İnsan Mezenkimal Kök Hücre İmmünomodüler Properties (MKH) değerlendirilmesi

1Regenerative Medicine Research Group, Institute of Cellular & System Medicine, National Health Research Institutes (NHRI), 2National Institute of Cancer Research, National Health Research Institutes (NHRI), 3Institute of Microbiology & Immunology, National Defense Medical Center
Published 12/24/2015
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

İnsan mezenkimal kök hücrelerin (MSC) immünomodülatör özellikleri, klinik uygulama için giderek daha önemli görünmektedir. Floresan boya carboxyfluorescein süksinimidil ester (CFSE) ile ön-lekeli MSC ve periferal kan lökositlerinin bir ko-kültür sistemi kullanılarak, efektör lökosit çoğalmasının ve spesifik alt popülasyonları MSC immünomodülasyon in vitro değerlendirme tarif eder.

Cite this Article

Copy Citation

Hsu, P. J., Liu, K. J., Chao, Y. Y., Sytwu, H. K., Yen, B. L. Assessment of the Immunomodulatory Properties of Human Mesenchymal Stem Cells (MSCs). J. Vis. Exp. (106), e53265, doi:10.3791/53265 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

İnsan mezenkimal kök hücreler (MKH) bir kaç extramesodermal soy 5 yanı sıra, kemik, kıkırdak ve yağ dokusunda 1-4 paraxial mezodermal soy içine ayırt edebilirsiniz somatik atalarıdır. İlk erişkin kemik iliğinden izole, bu mültilineaj atalarıdır artık klinik uygulama 9-12 için son derece müsait görünen güçlü bağışıklık düzenleyici özelliklere sahip oldukları gösterilmiştir, beklenmedik, çok sayıda dokularda 6-8 bulunabilir ve oylandı. Immünomodülatör etkileri katılan Detaylı mekanizmalar aktif spesifik hastalık varlıklar üzerinde etkili uygulama için araştırılmaktadır. Immünmodülasyonu değerlendirmek için en basit yollarından biri efektör lökosit çoğalması 13 bastırılması için değerlendirilmesi gereğidir. Uyarılmış ya da aktive olduğunda örneğin T lenfositler ve monositler gibi çoğu efektör lökositler müthiş eğlenir çoğalırlar. İmmünomodülatuar fonksiyonu değerlendirilebilir zaman bastırmaçoğalması kanıtlanmıştır.

Geleneksel olarak, efektör lökosit proliferasyonu DNA içine [3H] timidin eklenmesi saptanması ile değerlendirilmiştir. Bununla birlikte, bu yöntem, radyasyon ve kullanım sonrası imha endişelerine önemli dezavantajları, hem de gereken karmaşık bir ekipmana sahiptir. Hücre çoğalmasını değerlendirmek için radyoaktif olmayan tahliller olmakla birlikte, carboxyfluorescein süksinimidil ester (CFSE) deneyi gibi birçok hücre tipini içeren ko-kültür deneyleri özellikle yararlı olan, özel hücresel popülasyonlar, tanımlanması için izin verilmesi gibi başka avantajlara da sahiptir. CFSE, akış sitometrik analizi ile tespit edilebilir bir flüoresan hücre boyadır. Hücre bölünmeleri gibi, bu hücresel etiketin yoğunluğu orantılı azalır; Bu sadece genel hücre çoğalmasının tespitine imkan değil, aynı zamanda floresan det zorlaşır önce 8 tümen kadar hücre bölünmeleri sayısına değerlendirilmesi için izin verirEKT arka plan sinyali karşı. Ayrıca, flüoresan CFSE stabilitesi hücreleri aylarca 14 kadar görselleştirilebilir şekilde etiketlenmiş hücrelerin in vivo izlenmesi için izin verir.

