Fare C1498 Cep Hattı ve İlişkili Lösemi Fare Modeli Karakterizasyonu için Detaylı Protokolü

Cancer Research
 

Summary

Bu yazıda, in vitro ve enjeksiyondan sonra farelerde akut lösemide C1498 hücre kültürlerinin karakterize etmek için kullanılabilen bir teknik prosedürü sağlar. Fenotipik ve fonksiyonel analizler flow sitometri, immünofloresan mikroskopi, histokimya ve Mayıs-Grünwald Giemsa boyama kullanılarak gerçekleştirilir.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Mopin, A., Driss, V., Brinster, C. A Detailed Protocol for Characterizing the Murine C1498 Cell Line and its Associated Leukemia Mouse Model. J. Vis. Exp. (116), e54270, doi:10.3791/54270 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

1941 Bu enjeksiyonlar, akut lösemi gelişme olmasına neden olduğundan, genetik olarak özdeş ya konjenik farelere C1498 hücrelerinin damar içi enjeksiyon yapılmıştır. Bununla birlikte, bu hastalığın doğasına, literatürde iyi belgelenmiştir edilmemiştir. Burada, in vitro C1498 hücreleri karakterize etmek için in vivo olarak uyarılan lösemi doğasını belirlemek için bir teknik protokol sağlar. Bu prosedürün ilk bölümü hematopoietik soy ve kültür C1498 hücrelerin farklılaşma aşamasının belirlenmesinde odaklanmıştır. Bunu elde etmek için, çok parametre akış sitometrik boyama hematopoietik hücre markörleri tespit etmek için kullanılır. İmmünofloresan mikroskopi, sitokimyasal ve Mayıs-Grünwald Giemsa boyama sonra sırasıyla, miyeloperoksidaz ifadesini, esteraz ve hücresel morfoloji aktivitesini değerlendirmek için yapılır. Bu protokolün ikinci bölümü indüklenir lösemi hastalığını anlatan adamıştırin vivo. Ikinci kan lösemik ve içsel hücre frekansları saptanmasıyla elde edilebilir sitometrisi belirli bir lekeleme kullanılarak ve akış hematopoietik organların (örneğin, kemik iliği ve dalak) ve non-lenfoid dokular (örneğin, karaciğer ve akciğer) analiz eder. lösemi doğası sonra kemik iliğindeki özel esteraz için Mayıs-Grünwald Giemsa boyama ve boyama kullanılarak teyit edilmiştir. Burada, aynı yaştaki C1498- ve PBS ile enjekte edilmiş farelerde, bu protokol kullanılarak elde edilen sonuçları sunulmaktadır.

Introduction

Akut miyeloid lösemi (AML) olgunlaşma farklı aşamalarında engellenir hematopoietik miyeloid hücrelerin kontrolsüz çoğalma ile karakterize edilir. Bu düzensizliği granülositik, monositik, eritrosit veya megaryocytic farklılaşma yolları 1 etkileyebilir. AML hücreleri trombositopeni, lenfopeni ve anemi ile sonuçlanır engelli hematopoez, yol, kemik iliğinde birikir. lösemi hücreleri, kan ve Lenfoid olmayan organları istila.

C1498 fare modeli literatür kana işgali tarif kanser hücreleri 1941 bir lösemi 10 aylık bir C57BL / 6 (H-2b) dişi fare izole çünkü akut lösemi için bir model olarak yıllardır kullanılmaktadır hematopoietik organları (örneğin, dalak ve lenf düğümleri) ve non-hematopoetik organların (örneğin, karaciğer, akciğer, yumurtalık ve böbrek) yüksek proliferatif C1498 hücreleri tarafından da bir IN ile enjekte edildikten sonratravenous, duyarlı farelere 2-4 içine deri altı veya intra-peritoneal rota. Ancak, bu fare modeli ya granülositik 2,5 veya miyelomonositik 6 lösemi uyardığı bildirildi. Daha yakın zamanlarda, 2002 yılında yayınlanan bir çalışmada, kemirgen NKT hücreli lösemi 7 olarak bu kanser türü tanımladı. Bu durumda, literatür, bu C1498 hücre hattının yapısı ve farelerde indükler ilişkili lösemi ile ilgili değişiklik gösterir. 70 - Bu tutarsızlıklar detaylı eksikliği ve hücrelerin hakkında güncel yayımlanan bilgilerin ve birçok çalışma 1950 yılında yapılmıştır çünkü genel olarak lösemi hastalığına başlıca nedeni vardır.

Burada C1498 hücreleri tanımlama ve farelere damar içine enjekte edilmesiyle uyandırılır lösemi hastalığın doğasını analiz açıklamak için ayrıntılı bir protokol sağlar. Bu protokolün birinci bölüm, in vitro olarak kültür edilmiş C1498 hücre açıklama ayrılmıştır. floresan antiyüzey ve hücre içi hematopoietik belirteçler karşı organları akış sitometrisi kullanılarak fenotipi belirlemek için kullanıldı. miyeloperoksidaz varlığı immünofloresan mikroskopi kullanılarak değerlendirildi, onların hematopoetik soy ve farklılaşma sahne esterazların aktivitesini değerlendirmek için sitokimya kullanılarak değerlendirildi ve Mayıs-Grünwald Giemsa boyama yapıldı. C1498 Hücreler daha sonra farelere enjekte edildi ve indüklenen akut lösemi hastalığı Bu yazının ikinci bölümünde tarif edilmektedir. Aynı teknikler frekansları ve kemik iliğindeki lösemi ve içsel hücre, periferal kan, dalak ve non-hematopoetik organ (karaciğer, akciğer) fenotipleri belirlemek için kullanıldı.

Bu protokol yüksek tekrarlanabilir ve burada sunulan veriler araştırmacılar yeni tedavi stratejilerinin etkilerini değerlendirmek için yardımcı olacaktır. Bu lösemi fare modeli zaten immünoterapi yaklaşımları test etmek için kullanılmıştırnd farklı kanser kemoterapötik ilaçları 8,9. Onların etkinliği tümör yükü ve sağkalım oranları evrimini belirlenerek değerlendirildi. Bu protokol tedavi sırasında lösemili ve diğer hematopoetik hücre popülasyonlarının dağılımı ve geçim hakkında ek bilgi sağlamak için kullanılabilir.

Protocol

Hayvan konut ve tüm deneysel prosedürleri yerel Hayvan Bakım Etik Komitesi tarafından, CEEA.NPDC (anlaşma no.512012) onaylanmış ve tüm deneyler Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Fransız ve Avrupa kurallarına uygun olarak yapıldı.

C1498 Celi Line In Vitro Tespiti 1.

