Summary

ラット上頚神経節(SCG)から培養交感神経のためのプロトコル

Published: January 30, 2009
doi:

Summary

これは、新生児ラットの仔の上頚神経節(SCG)からプライマリ交感神経ニューロンを分離して培養する方法を説明するプロトコルです。

Abstract

ラットの上頚神経節(SCG)は交感神経ニューロンが含まれている小さな、光沢のある、アーモンド形の構造です。これらのニューロンは、頭頸部領域の交感神経神経支配を提供し、彼らは十分に特徴付けと、比較的均質な集団(4)を構成する。交感神経ニューロンは、生存、分化および軸索成長のための神経成長因子(NGF)に依存しており、NGFの広範な可用性は、自分たちの文化と実験的操作を容易に(2、3、6)。これらの理由から、培養交感神経ニューロンは、ニューロンの発達と分化、プログラムおよび病理学的細胞死のメカニズム、及びシグナル伝達(1、2、5、および6)を含む研究のさまざまな分野で使用されている。新生児ラットと培養交感神経ニューロンからSCGを解剖することは非常に複雑ではありませんし、かなり迅速に習得することができます。この記事では、新生児ラットの仔からSCGを分析すると、交感神経ニューロンの文化を確立するためにそれらを使用する方法を詳細に説明します。資料も準備手順と、これを達成するために必要な様々な試薬と装置を説明します。

Protocol

1。解剖のための準備: 解剖する前に、実験の性質、およびラットテールコラーゲンでコーティングして24時間に応じて適切な培養皿を(10センチまたは6ウェルまたは24ウェルプレート、など)を選択します。ラットテールコラーゲンを調製し、コート培養皿にそれを使用するための方法は、(1)他の場所に記載されている。 リン酸塩で0.25%トリプシン溶液を調製生理食塩水(…

Discussion

私たちは文化のためのSprague Dawleyラットを使用。

神経節を清掃時間と世話をする。すべての残骸、血管や脂肪を取り除きます。このステップでは、多かれ少なかれ均質と無関係な細胞型のない文化を確保するために重要です。 uridine/5-FDUの加算は、主として文化を汚染する、残りの(有糸分裂)非神経細胞を排除するか、少なくともそれらの増殖を抑制します。

さらに、解離工程の間、患者にな?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NZは交感神経ニューロンを解剖し、収穫の彼女を訓練するための研究室メンバーバースビスワス、アンドリュースプロウル、とライアンウィレットに感謝します。 NIH – NINDSからの補助金によって支え。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Forceps, Stainless steel #5 Tool Roboz RS4976  
Scissors, DEAVER straight sharp-blunt- 43mm blades – 5.5 Tool Roboz RS6760  
RPMI 1640 w/ L-Glutamin Reagent Cellgro, Mediatech, Inc. 10-040-CV  
Fetal Bovine Serum Reagent SAFC Biosciences 12103c  
Donor Horse Serum Reagent JRH Biosciences 12449 Heat-inactivate by incubating in 56°C waterbath for 30 minutes.
Penicillin/streptomycin Reagent Gibco, Invitrogen 15140-122  
Trypsin without EDTA Reagent Difco MT 25-050-CI  
Uridine Reagent Sigma U3003  
5-Fluoro-5′ deoxyuridine Reagent Sigma F-8791  
NGF Reagent Harlan Bioproduct BT-5025  
Dissection Microscope and light source Microscope      
15 ml polypropylene tubes Tool BD Falcon 352096  
Cell culture dishes Tool Corning, Nunclone    

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Signaling Pathways. The Journal of Biological Chemistry. 282 (40), 29368-29374 (2007).
  3. Bocchini, V., Angeletti, P. U. The Nerve Growth Factor: purification as a 30,000-molecular-weight protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. (64), 787-794 (1969).
  4. Dechant, G. Chat in the Trophic Web: NGF Activates Ret by Inter-RTK Signaling. Neuron. 33 (2), 156-158 (2002).
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  8. Pierchala, B. A., Ahrens, R. C., Paden, A. J., Johnson, E. M. Nerve Growth Factor Promotes the Survival of Sympathetic Neurons through the Cooperative Function of the Protein Kinase C and Phosphatidylinositol 3-Kinase Pathways. The Journal of Cell Biology. 279, 27986-27993 (2004).

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Cite This Article
Zareen, N., Greene, L. A. Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia (SCG). J. Vis. Exp. (23), e988, doi:10.3791/988 (2009).

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