Bu deney de efektör lökosit veya spesifik popülasyonlarının bağışıklık fonksiyonunun belirli türde değerlendirmek için değişik olabilir ve manyetik boncuk yüzey işaretleyici seçimi gerçekleştirerek bağışıklık lökosit-interlökin-10 (IL-10) üretilmesi, CD14 + monositleri 15 olarak MSC-kaynaklı önce veya uygun bir şekilde eş-kültür sonrası ilgi hücre popülasyonları. Bizim protokol (akış şeması gösterilmiştir (akış şeması Şekil 1 'de gösterildiği gibi) efektör lökositler üzerinde MSC immünomodülatör etkileri belirlemek temel deneyi ve allojenik CD4 + efektör T lemfositlerinin MSC-uyarılan lökosit immünomodülasyon değerlendirilmesi için bu temel tahlilinde bir değişik biçimi tarif edilmiştir Şekil 4'te).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Kurumsal inceleme kurulu tarafından onaylanan Hasta onam insan hücrelerinin kullanımı için alınması gerekir.

İnsan Periferal Kan Tek Çekirdekli Hücreleri 1. yoğunluk gradyan izolasyonu (PBMC)

  1. 25 ml'lik bir pipetle 50 ml'lik bir tüp içine tam kan heparinize 25 ml ilave edilir.
    1. Fosfat tamponlu tuz (PBS), 25 ml hücreleri seyreltilir.
  2. Yeni 50 ml'lik bir tüp içine Ficoll Paque yoğunluk gradyanı 15 ml ilave edilir, ve tüpü eğerken, tam kan herhangi bir karıştırma ile olduğu şekilde çok yavaş ve dikkatli bir şekilde yoğunluk gradyanı içinde seyreltilmiş hücre süspansiyonu, 25 ml eklemek yoğunluk gradyan, yani., kan-yoğunluk gradyan arayüzünün hiçbir rahatsızlık.
  3. Santrifüj 20 ° C 'de fren olmayan 30 sıcaklık kontrollü bir sallanma-kepçeli rotor içinde 40 dakika için 400 x g'de aşama 1,2 süspansiyon.
    Not: üç farklı tabakalar, santrifüj işleminden sonra belirgin olmalıdır: the üst katman varlık plazma; alt berrak tabaka Ficoll Paque yoğunluk gradyan olmak; ve ince, orta hücresel tabaka PBMC'leri olmak
  4. Aspire edin ve mononükleer hücrelerin (örneğin, lemfositler, monositler ve trombositler) interfaz tabakası bozmamaya dikkat sahip bir Pasteur pipeti ile emme ile üst tabaka atılır.
  5. Dikkatli bir şekilde yeni bir 50 ml'lik santrifüj tüpüne, 10 ml bir pipet ile bu tek çekirdekli hücre faz toplanır.
  6. , 20 ml PBS ile tüp doldurun, iyice karıştırılmakta ve 20 ° C'de 10 dakika boyunca 300 x g'de santrifüje tabi tutun. Santrifüj sonra tamamen süpernatantı.
  7. 20 ° C'de 10-15 dakika boyunca 200 x g'da hücre PBS, 20 ml pelet ve santrifüj yeniden süspanse edin. Santrifüj sonra tamamen süpernatantı.
    Not: Bu adım trombositler-istenmeyen-içinde PBMC'ler vardır kaldırır; Bu adım, trombositlerin tam olarak çıkarılmasının sağlanması için tekrar edilebilir.
  8. Belirli nüfusun herhangi bir seçim isebir hücre sayımı 16 gerçekleştirdikten sonra kültür için arzu edilen lökosit tam bir ortam içinde tekrar süspansiyon hücre topağı (% 10 fetal bovin serumu (FBS),% 1 L-glutamin ve% 1 penisilin / RPMI-1640 ortamı içinde streptomisin) içinde 1 ml askıya Bir sonraki adıma geçmeden önce 10 7 PBMC'lerin başına ortam.

Lökosit Populasyonlarının 2. Manyetik Etiketleme (Belirli popülasyonlarının hiçbir Seçim Gerekli ise 4. adıma atlayın)

  1. Tamamen 10 dakika ve aspirat süpernatant için 300 × g Santrifüj PBMC süspansiyon.
  2. 10 7 toplam hücre başına PBS 80 ul süspanse hücre pelet.
  3. 10 7, toplam hücre başına (T lenfositlerinin izolasyonu için monositler, CD4 manyetik boncuk izolasyonu için, yani, CD14 manyetik boncuklar) belirtilen manyetik boncuk 20 ul ekle.
  4. İyice karıştırın ve buzdolabında 8 ° C'de 2 ila 15 dakika inkübe edilir.
  5. Yıkamak için 10 7 hücre başına PBS 1-2 ml ekleyin ve santrifüj10 dakika boyunca 300 x g'de.
  6. Süpernatant aspire tam ve 500 ul PBS içinde 10 8 hücrelere kadar yeniden süspanse edin.

Lökosit alt popülasyonlarının 3. Manyetik Seçimi

Not: manyetik boncuk ayırıcılar ve sütun çeşitli üreticileri bir dizi hücre yüzeyi işaretleyicisi tarafından lökositlerin özel nüfus izolasyonu için kullanılabilir. İzolasyon, bir veya bir kaç olumlu belirteçleri üzerine veya istenmeyen popülasyonlarının tükenmesi sonrasında negatif seleksiyon tarafından temelli pozitif seçimi ile olabilir. (Yani, monositler için CD4 T yardımcı lenfositler için veya CD14), bir işaretleyici kullanılarak pozitif seçim gerçekleştirmek genel bir yaklaşım, aşağıda özetlenmiştir.

  1. Hazırlama ve birinci manyetik ayırıcı üreticinin talimatlarına uygun ayırma kolonu da dahil olmak üzere.
  2. Etiketli PBMC'lerin örneğini içeren tüp uygulayın. Olumlu etiketli ve unlabel toplanması için iki adet 15 ml santrifüj tüpleri sağlayınimalatçının talimatlarına uygun olarak ed hücre fraksiyonları,.
  3. 10 7 hücre başına ortam 1 ​​ml kullanılarak hücre sayısı 15 sayın ve lökosit tam bir ortam içinde pozitif seçilen lökosit (örneğin, CD4 + T lenfositleri veya CD14 + hücreler) yeniden süspanse edin.

Proliferasyonunun Değerlendirme lökosit 4. KAKE Boyama

Not: KAKE yaygın in vivo ve in vitro çalışmalar hem immünolojik araştırmalarda kullanılmaktadır. Bizim protokol MSC / PBMC (ya da diğer lökosit) etkileşimlerinin in vitro çalışma için optimize edilmiştir. KAKE in vitro etiketleme yürüten genel adımlar benzer olmakla birlikte, protokolün 14 özel doz ve zamanlama farklılıklar olabilir. Bu, bir dizi faktöre, örneğin kullanılan özel hücre tipi, hücre sayısı olabilir kullanılmış olan büyük olasılıkla CFSE floresan sinyalin şiddetini etkileyebilir.

10 uM (CFSE-çalışma çözeltisi), istenen bir çalışma yoğunluğuna PBS içinde CFSE stok solüsyonu (10 mM) ile seyreltilir. CFSE-çözelti ile etiketlenmesi için 10 7 hücreleri (örneğin, PBMC'ler veya T hücreleri) hazırlayın.
  • 10 dakika için 300 × g Santrifüj hücre pelet elde etmek ve süpernatant aspire.
  • Yavaşça önceden ısıtılmış (37 ° C) CFSE-çalışma çözeltisi 1 ml hücreleri yeniden süspanse edin ve 37 ° C'de 10 dakika boyunca hücreler inkübe edin.
  • Fazla CFSE yıkayın için, önceden soğutulmuş (4 ° C) RPMI ortamı,% 10 FBS ihtiva eden (hacim ile) 10x hücre süspansiyonu seyreltin. 5 dakika boyunca 300 xg'de santrifüj hücreleri tortu ve supernatant atın. Iki kere daha bu şekilde hücre pelletini yıkayın.
  • Santrifüj hücreleri yeniden pelet ve hücre sayısını 15 saymak. 1 ml yeni, önceden ısıtılmış lökosit tam bir ortamda 10 7 hücreleri (PBMC'ler veya T hücreleri olarak) yeniden süspanse edin.
  • M 5. Co-kültürLökosit ve lökosit Aktivasyonu ile SC'ler

