Plastik gömülmesi ve Xenopus laevis Embriyolar Kesit

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Plastik bölümleri, parafine gömülü ya da dondurulmuş bölümleri daha birçok doku türleri için bu yöntem daha kullanışlı hale getirmek, floresan sekonder antikor ile boyanmış doku ince bölümlerde gerçek doku morfolojisi korumak. Bu video boyama, plastik gömme ve kesit yöntemi gösterilmiştir.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Ogata, S., Kawauchi, S., Calof, A., Cho, K. W. Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos. J. Vis. Exp. (3), e188, doi:10.3791/188 (2007).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Protocol

Tespit

  1. (Fisher kedi # 03-339-25b), küçük bir bardak sintilasyon flakon MEMFA ya da% 3.7 FA + PBS bütün embriyolar veya disseke eksplantlar aktarın. Bundan daha fazla değil, sadece 2 saat RT nutator flakon inkübe ve . FA embriyo 2 saatten fazla bırakmayın. FA uzun inkübasyon embriyonik doku zorlaştırır ve algılama süreci antikorlar fakir bir penetrasyon ile sonuçlanabilir.

  2. FA aspire ve Dent fiksatif flakon (~ 4.5ml) üstüne ekleyin. Yavaşça başka bir 4.5ml ile taze Dent Dent döviz embriyoların yıkamak için flakon birkaç kez ters ve -20 º C en az 48 saat süreyle inkübe edin. Gecelik yeterli DEĞİLDİR. Bu adım, antikor embriyolar daha geçirgen hale getirir. Embriyolar bu durum birkaç hafta saklanabilir.

İmmünofloresan

  1. Örnek rehidrate. Aşağıdaki gibi, metanol kademeli dizi inkübe:

    % 75 MeOH / H 2 O 10dk
    % 50 MeOH / PBS 10dk
    % 25 MeOH / PBS 10dk
    PBS 10dk
    PBS 10dk

  2. 60mm plastik tabaklar ile% 1.5 agaroz / PBS plakaları olun. Agaroz üst katı haline geldikten sonra PBS dökün.

  3. Embriyoların Hemi-kesit:% 1.5 agaroz / PBS plaka embriyolar koyun. Forseps bir çift ile bir embriyo kapın ve ince bir jilet kullanarak embriyonun merkezi aracılığıyla ikiye kesmek. Düz bir kesim uçağı başarıyla yarıya olduğunu olanları seçin.

    Şekil 1

  4. Ikiye embriyolar, bir cam sintilasyon PBT şişenin içine aktarın. % 20 keçi serum + PBT 4.5ml ile değişimi. Nutator (Engelleme) 2 saat oda sıcaklığında inkübe edin.

  5. PBT birincil antikor uygun bir seyreltme hazırlayın. Bu başına örneklerinin 0.5 ml gereklidir. Örneğin, ben C-cadherin 5mm plastik bölümlerde hücre içi lokalizasyonu çalışma tavşan anti-C-kaderin PAB 1 / 200 dilüsyon kullanılır.

  6. Engelleme çözüm aspire ve seyreltilmiş primer antikor 0.5 ml ekleyin. Şişeleri, plastik bir tüp tutucu stand-up pozisyonda yerleştirin. Bir nutator 4 º C'de bir gece inkübe edin.

  7. Seyreltilmiş birincil antikor (Bu seyreltilmiş primer antikor kaydedilir ve sonraki 1-2 hafta içinde tekrar edilebilir) çıkarın. RT az 4 kez, her biri (40-60 dakika) için PBT 4.5ml ile yıkayın.

  8. 1 / 100 dilüsyon PBT Biotin-konjuge sekonder antikor 0.5 ml ile değişimi. Bir nutator 4 º C'de bir gece inkübe edin. Biotin ışıktan korumak için alüminyum folyo ile şişeleri örtün.

  9. Bu noktadan itibaren, bakım, ışık, yani örnek korumak için bazı kapak veya alüminyum folyo altında şişeleri tutmak alınmalıdır .

  10. Biotin ikincil antikor (bu da önümüzdeki 1-2 hafta içinde tekrar edilebilir) çıkarın. RT (her biri 40-60 dakika) ya da 4 kez PBT 4.5ml yıkayın.

  11. PBT içinde Streptavidin (FITC, Texas-kırmızı, vb.) Floresan etiketli 1 / 200 dilüsyon ile Alım Satım 0.5 ml. Bir nutator 4 º C'de bir gece inkübe edin.

  12. Streptavidin (bu da, yeniden olabilir) çıkarın. RT (her biri 30 dakikalık 15), 3 kez için PBT 4.5ml ile yıkayınız.

  13. RT 30 dakika süreyle% 3.7 FA + PBS 4.5ml Fix embriyoların.

  14. Iki kez PBS 4.5ml ile yıkayın.

  15. Örnek dehydrate. Aşağıdaki gibi, etanol kademeli dizi inkübe:

    % 30 EtOH / H 2 O 10 dakika
    % 50 EtOH / H 2 O 10 dakika
    % 75 EtOH / H 2 O 10 dakika
    100% EtOH 10 dakika


  16. Örnek ışıktan korumak için bir kapak ile 4 º C'de% 100 EtOH saklanabilir.

Sızma

  1. Technovit 7100 infiltrasyon karışımı olun. Ben genellikle, 50ml, konik tüp baz sıvı 15ml sertleştirici 150mg ekleyin ve 15 dakika boyunca nutator sallayarak karıştırın. Bu infiltrasyon karışımı bir ay kadar 4 ° C'de muhafaza edilebilir.

  2. Technovit infiltrasyon mix / EtOH açılan kademeli serisi ile alışverişi infiltrasyon karışımı ile örnek Infiltrate, aşağıdaki gibi:

    1. % 50 Technovit / EtOH - 1 saat

    2. % 100 Technovit - 1 saat

    3. % 100 Technovit - gecede

  3. Specimen 4 º C'de% 100 infiltrasyon karışımı bir ay kadar saklanabilir. Numuneler üzerinde ışıktan korumak için bir kapak koyun.

Gömülmesi

  1. Technovit 7100 gömme karışımı olun: 1.5ml bir tüp içinde infiltrasyon karışımı 0.75ml ve sertleştirici II 50ml ekleyin. Tersine tüp birkaç kez karıştırın.

  2. , Plastik bir transfer pipet kullanarak, gece 0.5 ml ince duvarlı PCR tüp içine sızmış bir örnek alır. Süpernatantı çıkarın.

  3. 0.25ml numune için bu bölümü adım # 1, "Gömme", yapılan gömme karışımı ekleyin. Orient sıkıcı bir ucu diseksiyon iğne (diseksiyon iğnesi ahşap saplı) ile hafifçe dürtmek, tüp aşağıya doğru bakacak şekilde diseksiyon düzlemi ikiye embriyo.

  4. Kapağını kapatın ve yaklaşık dört saat boyunca karanlık bir yerde tüp inkübe plastik polimerize izin verecek.

  5. Technovit 3040 karışımı olun. Tozu 1 gram ağırlığında bir çanak alın ve 0.5 ml sıvı ekleyin. Hemen bir bluetip kullanarak toz ve sıvı karıştırın. Sertleştirilmiş spacimen üstüne dökün. Bu sarı Technovit 3040 tüpten çıkan tüm plastik blok önleyecektir.

Kesit

  1. Ksilen Histoknife H Bezi (EtOH genellikle yeterince iyi değil) ve sizin mikrotom ayarlayın. Yaklaşık 45 ° 'de bıçak açısı. Bu alanın temizliği kesitli dilim kalitesi çok önemli, çünkü, çok, ksilen ile bıçağın önünde sahne alan silin.

  2. Tüp tarafında kesin ve karton bir bıçak kullanarak kapalı ucu kabuğu.

    Şekil 2

  3. Mikrotom mandren tutucu örnek ayarlayın.

  4. Bölüm dilim için bir montaj odasına bir slayt camına "basın-seal" silikon izolatör takın. Temiz benchtop slayt sıkıca yalıtkan basın ve yalıtkan herhangi bir hava kabarcıkları olmadan tamamen takılı olduğundan emin olun diğer taraftan bakın. Pasteur pipeti kullanarak slayt havuz, su yüzeyi, düz, iç bükey değil ya da şekil olarak dışbükey hale olduğu görülebilir seviyeye kadar temiz ve sıcak dH 2 O (~ 40 ° C) dökün.

  5. Bölüm dilim yapmaya başlayın. Immunofloresan çalışmalar için 5 mm bölüm dilim olun. - 8 mm sinyallerin amacı ve yoğunluklarına bağlı olarak, in situ hibridizasyon örnekleri için, dilimlerin kalınlığı ~ 3 aralığında ayarlanabilir olabilir .

  6. Küçük bir fırça kullanarak, bölüm dilim bıçak önünde sahne su ile montaj odasına taşıyın. Su havuzunun üstüne bir dilim fırça tutun ve sıkıcı bir ucu diseksiyon iğne ile vurmak suretiyle su dilim aşağı açılır. Su yüzeyine vurur dilim en kısa sürede dairesel bir şekil genişletmek olacaktır.

  7. Montaj odasına su yüzey alanının en kesit dilimleri ile dolduğunda, Pasteur pipeti kullanarak suyun neredeyse yarısı kadar emmek. Örnek tamamen kuru bir slayt sıcak gecede slayt inkübe edin.

  8. Counter-beş dakika için DAPI (TE içinde 0.1mg/ml) 1ml leke. Aspire DAPI ve örnek kurulayın.

  9. Slayt silikon kauçuk yalıtkan çıkarın. Şimdi resimler örnek alınabilir. 4 örnek Mağaza ° C, ışıktan korunmalıdır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
PBS Buffer 1L recipe8.0gNaCl0.2gKCl2.68gNa2HPO4·7H2O0.2gKH2PO4The pH is supposed to be 7.4. Adjust the volume to 1L. Autoclave.
PBT Buffer Add 0.5ml of Triton X-100 and 1.0g of BSA (Molecular Biology grade, fraction V is good [>99%], but don’t use crude 97% Albumin) to 500ml of autoclaved PBS. Filtrate through 0.2mm filter cup. Store it in 4ºC.
·Dent’s fixative Reagent Mix 40ml of methanol and 10ml of DMSO. Keep it in –20°C.
3.7% FA+PBS Reagent Mix 37% formaldehyde and PBS at 1:9 ratios. Make it fresh at each time and discard the left over.
Biotinylated Anti-Mouse IgG (H+L), made in goat Ab Vector Laboratories BA-9200
Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L), made in goat Ab Vector Laboratories BA-1000
IG’S HUADS BIOTIN GTXRBT Ab Invitrogen ALI3409 BioSource™
IgG (g), Goat Anti-Mouse Ab Invitrogen M30115 CALTAG™
Fluorescent streptavidin kit Reagent Vector Laboratories SA-1200 Contains streptavidin labeled with three different fluorophores (FITC, Texas Red and AMCA) suitable for this procedure.
20% goat serum/PBT Buffer This will be used as a blocking solution.
Small paintbrush Tool
Dull-tip dissection needle Tool
Kulzer Technovit 7100 GMA , 3040 Reagent 7100 GMA , 3040 glycol methacrylate
Kulzer Tungsten Histoknife H Tool Energy Beam Sciences H1310
75% MeOH/H2O Buffer
50% MeOH/PBS Buffer
25% MeOH/PBS Buffer
30% EtOH/H2O Buffer
50% EtOH/H2O Buffer
75% EtOH/H2O Buffer
100% EtOH Buffer
Small glass scintillation vials Tool Fisher Scientific 03-339-25B
0.5ml Thin-wall PCR tubes Tool Molecular BioProducts 3430
Press-to-Seal Silicone Rubber Insulators Tool Grace Bio-Lab Inc. JTR1L-2.5 32mm L x 19mm W, 2.5mm D
Thin razor blade Tool
1.5% Agarose in PBS
Primary antibody against your antigen or epitope tags: Make an appropriate dilution in PBT.Biotin-conjugated secondary antibody: various vendors sell biotin-conjugated antibodies.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

Comments

1 Comment

  1. So what are the advantages of plastic sectioning over frozen/wax embedding + sectioning?

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 17, 2008 - 11:13 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics