centrífuga de plástico de 50 ml, agregue 20 ml de solución de ácido tricloroacético (TCA) al 5% (consulte la tabla de materiales) y homogeneice a 1,000 rmin-1 durante 1 min con un homogeneizador de dispersión de alta velocidad.
- Después de la homogeneización, centrifugar a 1.717 x g durante 5 min a temperatura ambiente, agregar un poco de algodón absorbente en el embudo de vidrio y filtrar el sobrenadante en un matraz aforado de 50 mL.
- Repita el proceso de extracción anterior dos veces con 15 ml y 10 ml de solución de TCA al 5%. Combine el filtrado y dilúyalo a 50 ml con una solución de TCA al 5%.
2. Preparación de reactivos
- Preparar solución de hidróxido de sodio al 20%: pesar 20 g de hidróxido de sodio y utilizar agua desionizada para fijar el volumen en un matraz aforado de 100 mL.
- Preparar solución de TCA al 5%: pesar 25 g de TCA y utilizar agua desionizada para fijar el volumen en un matraz aforado de 500 mL.
3. Preparación de la solución madre estándar de TMA
- Prepare la solución madre estándar de TMA: pese 0,0162 g de muestra estándar de clorhidrato de TMA, disuélvala en una solución de TCA al 5% y fije el volumen a 100 ml, igual a la concentración de 100 μg/ml de solución madre estándar de TMA. Guárdelo a 4 °C.
- Prepare la solución de uso estándar de TMA: tome un cierto volumen de solución madre estándar de TMA y dilúyala paso a paso con una solución de TCA al 5% a concentraciones de 0,1 μg/mL, 0,5 μg/mL, 1 μg/mL, 2 μg/mL, 5 μg/mL y 10 μg/mL de solución estándar de TMA.
4. Procesamiento del espacio de cabeza de la muestra
- Pesar con precisión 2 ml de solución de hidróxido de sodio y 0,5 g de parafina sólida (punto de fusión: 58-60 °C) en un vial de espacio de cabeza de 20 ml (ver Tabla de materiales).
- Coloque el vial de espacio libre en un horno a 70 °C durante unos 30 min. La parafina sólida se derrite por completo.
- Sácalo y déjalo enfriar a temperatura ambiente para que la parafina se solidifique. La parafina solidificada sellará el hidróxido de sodio.
- Tome 2 ml de cada solución de extracción de muestra y colóquela encima de la capa de parafina, presione la tapa y selle.
- Coloque el vial de espacio de cabeza sellado en la máquina (consulte la Tabla de materiales) para la medición.
5. Establecimiento de las condiciones de análisis HS-GC-MS/MS
- Consulte la Tabla 2 para conocer las condiciones de espacio de cabeza y las condiciones de GC-MS.
- Consulte la Tabla 3 para obtener información sobre iones.
6. Dibujo de curva estándar
- Consulte el procesamiento del espacio de cabeza de la muestra en los pasos 4.1-4.3 para preparar el vial de espacio de cabeza que contiene lejía y la capa de sellado de parafina.
- Aspire 2 ml de solución estándar de TMA de 0,1 μg/ml, 0,5 μg/ml, 1 μg/ml, 2 μg/ml, 5 μg/ml y 10 μg/ml de TMA en un vial de espacio de cabeza de 20 ml, selle la tapa y mida en la máquina.
7. Prueba de precisión
- Consulte el procesamiento del espacio de cabeza de la muestra en los pasos 4.1-4.3 para preparar el vial de espacio de cabeza que contiene lejía y la capa de sellado de parafina.
- Aspire 2 ml de solución estándar de TMA de 0,1 μg/ml en un vial de espacio de cabeza de 20 ml y selle la tapa. Realice seis pruebas paralelas en la máquina siguiendo las instrucciones del fabricante (ver Tabla de Materiales).
8. Experimento de la tasa de recuperación
- Tome un lote de Pheretima, Periplaneta Americana e Hirudo (S02, S05, S07; Tabla 1) como los medicamentos representativos para el experimento de la tasa de recuperación.
- Tomar varios lotes de polvo de muestra (S02, S05, S07) y hornearlos en un horno a 50 °C durante 72 h hasta que no se detecte TMA.
- Consulte el método de preparación de la muestra en las secciones 4-6 para detectar el contenido de TMA en el polvo de medicamento horneado.