    1. En fazla 30 dakika süreyle 37 ° C'ye kadar ön-sıcak MSC komple ortam (optimum MSC büyümesi için önceden test% 10 FBS (),% 1 L-glutamin ve% 1 penisilin / DMEM-düşük glikoz ortamında streptomisin).
    2. 24 oyuklu plakalar içinde MSC tam orta 1 ml 50,000 hücre (MSC yoğunluğu: 25.000 hücre / cm2) de tohum erişkin 37 ° C kuluçka makinesi içinde ek olarak O / N, kök hücre için izin% 80 konfluansa ulaşmalarına.
    3. Tohumlanmış MSC numaraları göre orta aspire ve, CFSE etiketli PBMC ekleme (daha önce işaretlenmiş lütfen yukarıda protokolü Adım 4'e bakınız), bir lökosit tam orta 1 ml (24 oyuklu plakalar içinde bir önceki güne tohumlanmış) kültürlenmiş MSC'Iere 01:10 (hücre oranı) PBMC'lerden için MKH ko-kültür oranı.
    4. 1 ml lökosit tam orta toplam hacim içinde 10 ug / ml'lik bir nihai konsantrasyona kadar, mitojen fitohemaglutinin (PHA), spesifik olmayan bir lökosit etkinleştirici Oyuk başına.
      1. Alternatively, özellikle T lenfositlerin aktivasyonu için uyarmak için: α-CD3 / 28, mikro-boncuklar kullanımı ve 1 bir kordon T'ye lenfosit oranını elde etmek için, iki hücre ortak-kültürünün eklemek: 1 arasındadır.
    5. 500.000 PBMC / Negatif kontrol, levha (hücre yoğunluğu ya da belirli bir efektör nüfusunun lökosit: 250.000 lökosit / cm2) için, sadece 1 ml lökosit ortamla, 24 oyuklu bir plaka içerisinde, Pozitif kontrol için, ek olarak, iyi PBMC'lerin / aynı sayıda kaplama için 10 ug / ml 'lik bir nihai konsantrasyona kadar PHA ekleyin.
    6. 3 ve ko-kültür deney 5 gün, fluoresein için uygun 488 nm eksitasyon ve emisyon filtreleriyle akış sitometrik analizi 17 CFSE etiketli lökosit çoğalmasının (yuvarlak dipli tüplerine yerleştirilmiştir) değerlendirir.
      Not: Akış sitometri analizi için hücre içi sitokin boyaması da mo olarak lökosit sitokin ekspresyon profili değişiklikleri değerlendirmek için, bu noktada bu KAKE etiketli lökositlere gerçekleştirilebilirMKH tarafından dulated. KAKE fluoresein için bir filtre uygun değerlendirilmiştir olduğundan, antikorlar, çeşitli sitokinler floresein veya benzer yelpazenin dışındaki fluorochromes konjuge gereken değerlendirmek için seçilen (yani, fikoeritrin, klorofil protein kompleksinin (PerCP) peridinin).

    6. Varyasyon: Efektör baskılama tahlili Manyetik Aktif CFSE etiketli Efektör CD4 + T hücreleri üzerinde bağışıklık ayarlayıcı Lökositler MSC ile indüklenen, Boncuk seçilen

    1. 6-yuvalı plakalar içinde MSC tam orta 3 ml 250,000 hücreler (MSC yoğunluğu: 25.000 hücre / cm2) de tohum erişkin 37 ° C kuluçka makinesi içinde ek olarak O / N, kök hücre için izin% 80 konfluansa ulaşmalarına. En az 3 ila 6 oyuklu plakalar alt popülasyonu seçimi için yeterli MSC-kültive PBMC'ler sağlamak için gereklidir.
    2. Kültür ortamı basınçla, ve Adım 1 'deki gibi fakat / oyuk (hücre yoğunluğu 2.5 x 10 6 hücre 6 oyuklu plakalar içinde ayrılmış PBMC ekleyin: 250,000 leLökosit tam orta 3 ml ukocytes / cm2). 37 ° C kuluçka makinesi içinde 48-72 saat boyunca Co-kültür.
    3. Manyetik Bölüm 2-3 uyarınca MSC kaynaklı immünomodülatör lökositlerin (yani, CD14 + hücreler) spesifik nüfusu boncuk seçin.
      Notlar: akış sitometri analizi için hücre içi sitokin boyaması lökosit sitokin ekspresyon profili, yani ekspresyonunda değişiklikler için değerlendirmek üzere bu noktada gerçekleştirilebilir interlökin-10-as MSC tarafından modüle.
    4. 24 oyuklu plakalar içinde Bölüm 2-4 uyarınca üretilen allojenik CD4 + T hücrelerinin CFSE etiketli ekle 1 lökosit komple ortam (T hücre yoğunluğu: 250.000 hücre / cm2) arasında mi çeşitli oranlarda Boncuk seçilen MSC kaynaklı lökosit örneğin, 1:10, 1: 5, 1: 2 ve 1: 1 oranları (hücre hücre).
    5. CD4 + T hücreleri teşvik etmek, 1 bir kordon-hücre oranı elde etmek α-CD3 / 28 konjuge mikroboncukları ekleyin: 1.
    6. Negatif kontrol için, 5 plaka00.000 CD4 + T hücre / oyuk, 24 gözenekli bir plaka (T hücre yoğunluğu: 250.000 hücre / cm2) 'de, sadece 1 ml lökosit tam orta; Pozitif kontrol için, ek olarak 1, bir kordon-hücre oranını elde etmek için α-CD3 / 28 konjuge mikroboncukları eklemek / oyuk, CD4 + T hücreleri aynı sayıda kaplama: 1 arasındadır.
    7. Eş-kültür 3. gününde, fluoresein için uygun 488 nm eksitasyon ve emisyon filtreleriyle akış sitometrik analizi ile 16 (yuvarlak tabanlı tüp içine yerleştirilmişlerdir) CFSE etiketli CD4 + T hücrelerinin proliferasyonunu değerlendirmek.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Representative Results

    Şekil 1, deney genel şema gösterir, ve Şekil 2, faz-kontrast ters mikroskobu ile gösterildiği gibi çeşitli hücre kültürü koşullarının görünümünü göstermektedir. PBMC'ler ve lökositlerin küçük yuvarlak yapışmayan hücreler iken erişkin bir fibroblastik, iğ şeklinde morfolojiye sahip yapışmayan hücreler bulunmaktadır. Bu iki morfolojik olarak farklı hücre tipleri açık bir şekilde ko-kültür görülebilir. Testin sonunda, PBMC'ler (veya leuckotyes) Akış sitometrik için aspire edildiğinde yapışık MKH yanlışlıkla değerlendirilmesi ile hiçbir sorun olmalı, (yoksul eki veya şiddetli aspirasyonu ile yerinden çıkmak, yani) bulunsa bile, analizleri Bu hücrelerin beri PBMC / lökosit kesir KAKE etiketli olacaktır. Hiçbir çoğalma olduğunda, KAKE etiketli hücreler için histogram sonuçlar tek son derece olumlu ve keskin tepe olarak görülmektedir; Etkinleştirme meydana geldiğinde, ancak, proliferasyon tezahür b gibi anlaşılacaktırBir kayıp ve floresan yoğunluğu sol-shift (Şekil 3) ile y birden fazla küçük zirveleri. Çoğalmasının bastırılması meydana zaman sağ netlik sağ ve artışları piklerin kaydırılması yoluyla kanıtlandığı gibi, örneğin., MSC ko-kültür, birden çok daha küçük bir tepe değeri, floresan yoğunluğunun eşlik eden bir artış azalacaktır . aktive edilmiş alojenik efektör CD4 + T hücreleri üzerinde MSC-kaynaklı bağışıklık lökositlerin efektör bastırılması değerlendirilmesi: bölünmeyen hücreleri temsil eden en tepe Şekil 4, deneyin bir varyasyon genel şema göstermektedir. Deney bir varyasyonu gibi sonuçları çoğalması görülen (Şekil 5) doza bağlı bastırma ek bilgilerle orijinal deneyinde benzer.

    figür 1
    Allojenik efektör lökositler üzerinde mezenkimal kök hücrelerin (MKH) immünomodülatör etkilerinin değerlendirilmesi için Şekil 1. Akış çizelgesi. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Şekil 2,
    MSC, lökositler ve iki hücre popülasyonlarının eş-kültür Şekil 2. Hücre morfolojisi. MSC ve lökositlerin tek hücre kültürünün faz-kontrast mikroskopi fotoğraflarında, ve MSC-lökosit ko-kültür. Ölçek çubuğu, 100 mikron. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Şekil 3,
    Rakam Lökositler çoğalan 3. MSC baskılayıcı etkileri. Carboxyfluorescein süksinimidil ester sitometrik histogram (CFSE) -etiketli lökosit çoğalması (A) MSC ile kültürlenen başına uyarılmamış, (B) eş-kültür, anti-CD3 / CD28 mikroboncuk ile kültürlenen (C) Akış stimülasyonu (α-CD3 / CD28), tek başına, (D) ve MSC ile. Histogramlarda gösterilen Yüzdeler çoğalan lökositlerin oranını ifade etmektedir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Şekil 4,
    Allojenik CD4 + efektör T lenfositlerinin MSC kaynaklı lökosit immünomodülasyon değerlendirilmesi için Şekil 4. akış şeması./ 53.265 / 53265fig4large.jpg "target =" _ blank "yüklemek> bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

    Şekil 5,
    CD4 lenfositlerin proliferatif MSC-ko-kültürlenmiştir CD14 monositlerin Şekil 5. bastırıcı kapasitesi. Arsa Dağılım ve anti-CD3 / CD28 mikroboncuk MSC-ko-kültürlenmiştir CD14 + monositleri (M-CD14 +) baskılayıcı kapasitesi sitometrik histogram akış uyarılması, CFSE etiketli CD4 + efektör T lemfositleri (S-CD4 +). M-CD14 + S-CD4 + Co-kültür oranı gösterilmektedir. CD4 + T lenfositleri (R1) işlenir ve CFSE yoğunluğu açısından değerlendirildi. Histogramlarda gösterilen yüzdeler CD4 + T hücrelerini çoğalan oranını ifade etmektedir. Th büyük halini görmek için tıklayınızrakamdır.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Ficoll-Paque PLUS GE Healthcare 71-7167-00 AG Density grandient for isolation of peripheral blood mononuclear cells (PBMCs)
    Vibrant CFDA-SE Cell Tracer Kit (CFSE) Life Technologies V12883 Cellular label for detection of cell division
    Phytoagglutinin (PHA) Sigma L8902 Activation of human PBMCs
    Dynabeads Human T-Activator CD3/28 Life Technologies 111.32D Activation of human T lymphocytes, e.g. CD4+ T cells, CD8+ T cells, etc.
    autoMACS™ Separator Miltenyi Biotec autoMACS™ Separator Magnetic based cell separator
    autoMACS® Columns Miltenyi Biotec 130-021-101 separation columns
    CD14 microbeads, human  Miltenyi Biotec 130-050-201 For positive selection of CD14+ human monocytes and macrophages from PBMCs
    CD4 microbeads, human  Miltenyi Biotec 130-045-101 For positive selection of CD4+ human T lymphocytes from PBMCs
    RPMI 1640 Medium Life Technologies 11875 Human PBMC/leukocyte culture medium
    DMEM, Low glucose, pyruvate Life Technologies 11885 Human mesenchymal stem cell (MSC) culture medium
    L-glutamine Life Technologies 25030-081 Supplementation for MSC complete medium
    Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070-063 Supplementation for PBMC/leukocyte and MSC complete medium
    Fetal bovine serum (FBS) 1) Hyclone, for MSC culture                   2) Life Technologies, for all other cells (i.e. PBMCs, specific leukocyte populations) 1) SH30070.03M 2) 10091-148 Pre-test lots for support of MSC in vitro culture
    24-well cell culture plate Corning COR3524 Co-culture plate
    50 ml centrifuge tube Corning 430291 Isolation PBMCs from whole blood by Ficoll-Paque PLUS
    15 ml centrifuge tube  Corning 430766 Collection of the labeled and unlabeled cell fractions
    Round-bottom tubes BD Falcon  352008 Collection of cells for flow cytometric analysis