  1. C1498 hücrelerinin in vitro kültüründe
    1. Hazırlama tam RPMI (Roswell Park Memorial Institute) fetal sığır serumu, 50 ml (FBS), penisilin, 5 ml ilave edilerek 1640 ortamında (100 U / ml) (100 ug / ml), 50 mM β-merkaptoetanol, 500 ul -streptomycin 5 N-2-hidroksi-N-2-etan sülfonik asit (HEPES) içinde mi, esansiyel olmayan amino asitler ile 5 mL RPMI ortamı, 500 ml sodyum piruvat 5 ml.
    2. tam RPMI içinde C1498 hücre hattı büyütün. pipetleme süspansiyon hücreleri hasat ve 50 ml'lik bir tüp hücre transfer edin. 10 dakika boyunca 350 xg'de santrifüj ve Superna kaldırmaktant.
    3. 10 dakika boyunca 350 xg'de fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) (1x) çözeltisi santrifüj 20 ml ilave edilir, ve supernatant çıkarın.
    4. 10 flüoresanslı etkinleştirilmiş hücre ayırıcı (FACS) tamponu (sığır serum albümini (BSA) pudra 2.5 g ve 2 PBS çözeltisi, 500 ml 0.5 M etilendiamin tetraasetik asit (EDTA) çözeltisi mi) içinde tekrar süspansiyon hücreleri. tripan mavisi ile boyanması sonrası bölme sayma Thoma hücre kullanarak hücreleri sayın.
  2. C1498 hücre çizgisinin fenotipik nitelendirilmesi immün kullanarak akış sitometri analizine
    1. Hücre yüzey boyama
      1. FACs tampon hazırlayın.
      2. 10 7 hücre / ml FACS tampon hasat hücreleri ayarlamak ve tüpler akış sitometrisi her bir boyama deney için (100 ul), 10 6 hücre dağıtın.
      3. FACS tamponu içinde seyreltilmiş, aşağıdaki antikorlar ya da bunların ilişkili izotip kontrolleri 100 ul hücreleri etiketlemek:
        1. Formön ve farklı hücre arkers anti-CD11b / anti-CD18 (1), bir anti-Ly-6G (1), anti-CD19, anti-B220 (2), anti-NK1.1, anti-hücreleri etiketlemek CD49b, anti-CD4 (1), anti-CD8 (2), anti-CD3 (3), anti-CD21 / 35, anti-CD115 ve anti-TCRVβ antikorları yer alır.
        2. Hematopoietik kök / progenitor hücreler belirteçleri, anti-CD34, bir arada kullanmak / anti-CD117 / anti-Sca-1, anti-CD150 / anti-CD117 / anti-Sca-1, anti-CD117 / anti-CD127 veya anti tek başına CD16 / 32-biotin antikorları.
        3. Hücre fonksiyonları (örn, yapışma, antijen sunumu, ortak uyarıcı moleküller ve reseptör) belirteçleri, anti-CD18 (2) / anti-CD11a, bir anti-MHC sınıf I, anti-MHC sınıf II, anti-hücreleri leke CD31, anti-CD44, anti-CD80-biotin, anti-CD86 ve anti-CD274 antikorları yer alır.
      4. 30 dakika boyunca 4 ° C'de tüpler akış sitometrisi tüm inkübe edin.
      5. iki kez 5 dakika boyunca 350 xg'de Her tüpe FACS tamponu 2 ml santrifüj ekleyerek hücreleri yıkanır ve supernatant çıkarın. Her tüpe FACS tampon 100 ul ilave edin ve biyotinile-konjüge antikorlarla (1/200 nihai seyreltme için FACS tampon 1/100) fluoresan streptavidin 100 ul ilave edilerek sekonder boyama geçin. 30 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
      6. şöyle hücreler iki kez yıkayın: 5 dakika boyunca 350 xg'de, her tüpe santrifüj tüpleri FACS tamponu 2 ml ekleyin ve pipetleme ile süpernatantı.
      7. Soğuk 500 ul PBS hücrelerin tekrar ve tüpler kapsayacak şekilde alüminyum folyo ile karanlıkta tutarak, buz üzerinde hücreleri yerleştirin. Bir Sitometreyi 10 kullanarak sonuçları analiz edin.
    2. Hücre içi boyama
      1. PBS çözeltisi 375 ml% 4 paraformaldehit (PFA) çözeltisi 125 ml ekleyerek sabitleme tamponu hazırlayın.
        NOT: havalandırılmış başlığı içinde bir karıştırma plakası üzerinde yaklaşık 60 ° C'de% 4 PFA 500 mi, sıcak PBS çözeltisi 400 ml hazırlanması. PFA tozu 20 g ekleyin ve pH'ı yükseltmekkadar PFA eritilir. Çözelti, soğumaya 6.9 pH ayarlamak ve PBS ile 500 ml birimi oluşturacak izin verin.
      2. Saponin 0.5 g ve PBS çözeltisi 500 ml BSA 0.5 g ekleyerek geçirimli tamponu hazırlayın.
      3. 10 7 hücre / ml FACS tampon hasat hücreleri ayarlamak ve tüpler akış sitometrisi her bir boyama deneyi için hücreler (100 ul) 10 6 dağıtın. 5 dakika boyunca 350 xg'de hücreleri Santrifüj ve süpernatant kaldırmak.
      4. % 1 PFA çözeltisi 200 ul hücre saptamak ve 4 ° C'de 10 dakika inkübe edilir.
      5. 5 dakika boyunca 350 xg'de, her tüpe santrifüj tüpleri geçirimli tampon 2 ml ilave edilir, ve pipetleme ile süpernatantı. Her tüpe tampon Su-geçirimli 100 ul ekle.
      6. tampon Su-geçirimli bunları inceltilerek aşağıdaki antikorlar veya bunların karşılık gelen izotip kontrolleri 100 ul hücreleri etiketlemek: anti-CD3 (2) / anti-CD8 (1), anti-CD3 (3) A /nti-CD4 (2), anti-CD107b ve anti-CD3 (3) / anti-TCRVβ.
      7. 30 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe hücreleri.
      8. iki kez, her tüpe tampon Su-geçirimli 2 ml ekleyerek hücreleri yıkanır. 5 dakika boyunca 350 xg'de tüpler santrifüj ve süpernatant kaldırmak.
      9. hücrelere tampon Su-geçirimli 100 ul ekle. biotinlenmiş-konjuge antikor tampon permeabilizing seyreltilmiş floresan streptavidin 100 ul ekleyerek ikincil boyanması geçin. 30 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
      10. Her bir tüpe tampon Su-geçirimli 2 ml ilave edilir, 5 dakika boyunca 350 xg'de tüpler santrifüj ve supernatant çıkarın. Bu adımı bir kez daha tekrarlayın.
      11. Soğuk 500 ul PBS hücrelerin tekrar ve karanlıkta buz üzerinde hücreleri yerleştirin. 10 debi sitometresinde analiz sonuçları.
  3. için mikroskop bir hücre süspansiyonunun hazırlanması
    1. Ha Yıkama 10 6soğuk FACS 5 ml (adım 1.1.4 'de elde edilen) rvested C1498 hücreler iki kez tampon ve soğuk FACS tampon maddesi 1 ml hücre seyreltin. buz üzerinde tüpler yerleştirin.
    2. Önceden takılı filtre kartları ile tek odalarına slaytlar yerleştirin ve bir Sitosantrifüj içine bu yerleştirin.
    3. Her bir oda ve filtre kartına FACS tampon 100 ul ekle ve 4.52 x g'de 2 dakika boyunca her dönerler.
    4. Her bir oda ve filtre kartına 100 ul hücre ekleyin ve 2 dakika boyunca 4.52 xg'de hücreleri dönerler.
    5. Dikkatle odalarından slaytlar kaldırmak ve miyeloperoksidaz (adım 1.4), esterazlar (adım 1.5) ya da Mayıs-Grünwald Giemsa (adım 1.6) ile boyamadan önce slaytlar hava kurutun.
  4. Immünofloresan için Miyeloperoksidaz boyama
    1. 2 dakika için çözelti ve daha sonra slaytlar hava kuru: aseton (1: 1:) soğuk metanol slaytlar daldırılmasıyla slaytlar üzerinde hücreleri saptamak.
    2. Bir ci çizmek, hücreleri içeren slayt alanına sıvı sınırlandırmak içinSu tutmayan kalem kullanarak hücrelerin etrafında Dairesel.
    3. 10 dakika boyunca soğuk PBS çözeltisi 200 ul hücre durulayın.
    4. normal eşek serumu, 10 ul saflaştırılmış anti-CD16 / 32 antikorları, 10 ug / ml içeren% 3 BSA / PBS tampon 200 ul hücre bloke eder.
    5. (% 3 BSA / PBS tamponu içinde 20 ug / ml'ye seyreltilmiş), anti-fare miyeloperoksidaz 200 ul uygulanır. bir nem odası 4 ° C'de hücreler O / N inkübe edin.
    6. Soğuk% 0.1 BSA / PBS 200 ul hücreleri yıkanır.
    7. % 3 BSA / PBS tamponu içinde 1/250 oranında seyreltilen anti-keçi IgG antikorlarının 200 ul uygulanır. bir nem odası, oda sıcaklığında 2 saat süre ile inkübe hücreleri.
    8. soğuk PBS içinde iki kez% 0.1 BSA / PBS tampon 200 ul hücreleri 3 kez yıkayın.
    9. Oda sıcaklığında 2 dakika boyunca (1 ug / ml bir son konsantrasyona kadar), PBS içinde 1 / 1,000 seyreltilmiş Hoechst 200 ul hücre çekirdekleri leke.
    10. su ile slaytlar yıkayın ve mountin önce kurumaya onlara izinörn. hücrelere orta 1 montaj bir damla uygulayın, slayt üzerine bir kapak cam bir kenarını yerleştirin ve dikkatlice forseps kullanarak hücreleri üzerine indirin. yavaşça kapak camına basın herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için.
  5. esteraz sitokimya
    Not: RT Pre-sıcak tüm reaktifler.
    1. Sabitleme hazırlık
      1. 2.5 sitrat solüsyonu, aseton, 6.5 ml bir cam şişe için 0.8 mi% 37 formaldehid ilave, sitrat-aseton-Formaldehit (CAF) solüsyonu hazırlamak. İyice karıştırın ve 4 ° C'de saklayın.
    2. Naftol AS-D kloroasetat esteraz (CAE) aktivite deneyi
      1. 37 ° C'ye ısınmaya deiyonize su.
      2. 50 ml'lik bir tüp içinde, boya çözeltisinin 1 ml sodyum nitrit çözeltisi 1 ml. İyice karıştırın ve 2 dakika bekletin. Ekle önceden ısıtılmış deiyonize su, 40 mL, 5 pH 6.3 tampon maddesi konsantresi ml naftol AS-D kloroasetat çözeltisi 1 mi. Mix ve bir Coplin kavanozun içine aktarın.
      3. üzerine hücreleri düzeltmekSlaytlar CAF çözeltisi (adım 1.5.1.1 bakınız) 30 saniye için (bakınız Bölüm 1.3) ve iyonu giderilmiş su ile 45 saniye boyunca slaytlar yıkayın.
      4. Aşama 1.5.2.2 hazırlandı çözeltisi içine slaytlar aktarın ve ışıktan korunan bir nem odası içinde 30 dakika süreyle 37 ° C'de inkübe slaytlar.
      5. slaytlar kurutun ve daha sonra 2 dakika boyunca iyonu giderilmiş su içine batırılarak ile durulayın.
      6. Hematoksilin çözeltisi damlatılır ve 1 dakika için onları kuluçka hücreleri karşıt.
      7. nötr su (pH 7) ile slaytlar yıkayın ve kurumaya onlara izin. hücrelere orta 2 montaj bir damla uygulayın, slayt üzerine bir kapak cam bir kenarını yerleştirin ve dikkatlice forseps kullanarak hücreleri üzerine indirin. yavaşça kapak camına basın herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için.
    3. Alfa-Naftil butirat esteraz (BOU) aktivite deneyi
      1. kullanımdan önce 37 ° C ye ısınmasına α-naftil butirat çözeltisi.
      2. Sodyum sirke bir tablet seyreltiniyonu giderilmiş su 6.25 ml ayin.
      3. 50 ml'lik bir tüp içinde bir sodyum nitrit, tablet 1.5 ml çözelti ve Pararosaniline 1.5 ml çözelti ilave edin. İyice karıştırın ve solüsyon 5 dakika bekletin. fosfat tamponlu çözelti 40 ml çözelti Ek. dikkatli bir şekilde 10 N NaOH damla damla eklenerek pH 6'ya getirin. , Α-naftil butirat çözeltisi 5 ml tam çözüm karıştırmak ve Coplin kavanoza aktarın.
      4. Oda sıcaklığında CAF çözeltisi kullanılarak 10 saniye boyunca slaytlar üzerine hücreleri düzeltmek ve deiyonize su ile 45 saniye boyunca durulayınız.
      5. Aktarım ışıktan korunması ise aşama 1.5.3.2 hazırlanır ve bir nemlilik bölmesi içerisinde 37 ° C'de 1 saat boyunca birlikte inkübe edildi çözeltisi içeren Coplin kavanoza kayar.
      6. 2 nötr suda dakika (pH 7) ve hava-kuru için slaytlar durulayın.
      7. slayt birkaç damla eklenmesiyle metilen mavi solüsyonla hücreleri karşıt ve 4 dakika için inkübe edilir.
      8. deio slaytlar daldırın2 dakika boyunca su immünize ve havada kurumaya izin verin. Slaytlar monte hücrelere orta 2 montaj bir damla uygulamak için, slayt üzerine kapak cam bir kenarını yerleştirin ve dikkatlice forseps kullanarak hücreleri üzerine indirin. yavaşça kapak camına basın herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için.
  6. Mayıs-Grünwald Giemsa (MGG) boyama
    1. 3 dakika Mayıs-Grünwald çözeltisi içeren bir Coplin kavanoza slaytlar daldırarak (bölüm 1.3 hazırlanan) hücreleri leke.
    2. 1 dakika boyunca pH 6.8 tampon çözeltisi içeren bir Coplin kavanoza slaytlar aktarın.
    3. 10 dakika süre ile (pH 6.8 tampon çözeltisi içinde 1/20 seyreltilmiş) Giemsa R çözeltisi içeren bir Coplin kavanoza yerleştirilmesiyle, slaytlar Leke. 10 saniye boyunca, nötr su (pH 7) ile slaytlar yıkayın.
    4. Drenaj ve slaytlar hava kurutun. hücreleri üzerine orta 2 montaj bir damla uygulayarak slaytlar monte edin. slayt üzerine kapak cam bir kenarını yerleştirin ve dikkatle üzerinde düşürmekhücrelere forseps kullanılarak. yavaşça kapak camına basın herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için.

Vivo Geliştirme 2. ve Akut Lösemi Karakterizasyonu

Not: Dört haftalık dişi konjenik C57BL / 6J-Ly5.1 fareleri (steril bir ortamda, örneğin,) belirli bir patojen içermeyen koşullar altında tutuldu. 5 ila 6 haftalık iken farenin enjekte edilmiştir.

  1. C1498 hücreler damar içine enjeksiyonu
    1. pipetleme süspansiyonlar kültürlenen C1498 hücreleri hasat. 10 dakika boyunca 350 xg'de 50 ml tüp ve santrifüj hücreleri aktarın. Iki kez soğuk PBS ile 10 ml hücre yıkayın ve PBS içinde 10 7 hücre / ml hücre süspansiyonu hazırlamak. enjeksiyon gerçekleştirmeden önce buz üzerinde hücresel süspansiyon yerleştirin.
    2. Bir süzgeç fare yerleştirin ve bir laminer akış kaputu steril koşullar altında enjeksiyon gerçekleştirin.
    3. içine hücreleri enjekte etmek için bir şırınga ile bir 29G iğne kullanınKuyruk ven. uzak ucunda kuyruk kavrayın ve% 70 etanol batırılmış bir gazlı bez sünger ile dezenfekte edin. Şırınga içinde hiçbir hava kabarcığı olmadığından emin olmak için kontrol edin ve ardından yavaşça kuyruk damar içine C1498 hücre süspansiyonu 100 ul (10 6 hücre) enjekte edilir.
    4. Enjeksiyondan sonra, kuyruk iğne çıkarılır ve enjeksiyon yerinde steril bir gazlı sünger ile basınç uygulayarak herhangi bir kanama kontrolü. önümüzdeki saatler ve günler boyunca onun sağlığını kontrol dikkatle kafesine hayvan dönün ve.
  2. Retro orbital kan toplama
    1. Lösemi hastalığı (ör piloerection, gruptan izolasyon ve indirgenmiş veya kafes içinde herhangi bir hareket) belirtilerini PBS- ve C1498-enjekte edilmiş farelerden davranışını izler.
      NOT: hücreleri enjekte edilir sonra bu, genellikle 17 ila 19 gün arasında meydana gelir.
    2. hemen ötenazi önce, retro orbital kan toplama gerçekleştirmek laminer akış steril koşullar altında (adım 2.2.7 bakınız)kaput ve bir ısıtma lambası altında hipotermi önlemek için.
    3. Anestezi için 10 mg / kg, 150 mg / kg ve ksilazin ketamin kullanın. PBS çözeltisi, 18 ml ksilazin 1.5 ml ketamin ve 0.5 ml seyreltilmesi ile anestezi çözeltisi hazırlayın.
    4. kontrol ve lösemik fareler anestezi. 26G iğne kullanılarak fare 10 gramı başına anestetik çözeltisi 200 ul bir intraperitoneal enjeksiyon ve 1 ml şırınga ile devam edin. Anestezi onaylamak için pedal refleks kaybı olup olmadığını kontrol edin.
    5. Gözün medial canthus içine kılcal tüp takın. Kan kılcal tüpe orbital sinüsten yükselecek. nazikçe steril bir gazlı sünger ile gözün üzerine basınç uygulayarak kanamayı kontrol.
      Not: Kan, 100 ila 200 ul bir hacmi bu teknik kullanılarak elde edilebilir.
    6. bir EDTA tüpe kan toplayın ve mononükleer hücreler izole önce buz üzerinde örnek saklayın.
    7. servikal dislokasyon kullanarak fare Euthanize veorganları (bölüm 2.3) izole geçin.
  3. Organlar ve hücreler izolasyon
    1. organlar izolasyon
      1. Bir plastik kartındaki sırtına ötenazi fare yerleştirin ve organ izole edilmesini kolaylaştırmak için hayvanın ayaklarını pin iğne kullanın. bir kesi yapmadan önce% 70 etanol kullanarak fare dezenfekte edin.
      2. Steril makas kullanarak, boyun, karın deriden ventral kesi yapmak. karaciğer erişmek için karın duvarından kesti. göğüs kafesi ve akciğerler erişmek için diyafram üzerinden kesin. tarafına bağırsak hareket ettirin ve steril makas ve forseps kullanarak dalak çıkarın.
      3. Kemik iliği izole etmek için, steril makas kullanarak eklemin üzerinde uyluk kemiklerinin üstündeki bacaklarını kesti. hafifçe çekerek femur tibia ayırın ve forseps ve makas kullanılarak kemiklerden cilt ve kasların çıkarın.
      4. gibi soğuk PBS içeren 50 ml'lik bir tüp içinde, her organ ve kemik yerleştirin ve buz üzerine yerleştirin.
    2. organlardan hücrelerin izolasyonu
      1. hücreleri parçalayarak önce dalak tartın. Mekanik olarak 50 ml bir tüp içinde, bir şırınga pistonu kullanarak 70 mikron süzgecinden bastırarak dalak, akciğer ve karaciğer bozabilir ve soğuk PBS ile 30 ml hücreleri toplamak.
      2. , Kemik iliği hücreleri toplamak buz üzerinde bir Petri kabındaki femur ve tibia koymak, steril makas kullanarak ekstremitelerde kesilmiş ve soğuk PBS 5 ml içeren 10 ml şırınga bağlı bir 26G iğne sokarak kemik iliği dışarı floş.
        1. iğne / şırınga yoluyla hücre süspansiyonu geçirerek kemik iliği hücreleri bozabilir ve 50 ml'lik bir tüp içinde 70 mikron süzgecinden hücre süspansiyonu filtre.
      3. Santrifüj 10 dakika boyunca 350 xg'de organ ve kemik iliği hücreleri her içeren tüpler her. Süpernatant atılır ve 2 lizis tamponu (1 x) ve hücre akciğer ve kemik iliğinden toplanan hücreler tekrar süspansiyonhafifçe yukarı ve aşağı karışım pipetleme liziz tamponu (1x), 5 ml karaciğer ve dalak izole s. soğuk PBS ile 50 ml tüpler doldurun.
      4. 10 dakika boyunca 350 xg'de hücreleri Santrifüj. Akış sitometrisi analizi için FACS tamponu hücrelerin yeniden süspanse veya mikroskop için hücreleri hazırlamak için. tripan mavisi ile boyanarak, bir Thoma hücre sayım odası kullanarak hücreleri sayın.
  4. flow sitometri analizi için organlardan izole hücreler ile hücre yüzeyinin boyanması
    1. Boru sitometri akışı, etiket FACS tampon 100 ul saflaştırılmış anti-CD16 / 32 antikorları, 10 ug / ml organ izole edilmiştir 10 6 hücre içinde.
    2. 10 6, kemik iliği hücreleri için FACS tamponu içinde seyreltilmiştir, aşağıdaki antikorlar veya bunların kombinasyonlarından antikorların ve bunlara karşılık gelen izotip kontrolleri 100 ul: Anti-CD11b / anti-CD3 (1) / anti-Ly6C / anti-Ly6G (2), Anti-B220 (1) /anti-CD45.2/anti-CD19, anti-CD115 / anti-CD3 (1) / birTi-Ly6C / anti-Ly6G (2), anti-CD45.2 anti-Ly6G (2), bir anti-CD11b, anti-CD115 ya da tek başına dengeleme ayarları için bir anti-CD 19.
    3. splenosit için FACS tamponu içinde seyreltilmiştir 100 Aşağıdaki antikor ul ve bunlara karşılık gelen izotip kontrolleri ekleyin: / anti-CD3 (1) / anti-Ly6C / anti-Ly6G (2), anti-B220, anti-CD11b bir arada (1 ) /anti-CD45.2/anti-CD19 anti-CD45.2 anti-Ly6G (2), bir anti-CD11b veya dengeleme ayarları için bir anti-CD 19.
    4. akciğer ve karaciğer hücrelerine, 100 anti-CD45.2 antikorlarının ul ve FACs tamponunda 1/100 seyreltilmiş karşılık gelen izotop denetimi ekleyin.
    5. 4 ° C'de 30 dakika boyunca hücre tüm çözümleri inkübe edin.
    6. Her tüpe FACS tamponu 2 ml ekleyerek hücreleri yıkanır. 350 xg'de 5 dakika boyunca tüpleri Santrifüj ve pipetleme süpernatant atarak. Bu adımı bir kez daha tekrarlayın.
    7. soğuk PBS 500 ul etiketli tekrar süspansiyon hücreleri. hücreleri buz üzerinde tutun ve ac için flow sitometri gerçekleştirmeden önce ışıktan korunmalıdıredinirken ve analizi 10.
  5. flow sitometri analizi için kan tek-çekirdekli hücreleri ve immünofloresan boyama izolasyonu
    1. protokolü başlamadan önce, RT'ye ayıran çözüm ön ısıtmak.
    2. mikrosantrifüj tüpüne (adım 2.2 elde 100 ila 200 ul), ve çözelti hacmi 500 ul kadar PBS / 1 mM EDTA çözeltisi ilave bir kan örneği aktarın. Dikkatlice 30G iğne ve 1 ml şırınga ile kan ihtiva eden çözelti altında çözüm ayrılması 500 ul tabaka. kan ve ayırma çözüm karışmaz.
    3. Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca (fren olmadan) 800 x g'de santrifüjleyin tüpler. Santrifüj işleminden sonra, bir pipet kullanılarak, hücresel bir halka (opak beyaz tabaka) toplar. Bir mikrosantrifüj tüp hücreleri aktarın.
      NOT: opak beyaz tabaka lenfositler yanı sıra monositler içerir ve alt katmanı arasında görünür - ayırma çözeltisi - ve üst katmanda.
    4. 1 ml ilave edilirPBS çözeltisi, santrifüj 10 dakika boyunca 350 xg'de tüp. FACS tampon 600 ul tekrar süspansiyon hücreleri.
    5. (100 ul her biri) saflaştırılmış anti-CD16 / 32 antikorları, 10 ug / ml ilave edilir ve altı farklı tüplere hücre süspansiyonu 100 ul dağıtın.
    6. FACS tamponu içinde seyreltilmiş, aşağıdaki antikorlar ya da bunların ilişkili izotip kontrolleri 100 ul hücreleri etiketlemek: (1) / anti-B220 (1) /anti-CD45.2 ve anti-Ly6C / anti-CD115, anti-CD3 bir kombinasyonunu /anti-CD45.2 veya anti-CD45.2 tek başına dengeleme ayarları için, anti-CD115.
    7. 30 dakika boyunca 4 ° C'de tüpler her inkübe edin.
    8. Her tüpe FACS tamponu 2 ml ekleyerek hücreleri yıkanır ve daha sonra 350 x g'de 10 dakika boyunca santrifüj tüpleri ve bir pipet kullanılarak süpernatan atılır.
    9. 500 ul soğuk PBS etiketli hücreleri tekrar süspansiyon. Buz üzerinde hücreleri tutun ve toplama ve analiz 10 flow sitometri gerçekleştirmeden önce ışıktan korunmalıdır.
  6. için mikroskop kemik iliği hücre süspansiyonları hazırlanması
    1. Bölüm 1.3'de açıklanan adımları izleyin, ancak adım 1.3.1, 10 dakika süreyle 72,26 xg'de her odasına hücreleri 10 5 kemik iliği hücreleri kullanın ve adım 1.3.4 yılında, dönerler.
  7. Esteraz aktivite deneyleri kemik iliği hücreleri kullanılarak
    1. Kemik iliği esteraz sitokimya deneyleri gerçekleştirmek için, adım 1.5.3.7 1.5 devam edin.
  8. kemik iliği hücrelerinin Mayıs-Grünwald Giemsa boyama
    1. Kemik iliği hücreleri boyamak için, Bölüm 1.6'da tarif edilen protokol takip fakat adım 1.6.1 içinde, 5 dakika süre ile Mayıs-Grünwald çözeltisi slaytlar inkübe edin.

Representative Results

C1498 fare modeli karakterize etmek için, iki büyük adımlarla ilerledi. İlk olarak, C1498 hücreleri in vitro olarak bunların hematopoietik kökenli ve olgunlaşma aşamasına (Şekil 1) belirlenmesi için karakterize edildi. Bu hücreler daha sonra konjenik farelere enjekte edildi ve indüklenen lösemik hastalığın niteliği, farklı özellikleri belirlemek için değerlendirilmiştir: lösemik hücre infiltrasyonu, bunların fenotip, kemik iliğinde hematopoietik hücrelerin bir miktarının (olgun ve progenitorlar / ön), frekans C1498 hücreleri ve kan olgun hematopoietik hücrelerin ve organ şişme değerlendirilmesi (dalak, karaciğer ve akciğer) ve hücresel bileşimin.