- Tome 1 g de polvo horneado (con una precisión de 0,001 g), colóquelo en un tubo de centrífuga de plástico de 50 ml y agregue 50 μl de solución estándar de TMA.
NOTA: La concentración de la solución estándar de TMA es de 100 μg/mL, 1000 μg/mL y 10000 μg/mL. - Añadir 20 mL de solución de TCA al 5% y homogeneizar a 1000 rmin-1 durante 1 min.
- Después de la homogeneización, centrifugar a 1717 x g durante 5 min, agregar un poco de algodón absorbente en el embudo de vidrio y filtrar el sobrenadante en un matraz aforado de 50 mL.
- Repita el proceso de extracción anterior dos veces con 15 ml y 10 ml de solución de TCA al 5%; combine el filtrado y dilúyalo a 50 ml con una solución de TCA al 5%.
9. Determinación de los límites de detección (LOD) y cuantificación (LOQ)
- Determine el nivel de detalle por la concentración correspondiente cuando la relación señal/ruido (S/N) = 3.
- Determine el LOQ por la concentración correspondiente cuando la relación S/N = 10.
10. Determinación del contenido de TMA de la muestra
- Tome aproximadamente 1 g de polvo fino de Pheretima, Periplaneta americana e Hirudo, respectivamente, extraiga la muestra de acuerdo con el método anterior y determinela en la máquina.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
En la Figura 1 y en la Figura 2 se muestran diagramas esquemáticos del principio de preprocesamiento y el funcionamiento de este protocolo, respectivamente. El tiempo pico de TMA fue de 2,3 min, con una forma de pico nítida y sin interferencia de otras impurezas (Figura 3). Midiendo el rango lineal de 0,1-10 μg/mL de solución estándar de TMA, con la concentración de TMA como abscisa y el área del pico como ordenada, se dibujó una curva estándar. La ecuación de regresión lineal se obtuvo como y = 2522482x + 24255, con el coeficiente de correlación (R2) = 0.9998, mostrando una buena relación lineal. El LOD y el LOQ se calcularon con S/N = 3 y S/N = 10, respectivamente. El LOD fue de 0,03 mg/kg y el LOQ de 0,11 mg/kg. Para investigar la precisión de este método, se determinó el contenido de TMA (0,1 μg/mL) seis veces en paralelo con una desviación estándar relativa (DSR) de 5,84%, lo que demostró la buena precisión de este método. Se seleccionó un grupo de muestras de Pheretima, Periplaneta americana e Hirudo como muestras representativas para el experimento de recuperación (S02, S05, S07, respectivamente); estos se sometieron a pruebas de recuperación de picos por secado para reducir la TMA en las hierbas, y las tasas promedio de recuperación fueron de 84,49%, 94,66% y 85,67%, respectivamente, con la precisión cumpliendo con los requisitos de análisis (Tabla 4). Se detectó TMA en nueve lotes de hierbas de Pheretima, Periplaneta Americana e Hirudo, con concentraciones que oscilaron entre 13,23 y 271,63 mg/kg (Tabla 5). Este método de protocolo tiene buenos resultados de validación metodológica y también detectó el contenido de TMA en medicamentos de origen animal con un evidente olor a pescado.
Figura 1: Diagrama esquemático del principio de reacción de la solución de extracción de lejía-parafina. (1) Pese con precisión 2 ml de solución de hidróxido de sodio en un vial de espacio de cabeza de 20 ml. (2) Añadir 0,5 g de parafina sólida al vial de espacio de cabeza. (3) Calentar para derretir la parafina sólida, que se cubre con una solución de hidróxido de sodio y flota sobre la solución de hidróxido de sodio. (4) Después de enfriarse, la parafina se solidifica y sella firmemente sobre la solución de hidróxido de sodio. (5) Tome 2 ml de solución de extracción de muestra y colóquela encima de la capa de parafina, presione la tapa y selle. (6) Coloque el vial de espacio de cabeza sellado en la máquina para medir. El calentamiento del horno termostático derrite la capa de parafina, y los reactivos ácido-base por encima y por debajo de la capa de parafina reaccionan para producir TMA en un entorno sellado. El procesamiento del espacio de cabeza de la muestra se lleva a cabo a grandes rasgos en las secciones 1 a 6. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2: Diagrama esquemático de la operación de pretratamiento de la muestra. (A) Lejía de sellado: paso 4.1-4.3 del protocolo. (B) Extracción de muestras: sección 1 y paso 4.4 del protocolo. (C) Detección de TMA: paso 4.5 y sección 5 del protocolo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: Cromatograma iónico total de TMA. Espectrograma de 1 μg/mL de solución patrón de TMA. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Lote | Origen | |
| Ferétima | S01 | Ciudad de Leshan, provincia de Sichuan |
| Ferétima | S02 | Ciudad de Dianbai, provincia de Guangdong |
| Ferétima | S03 | Ciudad de Maoming, provincia de Guangdong |
| Periplaneta americana | S04 | Ciudad de Xichang, Prefectura Autónoma de Liangshan Yi, provincia de Sichuan |
| Periplaneta americana | S05 | Condado de Midu, prefectura de Dali, provincia de Yunnan |
| Periplaneta americana | S06 | Ciudad de Bozhou, provincia de Anhui |
| Hirudo | S07 | Condado de Weishan, ciudad de Jining, provincia de Shandong |
| Hirudo | S08 | Ciudad de Kunshan, provincia de Jiangsu |
| Hirudo | S09 | Distrito de Laiwu, ciudad de Jinan, provincia de Shandong |
Tabla 1: Información sobre medicamentos de origen animal.
