고립 된 혈액 관류 쥐 폐 준비에 단일 미세 혈관 투과성의 양을

Biology

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Summary

고립 된 혈액 관류 폐 준비는 폐 표면에 미세 혈관의 네트워크를 시각화하는 것이 가능합니다. 여기에서 우리는 실시간 형광 이미징을 사용하여 격리 된 폐의 단일 미세 혈관의 투과성을 정량화하는 방법을 설명합니다.

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Kandasamy, K., Parthasarathi, K. Quantifying Single Microvessel Permeability in Isolated Blood-perfused Rat Lung Preparation. J. Vis. Exp. (88), e51552, doi:10.3791/51552 (2014).

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Abstract

고립 된 혈액 관류 폐 준비 널리 시각화하고 하나의 미세 혈관에 신호를 정의하는 데 사용됩니다. 실시간 이미징이 혼합물을 결합함으로써, 각각의 폐의 미세 혈관 투과성의 변화를 결정하기 위하여 가능해진다. 여기에서 우리는 쥐의 폐를 분리하고자가 혈액을 perfuse하는 단계를 설명합니다. 다음, 우리는 작은 폐 영역으로 microcatheter를 통해 형광 또는 대리인을 주입하는 단계를 설명합니다. 설명이 절차를 사용하여, 우리는 박테리아 리포 폴리 사카 라이드의 주입에 대한 응답으로 쥐의 폐의 미세 혈관의 투과성이 증가 결정. 데이터는 리포 폴리 사카 라이드가 모두 세정맥과 모세 혈관의 미세 혈관의 세그먼트에 걸쳐 유체 누출을 증가 것으로 나타났습니다. 따라서,이 방법은 가능한 혈관 세그먼트 구비 투과성 응답과 비교함으로써, 어떤 응답 이질성을 정의 할 수있다. 폐 투과성을 정의하기 위해 일반적으로 사용되는 방법으로는 폐 조직 샘플의 후 처리를 필요로하지만실시간 이미징의 사용은 본 방법에서 명백한 바와 같이 이러한 요구를 미연에 방지한다. 따라서, 실시간으로 영상과 함께 격리 된 폐 준비는 폐의 미세 혈관의 투과성을 결정하는 기존의 방법에 비해 여러 가지 장점을 제공합니다, 아직 개발하고 구현하는 간단한 방법입니다.

Introduction

폐에 증가 된 미세 혈관의 투과성은 폐포 부종과 손상 가스 교환의 개발에 이르게 및 급성 폐 손상 (ALI) 1-3의 주요 특징입니다. 따라서, 혈관 투과성의 평가는 폐 손상과 제안 된 치료 적 개입의 효과의 범위를 정의하는 데 중요합니다. 혈액 무료 폐 습윤 건조 비율과 미세 혈관의 여과 계수와 같은 중량 분석 널리 투자율 4.5을 추정하는 방법을 사용합니다. 다른 방법은 폐 조직 6-8 방사성 형광 프로브의 유지를 정량화 있습니다. 그러나, 상기 방법은 투자율 데이터 해명 향해 폐 조직 샘플 postexperiment 가공을 필요로한다. 동물은 단일 치료 프로토콜에 대해서만 이용 될 수 있기 때문에 더욱, 큰 동물 번호는 완전한 연구를 위해 필요할 수도있다. 상기 방법의 일반적인 특징은 그들이 뜻 혈관 투과성을 결정한다는 것이다조직 샘플 내의 모든 혈관. 그러나, 잘 폐 마이크로 및 매크로 혈관 9 표현형 달라 확립된다. 따라서, 투과성 반응뿐만 아니라 9,10 다양한 용기 세그먼트 사이에서 이기종 수 있습니다. 따라서, 조직 샘플에있는 모든 폐 혈관의 평균 투자율을 정량화하는 것은 적절이 이질성을 반영하지 않을 수 있습니다.

절연 혈액 관류 폐 제제에서, 폐 표면에 혈관 직립 현미경 4,11,12 의해 시각화 될 수있다. 이 응답 (13)에서 임의의 이질성을 어드레싱, 따라서 단일 혈관의 특징 인 응답을 가능하게하고. 또, 미세 혈관의 형광 이미징을 이용하여 형광 분석법을 기반으로 통합 될 수있다. 또한, 좌심방 microcatheter 혈관 11,14으로 에이전트 및 형광 프로브를 전달하기 위해 사용될 수있다. microcatheter 작은 폐 영역에 배달 제한, 따라서 전주입 에이전트 및 형광에 지역 내에서만 혈관을 포즈. 이것은 동일한 폐 내의 체류 소 영역이 연구에 필요한 동물에서 전체적인 감소로 이어지는 별도의 실험에 사용되는 것을 허용한다.

실시간 영상은 혈관과 분리 된 폐 준비의 하나의 미세 혈관의 혈관 외 형광의 역동적 인 변화를 캡처 할 수 있습니다. 따라서, 이미지 필드 내의 각각의 미세 혈관에 대해, 형광체 및 washoff의 주입 동안 형광의 변화를 기록하고, 오프라인 (14)을 정량 할 수있다. 최대 및 잔류 혈관 형광의 값을 사용하여, 촬상 필드 내의 각 미세 혈관 투과성에 대한 인덱스가 결정될 수있다. 염증성 또는 유해한 제제에 응답 투자율 변화를 결정하기 위하여, 원하는 에이전트 제 투여 될 수 후 투자율 인덱스가 결정. 또, 이미지 필드는 주입에 의해 폐 영역 내의 아무 설정할 수microcatheter, 따라서 원하는 혈관 네트워크를 선택에서 높은 수준의 유연성을 가능하게한다. 따라서, 실시간으로 영상과 연계하여 고립 된 혈액 관류 폐 준비는 단일 폐의 미세 혈관의 투과성을 정량화 할 수있는 매력적인 실험 모델을 제공합니다.

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Protocol

테네시 건강 과학 센터의 대학의 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인 된 동물에서 수행 모든 실험이었다.

관류 쥐 폐 준비를위한 1. 관

  1. 그림 1에서와 같이 압력 변환기 (P23XL)를 연결합니다. 혈액 관류에 대한 타이곤 튜브 (# 18)와 튜브 시스템을 준비하고 현미경 단계에 튜브를 배치합니다.
  2. 37 ° C의 물을 욕조의 온도를 설정
  3. 폐의 입구를 연결하고 타이곤 튜브와 함께 일시적으로 출구.

그림 1
그림 1. 혈액 관류 관. 회로도는 격리 된 폐 준비를 통해 혈액 순환에 사용되는 배관 설치를 보여줍니다. 또한 관련된 구성 요소가 있습니다 표시되는 통해 튜브 나의 라우팅. 심장과 폐의 회로도는 튜브 및 폐동맥 (PA)의 접속 위치를 표시하기 위해 포함, 심방 (LA) 정맥 (파란색 점선)에 남아 있습니다.