In vitro C1498 hücresi fenotipleri karakterize etmek için, hücreler, hematopoietik öncüler ve olgun hücreleri (Tablo 1) ile ifade edilir moleküllerine karşı yöneltilen antikorlar ile etiketlenir ve sonuçlar akış cytomet kullanılarak analiz edilmiştirry. C1498 hücreleri Mac-1 (CD11b / CD18) (~% 7), B220 (>% 25) hücre yüzey ifadesi için pozitiftir ve bunlar CD3ε, T-hücre reseptör (TCR) Vβ zincirleri ve Mac hücre içi ifadesi sergilemiştir 3 (Şekil 2A ve B). hücreler, hücre yüzey markörlerinin Ly6G, Ly6C, CD115, CD21 / CD35, CD19, CD3, CD4, CD8, NK1.1, pan-NK molekülleri için negatif ve CD4 ve CD8 hücre içi ifadesi için (veriler gösterilmemiştir) . Daha sonra hematopoietik kök hücreler ve progenitorlar (Tablo 1) işaretleri için incelenmiştir. Ayrıca, CD117, CD34, Sca-1, CD150 ve CD16 / 32 hücre yüzey ifadesi için negatif idi (veriler gösterilmemiştir). Bu lösemili hücreler daha sonra yapışma, antijen sunumu ve ko-stimülatör moleküllerin ekspresyonunu belirlemek için test edildi. Hücreler yüzey belirteçleri LFA-1 (CD11a / CD18), CD44, CD31 (PECAM-1), ve H-2D B ifade, CD80, CD86 ve CD274 (veriler gösterilmemiştir) MHC sınıf II negatif idi. C1498 hücreleri, Therefore miyeloid (Mac-1, Mac-3) ve lenfoid işaretleri (B220, CD3, TCR) ifade edilmektedir.

daha iyi hematopoetik soy karakterize etmek için myeloperoksidaz ifade immünofloresan mikroskopi kullanılarak değerlendirildi. Tüm hücreleri onların miyeloid kökeni (Şekil 3A) doğrulandı miyeloperoksidaz, pozitif idi. Hücrelerin büyük bir kısmı, aynı zamanda α-naftil butirat esteraz (Şekil 3B, sol panel) için pozitif boyandı, ve bazıları naftol AS-D kloroasetat esteraz (siyah oklar) (Şekil 3B, sağ panel) için boyandı. Sonuçlar hücrelerin monositik ve granülositik hücrelerin karışımları ihtiva göstermektedir. Mayıs-Grünwald Giemsa boyama yapıldıktan sonra, C1498 hücreleri, yüksek Nucleo-sitoplazmik oranı ile çekirdeğinde 3 ila 5 nükleol, perinükleer halo, çok sayıda vakuoller ve bazofilik sitoplazma (Şekil 3C bir patlama şeklinde bir yapıya görüntülemek için gözlendi ). thUS, C1498 hücre çizgisi monoblastlardan ve miyeloblast oluşmaktadır.

C1498 hücreleri (CD45.2 +), daha sonra damar içine CD45.1 + farelere enjekte edildi. fareler hücreleri enjekte edildi 17 ila 19 gün sonra yenik düştü. hastalığın öldü önce lösemi türü analiz edilebilir, böylece bu fareler kurban edildi. PBS enjekte edildi Kontrol fareleri, karşılaştırma için, aynı zaman noktalarında analiz edilmiştir. C1498 hücre enjekte edilen fareler May-Grünwald Giemsa lekeleme (Şekil 4A) yapıldı sonra hücrelerin yüksek benzeri bir görünüm ile gösterildiği gibi, kemik iliği içine C1498 hücrelerinin yoğun infiltrasyonu gösterilir. Onlar da akut miyelomonositik lösemi özelliğidir monoblastik ve miyeloblastik hücrelerin birikimini gösteren, onların monosit ve granülositik fenotipleri (Şekil 4B ve C) korudu.

dmedüller hematopoetik hücreler sayılar, lösemik hücreler işgali, CD45.2 + C1498 hücreleri, B lenfositik, monositik ve (ataları, öncüleri ve olgun hücreler dahil) granülositik nüfus aşağıdaki düşüktü immunofluorescent boyama ve sitometri analizi çok parametrik akışını kullanarak ölçüldü olmadığını etermine. Lösemili hücrelerin hematopoietik hücrelerin% 36 16 temsil (veriler gösterilmemiştir). diğer hücre tipi tüm granülositik hücrelerin ortalama 3 kat ortalama olarak 4 kat, B hücresi alt-gruplar için ortalama 5-kat (PBS enjekte edilmiş farelerde daha C1498-enjekte edilmiş farelerde önemli ölçüde daha düşük sayıda mevcuttu C monositik alt-gruplar için) (Şekil 5A).

Lösemi ve kontrol fare kan örneklerinde tek çekirdekli hücrelerin frekanslarının bir araştırma da lenfositler (Şekil 6A) arasında benzer bir yüzdesi, ancak monositik daha yüksek bir frekans ihtiva ettiğini gösterdive lösemi hücreleri. Bu özellikler, akut miyelomonositik lösemi 11 (Şekil 6B) temsil etmektedir.

Akut miyelomonositik lösemi 12 diğer özellikleri arasında, C1498-enjekte edilen fareler şişmiş karaciğerleri (hepatomegali), akciğer ve dalak (splenomegali) (Şekil 7A) ile sunulmaktadır. CD45.2 + C1498 hücrelerin çeşitli frekanslar immünofloresan boyama ile bu organlarda tespit ve analiz (Şekil 7B) akış sitometrisi edildi. Splenomegali sızmış monositlerin yüksek sayıda kaynaklanabilir, biz de dalak nüfus oranlarını tahmin. B lenfosit, monositik hücreler ve granülositik hücre fraksiyonlarının sayılar 2 kat ortalama, önemli ölçüde daha büyük olan, 2.5 kat, 3 kat, sırasıyla kontrol dalak (Şekil 7C) göre lösemi dalaklarında.

İnce sayfa = "1"> Şekil 1
In vitro kültürlü C1498 Cep Hatları ve Akut Lösemi in vivo Tanımlar Karakterizasyonu için Kurma Protokolün. Hematopoetik soy ve doku kültüre C1498 hücrelerinin farklılaşma aşamasında Şekil 1. şematik Temsil ilk belirlendi. C1498 Hücreler daha sonra, akut lösemi gelişiminin uyarılması için konjenik farelere enjekte edildi. kemik iliği, periferik kan, dalak, karaciğer ve akciğer dokularında izolasyonu C1498 hücreleri infiltrasyonu sonra frekansları, fenotipleri ve morfolojik değişikliklerini saptamak amacıyla yapılmıştır. IV: Damar MGG:. Mayıs-Grünwald Giemsa bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.

reklam / 54270 / 54270fig2.jpg "/>
In vitro kültür. Nokta diyagramları ve hücre yüzeyi (A), ve hücre içi (B) histogramları sitometrisi Örnek akış sonra C1498 Hücreler Şekil 2. fenotipik analizi hematopoetik olgun hücre farklılaşması ile ilişkili moleküller gösterilmiştir C1498 eksprese. C1498 hücreler, hücre yüzeyi CD11b, CD18 ve B220 işaretleri ya da bunların izotip kontrolleri için spesifik olan floresan antikorlar kullanılarak kültürler hasat yıkandı ve etiketlenmiştir. hücre içi boyama için, hücreler, sabit geçirgenleştirildi ve Mac-3, CD3ε karşı antikorlar ve TCR (T hücre reseptörü) Vβ zincirli ya da izotip kontrolleri ortak bir epitop ile etiketlenmiştir. Analizler, canlı hücreleri ile yolluk kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