| Condición del espacio de cabeza | |
| Temperatura del horno termostático | 80 °C |
| Tiempo para el termostato de la muestra b | 30 minutos |
| Temperatura de la aguja del espacio de cabeza | 100 °C |
| Tamaño de la muestra | 1 ml |
| Condiciones de GC-MS | |
| Columna cromatográfica | SH-Amina volátil, 30 m×0,32 mm×5 μm |
| Programa de temperatura de columna | 40 °C (0,5 min) _20 °C /min _200 °C (5 min) |
| Temperatura del inyector | 200 °C |
| Modo de control de gas portador | Velocidad lineal constante |
| Modo de inyección | Inyección dividida |
| Relación de división | 10:01 |
| Flujo de columna | 2 ml/min |
| Tamaño de la muestra | 1 ml |
| Modo de ionización | IE |
| Temperatura de la fuente de iones | 200 °C |
| Temperatura de la interfaz GC-MS | 230 °C |
| Voltaje del detector | Tensión de sintonización +0,6 kV |
| Información sobre el modo de adquisición | MRM |
Tabla 2: Condición del espacio de cabeza y condiciones GC-MS/MS.
| Nombre compuesto | CAS | Tiempo de retención (min) | Ion cuantitativo (m/z) | Después de Cristo | Ion de referencia (m/z) | Después de Cristo |
| Trimetilamina | 75-50-3 | 2.308 | 58>42 | 20 | 58>30 | 7 |
Tabla 3: Información sobre los compuestos de TMA.
| Muestra | Concentración de la muestra (mg/kg) | Concentración de picos (mg/kg) | Concentración medida (mg/kg) | Tasa media de recuperación (%) | DSR (%) |
| S02 | 128.99 | 500.00 | 548.50 | 84.49 | 2.12% |
| S05 | 49.08 | 500.00 | 520.93 | 94.66 | 0.96% |
| S07 | 101.36 | 500.00 | 527.07 | 85.67 | 1.87% |
Tabla 4: Resultados del experimento de tasa de recuperación de TMA en medicamentos de origen animal.
| Muestra | Concentración de la muestra (mg/kg) |
| S01 | 88.11 |
| S02 | 137.34 |
| S03 | 18.63 |
| S04 | 19.10 |
| S05 | 40.50 |
| S06 | 13.23 |
| S07 | 271.63 |
| S08 | 69.73 |
| S09 | 67.70 |
Tabla 5: Resultados de la determinación de la concentración de TMA en medicamentos de origen animal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Los medicamentos de origen animal provienen de todo el cuerpo, órganos o tejidos, productos fisiológicos o patológicos, excreciones o secreciones y productos procesados de animales. La TMA es una fuente importante de olor a pescado en los medicamentos de origen animal; es una sustancia maloliente típica con un umbral olfativo muy bajo (0,000032 × 10-6 V/V) y un fuerte olor a pescado13. En la actualidad, el método HS-GC-MS comúnmente utilizado no puede detectar TMA en medicamentos de origen animal de manera estable y precisa.
Este protocolo se mejora en varios aspectos: (1) La TMA es más polar y alcalina. En este protocolo, se selecciona una columna especial para la cromatografía de gases de aminas volátiles para detectar TMA, lo que garantiza la precisión y sensibilidad de la detección de TMA. (2) En el proceso de preparación de muestras del método HC-GC-MS en GB5009.179-2016, se inyecta una solución de hidróxido de sodio de alta concentración en el vial de espacio de cabeza sellado10. En este momento, la ocurrencia de la reacción ácido-base conduce a un aumento de la presión en el vial del espacio de cabeza, lo que puede causar el escape de TMA, lo que resulta en una detección inexacta de TMA. Este protocolo se refería al método de detección de residuos de dióxido de azufre en la medicina tradicional china14. En el pretratamiento de la muestra, se utiliza parafina sólida como medio para aislar los reactivos ácido-base. Después de sellar el vial de espacio de cabeza, la parafina se derrite lentamente bajo el calentamiento del horno termostático, evita la reacción ácido-base severa y proporciona un buen ambiente hermético para la reacción de TMA, lo que garantiza la estabilidad y precisión de la detección de TMA. (3) Este protocolo utiliza el modo MRM en GC-MS/MS para la adquisición y optimiza los parámetros de detección (programa de temperatura de columna, etc.) para garantizar la eficiencia y precisión analíticas.
Se debe prestar atención a los siguientes puntos en el funcionamiento de este protocolo: (1) se debe seleccionar una cantidad adecuada de cera de parafina sólida. Una dosis más pequeña de parafina conducirá a una capa de parafina no sellada y a la reacción inmediata de los reactivos ácido-base, lo que dará como resultado la generación y el escape de TMA antes del sellado. Una dosis más alta de parafina puede dificultar la liberación, el enriquecimiento y la detección de TMA. (2) La glándula debe estar apretada y el sello intacto. Además, existen algunas limitaciones del protocolo. La TMA en los medicamentos de origen animal es endógena y no puede eliminarse limpiamente mediante secado; se utilizó una baja concentración de solución estándar de clorhidrato de TMA en el experimento de recuperación, pero el efecto fue insatisfactorio. Por lo tanto, solo se seleccionó la misma concentración de solución patrón de clorhidrato de TMA para el experimento de recuperación en este protocolo.
En conclusión, este protocolo proporcionó un método de pretratamiento de muestras y una detección precisa de TMA en medicamentos de origen animal. El establecimiento de este método llenó el vacío en el método de detección de TMA en medicamentos de origen animal y proporcionó apoyo técnico para la investigación de sustancias de olor a pescado en medicamentos de origen animal, lo cual es de gran importancia para promover la investigación, el desarrollo y la aplicación de medicamentos de origen animal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Este trabajo contó con el apoyo de subvenciones de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82173991) y del Programa de Ciencia y Tecnología de Sichuan (2022YFS0442).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Centrifuge | Beckman Coulter Trading (China) Co. | SSC-2-0213 | |
| Chinese herbal medicine grinder | Zhejiang Yongkang Xi'an Hardware and Pharmaceutical Factory | HX-200K | |
| Convection oven | Sanyo Electric Co., Ltd | MOV-112F | |
| Decapper for 20 mm Aluminum caps | ANPEL Laboratory Technologies (Shanghai) Inc | V1750004 | |
| Electronic balance | Shimadzu Corporation Japan | AUW220D | |
| Gas chromatography mass spectrometry | Shimadzu Corporation Japan | TQ-8050 NX | |
| Headspace Vial | ANPEL Laboratory Technologies (Shanghai) Inc | 25760200 | |
| Homogenizer | Shanghai biaomo Factory | FJ200-SH | |
| Preassembled Cap | ANPEL Laboratory Technologies (Shanghai) Inc | L4150050 | |
| Sample sieve | Zhenxing Sieve Factory | / | |
| SH-Volatile Amine | Chengdu Meimelte Technology Co., Ltd | 227-3626-01 | |
| Sodium hydroxide | Chengdu Chron Chemicals Co., Ltd | 2022101401 | |
| Solid paraffin wax | Shanghai Hualing Kangfu apparatus factory | 20221112 | |
| Trichloroacetic acid | Chengdu Chron Chemicals Co., Ltd | 2022102001 | |
| Trimethylamine hydrochloride | Chengdu Aifa Biotechnology Co., Ltd | AF22022108 | |
| Ultra-pure water system | Sichuan Youpu Ultrapure Technology Co., Ltd | UPR-11-5T |
References
- Fan, H., et al. Material basis of stench of animal medicine: a review. China Journal of Chinese Materia Medica. 47 (20), 5452-5459 (2022).
- Deng, Y. J., et al. Progress on formation and taste-masking technology of stench of animal medicines. China Journal of Chinese Materia Medica. 45 (10), 2353-2359 (2020).
- Casaburi, A., Piombino, P., Nychas, G. J., Villani, F., Ercolini, D. Bacterial populations and the volatilome associated to meat spoilage. Food Microbiology. 45 (Pt A), 83-102 (2015).
- Rouger, A., Tresse, O., Zagorec, M. Bacterial contaminants of poultry meat: sources, species, and dynamics. Microorganisms. 5 (3), 50 (2017).
- Baliño-Zuazo, L., Barranco, A. A novel liquid chromatography-mass spectrometric method for the simultaneous determination of trimethylamine, dimethylamine and methylamine in fishery products. Food Chemistry. 196, 1207-1214 (2016).
- Zhao, C., et al. Ultra-efficient trimethylamine gas sensor based on Au nanoparticles sensitized WO3 nanosheets for rapid assessment of seafood freshness. Food Chemistry. 392, 133318 (2022).
- Bota, G. M., Harrington, P. B. Direct detection of trimethylamine in meat food products using ion mobility spectrometry. Talanta. 68 (3), 629-635 (2006).
- Neyer, P., Bernasconi, L., Fuchs, J. A., Allenspach, M. D., Steuer, C. Derivatization-free determination of short-chain volatile amines in human plasma and urine by headspace gas chromatography-mass spectrometry. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 34 (2), e23062 (2020).
- Mitsubayashi, K., et al. Trimethylamine biosensor with flavin-containing monooxygenase type 3 (FMO3) for fish-freshness analysis. Sensors & Actuators B: Chemical. 103 (1-2), 463-467 (2004).
- National Health and Family Planning Commission of the People's Republic of China. GB 5009. 179-2016. , 12 (2016).
- Liu, X. M., et al. Study on material basis and processing principle of fishy smell of Pheretima aspergillum by electronic nose and HS-GC-MS. Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae. 26 (12), 154-161 (2020).
- Zheng, X., Sun, F., Du, L., Huang, Y., Zhang, Z. Comparison on changes of volatile components in Gecko before and after processing by HS-SPME-GC-MS. Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae. 28 (15), 145-152 (2022).
- Yoshiharu, I. Odor olfactory measurement. , Japan Association on Odor Environment. Tokyo. (2004).
- Jia, Z. W., Mao, B. P., Miao, S., Mao, X. H., Ji, S. Determination of sulfur dioxide residues in sulfur fumigated Chinese herbs with headspace gas chromatography. Acta Pharmaceutica Sinica. 49 (2), 277-281 (2014).
Tags
Química Número 193 medicina de origen animal trimetilamina olor a pescado cromatografía de gases en el espacio de cabeza-espectrometría de masas cuadrupolar en tándemErratum
Formal Correction: Erratum: An Improved Technique for Trimethylamine Detection in Animal-Derived Medicine by Headspace Gas Chromatography-Tandem Quadrupole Mass Spectrometry
Posted by JoVE Editors on 11/28/2023.
Citeable Link.
An erratum was issued for: An Improved Technique for Trimethylamine Detection in Animal-Derived Medicine by Headspace Gas Chromatography-Tandem Quadrupole Mass Spectrometry. The Authors section was updated from:
Hui Ye1
Xuemei Liu1
Haozhou Huang2
Lin Huang1
Yang Bao1
Hongyan Ma1
Junzhi Lin3
Xiaoming Bao4
Dingkun Zhang1
Runchun Xu1
1State Key Laboratory of Southwestern Chinese Medicine Resources, Pharmacy School, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
2Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
3TCM Regulating Metabolic Diseases Key Laboratory of Sichuan Province, Hospital of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
4Shimadzu (China) Co., Ltd
to:
Hui Ye1
Xuemei Liu1
JiaBao Liao2
Haozhou Huang3
Lin Huang1
Yang Bao1
Hongyan Ma1
Junzhi Lin4
Xiaoming Bao5
Dingkun Zhang1
Runchun Xu1
1State Key Laboratory of Southwestern Chinese Medicine Resources, Pharmacy School, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
2China Resources Sanjiu Modern Chinese Medicine Pharmaceutical Co., Ltd
3Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
4TCM Regulating Metabolic Diseases Key Laboratory of Sichuan Province, Hospital of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine
5Shimadzu (China) Co., Ltd