    DOWNLOAD MATERIALS LIST

    References

    1. Friedenstein, A. J. Precursor cells of mechanocytes. Int Rev Cytol. 47, 327-359 (1976).
    2. Pittenger, M. F., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 284, 143-147 (1999).
    3. Prockop, D. J. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues. Science. 276, 71-74 (1997).
    4. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8, 315-317 (2006).
    5. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126, 677-689 (2006).
    6. Zuk, P. A., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 7, 211-228 (2001).
    7. Yen, B. L., et al. Isolation of multipotent cells from human term placenta. Stem Cells. 23, 3-9 (2005).
    8. Erices, A., Conget, P., Minguell, J. J. Mesenchymal progenitor cells in human umbilical cord blood. Br J Haematol. 109, 235-242 (2000).
    9. Bartholomew, A., et al. Mesenchymal stem cells suppress lymphocyte proliferation in vitro and prolong skin graft survival in vivo. Exp Hematol. 30, 42-48 (2002).
    10. Chang, C. J., et al. Placenta-derived multipotent cells exhibit immunosuppressive properties that are enhanced in the presence of interferon-gamma. Stem Cells. 24, 2466-2477 (2006).
    11. Uccelli, A., Moretta, L., Pistoia, V. Mesenchymal stem cells in health and disease. Nat Rev Immunol. 8, 726-736 (2008).
    12. Chen, P. M., Yen, M. L., Liu, K. J., Sytwu, H. K., Yen, B. L. Immunomodulatory properties of human adult and fetal multipotent mesenchymal stem cells. J Biomed Sci. 18, 49-59 (2011).
    13. Muul, L. M., et al. Measurement of proliferative responses of cultured lymphocytes. Curr Protoc Immunol. Wiley & Sons, Inc. (2011).
    14. Quah, B. J., Warren, H. S., Parish, C. R. Monitoring lymphocyte proliferation in vitro and in vivo with the intracellular fluorescent dye carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester. Nat Protoc. 2, 2049-2056 (2007).
    15. Chen, P. M., et al. Induction of immunomodulatory monocytes by human mesenchymal stem cell-derived hepatocyte growth factor through ERK1/2. J Leukoc Biol. 96, 295-303 (2014).
    16. Oughton, J. A., Kerkvliet, N. I. UNIT 18.8 Immune cell phenotyping using flow cytometry. Curr Protoc Toxicol. Costa, L. G., Davila, J. C., Lawrence, D. A., Reed, D. J., Will, Y. Wiley & Sons, Inc. 18.8.1-18.8.24 (2005).
    17. Phelan, M. C., Lawler, G. APPENDIX 3A Cell counting. Curr Protoc Cytom. Robinson, J. P., et al. Wiley & Sons, Inc. A.3A.1-A.3A.4 (2001).
    18. Gebler, A., Zabel, O., Seliger, B. The immunomodulatory capacity of mesenchymal stem cells. Trends Mol Med. 18, 128-134 (2012).
    19. Le Blanc, K., et al. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 371, 1579-1586 (2008).
    20. Tan, J., et al. Induction therapy with autologous mesenchymal stem cells in living-related kidney transplants: a randomized controlled trial. JAMA. 307, 1169-1177 (2012).
    21. Le Blanc, K., et al. Mesenchymal stem cells inhibit and stimulate mixed lymphocyte cultures and mitogenic responses independently of the major histocompatibility complex. Scand J Immunol. 57, 11-20 (2003).
    22. Li, X. Y., et al. Long-term culture in vitro impairs the immunosuppressive activity of mesenchymal stem cells on T cells. Mol Med Rep. 6, 1183-1189 (2012).
    23. Moll, G., et al. Do cryopreserved mesenchymal stromal cells display impaired immunomodulatory and therapeutic properties? Stem Cells. 32, 2430-2442 (2012).
    24. Ho, P. J., Yen, M. L., Tang, B. C., Chen, C. T., Yen, B. L. H2O2 accumulation mediates differentiation capacity alteration, but not proliferative decline, in senescent human fetal mesenchymal stem cells. Antioxid Redox Signal. 18, 1895-1905 (2013).

    Comments

    0 Comments


      Post a Question / Comment / Request

      You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

      Video Stats