ntent "fo: keep-together.within-page =" 1 "> Şekil 3,
Şekil 3. Fonksiyonel ve Kültür C1498 Hücrelerinin Morfolojik Karakterizasyonu. C1498 hücre kültürlerinden hasat edilir ve mikroskopi için slaytlar üzerinde santrifüjlenmiştir. (A), miyeloperoksidaz ifadesi için boyama immünofloresan kullanılarak gerçekleştirildi. (B) Sitokimyasal reaksiyonlar α-naftil butirat esteraz (BOU) ve naftol AS-D kloroasetat esteraz analiz etmek için kullanıldı (CAE) C1498 hücreleri faaliyetleri. Hücreler, kahverengi, kırmızı, mor-geniş, sitoplazmik granüller sırasıyla gözlenmiştir her etiket için pozitif olarak kabul edilmiştir. C1498 hücrelerinin (C) May-Grünwald Giemsa (MGG) boyama. Her boyama deney için, mikroskop objektif büyütme gösterilir. Her bir görüntü, üç ayrı deneyi temsil etmektedir.large.jpg "target =" _ blank "> bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 4,
Şekil 4. PBS ve Kemik İliği morfolojileri Fare C1498 enjekte. Kemik iliği hücreleri PBS ve C1498 hücre enjekte edilen farelerin izole ve mikroskopi için slaytlar üzerine santrifüj edildi. (A) Mayıs-Grünwald Giemsa (MGG) boyama. (B ) α-naftil bütirat esteraz (NBE) ve kloroasetat esteraz (CAE) işlevleri sitokimya kullanılarak değerlendirildi AS-D (C) naftol. Panel A'da, bant (olgunlaşmamış) veya bölümlenmiş (olgun) nötrofiller PBS enjekte edilmiş farelerde daha C1498-enjekte edilen farelerin kemik iliği daha az görünür. Panel B, ve C kontrol kemik iliğinde görülen sayılar göre lösemi kemik iliği monositik ve granülositik hücrelerin birikimi olduğunu gösterir. Herşeymikroskopik analizler 100X büyütme objektif kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 5,
Şekil 5. PBS ve Medüller Populasyonlarının Kantitatif Analiz Fare C1498 enjekte. Kemik iliği hücreleri PBS ve C1498 hücre enjekte edilen farelerin izole ve hücre sayımı yapıldı sonra tahmin edilmiştir. Farklı hücre popülasyonlarının frekansları immün ve sitometri analizi canlı hücre kapı akış sonra belirlenmiştir. (A), B hücresi alt-gruplar B lenfositler (B), granülositik hücrelerin olgun pro-B hücreleri kademeli olarak CD19 + B220 + hücrelerinin dahil öncüleri bir yer ve CD11b + Ly6G + soy, - CD3. CD115 + ve monosit aşamalarını olgun atası hücreleri dahil - nd olgunlaşmamış ve olgun granülositler (C) monositik alt kümeleri CD3 olarak tanımlanmıştır. n = 7 fare / grup, ve veri = ortalama ± SEM gösteren histogramlar olarak sunulmaktadır. *** P <0.0001 ve ** p <0.01, PBS ve C1498 enjekte fareler karşılaştıran Student en t testi. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 6,
PBS ve Mononükleer Hücre Alt Grupları Şekil 6. Kan Analiz fareler C1498 enjekte. Sırasıyla, PBS ve C1498 CD3 + ve B220 + hücrelerinin olarak tanımlanan (a) T ve B limfosit yüzdeleri, dot sitometrisi lekeleri Örnek akış hücresi enjekte. ve CD115 + LY6C yüksek hücre - fareler (B) C1498 lösemik ve kontrol monositik hücre frekansları (PBS) farenin CD115 + LY6C analiz edilmesi ile belirlenmiştir. Analiz canlı hücreleri yolluk gerçekleştirildi. Lösemi ve kontrol fareleri karşılaştırmak için, C1498 hücreleri hariç tutulmuştur + CD45.2. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 7,
Lösemi ve Kontrol Farelerde Dalak Populasyonlarının Şekil 7. tahmini. (A), lösemi farelerde şişen, karaciğer, akciğer ve dalak Örnek fotoğraf kontrol fareleri ile karşılaştırıldığında. Dalaklar, doku bozulması, aşağıdaki toplanır ve tartılır ve splenositler sayıldı. (B) Histogram fark lösemik hücre frekansları temsil edenerent organları immün CD45.2 + hücreleri için yapıldı ve sonuçlar flow sitometri kullanılarak analiz edildikten sonra. (C) dalak B, immün sonra granülositik ve monositik hücre sayıları tahminleri ve analiz yolluk akım sitometri canlı CD19 + B220 belirlemek için yapılmıştır + CD3 - CD11b + Ly6G + CD3 - CD11b + Ly6C - ve CD3 - CD11 b + Ly6C yüksek hücreler. akciğerler, dalak ve karaciğerleri için gösterilen ölçek çubukları 1 cm göstermektedir. .. 5 = - 8 fare / grup, ve veri ortalama ± SEM olarak histogramlar temsil edilir * p <0.05; ** p = 0.0033, PBS ve karşılaştırma Student t testi en C1498-enjekte edilen fareler , lütfen Bu rakamın büyük halini görmek için buraya tıklayın.

hücre Tipi Zar veya hücre içi moleküller
Öncüleri ve Olgun hücreleri
NK hücreleri NK1.1 + pan-NK +
NKT hücreleri NK1.1 + pan-NK + TCR Vbeta + (8.2), CD3 +
T lenfositleri TCR Vbeta +, CD3 +, CD4 +, CD8 +
B hücreleri öncüleri ve B lenfositleri B220 + CD19 +, CD21 / + 35
granülositik öncüleri ve granülositler Ly6G + Mac-1 + CD11b +
monositik ön-maddeleri ve monosit / makrofajlar CD11b +, Mac-1 +, Mac-3 +, CD21 / + 35, CD115 + Ly6Chi
atalarıdır
multipotent atalarıdır CD117 + Sca-1+ CD34 + (Lin CD150-)
lenfoid hazırlanmış multipotent progenitörler CD117hi Sca-1hi CD127 + (Lin-)
ortak lenfoid atalarıdır CD117lo Sca-1LO CD127 + (Lin-)
Ortak miyeloid atalarıdır CD16 / 32lo CD117 + CD34int (Lin Sca-1-)
granülosit-makrofaj progenitörler CD16 / 32hi CD117 + CD34hi (Lin Sca-1-)
megakaryosit-eritroid atalarıdır CD16 / 32lo CD117 + CD34lo (Lin Sca-1-)
Hematopoetik kök hücreler CD117 + Sca-1 + CD150 + (Lin CD34)

Tablo Hematopoetik hücre soylarının ve Farklılaşma 1. İşaretleyiciler.
CD: farklılaşma küme; Lin: Olgun hücrelerin belirteçleri; lo:Düşük ifadesi; hi: yüksek ifade; int: ara ifade; NK: doğal öldürücü hücreler; TCR: T-hücresi reseptörü.

Discussion

Daha önce yapılan çalışmalarda, C1498 hücre çizgisi, akut granülositik 5, 6 ya da miyelomonositik NKT 7 hücre lösemi bir teşvik edici olarak tanımlanmıştır. Ancak literatürde demonstrasyon veri yok veya eksik ya idi. Burada sunulan protokol gibi flow sitometri, immünofloresans, MGG boyama ve sitokimyasal tahlilleri gibi farklı teknikler, kültürlü C1498 hücreleri karakterize etmek ve onlar enjekte edildikten sonra farelerde olduğu lösemi doğasını belirlemek için kullanır.

Bu immün sonra in vitro kültür C1498 hücrelerinde fenotiplenir ve sitometrisi analizi yapıldı akışındaki Bu hücreler daha önce literatürde 6,7 tarif edilmiştir birkaç hücre yüzeyi hematopoietik belirteçleri olmasından ötürü, bazı sınırlamalar görülmektedir. Bizim sonuçları ile uyum içinde, Labelle ve ark. Akış cytomet kullanarak C1498 hücreleri üzerinde olgun TCR hücre yüzey ekspresyonunu dikkat etmediry boyama. Onlar CD3ε ve TCRVβ8.2 mRNA 7 algılandı sonra ancak, bir NKT hücre hattı olmalarını kabul. Ayrıca hücreler (>% 70) çoğu TCRVβ zincirleri ve CD3ε moleküllerin hücre içi ekspresyonunu görülmektedir, ancak Mac-3 molekülünün birlikte hücre içi ekspresyonu, aynı zamanda orada dolayı hematopoietik soyların belirlenemedi.

Myeloperoksidaz, MGG boyama ve sitokimya kullanılarak fonksiyonel esterazları analiz değerlendirmeler C1498 hücre hattının bir miyeloid kökeni vardı ve monoblastlardan ve miyeloblast oluştuğunu göstermiştir. Bu sonuçlar boyama flow sitometri analizi elde edilmiştir, Mac-3 + hücrelerinin yüzdesi ile uyumlu idi. Bu adımlar önemli deneyler temsil nicel olmamasına rağmen yapılacak. Aslında, hiç ya da F ifade eden hematopoietik hücrelerin soyu ile farklılaşma aşamasında karakterize etmek için en iyi, mevcut yöntem, şimdiye kadar, devamew spesifik fenotipik belirteçler.

boyanma Flow sitometri C1498 hücreleri damardan enjekte edildikten sonra congenic farelerde akut lösemi gelişimini göstermek için yardımcı oldu. Periferik kan ve çeşitli organlarda sızmış CD45.2 + C1498 hücreleri izole edildi ve bunların frekansları belirlenmiştir. Niceleme da immünofenotiplendirme sonra doğal medüller ve dalak hücreleri analiz etmek için yapılmıştır. Onlar birkaç hematopoetik belirteçler ifade edilen C1498 hücre fenotipi organlarda incelendiğinde zaman Sınırlamalar rastlanmıştır (bunlardan sadece bir kaç B220 + idi). gözlenen akut lösemi doğasını, Mayıs-Grünwald Giemsa boyama ve monositik faaliyetlerinin analizini tanımlamak ve granülositik esterazlar kemik iliği kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Sonuçlar C1498 hücreleri miyelomonositik lösemi başlangıcı açığa onların miyeloblastik ve monoblastik morfolojisi ve fonksiyonu korunmuş olduğunu göstermiştir.

(örneğin, kan, kemik iliği, dalak hücreleri) her prosedür sırasında buz üzerinde tutulmalıdır CD115 molekülünün ekspresyonunu ve akış tarafından algılama korumak için. Hiçbir boyama flow sitometri ve / veya immünofloresan deneyleri, antikorların referans kendi depolama yeniden gözlenmesi durumundacommendations ve seyreltme kontrol edilmelidir. malzemeler / ekipman tablosunda belirtilen referanslar akış sitometri veya immünofloresan uygulamaları için seçilmiştir. Birincil / ikincil antikorlar veya konjuge fluorophores nedeniyle uygunsuz depolama faaliyetlerini kaybetmiş olabilir (örneğin, ışığa veya ısıya maruz kalma), yanlış seyreltme, geniş donma / çözülme veya kontamine tamponlar kullanılması. Onlar düzgün çalıştığından emin olmak için pozitif kontrol çalıştırın. Fare kemik iliği ya da proteinleri eksprese ettiği bilinen dalağından alınan hücreler kullanın. yüksek arka plan ve non-spesifik boyama önlemek için, hücrelerin düzgün yıkanmış ve (Immünofloresan için) yüksek nemde tutulması ve talimat olarak antikorlar seyreltilmiş olduğunu emin olun. doğru örnek arka plan seviyesini belirlemek için izotip kontrol antikoru ve primer antikor için aynı konsantrasyon ve seyreltme kullanın. esteraz sitokimya deneyler için,reaktifler saflaştırılmış fare dalak granülositik (Ly6G +) ve monositik (CD115 +) hücreleri içeren pozitif ve negatif kontrol slaytlar kullanılarak test edilebilir.

Bu çalışmada açıklanan prosedür C1498 hücrelerin enjeksiyonundan sonra farelerde gözlemlenen lösemik özellikleri birçok insan akut miyelomonositik lösemi 11,12 ortak ayırt edici ortak gösterdi. işgal lösemik hücrelerin olgun ve olgun olmayan (progenitör ve öncüler) medüller hematopoietik hücrelerin bir azalma ile sonuçlandı. monositik hücreler gibi C1498 hücreleri, periferik kandaki yüksek frekans (>% 20) bulunmaktadır. Hepatomegali, splenomegali lösemik hücrelerin infiltrasyonu sonuçlandığı gözlenmiştir, ve B lenfositleri ve miyeloid hücrelerde önemli artışlar splenomegali birlikte gözlenmiştir. kan platelet sayıları hematoloji analiz cihazı kullanılarak tahmin edildiğinde trombositopeni gözlenmiştir.

Bu gösteri olduN, in vitro deneyler kullanarak, C1498 hücreleri, çözünebilir faktörleri 13 salgılayan normal murin hematopoez inhibe. Birkaç tümörlü fare modellerinde, (monositik ve granülositik hücreleri dahil olmak üzere), olgun myeloid hücreleri, anti-tümör spesifik T hücresi aktivasyonunu ve çoğalmasını 14 inhibe eden dalak, kemik iliğinden geçirmek için gösterilmiştir. Bu durumda, kemik iliği gözlendi hematopoietik hücrelerin azalma hematopoez ve / veya bunların göç bir eksiklik ya da meydana gelmiş olabilir. Bu ikinci bir mekanizma, periferik kandaki monositoz varlığının veya dalakta büyütülmüş miyeloid fraksiyonların gözlem açıklayabilir. Hücreler geliştirilmiş dalak hematopoez türemiş olabileceğini de düşünülebilir. Olgun B ön-maddeleri 15 lenfositler gibi Gerçekten de, sabit durum koşulları altında, dalak B hücrelerinin, bazı alt-gruplar tespit edilmiştir. Ayrıca, inflamatuar koşullar altında, medullary kök ve progenitorlar hücreler olgun monositler 16 üretimini uyarmak için dalak taşınmaya gösterilmiştir. Bu protokol bize lösemi gelişiminde katılan ve ek fonksiyonel yanı sıra moleküler deneyleri bunu yapmak için istihdam edilmelidir mekanizmaları ile ilgili sonuçlara varmak için izin vermez. Ancak bu veriler akut miyelomonositik lösemi klinik özellikleri hakkında ayrıntılı bilgi içermektedir ve değerlendirmek ve yeni terapötik ajanların etkilerini anlamak için araştırmacılara yardımcı olacaktır.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
C1498 cell line ATCC TIB 49
C57BL/6J-Ly5.1 Charles River B6.SJL-Ptprc a Pep3 b/BoyCrl
Cells culture reagents
2-Mercaptoethanol, Gibco ThermoFisher Scientific 21985
Fetal Bovine Serum (FBS) ThermoFisher Scientific 10270
HEPES, Gibco (1 M) ThermoFisher Scientific 15630
Non-Essential Amino Acids Solution, Gibco   ThermoFisher Scientific 11140
Penicillin-Streptomycin, Gibco  ThermoFisher Scientific 15140
RPMI 1640 Medium (Gibco, GlutaMAX Supplement) ThermoFisher Scientific 61870
Sodium Pyruvate, Gibco (100 mM) ThermoFisher Scientific 11360
Flow cytometry staining reagents
anti-mouse B220 APC (1) ebiosciences 17-0452 clone RA3-6B2, final dilution 1/100
anti-mouse B220 biotin (2) ebiosciences 13-0452 clone RA3-6B2, 1/400
anti-mouse CD3 eFluor450 (1) ebiosciences 48-0032 clone 17A2, 1/100
anti-mouse CD3 PE (2) BD biosciences 555275 clone 17A2, 1/100
anti-mouse CD3 PE-Cy5 (3) ebiosciences 15-0031 clone 145-2C11, 1/100
anti-mouse CD4 APC (1) ebiosciences 17-0041 clone GK1.5, 1/500
anti-mouse CD4 PE (2) ebiosciences 12-0041 clone GK1.5, 1/200
anti-mouse CD8 biotin (1) ebiosciences 13-0081 clone 53-6.7, 1/100
anti-mouse CD8 eFluor450 (2) ebiosciences 48-0081 clone 53-6.7, 1/500
anti-mouse CD11a biotin ebiosciences 13-0111 clone M17/4, 1/100
anti-mouse CD11b PE  ebiosciences 12-0112 clone M1/70, 1/200
anti-mouse CD16/32 biotin ebiosciences 13-0161 clone 93, 1/400
purified anti-mouse CD16/32 (FcR blocking)  BD biosciences 553141 clone 2.4G2
anti-mouse CD18 biotin (1) ebiosciences 13-0181 clone M18/2, 1/100
anti-mouse CD18 FITC (2) ebiosciences 11-0181 clone M18/2, 1/50
anti-mouse CD19 PE ebiosciences 12-0193 clone 1D3, 1/200
anti-mouse CD21/35 PE ebiosciences 12-0211 clone 8D9, 1/50
anti-mouse CD31 PE ebiosciences 12-0311 clone 390, 1/100
anti-mouse CD34 eFluor660 ebiosciences 50-0341 clone RAM34, 1/20
anti-mouse CD44 PE BD biosciences 553134 clone IM7, 1/50
anti-mouse CD45.2 FITC  ebiosciences 11-0454 clone 104, 1/100
anti-mouse CD49b/Pan NK PE  BD biosciences 553858 clone DX5, 1/50
anti-mouse CD80 biotin ebiosciences 13-0801 clone 16-10A1, 1/200
anti-mouse CD86 biotin ebiosciences 13-0862 clone GL1, 1/200
anti-mouse CD107b (Mac-3) PE ebiosciences 12-5989 clone M3/84, 1/40
anti-mouse CD115 PE ebiosciences 12-1152 clone AFS98, 1/100
anti-mouse CD117 eFluor450 ebiosciences 48-1171 clone 2B8, 1/100
anti-mouse CD127 PE ebiosciences 12-1271 clone A7R34, 1/100
anti-mouse CD150 APC ebiosciences 17-1501 clone 9D1, 1/20
anti-mouse CD274 (PD-L1) biotin ebiosciences 13-5982 clone MIH5, 1/200
anti-mouse Ly-6A/E (Sca-1) PE ebiosciences 12-5981 clone D7, 1/100
anti-mouse Ly-6C APC ebiosciences 17-5932 clone HK1.4, 1/200
anti-mouse Ly-6G  (Gr-1) biotin (1) ebiosciences 13-5931 clone RB6-8C5, 1/400
anti-mouse Ly-6G FITC (2) ebiosciences 11-9668 clone 1A8, 1/50
anti-mouse MHC class I (H-2Db) biotin ebiosciences 13-5999 clone 28-14-8, 1/50
anti-mouse MHC class II (I-A/I-E) PE-Cy5 ebiosciences 15-5321 clone M5/114.15.2, 1/1000
anti-mouse NK1.1 PE BD biosciences 557391 clone PK136, 1/50
anti-mouse TCRVb FITC BD biosciences 553170 clone H57-597, 1/50
streptavidin PE-Cy5 ebiosciences 15-4317    1/200
Immunofluorescence staining reagents
Anti-mouse myeloperoxidase (heavy chain antibody)  Santa Cruz Biotechnology sc-16129 1/10 (20 µg/ml)
 anti-goat IgG (Texas Red coupled antibody) Jackson Immunoresearch 705-076-147 1/250
Normal donkey serum Jackson Immunoresearch 017-000-001
Hoechst solution BD Biosciences 561908 1/1000
Mounting medium 1 (Fluoromount)  Sigma-Aldrich F4680
Acetone VWR  20066
Methanol Merck Millipore 106009
Esterase cytochemical staining reagents
Naphtol AS-D chloroacetate solution Sigma-Aldrich 911
Dye solution (Fast Red Violet LB Base solution) Sigma-Aldrich 912
pH6.3 buffer concentrate (TRIZMAL) Sigma-Aldrich 913
Sodium nitrite solution Sigma-Aldrich 914
Citrate solution Sigma-Aldrich 915
Hematoxylin solution Sigma-Aldrich GHS3
Acetone VWR  20066
Formaldehyde solution, 37% Sigma-Aldrich F1635
α-naphthyl butyrate solution Sigma-Aldrich 1801
Phosphate buffer solution Sigma-Aldrich 1805
Sodium nitrite Tablet Sigma-Aldrich 1809
Pararosaniline solution Sigma-Aldrich 1804
Methylene blue solution Sigma-Aldrich 1808 1/10
mounting medium 2 (Clearmount) Invitrogen 00-8010
May-Grünwald Giemsa staining reagents
May-Grünwald solution RAL Diagnostics 320070
Giemsa R solution  RAL Diagnostics 320310    1/20
pH 6.8 buffer solution RAL Diagnostics 330368
Others materials, reagents and equipment
Ketamine 1000 (100 mg/ml) VIRBAC 3597132111010
Xylazine SEDAXYLAN (20 mg/ml) CEVA
Bovin albumin serum (BSA) powder ThermoFisher Scientific BP671
PBS solution (1x concentrate) ThermoFisher Scientific 14190
Paraformaldehyde (PFA)  Sigma-Aldrich 158127
Saponin  Sigma-Aldrich 47036
Ultra Pure 0.5 M EDTA solution, pH 8.0 ThermoFisher Scientific 15575
Separating solution (Pancoll Mouse) PANBIOTECH P04-64100
Lysis buffer (Red Blood Cells Lysing Buffer) (10x) BD Biosciences 555899 1/10
NaOH 10 N ThermoFisher Scientific SS267
Trypan blue solution (0.4 %) ThermoFisher Scientific 15250-061 1/2
50 ml tube (Falcon) Fisher Scientific 14-432-22
70 µm Cell Strainer (Falcon)  Corning Life Sciences 352350
 Chamber & filter card (EZ Cytofunnel Shandon) Thermo Scientific A78710003
Microscope Cover Glasses, 24 x 24mm Knittel Glass VD1 2424 Y100
Slides (Starfrost - ground edges 90) Knittel Glass VS1137# 077FKB
EDTA Tube Greiner Bio-One 454034
Pasteur Pipette 150 mm (capillary tube) Fisherbrand 1154-6963
26 G needle Terumo NN-2613R
 insulin syringe and needle 29 G Terumo BS05M2913
30 G needle  Becton & Dickinson 304000
Flow cytometry tubes (blue) Beckman Coulter 2523749
Water-repellent pen (Dakopen) Dako S200230
Sharp sterile scissors  Nessi-care SCI-01
Sterile forceps Dominique Dutscher 956506
Thoma cell counting chamber VWR 631-0397
Petri Dishes (Fisherbrand Plastic) ThermoFisher Scientific S33580A
Microcentrifuge tube (1.5 ml) ThermoFisher Scientific 05-408-129
Cylindrical Restrainer 15 - 30 gm Stoelting 51338
Shandon Cytospin 3 Cytocentrifuge ThermoFisher Scientific
10 ml syringe Terumo SS-10L
1 ml syringe Terumo SS-01T
Ethanol Merck 1.08543
Sterile gauze sponges URGO 501580

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Forthun, R. B., Hinrichs, C., Dowling, T. H., Bruserud, Ø, Selheim, F. The past, present and future subclassification of patients with acute myeloid leukemia. Curr. Pharm. Biotechnol. 17, (1), 6-19 (2016).
  2. Goldie, H., Butler, C. H., Anderson, M. M., Maxwell, M. C., Hahn, P. F. Growth characteristics of free C1498 (granulocytic leukemia) tumor cells in the peritoneal fluid and the blood of C57 mice. Cancer Res. 13, (2), 125-129 (1953).
  3. Tanaka, K. K., Roberts, E. Biological studies of E.L.4 lymphoma and C Leukemia in susceptible (C57BL) and resistant (B10.D2) mice. Cancer Res. 24, (1498), 1785-1797 (1964).
  4. Law, L. W. Characterization of an influence affecting growth of transplantable leukemias in mice. Cancer Res. 4, 257-260 (1944).
  5. Graham, J. D., McMahon Welch, C., Patchen, M. L. Studies of an implanted murine myelogenous leukemia C1498. Ohio J. Sci. 75, (4), 202-208 (1975).
  6. Boyer, M. W., Orchard, P. J., Gorden, K. B., Anderson, P. M., Mclvor, R. S., Blazar, B. R. Dependency on intercellular adhesion molecule recognition and local interleukin-2 provision in generation of an in vivo CD8+ T-cell immune response to murine myeloid leukemia. Blood. 85, (9), 2498-2506 (1995).
  7. Labelle, J. L., Truitt, R. L. Characterization of a murine NKT cell tumor previously described as an acute myelogenous leukemia. Leuk. Lymphoma. 43, (8), 1637-1644 (2002).
  8. Bradner, W. T., Pindell, M. H. Myeloid leukemia as a screen for cancer chemotherapeutic agents. Cancer Res. 26, (4), Pt 2 375-390 (1966).
  9. Lin, J. M., Li, B., Rimmer, E., VanRoey, M., Jooss, K. Enhancement of the anti-tumor efficacy of a GM-CSF-secreting tumor cell immunotherapy in preclinical models by cytosine arabinoside. Exp. Hematol. 36, (3), 319-329 (2008).
  10. Robinson, J. P. Handbook of Flow Cytometry Methods. Wiley-Liss, Inc. New York, NY. (1993).
  11. Xu, Y., McKenna, R. W., Wilson, K. S., Karandikar, N. J., Schultz, R. A., Kroft, S. H. Immunophenotypic identification of acute myeloid leukemia with monocytic differentiation. Leukemia. 20, (7), 1321-1324 (2006).
  12. Hassan, K., Qureshi, M., Shafi, S., Ikram, N., Akhtar, M. J. Acute myeloid leukemia-FAB classification and its correlation with clinico-haematological features. J. Pak. Med. Assoc. 43, (10), 200-203 (1993).
  13. Quesenberry, P. J., Rappeport, J. M., Fountebouni, A., Sullivan, R., Zuckerman, K., Ryan, M. Inhibition of normal murine hematopoiesis by leukemic cells. N.Engl.J. Med. 299, (2), 71-75 (1978).
  14. Youn, J. I., Nagaraj, S., Collazo, M., Gabrilovich, D. I. Subsets of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. J. Immunol. 181, (8), 5791-5802 (2008).
  15. Loder, F., et al. B cell development in the spleen takes place in discrete steps and is determined by the quality of B cell receptor-derived signals. J. Exp. Med. 190, (1), 75-89 (1999).
  16. Robbins, C. S., et al. Extramedullary hematopoiesis generates Ly-6C(high) monocytes that infiltrate atherosclerotic lesions. Circulation. 125, (2), 364-374 (2012).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics