Summary

쥐 우수한 자궁암 신경 (SCG)에서 Culturing 교감 신경에 대한 프로토콜

Published: January 30, 2009
doi:

Summary

이것은 갓 태어난 새끼 쥐의 우수한 경추 신경 (SCG)에서 기본 교감 신경을 분리하고 문화하는 방법을 설명하는 프로토콜입니다.

Abstract

쥐에서 우수 자궁 경부 신경 (SCG)은 교감 신경을 포함 작은 광택, 아몬드 모양의 구조입니다. 이들 뉴런은 머리와 목 지역에 대한 공감 innervations를 제공하고 그들은 잘 특징과 비교적 균질 인구 (4) 구성합니다. 교감 신경이 NGF의 가용성은 그들의 문화와 실험 조작 (2, 3, 6)을 용이하게 생존, 분화 및 axonal 성장과 넓은 확산에 대한 신경 성장 인자 (NGF)에 따라 달라집니다. 이러한 이유로, 교양 교감 신경이의 연결을 개발 및 분화, 프로그램 및 병리 학적 세포 죽음의 메커니즘 및 신호 전달 (1, 2, 5, 6)를 포함하여 연구의 다양한 사용되었습니다. 신생아 쥐 및 culturing 교감 신경에서 SCG를 해부하는 것은 매우 복잡하지 않으며 매우 빠르게 마스터하실 수 있습니다. 이 문서에서는, 우리는 신생아 쥐 새끼에서 SCG을 해부하다하고 교감 신경의 문화를 확립하기 위해 그들을 사용하는 방법을 자세히 설명합니다. 이 문서는 또한 준비 단계와이를하는 데 필요한 다양한 시약과 장비를 설명합니다.

Protocol

1. 해부를위한 준비 : 적절한 문화 실험의 성격에 따라 접시 (10cm 또는 6 – 글쎄 또는 24 – 잘 접시 등) 및 외투들을 쥐 – 꼬리 콜라겐 24시간 절개 전에로를 선택합니다. 쥐 – 꼬리 콜라겐을 준비하고 외투 문화 요리에 사용하기위한 방법은 (1) 다른 설명했습니다. 인산염의 0.25 % 트립신의 솔루션을 준비 호수 (PBS) (없음 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산))와 필터 소독이 버퍼. -20 º C. 1 ML…

Discussion

우리는 우리의 문화 스프 라그 돌리 쥐를 사용합니다.

신경 청소 때 시간과주의를 가져가라. 모든 파편, 혈관과 지방을 제거합니다. 이 단계는 더 많거나 적은 균일한과 관계없는 세포 종류의 무료 문화 확보에 중요합니다. uridine/5-FDU의 추가는 크게 문화를 오염 나머지 (mitotic) 이외의 연결을 세포를 제거하거나 적어도 증식을 억제합니다.

또한, 분리 단계 동안 인내심을하고는 접시에 씨앗되면 그들?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NZ, 동정 뉴런을 해부하고 수확에서 그녀를 훈련 연구소 회원 Subhas Biswas, 앤드류 스프 라울, 그리고 라이언 윌렛 감사하고 싶습니다. NIH – NINDS에서 교부금에 의해 지원됩니다.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Forceps, Stainless steel #5 Tool Roboz RS4976  
Scissors, DEAVER straight sharp-blunt- 43mm blades – 5.5 Tool Roboz RS6760  
RPMI 1640 w/ L-Glutamin Reagent Cellgro, Mediatech, Inc. 10-040-CV  
Fetal Bovine Serum Reagent SAFC Biosciences 12103c  
Donor Horse Serum Reagent JRH Biosciences 12449 Heat-inactivate by incubating in 56°C waterbath for 30 minutes.
Penicillin/streptomycin Reagent Gibco, Invitrogen 15140-122  
Trypsin without EDTA Reagent Difco MT 25-050-CI  
Uridine Reagent Sigma U3003  
5-Fluoro-5′ deoxyuridine Reagent Sigma F-8791  
NGF Reagent Harlan Bioproduct BT-5025  
Dissection Microscope and light source Microscope      
15 ml polypropylene tubes Tool BD Falcon 352096  
Cell culture dishes Tool Corning, Nunclone    

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Signaling Pathways. The Journal of Biological Chemistry. 282 (40), 29368-29374 (2007).
  3. Bocchini, V., Angeletti, P. U. The Nerve Growth Factor: purification as a 30,000-molecular-weight protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. (64), 787-794 (1969).
  4. Dechant, G. Chat in the Trophic Web: NGF Activates Ret by Inter-RTK Signaling. Neuron. 33 (2), 156-158 (2002).
  5. Deckwerth, T., Elliott, J. L., Knudson, C. M., Johnson, E. M., Snider, W. D., Korsmeyer, S. J. Bax is required for neuronal death after trophic factor deprivation and during development. Neuron. (17), 401-411 (1996).
  6. Greene, L. A. Quantitative in Vitro Studies on the Nerve Growth Factor (NGF) Requirement of Neurons – I. Sympathetic Neurons. Developmental Biology. (58), 96-105 (1977).
  7. Park, D. S., Morris, E. J., Padmanabhan, J., Shelanski, M. L., Geller, H. M., Greene, L. A. Cyclin-dependent kinases participate in death of neurons evoked by DNA-damaging agents. The Journal of Cell Biology. 143, 457-467 (1998).
  8. Pierchala, B. A., Ahrens, R. C., Paden, A. J., Johnson, E. M. Nerve Growth Factor Promotes the Survival of Sympathetic Neurons through the Cooperative Function of the Protein Kinase C and Phosphatidylinositol 3-Kinase Pathways. The Journal of Cell Biology. 279, 27986-27993 (2004).
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Cite This Article
Zareen, N., Greene, L. A. Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia (SCG). J. Vis. Exp. (23), e988, doi:10.3791/988 (2009).

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