고립 된 쥐의 폐의 2. 준비

  1. 케타민 (80 ~ 100 ㎎ / ㎏)과과 자일 라진 (5 ~ 10 ㎎ / ㎏)와, 쥐 (250-300그램 남성 흰쥐)를 마취. 마취의 수술 비행기를 확인한 후, 앙와위에서 동물을 배치합니다.
  2. 기관 절개를 수행, 기관 캐 뉼러 (PE-90)를 삽입하고 수술 봉합사로 고정.
  3. 심장 천자 (21 G 나비 바늘)에 의해 심장에 헤파린 (100 ~ 200 U)를 주입, 60 초 및에게서 피를 뽑다 혈액 (~ 12 ~ 15 ㎖의 혈액)을 기다립니다.
  4. 두 캐 뉼러 (, 4 cm 길이, 타이곤 튜브 3 mm 직경의 한쪽 끝에 플레어)를 준비하고 식염수로 채우십시오.
  5. 개흉술을 수행합니다. 우심실에 절개 (3 mm)를 확인하고 폐쪽으로 절개로 정맥의 플레어 끝을 밀어동맥. 봉합 수술과 폐 동맥에 정맥을 고정합니다.
  6. 좌심실의 정점 (3 mm)를 절개하고 절개로 두 번째 정맥의 플레어 끝을 밀어 넣습니다. 좌심방으로 정맥을 안내합니다. 제대 테이프 (2 mm 폭)과 좌심실에 캐 뉼러를 고정합니다.
  7. 모든 결합 조직을 해부하고, 첨부 된 캐 뉼러와 함께 폐와 심장을 제거합니다. 배양 접시에 폐와 심장을 놓습니다. 횡격막 표면 위에 있도록 폐의 위치를​​ 조정합니다. 세 캐 뉼러는 동일한 방향에 직면한다.
  8. XY 방향으로 조작 할 수있는 단계에 폐 준비를 놓습니다. 현미경으로 오는 모든 단계는 튜브 또는 필요한 경우, 내장 맞춤 제작 단계를 유지하기 위해 수정 될 수있다.

고립 된 쥐의 폐의 3. 혈액 관류

  1. 같은 부피의 알부민 용액 (5 %)로 exsanguinated 혈액을 혼합하고 저장을 추가 할 수 있습니다. 연동 펌프를 시작하고 흐름의 R 설정14 ㎖ / 분으로 먹었다. 혈액 튜브를 채울 수 있습니다.
  2. 션트을 열어 둔 임시 폐 입구 출구 커넥터를 제거합니다. 각각 폐의 입구와 출구에 폐동맥과 왼쪽 심방 정맥을 연결합니다. 튜브에 기포가 없는지 확인합니다.
  3. 제 3 압력 변환기 (P23XL)에 기관의 정맥을 연결합니다. 기관 캐뉼라를 통해 30 %의 산소와 폐를 팽창시키고 5cm의 H 2 O에 압력을 유지
  4. 폐 관류를 시작하는 클램프 션트을 닫습니다. 폐동맥 각각 10과 3 개 cm H 2 O ~에서 좌심방의 압력을 유지한다.

4. 미세 혈관 주입을위한 폐 준비

  1. 폐 및 보안의 수준 위의 카테터의 확장 튜브의 후단을 올립니다.
  2. ~ 길이 30cm PE90 튜브에 40 cm 길이 PE10 튜브의 약 30 센티미터 삽입하여 주입 카테터를 준비합니다. 바늘 (30 G)에서에 PE10 튜브의 노출 끝을 연결합니다주사기 (1 CC)에 블.
  3. 확장 튜브의 제기 후 단부에 카테터 조합을 삽입합니다. 이 저항을 만날 때까지 좌심방을 통해 폐에 카테터 조합을 안내합니다. 이 저항을 충족 할 때까지, 폐에 더 혼자 PE10 카테터를 밀어 넣습니다. 카테터를 삽입 할 때 과도한 힘을 적용하면 폐를 손상되므로주의.
  4. 링거액과 함께 1 CC의 주사기를 입력하고 주사기 펌프에 연결합니다. 10 μL / min으로 주입 속도를 설정합니다.
  5. 주입 사이트는 폐의 나머지 부분에 비해 창백 될 것입니다.
  6. 식염수로 폐를 적셔 발견 주입 사이트를 떠날 정도로 큰 구멍을 가진 플​​라스틱 포장으로 폐를 포함한다.
  7. O-링 (맞춤 제작)의 바닥에 약간의 꼭지 그리스를 면봉 O-링의 바닥에 유리 커버 슬립 (# 1.5, 22mm 직경)를 배치합니다. 부드럽게 주입 사이트의 커버 슬립과 O-링을 배치합니다. 표준 테스트 튜브 홀리와 O-링을 고정데르. 최근 15를보고 커버 슬립 / O-링의 조합은, 그 아래 폐포 구조를 왜곡하지 않습니다.
  8. O-링 위의 형광 현미경의 목적 (20X)를 놓고 폐 표면에 초점을 맞 춥니 다.

미세 혈관을 통해 5. 이미징 형광 덱스 트란 교통

  1. 영상 FITC 개화에 대한 현미경을 준비합니다.
  2. 이미지에 표시 할 영역을 선택하고, 이미지 수집 소프트웨어를 사용하여 1/minute의 속도로 이미지를 수집.
  3. 주사기 펌프를 사용하여 FITC-덱스 트란 20 kD의 (0.5 ㎎ / ㎖)의 주입을 시작합니다. 혈관에 형광이 점차 증가하고 최대에 도달 할 것입니다. 60 분 동안 주입을 계속합니다.
  4. 그런 내강 형광을 씻어 링거 주입으로 전환합니다. 10여 분 동안 주입을 유지한다. 워시 오프 동안 분당 1에서 이미지 수집을 계속합니다.

6. 이미지 분석

  1. 이미지 수집 파일을 엽니 다.
  2. 장소 지역이미지 프레임 내의 미세 혈관에 관심.
  3. 이미지 파일을 프레임을 재생하고 모든 프레임에 대한 관심의 각 영역에서의 형광 강도를 기록한다.
  4. 시간의 함수로서 각각의 관심 영역에 대한 형광 강도의 변화를 그린다.
  5. 최대 형광 강도 및 washoff 10 분 후의 잔류 형광 강도를 계량화한다.
  6. 관심의 지역과 관련된 미세 혈관의 투과성 인덱스를 얻기 위해 각 관심 영역에서 잔류 형광 강도에 최대의 비율을 계산합니다.

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Representative Results

관류 배관 및 관련 장비에 연결된 절연 혈액 관류 폐 제조는도 2에 도시된다. 본 명세서에 기재된 방법은 랫트 ​​종으로 이용 될 수 있지만 설명을 위해, 우리는 스프 라그 돌리 래트를 사용 하였다. 좌심방 microcatheter 통해 주입은 폐의 작은 영역에 도달한다. 주입 영역 주입 유도 탈색 (도 3)에 의해 식별 될 수있다. 실시간 이미징 위치로 폐 제제는도 4에 도시된다.

그림 2
그림 2. 혈액 관류 폐 준비입니다. 사진은 관류 튜브에 연결자가 혈액 관류 고립 된 쥐의 폐를 보여줍니다. 폐의 횡격막 표면 미시간 대향 유의목적 croscope.

그림 3
그림 3. Microcatheter 주입 영역. 좌심방 통해 삽입 microcathether은 폐 제제에 링거액을 주입하는 데 사용되었다. 사진은 링거 주입을 받고 왼쪽 폐 (원)의 영역을 보여줍니다. 링거 주사는 혈관을 통해 관류 혈액을 치환으로, 주입 영역은 다른 폐 지역에 비해 옅은 나타납니다. 링거 주입은 폐의 작은 명확하게 구분되는 지역으로 제한되어 있습니다.

그림 4
격리 된 폐 준비를위한 그림 4. 영상 위치. 사진은 우WS 격리 된 폐 준비 이미징을위한 준비 목적 현미경 아래에 위치. 폐 표면이 촉촉한 폐 표면을 유지하기 위해 플라스틱 포장으로 덮여 있습니다. O-링은 이미징 동안 폐 표면의 수평을 유지합니다.

, ALI의 널리 사용되는 모델 :;이 연구는 박테리아 지질 다당류 (B4 혈청 형 0111 LPS)와 치료에 대한 응답으로 혈관 투과성의 변화를 결정했다. 이 무렵, 우리는 60 분 11 링거 세척 한 다음 30 분 동안 미세 혈관에 LPS (100 ㎍ / ㎖)에 주입. 그 다음 우리는 투과성 인덱스를 계량하는 FITC 덱스 트란 20 kD의를 주입. 잔여 FITC 형광 링거 치료 미세 혈관의 낮은 있지만, LPS (도 5A-D)로 처리하는 높았다. 더욱이, 링거 주입에 비해, LPS 주입은 화상 fiel 내의 모든 혈관 투과성의 증가를 해외 시사 투자율 지수의 상당한 감소를 초래D (그림 5E). 세정맥과 모세 혈관에 대해 개별적으로 정량 투자율 지수의 차이 (그림 5 층)으로 유의하지 않았다 비록 LPS-유도 투과성 증가, 모세 혈관보다 작은 정맥 낮은 것을 제안했다.

그림 5
그림 5. LPS는 혈관 투과성을 증가시킨다. 폐 미세 혈관은 30 분 동안 하나 링거 또는 LPS (100 ㎍ / ml)로 처리 하였다. 60 분 후, FITC 덱스 트란 20 kD의는 벨소리의 세척 및 실시간 영상에서 캡처 한 형광의 변화에​​ 따라 주입했다. 그런 다음 폐의 처리 영역에서의 혈관 투과성 인덱스 잔류 FITC 덱스 트란 형광에 최대의 비로서 결정 하였다. AD) 이미지가 최대 (A, C) 및 잔류 표시 (B, D) FITC 불소Ringer's-(A, B) 및 LPS-처리 된 (C, D)의 폐 미세 혈관에서 escence. E) LPS 주입은 화상 프레임 내의 모든 용기 세그먼트에 상당히 투과성 인덱스를 감소시켰다. F) LPS 치료에서 투자율 지수의 감소를 야기 모두 작은 정맥 및 모세 혈관 (* P <이 링거 제어에 비해 0.05; 세 번 각각의 반복, ± SEM을 의미). 모세 혈관 (캡)과 세정맥 (호흡기)는 FITC 덱스 트란 20 가와사끼 주입하기 전에 촬영 한 시야 이미지에서 얻은 용기의 크기에 의해 확인되었다. 보이는 이미지는 850 X 850 μm의 이미지 프레임의 잘라낸 부분입니다. N = 선박의 수입니다.

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Discussion

실시간 영상과 함께 고립 된 혈액 관류 폐 준비는 단일 폐의 미세 혈관의 투과성 변화의 측정을위한 간단한 도구를 제공합니다. 우리는 LPS의 주입에 대한 응답으로 투자율 변화를 정의하려면이 방법을 적용했다. 우리의 데이터는 명확하게 LPS 주입은 미세 혈관 투과성의 증가를 야기하는 것이 좋습니다. 또한, 데이터는 LPS에 의해 유도 투자율 변화 세정맥과 모세 혈관에서 모두 유사 하였다 것을 나타낸다. 따라서,이 기술의 주요 장점은 하나의 미세 혈관의 leakiness뿐만 아니라 혈관의 글로벌 네트워크를 정의 할 수있는 기능입니다. 이 기술은 또한 해외 투자율 변화를 산출 감안할, 이러한 중량 분석과 같은 다른 일반적으로 사용되는 방법을 이용하여 얻어진 것을 사용하여 이러한 값을 비교하는 것이 가능하다. 따라서, 본 방법은 또한 다른 연구에서보고 그와 미세 혈관 유체 누설 정보의 비교를 허용한다.

비교더 널리 혈관 투과성의 변화를 결정하기 위해 기술을 사용, 실시간 영상 기반 방법은 폐 조직 샘플의 더 후 처리가 필요하지 않습니다. 형광 유지의 정도는 형광 물질의 주입 및 후속 washoff 동안 캡처됩니다. 이것은 분명히 조직 샘플과 그들의 처리와 관련된 오류를 보존 제거합니다. 투과 지수를 통해 개별 미세 혈관 투과성을 수립에 더하여, 현재의 방법은 또한, 트레이서 형광 증가의 정도, 추적 형광의 변화율의 이상성 활동 및 씻어 동안 트레이서 형광 감쇠율을 정의 용이하게한다. 우리의 이전의 리포트 (14)에서 설명한 바와 같이 이들 부가적인 파라미터는, 다른 처리뿐만 아니라 미세 혈관의 분절 간의 차이에 대한 응답을 비교하는 데에 이용 될 수있다.

우리는 여기에 염증에 반응하여 투과성의 변화를 결정하는 절차를 설명했다혈관 주입에 의해 전달되는 에이전트. 그러나, 물론 다른 경로에 의해 전달 에이전트 투자율 변화를 결정하는 절차를 적용 할 수있다. 따라서, 우리는 이전에 폐포 점안 (14)에 의해 전달 산에 미세 혈관 투과성 증가를 결정했다.

알 수있는 바와 같이, 폐 사진에서, microcatheter 기반의 배송 방법은 폐의 작은 영역으로 전달되는 제품을 제한합니다. 따라서, 다른 폐 영역에 microcatheter를 조작함으로써, 일련의 실험은 동일한 폐에서 수행 될 수있다. 따라서,이 방법은 완전한 연구에 필요한 동물의 수에 상당한 영향을 미친다. 이 데이터 및 기타보고 된 연구는 같은 폐 4,11,12,14,16에서 여러 혼합을 이용했다. 다른 지역의 응답에 차이로 인해 본 연구의 관류를 통해 주입 에이전트의 수 순환에 분명했다 없지만,이 가능성은 죄수해야실험 설계에 idered. 실험 같은 폐의 다른 지역을 이용할 때 따라서, 초기 투자율이 다른 폐 지역의 유사 여부를 확인하는 도움이 될 수 있습니다.

본 발명의 방법의 성공은 잘 관류 폐 준비를 설정하는 방법에 따라 크게 달라진다. 폐 준비는 유체가 기관 튜브, 혈액 누출, 또는 손상된 폐를 나타내는 모두의 높은 폐동맥 압력에서 나오는 모든 붉은 반점없이 균일 한 색상이어야합니다. 또한, 치료는 삽입을 강요하는 것은 세정맥의 구멍과 폐의 손상으로 이어질 것으로, 폐에 microcathether 삽입시주의해야한다.

따라서 본 그대로 폐 방법 제한 흉막과 subpleural 혈관 시각화 및 폐 혈관의 서브 세트에서 투과성 예측을 할 수 있습니다. 깊은 혈관의 시각화를 들어, 두 광자 현미경 영상은 가능한 대안이 될 수있다. 삽입역행 방향으로 작은 정맥 및 모세 혈관에 왼쪽 심방 정맥 제한 주입을 통해 microcatheter의 이온. 이 제한을 부정 할 수 방법은 폐동맥 정맥을 통해 카테터를 삽입하는 것입니다. 이러한 대체 절차에 필요한 유일한 변형은 폐 입구 측에 카테터에 대한 연장 튜브를 부착하는 것이다.

이러한 절차는 모델로 쥐의 폐를 사용하여 개발되었다. 그러나, 약간의 변형과 동일한 단계는 마우스 폐의 미세 혈관 투과성의 변화를 결정하는데 사용될 수있다. 마우스 폐 실험을 위해, 효능 제 및 트레이서 관류 액에 첨가 될 수 있으며, 투자율은 쥐의 폐에 대한 것과 유사한 정량. 또한, 서로 다른 형광 트레이서는 사용자의 현미경의 능력에 맞게 치환 될 수있다. 덱스 트란 분자 크기 작용제 - 유도 된 투과성 증가 예상 된 크기에 따라 변화 될 수 있고, 결정되어야초기 실험 데이터에 근거. 따라서, 전반적인 함께 형광 이미징과 격리 된 폐 준비 ALI의 표준 동물 모델에서 단일 혈관 투과성을 확인 할 수있는 강력한 도구를 제공합니다.

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Disclosures

저자가 공개하는 게 없다.

Acknowledgements

연구 KP에 NIH HL75503에 의해 지원되었다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Tygon Tubing Fisher Scientific #18
Pressure Transducer Data Sciences International P23XL Need quantity 3
Butterfly Needle Greiner Bio-One 450081 21 G
Peristaltic pump Cole Parmer Masterflex L/S
PE-90 tubing Becton Dickinson 427421 30 cm needed
PE-10 tubing Becton Dickinson 427401 40 cm needed
Syringe Pump Braintree Scientific BS8000
O-ring Custom made with a 20 mm diamter hole and a handle to secure O-ring to holder
Upright fluorescence microscope Olympus America BX61WI
Image Acquisition Software Molecular Devices Metamorph
FITC Dextran 20KD Sigma Aldrich 0.5 mg/ml (A dextran of different molecular size can be selected, if trial experiments indicate its suitability based on the calculated permeability index values) 
Lipopolysaccharide Sigma Aldrich Serotype 0111:B4

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References

  1. Ware, L. B., Matthay, M. A. The acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 342, 1334-1349 (2000).
  2. Matthay, M. A., et al. The acute respiratory distress syndrome. J Clin Invest. 122, 2731-2740 (2012).
  3. Bhattacharya, J., Matthay, M. A. Regulation and repair of the alveolar-capillary barrier in acute lung injury. Annu Rev Physiol. 75, 593-615 (2013).
  4. Parthasarathi, K., et al. Connexin 43 mediates spread of Ca2+-dependent proinflammatory responses in lung capillaries. J Clin Invest. 116, 2193-2200 (2006).
  5. Parthasarathi, K., Bhattacharya, J. Localized Acid instillation by a wedged-catheter method reveals a role for vascular gap junctions in spatial expansion of Acid injury. Anat Rec (Hoboken). 294, 1585-1591 (2011).
  6. Gorin, A. B., Stewart, P. A. Differential permeability of endothelial and epithelial barriers to albumin flux. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 47, 1315-1324 (1979).
  7. Boutoille, D., et al. FITC-albumin as a marker for assessment of endothelial permeability in mice: comparison with 125I-albumin. Exp Lung Res. 35, 263-271 (2009).
  8. Thorball, N. FITC-dextran tracers in microcirculatory and permeability studies using combined fluorescence stereo microscopy, fluorescence light microscopy and electron microscopy. Histochemistry. 71, 209-233 (1981).
  9. Stevens, T. Functional and molecular heterogeneity of pulmonary endothelial cells. Proc Am Thorac Soc. 8, 453-457 (2011).
  10. Ofori-Acquah, S. F., et al. Heterogeneity of barrier function in the lung reflects diversity in endothelial cell junctions. Microvasc Res. 75, 391-402 (2008).
  11. Kandasamy, K., et al. Real-time imaging reveals endothelium-mediated leukocyte retention in LPS-treated lung microvessels. Microvasc Res. 83, 323-331 (2012).
  12. Kandasamy, K., et al. Lipopolysaccharide induces endoplasmic store Ca2+-dependent inflammatory responses in lung microvessels. PloS One. 8, (2013).
  13. Qiao, R. L., Bhattacharya, J. Segmental barrier properties of the pulmonary microvascular bed. J Appl Physiol. 71, 2152-2159 (1991).
  14. Parthasarathi, K. Endothelial connexin43 mediates acid-induced increases in pulmonary microvascular permeability. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 303, (2012).
  15. Wu, Y., Perlman, C. E. In situ methods for assessing alveolar mechanics. J Appl Physiol 1985. 112, 519-526 (2012).
  16. Kuebler, W. M., et al. A novel signaling mechanism between gas and blood compartments of the lung. Journal Clin Invest. 105, 905-913 (2000).

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