Inducida por la forskolina Hinchazón en organoides intestinal: Una
1Foundation Hubrecht Organoid Technology, 2Department of Pediatric Pulmonology, Regenerative Medicine Centre Utrecht, Wilhelmina Children's Hospital, University Medical Centre Utrecht, 3Department of Stem Cells and Cancer, Walter and Eliza Hall Institute of Medical Research, 4Hubrecht Institute for Developmental Biology and Stem Cell Research, University Medical Centre Utrecht

Published 2/11/2017
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Medicine

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Boj, S. F., Vonk, A. M., Statia, M., Su, J., Dekkers, J. F., Vries, R. R., et al. Forskolin-induced Swelling in Intestinal Organoids: An In Vitro Assay for Assessing Drug Response in Cystic Fibrosis Patients. J. Vis. Exp. (120), e55159, doi:10.3791/55159 (2017).

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Abstract

Introduction

CF está causada por mutaciones en el gen de la fibrosis quística regulador de la conductancia transmembrana (CFTR) que codifica un canal de aniones epitelial. CF afecta a aproximadamente 85.000 personas en todo el mundo 1. Más de 2.000 mutaciones CFTR se han identificado ( www.genet.sickkids.on.ca ). Esta diversidad explica parcialmente un amplio espectro de fenotipos de la enfermedad observados ( www.CFTR2.org ) 2, 3. Seis clases de mutaciones CFTR se definen en función de su efecto sobre la expresión de la proteína CFTR y la función: (I) la síntesis de NO, (II) el tráfico deteriorado, (III) canal gating defectuoso, (IV) conductancia alterado, (V) niveles de reduce normalmente funcionamiento CFTR, y (VI) la estabilidad de la superficie celular alterada 4. Aunque las mutaciones CFTR comunes están bien estudiados, la función de CFTR y su relación con el estado clínico permanecen poorlY entiende a nivel del individuo, en particular para el gran grupo de mutaciones raras "huérfanos" ( www.CFTR2.org ) 1, 3.

Recientemente, se han desarrollado medicamentos que se dirigen a la proteína CFTR en una manera-mutación específica. Dos clases de fármacos de proteínas CFTR de metas se encuentran actualmente en uso clínico y tienen modos de acción diferentes. Potenciadores, como el VX-770, aumentan la probabilidad de apertura de-CFTR mutante localizada apicalmente y actúan directamente sobre su adición a las células 5. Correctores, tales como VX-809, restauran el tráfico de endoplásmico CFTR misfolded retículo-localizados y requieren pre-incubación con las células antes de que los efectos se observan 6. El potenciador CFTR, VX-770, ha sido registrada para los sujetos con la mutación G551D 7, 8, así como para otros ochoCFTR gating mutaciones, incluyendo S1251N 9; En conjunto, estas mutaciones se realizan en un 5% de todos los sujetos con FQ. Otros ensayos clínicos han indicado que VX-770, combinado con el corrector VX-809, ha limitado efectos todavía significativos sobre la función pulmonar y causa una disminución en las tasas de exacerbación en los sujetos homocigotos para la mutación F508del llevado por 45 a 50% de los pacientes 10, 11.

ensayos clínicos convencionales para identificar sujetos sensibles al fármaco dentro del 50% restante de los pacientes con FQ son costosos y consumen mucho tiempo y no son factibles para los individuos con genotipos CFTR extremadamente raros. Novela, personalizados, métodos rentables son cruciales para que coincida con el creciente número de moduladores de CFTR a los individuos portadores de cualquier tipo de mutación CFTR. Hasta ahora, la inclusión de los ensayos de grupos de pacientes portadores de mutaciones CFTR específicos se ha guiado por los estudios que utilizan la transfección mutante del gen CFTR en hsistemas de células de eterologous, seguido de estudios electrofisiológicos en cámaras Ussing 5, 6, 12. Debido a la falta de modelos animales adecuados CF, estudios de eficacia de los medicamentos en las células epiteliales bronquiales de aire-líquido-interfaz-diferenciadas derivadas a partir de materiales de explantes de pulmón CF se han utilizado para el desarrollo de fármacos 13, 14, 15. Sin embargo, la limitada disponibilidad de tejidos de explantes de pulmón y los procedimientos invasivos para obtener células bronquiales de los sujetos sin enfermedad en fase terminal obstaculizar el análisis de mutaciones CFTR menos comunes y evitar las pruebas de drogas de una manera personalizada. Para superar estas limitaciones, los tejidos "fácil acceso", como organoides colorrectal, células de las vías respiratorias nasales y las vías respiratorias células derivadas de células madre pluripotentes inducidas, están actualmente siendo explorado por los tratamientos farmacológicos personalizados.

16, 17. factores de crecimiento para el colon / recto humano, las condiciones de cultivo implican definido (factor de crecimiento epitelial (EGF), gastrina, Wnt-3A, R-espondina 3 (Rspo3), y Noggin) en combinación con moléculas pequeñas (nicotinamida, A83-01, y SB202190) en una matriz de membrana basal. En estas condiciones, las células madre individuales o fragmentos de tejido pequeños crecen hacia fuera en, quística, estructuras 3D cerrado formado por epitelio altamente polarizada con su lado basal orientada hacia el exterior. Todos los tipos de células suelen aparecer en sus proporciones y posiciones normales. Organoides pueden ampliarse durante períodos de tiempo largos por rotura mecánica semanal y re-recubrimiento. Ellos son genéticamente y fenotípicamente estables y pueden ser almacenados, lo que permite la expansión a largo plazo y bio-banca 17. Son susceptibles detodas las manipulaciones de células / biológica estándar genéticos y técnicas de análisis desarrolladas para líneas celulares 2D 18.

Recientemente hemos demostrado que la función de CFTR se puede medir fácilmente en organoides colorrectal en un ensayo de inflamación inducida por la forskolina (FIS) 19, 20. Cuando se expone a la forskolina (FSK) o, alternativamente, a la toxina del cólera, organoides aumentan rápidamente su monofosfato de adenosina cíclico niveles (AMPc), que a su vez se traduce en la apertura del canal CFTR 19. Organoides de individuos sanos o de sujetos con mutaciones CFTR asociados con la función residual, posteriormente se hincharán como consecuencia de transporte de iones y agua al lumen de organoides, el equivalente in vitro de la diarrea secretora. La respuesta FIS de organoides colorrectal fue previamente demostrado ser totalmente dependiente de CFTR, como se indica por organoides derivados de individuos CFTR nulo unand por el uso de inhibidores de CFTR farmacológicas específicas 19. Grandes conjuntos de datos de temas específicos se pueden derivar dentro de varias semanas después de tomar una biopsia.

Para el ensayo de la FIS se describe en detalle aquí, organoides se cultivan a partir de biopsias rectales que se pueden obtener a cualquier edad y con la única incomodidad limitada 21. Organoides se pasan semanalmente por la ruptura mecánica en criptas individuales que se vuelva a sellar y formar nuevos organoides fácilmente. Para ejecutar el ensayo de FIS, ~ 30-80 de estos pequeños organoides alterado son sembraron en cada pocillo de una placa de 96 pocillos 19. En el día del ensayo, los organoides se tiñeron con calceína verde, un colorante fluorescente de células permeable que está retenido dentro de las células vivas, lo que facilita imágenes en vivo. Entonces, FSK, lo que eleva el AMPc intracelular y por lo tanto activa CFTR, se añade con el fin de estimular la hinchazón organoide. Potenciadores que actúan sobre CFTR apical se añaden simultáneamente won la forskolina, mientras que los correctores que restauran el tráfico de CFTR se añaden 24 h antes de la adición de FSK. La hinchazón organoide se cuantifica mediante un análisis de imagen automatizado que calcula el aumento relativo de la superficie total de todos los objetos fluorescentes para cada punto de tiempo después de la adición de forskolina.

3D organoid hinchazón ofrece ventajas y desventajas sobre las lecturas de CFTR electrofisiológicos existentes en las vías respiratorias células cultivadas 2D en cámaras Ussing. Una ventaja importante es el rendimiento del ensayo de hinchamiento. Las células se cultivan y se ensayaron utilizando un único tipo de medio de cultivo, y un técnico con experiencia pueden cultivo hasta 25 muestras de organoides sobre una base semanal, mientras que la cuantificación de aproximadamente 1200 puntos de datos por semana en 12 muestras de pacientes. Que convencionalmente escribir una sola condición experimental por medio de mediciones por duplicado o triplicado por placa y repetir dichas mediciones en tres momentos de incubación independientes. En total, aproximadamente 300-500 single organoide estructuras se miden por condición experimental, lo que lleva a mediciones muy precisas de la función de CFTR con variabilidad técnica limitada. Esta precisión nos permite definir con claridad las diferencias en la función y la respuesta residual a moduladores de CFTR y nos permite recoger fácilmente a efectos de fondo genéticas entre los pacientes portadores de mutaciones CFTR idénticos 19, 22, 23, 24, 25. calidad de los datos se puede evaluar fácilmente a partir de imágenes de microscopio. Mientras FIS es totalmente dependiente de CFTR, que es una medida de resultado indirecto de la función de CFTR, su lectura fuera causado por el acoplamiento del transporte de iones para el transporte de fluidos. Esto contrasta con las mediciones de la función de CFTR directos en cámaras Ussing, que miden las corrientes de iones transepiteliales 26. cámaras Ussing permiten la estimulación de selección de c apical o basolateralompartments (que el ensayo no permite organoid); por permeabilización de la membrana basolateral, la secreción de aniones CFTR dependiente apical se puede medir de forma selectiva 27.

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Protocol

Toda la experimentación utilizando tejidos humanos descritos en este documento fue aprobado por el comité de ética de la Universidad del Centro Médico de Utrecht (UMCU; TcBio # 14-008). El consentimiento informado para la recogida de tejidos, generación, almacenamiento y uso de los organoides se obtuvo de los pacientes en el Hospital -UMCU (WKZ) Wilhelmina niños.

Equipo Consumible Herramientas
Campana de flujo laminar 15 y 50 ml tubos cónicos Zeiss LSM 800 - Zen 2 (edición azul) de software para la medición de las imágenes
Incubador de CO2 tubos de microcentrífuga programa de Microsoft Excel
Microscopio de cultivo celular (microscopio óptico / óptica) 0.22 micras filtros
Centrífugo pipetas serológicas
Rodando Shaker puntas con filtro micropipeta
4 ° C o C sala de nevera 4 ° de la incubadora crioviales
CoolCell celda helada de contenedores
pipeta serológica
Micropippette (1000, 200 y 20 l)
Repita Viaflo pipeta
(Células vivas) Microscopio Confocal
Computadora
tanque de nitrógeno líquido
Multicanal (200 l)

1. Reactivos Preparación para la Cultura

  1. Basal Medium Preparación
    NOTA: El medio basal (BM) se refiere a de avanzada Eagle modificado por Dulbecco con la Mezcla de Ham nutrientes F-12 (Ad-DF) suplementado con 4- (2-hydroxyethil) ácido -1piperazineethanesulfonic (HEPES), glutamina, y penicilina / estreptomicina (Pen / Strep).
    1. En una botella de medio 500 ml Ad-DF, añadir 5 ml de glutamina 200 mM, 5 ml de 1 M HEPES, y 5 ml de las soluciones de penicilina / estreptomicina (10.000 U / ml, 10,000 g / ml).
    2. BM Conservar en el refrigerador a 4 ° C durante al menos 4 semanas.
  2. Wnt-3A-medio condicionado Preparación
    NOTA: medio condicionado-Wnt-3A se hace en la casa using la línea celular L-Wnt-3A de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
    1. Para recoger el medio de Wnt-3A-acondicionado, recoge el medio se expone a las células durante una semana y lo hace girar hacia abajo durante 5 minutos a 450 xg para eliminar las células flotantes.
    2. Se filtra el medio condicionado-Wnt-3A a través de un filtro de 0,22 micras y se divide en partes alícuotas de 40 ml en 50 ml tubos cónicos. Almacenar a 4 ° C durante al menos 4 meses sin pérdida de actividad.
    3. Prueba de la actividad del medio de Wnt-3A-acondicionado en un ensayo de TOP / FOP usando riñón embrionario humano (HEK) -293 células transfectadas con láminas superior y FOP-luciferasa y TK- Renilla y se mide con un kit de ensayo de Renilla -luciferase según las instrucciones del fabricante.
      NOTA: TOP-luciferasa es un plásmido indicador que contiene de tipo salvaje regiones de unión a TVC. Si el medio acondicionado Wnt-3A está activo, se activa la señalización Wnt canónica. Beta-catenina se transloca en el núcleo de asociar el ingenioh TCF / LEF factores de transcripción y activa la transcripción del informador de luciferasa, que induce un aumento en la actividad luciferasa relativa cuando se añade el sustrato. El FOP-luciferasa se usa como un control negativo debido a que el TCF se mutado regiones de unión aguas arriba del gen de la luciferasa.
  3. Preparación de colon Medio
    NOTA: preparar y diluir todos los factores de crecimiento y reactivos de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. Use alícuotas de tamaño pequeño un evitar ciclos de congelación-descongelación. factores de crecimiento funcionales son esenciales para los resultados.
    1. Preparar medio de dos puntos (CM), completándolo con BM 1x B27, 1,25 mM N-acetilcisteína, 50 ng / ml de hEGF, 5 nM gastrina, nicotinamida 10 mM, 300 ng / ml hRspo3, 100 ng / ml hNoggin, 500 M A83-01 , 10 M SB202190, y 100 mg / ml de un agente antimicrobiano para las células primarias.
    2. Divida el CM en alícuotas y congelar a -20 ° C durante un máximo de 4 meses. Descongelar las alícuotas para preparar el colon completomedio (FCM) mediante la adición de 50% de medio Wnt-3A-conditoned a la CM. Tienda FCM hasta 7 días a 4 ° C sin pérdida de actividad.
    3. Para el establecimiento de una cultura organoide de biopsias rectales, complementar FCM con 50 mg / ml de vancomicina, 50 mg / ml de gentamicina, y 10 mM proteína serina / treonina quinasa inhibidor-espiral de la bobina formando rho-asociado (RhoKi). Utilizar este medio, llamado medio de aislamiento (IM), sólo para los primeros dos o tres días en cultivo.
  4. EDTA Stock Preparación de la solución
    1. Preparar ácido 0,5 M etilendiaminotetraacético (EDTA), pH 8, en ultrapura H 2 O, esterilizada con un filtro de 0,22 micras.
  5. La manipulación de la membrana basal para la matriz
    1. Preparar la matriz de la membrana basal (BMM) de acuerdo con las recomendaciones del fabricante.
    2. Descongelar BMM noche en hielo.
    3. Cuando la transferencia de la BMM de la botella a un tubo cónico de 15 ml, el usouna pipeta de 5 ml y 15 ml de un tubo cónico de pre-enfriado a -20 ° C.
    4. Una vez descongelado, almacenar el BMM en un refrigerador a 4 ° C y se incuba en hielo durante al menos 30 a 60 min antes de su uso.
      NOTA: Con el fin de obtener los mejores resultados, el BMM debe ser frío y se mezcla adecuadamente antes de clavarse criptas o organoides.

2. El establecimiento de organoides Colon partir de una biopsia de pacientes con FQ

NOTA: Después de la recogida de tejidos, es importante mantener la muestra en hielo en solución salina, fosfato de Dulbecco solución salina tamponada sin Ca2 + y Mg2 + (DPBS), o BM. Se recomienda un rápido procesamiento de las biopsias, pero se ha demostrado que es posible establecer cultivos de biopsias de organoides almacenados en hielo durante un máximo de 7 días.

  1. Deje que las biopsias se depositan en el fondo de un tubo cónico de 15 ml y eliminar el sobrenadante.
  2. Añadir 10 ml de DPBS a las biopsias y la pipeta hacia arriba y abajo 10-20 veces usando una pipeta de 10 ml.
    NOTA: La pipeta tiene que ser pre-humedecida con BM antes de pipetear la biopsia.
  3. Deje que las biopsias se depositan en el fondo y eliminar el sobrenadante.
  4. Repita los pasos 2.2 y 2.3 de 4-5 veces hasta que el sobrenadante es claro.
  5. Añadir 10 ml de subproductos de desinfección y 200 l de EDTA (0,5 M) para las biopsias y colocar el tubo en una plataforma oscilante tubo de 60-120 min a 4 ° C.
    NOTA: El tiempo de incubación puede variar por paciente. Si criptas son liberados, DPBS se vuelve turbia. incubación EDTA puede ser finalizado cuando criptas se pueden observar bajo un microscopio.
  6. Permitir a las criptas se asienten. Descartar el sobrenadante.
  7. Tomar hasta 2 ml de BM y añadirlo a un nuevo tubo cónico de 15 ml. Agitar este nuevo tubo manualmente de tal manera que el interior se cubre con BM.
  8. Usando una pipeta de pre-humedecida con BM, añadir 2 ml de DPBS al tubo que contiene las biopsias y la pipeta arriba y abajo de 10-20 veces.
  9. Permitir que las biopsias se asienten y transfieren los DPBS con las criptas a la nuevatubo que contiene los 2 ml de BM que se preparó en el paso 2.7.
  10. Repita los pasos 2.8 y 2.9 hasta que no haya más criptas son liberados.
  11. Girar las criptas hacia abajo a 130 xg durante 5 min a 8 ° C.
  12. Mientras tanto, la transferencia de IM a la cabina de seguridad a temperatura ambiente (RT).
  13. Eliminar el sobrenadante y añadir 10 ml de BM a la etapa de pellets cripta y la repetición de 2.11.
  14. Resuspender el precipitado en 1 ml de BM. Tome 5-10 l y contar el número de criptas a simple vista bajo un microscopio.
  15. Girar las criptas hacia abajo a 130 xg durante 5 min a 8 ° C.
  16. Eliminar el sobrenadante y resuspender el precipitado en 55% BMM (v BMM a v IM).
    NOTA: Las criptas se resuspenden en el volumen correspondiente de 55% en BMM 1 cripta por l. Si no hay suficientes criptas, el volumen mínimo de BMM es de 40 l.
  17. Para la siembra, la pipeta 35 l por pocillo (en una placa de 24 pocillos). Divida a los 35 l de BMM en 3-5 gotas por separado con el fin de mejorar la difusión de growth factores en el BMM. No crear burbujas.
  18. Coloque y dejar la placa al revés en la incubadora a 37 ° C durante al menos 20 min para la BMM se solidifique.
  19. Añadir 500 l de mensajería instantánea por pocillo y mantenerlo en la incubadora a 37 ° C y 5% de CO2.
  20. Refrescar el medio cada 2-3 días. Retire el medio de edad pipeteando con una pipeta P1000, dejando el BMM cae intacta. Añadir con cuidado FCM con la pipeta en el lado del pozo, no directamente sobre las gotas de BMM.
    NOTA: Si no hay criptas se liberan en el protocolo de aislamiento, centrifugar el sobrenadante, lavar el pellet 2-3 veces con BM, y resuspender en BMM. Tome el tejido sobrante y cortarlo en pequeños trozos con una cuchilla de afeitar. Recoger estos en un tubo cónico de 15 ml, centrifugar ellos, y volver a suspender en el mismo BMM. Si todas las células madre epiteliales están presentes, estos también generan organoides.

3. pases de organoides Colon para el mantenimiento, congelación, y paraInflamación inducida por skolin Ensayo (FIS)

NOTA: Cada cultura tiene su propia organoid tiempo de duplicación. Normalmente, organoides CF colorrectales pueden ampliarse 1: 3-1: 5 veces cada 7-10 días. Es una buena señal si se observan estructuras en ciernes. Organoides colorrectal CF son menos quística (Figura 2A - 2C) que organoides normales colorrectales (Figura 2D). Para el establecimiento y mantenimiento, organoides se cultivan en placas de 24 pocillos; para congelar, en placas de 6 pocillos; y para el ensayo de FIS, en patés 96 pocillos.

  1. Pases de organoides
    1. Mantenga el BMM en hielo durante al menos 30 a 60 min antes de usarla.
    2. Mantenga el FCM a TA durante al menos 1 hr antes de usarlo.
    3. Etiquetar un tubo de 15 ml cónico con el nombre de la muestra y el otro tubo como "lavado".
    4. aspirar cuidadosamente el medio de los pocillos utilizando una pipeta P1000 sin molestar a las gotas para los BMM.
    5. Añadir 1 ml de BM a 1 bien y break el BMM gotas mediante el uso de una pipeta P1000. Transferir este 1 ml en el tubo cónico de 15 ml con el nombre de la muestra.
    6. Lavar el bien con otro 1 ml de BM y transferirlo al mismo tubo de 15 ml.
    7. Repita los pasos 3.1.5 y 3.1.6 con 5 pozos más (hasta 6 pocillos de una placa de 24 pocillos se lavaron en uno 15 ml tubo cónico).
    8. Llenar el tubo hasta 12 ml con BM. Pipeta hacia arriba y abajo utilizando una pipeta ml previamente mojado 5.
    9. Giran a 85 xg durante 5 min a 8 ° C.
    10. Eliminar el sobrenadante y añadir 1 ml de BM al sedimento. Con la misma punta de la pipeta P1000, tomar hasta una punta P10 sin un filtro, y la pipeta hacia arriba y abajo 20 veces. Desechar ambos consejos P10 P1000 y.
    11. Añadir 4 ml de BM con una pipeta de 5 ml y mantener el tubo inclinado en unos 70 ° de la vertical a un lado. Humedecer previamente una nueva punta P1000 y mezclar enérgicamente 2-3 veces con el P1000 (volumen 1 ml).
    12. Contar hasta 10, mientras que permanece en la posición inclinada, recoger la capa superior con cuidado wITH la pipeta P1000, y la transferencia de 4 x 1 ml en el tubo etiquetado como "lavado".
    13. Observar los organoides depositarse en el fondo del tubo inclinado; organoides no desorganizada y trozos más grandes se hunden hasta el fondo. Centrifugar los 15 ml "lavan" tubo durante 5 minutos a 85 xg y 8 ° C.
    14. Eliminar el sobrenadante y añadir la cantidad requerida de medio y BMM al sedimento organoide a una concentración final de 55% BMM. Mezclar pipeteando arriba y abajo sin crear burbujas (Figura 3B).
      NOTA: Una buena densidad se logra mediante la siembra de 25-30 organoides en 10 l de BMM.
    15. Siga los pasos del 02/17 a 02/19.
  2. Pases de congelación
    1. Mantenga el BM en hielo durante al menos 30 a 60 min antes de su uso. Mantenga el FCM a TA durante al menos 1 hora antes de su uso.
    2. Preparar FCM suplementado con RhoKi (Paso 1.3.3).
    3. Tome la tripsina de la nevera y se deja a temperatura ambiente durante al menos 30 minutos antes de su uso.
    4. Siga los pasos 3.1.5-3.1.10.
    5. Eliminar la mayor cantidad posible sobrenadante, añadir 4 ml de tripsina, y agitar durante 30 seg.
    6. Poner el tubo en un baño de agua caliente a 37 ° C durante 1 min y agitar vigorosamente durante 30 segundos.
    7. Inspeccionar la solución en el tubo. Si organoides intactos son todavía visibles bajo el microscopio, repita el paso 3.2.7.
    8. Cuando se interrumpen los organoides, añadir 8 ml de BM para neutralizar la tripsina y la pipeta de 10 veces.
    9. Centrifugado durante 3 minutos a 450 xg a 8 ° C.
    10. Eliminar el sobrenadante y añadir la cantidad necesaria de medio y BMM a los organoides para llegar a una solución BMM 55%. Mezclar pipeteando arriba y abajo sin crear burbujas.
      NOTA: Para la congelación, organoides deben ser sembradas en una relación 1: 1 después de tripsinización.
    11. Seed 250 l en un solo pocillo de una placa de cultivo de tejidos pre-calentado de 6 pocillos, produciendo pequeñas gotas, separadas de ~ 10 l. Coloque la placa boca abajo en la incubadora a 37 ° C y dejar elBMM se solidifique durante 20-30 min.
    12. Añadir 2,5 ml de FCM fresca + RhoKi en cada placa de 6 pocillos y así transferir la placa de la incubadora (Figura 3C).
  3. Organoides pases para el Ensayo de esquí alpino
    NOTA: En función del número y tamaño de los organoides, entre 4 y 6 pocillos de una placa de 24 pocillos son suficientes para la siembra de 27 pocillos de una placa de 96 pocillos.
    1. Procesar los organoides como se describe en los pasos 3.1-3.1.13.
    2. Resuspender el precipitado en 120 l de 50% de BMM.
    3. Confirmar el número de organoides (30-50) en un 3 l gota BMM bajo el microscopio.
    4. Plate los organoides utilizando una sola gota de 3 l colocados en el medio de cada pocillo de una pate 96 pocillos.
    5. Colocar la placa en la incubadora a 37 ° durante 15 min para el BMM se solidifique; medidas adicionales se describen en el paso 6.1.1.

4. Congelación de colon CF organoides

NOTA: Órganooids están listas para ser congelados hasta 1-2 días después de la tripsinización y el cultivo, por lo organoides todavía serán pequeños, lo que aumenta la eficiencia de la supervivencia después de la descongelación.

  1. Añadir 1 ml de BM y romper el BMM gotas con una pipeta P1000. Transferir a un tubo cónico de 15 ml.
  2. Lavar bien con el otro 1 ml de BM y traslado al mismo tubo de 15 ml.
  3. Repita los pasos 4.1 y 4.2 con todos los pocillos.
    NOTA: Para evitar el exceso de BMM, 3 pocillos de una placa de 6 pocillos compartirán un tubo de 15 ml.
  4. Llenar el tubo de 15 ml que contiene los organoides con 12 ml de BM frío y la pipeta hacia arriba y abajo con una pipeta de 5 ml. Deje el tubo en hielo durante 5 min.
  5. Girar durante 3 minutos a 450 xg y 8 ° C y separar el sobrenadante.
  6. Disolver la pastilla de organoides con medio de congelación y la pipeta hacia arriba y abajo para volver a suspender adecuadamente los organoides.
    NOTA: 500 l de medio de congelación se utiliza para cada 100 l de BMM.
  7. Usando una pipeta de 5 ml, transferir 0,5 ml deorganoides se volvieron a suspender en medio de congelación estériles para viales criogénicos.
  8. La transferencia de los viales a un contenedor de congelación celular y lo puso a -80 ° C.
  9. Después de 24 horas, la transferencia de los viales para su almacenamiento en nitrógeno líquido.

5. El establecimiento de cultivos de congelados organoides

NOTA: Descongelar la BMM en hielo y mantener en hielo. Deje que el BM alcanzar la temperatura ambiente, y se caliente una alícuota de 10 ml a 37 ° C antes de comenzar el procedimiento de descongelación uno criovial.

  1. Descongelar el vial rápidamente por agitación en un baño de agua C 37 ° hasta que todavía hay un poco de material congelado.
  2. La transferencia de los organoides descongeladas a un tubo cónico de 15 ml usando una pipeta P1000.
  3. Inmediatamente después, añadir 1 ml de gota BM caliente a gota mientras se agitaba la parte inferior del tubo. Una vez que se añade de 1 ml de medio, mezclar cuidadosamente con la pipeta hacia arriba y abajo varias veces para diluir el medio de congelación.
  4. Lentamente (gota a gota) añadir 9 ml de tibia BM a la conta tubo cónicoIning los organoides. Invertir varias veces.
  5. Girar la suspensión de células durante 3 minutos a 85 x g y 8 ° C.
  6. Descartar el sobrenadante con cuidado, sin perturbar el sedimento. Resuspender el organoide en 90 l de FCM suplementado con RhoKi (etapa 1.3.3). A continuación, añadir 110 l de BMM.
  7. Añadir 35 l a cada pocillo de una placa de 24 pocillos pre-calentado, haciendo pequeñas, gotitas separadas.
  8. Colocar la placa en el incubador a 37ºC, dejando la placa boca abajo durante 20-30 min.
  9. Añadir 500 l de FCM con RhoKi a cada pocillo y la transferencia de la placa posterior a la incubadora (Figura 4A - 4C).
  10. Una vez organoides se han recuperado correctamente a partir de la descongelación, se diluye en más BMM por lo que cada 10 l de BMM contiene 25-30 organoides. Este procedimiento se puede realizar de 2-3 días después de la descongelación (Figura 4D - 4G) y garantiza el buen crecimiento de la organoide.

6. inducida por la forskolina Hinchazón Comodecir (FIS)

NOTA: Fsk titulación permite la medición de la función residual CFTR. Para la modulación CFTR, organoides se exponen a un corrector dado (por ejemplo, VX-809) y / o potenciador (por ejemplo, VX-770), dependiendo del genotipo. Por lo general, el VX-809 se añade 18-24 h antes de la medición, mientras que el VX-770 y Fsk se añaden justo antes de iniciar las mediciones. Tenga en cuenta que algunos moduladores (correctores / potenciadores) pueden unirse a la superficie de plástico de la placa de ensayo.

  1. Plating para el Ensayo
    NOTA: VX-809 poblaciones se dividen en partes alícuotas a 20 mM y se almacenaron a -80 ° C. Al descongelar, deje a temperatura ambiente y protegido de la luz.
    1. Procesar los organoides como se describe en la sección 3.3.
    2. Si probar el corrector VX-809, preparar una curva de dosis-respuesta por triplicado con las concentraciones siguientes: 0,0003, 0,003, 0,03, 0,3, 3,0, y 30 mM. Preparar las diluciones de FCM.
    3. Para la placa de 96 pocillos, añadir o bien 100 μ; L de FCM con los respectivos concentración o 100 l VX-809 de FCM única e incubar la placa.
  2. La medición de la Ensayo
    NOTA: VX-770 poblaciones se dividen en partes alícuotas a 20 mm, mientras que Fsk está a 10 mM; tanto se almacenan a -80 ° C. Al descongelar, dejar a temperatura ambiente y protegido de la luz.
    1. Tomar un vial de calceína y DMSO y dejar a temperatura ambiente durante 15 min.
    2. Añadir 5,1 l de DMSO al vial que se presta el calceína como un polvo, si no se abre. De lo contrario, utilice un vial calceína ya se resuspendieron que contiene 2,5 l de calceína.
    3. Añadir 2,5 l de calceína a 580 l de BM en un tubo de 1,5 ml y etiquetarlo.
    4. Añadir 10 l de esta solución de colorante (BM + calceína) a cada pocillo usando una pipeta de repetición.
    5. Resuspender una vez con una multicanal para asegurar que el tinte se mezcla bien.
    6. Se incuba la placa en una incubadora a 37 ° durante 30 min.
    7. Durante la incubación calceína, comenzar a preparar FSKy soluciones VX-770, si es necesario.
    8. Si se utiliza un potenciador de VX-770, preparar una curva de dosis-respuesta por triplicado con las concentraciones siguientes: 0,0003, 0,003, 0,03, 0,3, 3,0, y 30 mM. En el caso de una valoración de FSK, las concentraciones son: 0, 0,008, 0,02, 0,05, 0,12, 0,32, 0,8, 2,0, y 5,0 mM. Preparar las diluciones en BM.
      NOTA: para FSK, VX-770, o cualquier otro fármaco añadido en el segundo día, las diluciones debe estar preparado a una concentración final de 2x, desde 100 l de Fsk se añadió solución / titulación fármaco a cada pocillo, que ya contienen 100 l de la FCM.
    9. La transferencia de la FSK y VX-770 soluciones, una pipeta P200, y consejos para la sala de microscopio.
    10. Para obtener imágenes del ensayo de esquí alpino, utilizar una imagen de células microscopio confocal en vivo equipado con una etapa automatizada, una cámara calentada, y el flujo de CO 2.
      NOTA: Los pasos siguientes se refieren a un microscopio específico. Diferentes configuraciones deben aplicarse a otros microscopios siguiente fabricante deinstrucciones.
    11. Coloque la placa de 96 pocillos en el soporte de la placa.
    12. Introduzca los ajustes confocal para la imagen.
      1. Preestablecer la herramienta de imágenes en vivo a 37 ° C y 5% de CO 2 y dejar que la cámara de pre-incubar durante un mínimo de 30 minutos antes de la medición.
      2. Utilice la opción "Configuración Inteligente" para seleccionar la pista Alexa Fluor-488.
      3. Ajuste el objetivo de 5X y un área de escaneado a 0.6x para alejar y capturar todo el pozo.
      4. Adaptar la sensibilidad de la potencia del láser y el detector para permitir la detección óptima de organoides etiquetados calceína verde sobre el fondo. El agujero de alfiler se puede aumentar a 130 micras y el cálculo del promedio imagen se puede ajustar a 2.
      5. Ajuste la profundidad de bits de 8 y el tamaño de cuadro de 512 x 512.
      6. Use la opción de series de tiempo para establecer la medición del tiempo, la frecuencia y los intervalos.
        NOTA: Sugerido para mediciones regulares: 1 hora con 10 minutos de intervalo: ciclos = 7 (Ciclo 1 es T = 0). Para medidas de reducción de la hinchazón, organoids se pueden obtener imágenes de hasta 3 horas.
      7. Use la opción de baldosas para determinar manualmente las posiciones de los pocillos individuales.
    13. Añadir 100 l de la FSK y / o VX-770 soluciones a los pocillos correspondientes, siguiendo el mismo orden que la medición. Empezar a añadir las soluciones en la primera fotografiados y así continuar con el orden de formación de imágenes.
    14. Iniciar la medición.
    15. Una vez finalizado el experimento, guardar el archivo.
  3. Análisis de FIS de ensayo de datos
    1. Crear una macro "análisis organoide" para el análisis de los datos del ensayo FIS usando la herramienta de análisis en un software de análisis de imágenes que reconoce todas las estructuras de imagen formada a través de la pista de Alexa-488 y llena las estructuras identificadas para calcular el aumento de área organoide total sobre el diferentes puntos de tiempo.
    2. Abra el archivo de datos con las imágenes adquiridas en el programa de análisis de imágenes.
    3. Seleccione la macro para el análisis organoid.
    4. <li> Establecer el umbral de equilibrar la relación señal-ruido en un pozo en el punto 1 vez y asegurarse de que todas las estructuras de organoides se reconocen y se llenan.
      1. Llegada 4-6 pozos para ver si todas las estructuras también son reconocidos en el punto 7. tiempo ligeramente modificar el umbral para asegurar que las señales de fondo en el punto 7 veces no se reconocen como estructuras (el umbral específico puede cambiar un poco entre los experimentos).
    5. Establecer los criterios de tamaño de área mínima de objetos reconocidos a 1.000 m 2.
    6. Pulse el botón "Analizar" para comenzar. El análisis toma aproximadamente unos 3 minutos, dependiendo del software utilizado.
    7. Cuando se termina el software, vaya a "crear la tabla" y seleccione los siguientes datos: así los números (tabla debe aumentar en este orden), los puntos de tiempo, y el área total por pocillo.
    8. Guardar archivo como un .xlm exportar a un programa de hoja de cálculo.
    9. En este programa, se calcula el aumento relativo de la superficie por well mediante el establecimiento de la zona del punto 1 vez al 100%. Calcular el área bajo la curva (AUC) de los puntos de tiempo de 1-7 por condición; el límite inferior de la zona (valor Y) se fija en el 100%. FSK o drogas titulaciones (eje X) se representan frente a las AUC (eje Y).

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Representative Results

La figura 1A muestra un aislamiento fresca representante de criptas incrustados en BMM. Las criptas son de una biopsia de colon de un sujeto CF. Por lo general, un organoide se genera a partir de cada cripta (Figura 1A - C). Debido a la disfunción de la CFTR, la mayoría de los organoides de colon CF no son quística, sino más bien son compactos y con proyecciones y injertos (Figura 2A - 2B). Sin embargo, algunas CF organoid culturas, especialmente con alta función residual, tienen unos organoides con una forma quística (Figura 2C), al igual que los de tipo salvaje culturas organoides (Figura 2D).

Antes de pases los organoides para expandir el cultivo o siembra de un ensayo de FIS, es importante que los organoides tienen un tamaño grande con múltiples injertos, como se muestra en la Figura 3A. Si los organoides son pequeñas y sin ninjertos umerosos cuando son procesadas por los pases, la cultura organoid se ve afectada negativamente. Dependiendo de la calidad y la actividad de factores de crecimiento esenciales, como EGF, Wnt-3A, y Rspo3, los organoides alcanzan el tamaño deseado entre los 7 y 12 días (Figura 3A). Después de disrupción mecánica, los injertos se interrumpen y se utilizan para generar nuevos organoides en el siguiente pasaje (Figura 3B). Si el procesamiento de los organoides para la congelación, es importante que se tratan con tripsina a un tamaño pequeño, como se representa en la Figura 3C. Después de tratamiento con tripsina, los organoides se siembran durante 1 o 2 días con el fin de permitir a recuperarse del estrés de la manipulación. Este paso, junto con el pequeño tamaño de los organoides, asegura una recuperación de células 98% después de la descongelación (Figura 4A).

Cuando se descongelan los organoides, es importante tener en alta densidad, por lo que normalmente, que se descongelan en unapequeño volumen (Figure4A). Después de uno o dos días en cultivo, y después de observar que los organoides están aumentando de tamaño (comparar Figura 4A con la figura 4B - 4C), los organoides se diluyen en una proporción de 20-30 organoides por cada 10 l de BMM, proporcionando la densidad adecuada para crecer en un tamaño más grande. Si los organoides están demasiado diluidos, pueden retrasar el crecimiento e incluso pueden diferenciar y morir. Si los organoides son demasiado lleno de gente, la falta de espacio o la escasez de factores de crecimiento también retarda el crecimiento de los organoides y reduce el número de injertos.

El chapado de organoides de cultivos viables con restos celulares limitada debe dar lugar a condiciones en las que> 95% de los organoides se hinchan tras la estimulación FSK, siempre que suficiente función CFTR está presente (Figura 5A - 5B). Organoides hincharse de forma genotipo y el fármaco-dependiente, como seilustrado por imágenes representativas de organoides con dos alelos F508del (Figura 5A) y el compuesto-heterocigotos organoides para F508del y S1251N (Figura 5B), una mutación CFTR gating asociado con una cierta función residual.

Para cuantificar la inflamación, áreas de superficie calceína verde totales se seleccionan para cada punto de tiempo y se expresaron como porcentaje de T = 0 (ajustado a 100%; Figura 6A). Los escombros y de las estructuras pequeñas, no hinchable son típicamente por debajo de 5% de la superficie total. El aumento de área relativa se expresa por intervalo de tiempo 10 min, y el AUC (unidades arbitrarias) mediciones se generan para cada condición (T = 0 a 60 min, umbral de base fijado en 100%; Figura 6B). Encontramos AUC para ser el más robusto, ya que incorpora alguna variación en la iniciación de la inflamación, así como una relación curvilínea más allá de 30-40 min de Fsk a niveles de función de alta CFTR.

Figura 6C). Organoides asociados con la función residual CFTR pueden alcanzar hasta 4.500 unidades de las AUC tras 60 minutos de estimulación 5 M Fsk en ausencia de moduladores CFTR (área de superficie de 200-220% de las condiciones pre-FSK). hinchazón organoid alcanza un límite máximo a ~ 4.500 unidades de las AUC, presumiblemente debido a las limitaciones físicas de las estructuras de organoides, el impacto que limita la velocidad de transporte de iones basolateral, y el establecimiento de la homeostasis de iones y fluidos de transporte en condiciones "estirados". FSK se puede titular para ampliar aún más el rango dinámico del ensayo a estos altos niveles de función residual CFTR para cuantificar mejor función residual o altamente eficaz tratamiento con el compuesto (por ejemplo, como se indica por la mayor actividad de VX770 en la hinchazón de organoides S1251N a la estimulación con concentraciones más bajas de FSK; Figura 6D).

Figura 1
Figura 1: Establecimiento de CF organoides colorrectal a partir de biopsias. (A) Imágenes representativas de material aislado de una biopsia rectal después de haber sido incrustado en BMM en el día de aislamiento (paso 0, día 0). La ampliación de la cripta indicada se muestra en el panel inferior derecho. (B) Las mismas criptas fueron seguidos después de 7 días en cultivo (paso 0, día 7). Se muestra la ampliación de la misma cripta presentado en el panel A. (C) imagen representativa de la misma cultura organoid 11 días después de haber sido dividido (paso 1, el día 11). Barras de escala = 100 m.
159fig1large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2
Figura 2: Imágenes representativas de organoides colorrectales CF derivadas de sujetos con diferentes mutaciones CFTR. Imágenes representativas de CF organoides colorrectal a partir de los sujetos con F508del / F508del (A), F508del / R117H-7T (B), y las mutaciones F508del / S1251N (C). (D) imagen representativa de una cultura organoid colorrectal a partir de un objeto de tipo salvaje CFTR. Barras de escala = 100 m. Estas imágenes fueron obtenidas sin estimulación FSK. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 3: Procesamiento de colon organoides CF para el mantenimiento y el ensayo o para congelar. (A) Imágenes representativas de una cultura organoid CF de colon listo para ser procesado, ya sea para pases (B) o congelación (C). (B) Después de su ruptura mecánica, se forman pequeñas piezas, lo que generará los nuevos organoides en el siguiente paso. (C) Después de la tripsinización, organoides muy pequeños, redondos se generan, facilitando su viabilidad durante el proceso de congelación. Barras de escala = 100 m. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4
Figura 4: Establecer una cultura organoid colorrectal CF desde organoides congelados. (<strong> A - C) Imágenes representativas de una cultura organoid colorrectal CF descongelados en el día 0 (A). Las imágenes de la misma, así se tomaron una (B) y (C) dos días después. (D - G) Imágenes representativas de la etapa de dilución se describe en la sección 5.9. Una vez que los organoides se han recuperado correctamente a partir de descongelación (día 3 después de la descongelación), se diluyen para que tengan espacio para crecer (D). Las imágenes de la misma, así se tomaron seis (E), diez (F), y quince (C) días después de la descongelación. Barras de escala = 100 m. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5
Figura 5: inflamación inducida por la forskolina de la FQorganoides. (A y B) Imágenes representativas de F508del / F508del (A) o F508del / S1251N (B) organoides colorrectales antes o después de 60 min de estimulación con Fsk (5 m) en ausencia o presencia de VX-770 (3 m]) o VX-770 en combinación con VX-809 (3 m). Barras de escala = 200 m. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6
Figura 6: Cuantificación de la hinchazón inducida por la forskolina. (A) Imágenes representativas de la selección del área organoide por un software de análisis de imágenes de F508del / S1251N organoides antes (0 min) y después de 60 min de estimulación con Fsk (5 M) y VX770 (3 M). Barras de escala = 200 m. (B) Represimágenes repre- del incremento de la superficie relativa de F508del / F508del o F508del organoides / S1251N durante 60 min de Fsk (5 micras) de estimulación, en ausencia o presencia de VX770 (3 m) y / o VX809 (3 m). (C) Área bajo la curva de las mediciones de las condiciones indicadas en (B) (T = 60 min, la línea base umbral = 100%). (D) El área bajo la curva de las mediciones de F508del / F508del o organoides F508del / S1251N a diferentes concentraciones de FSK. Los datos representan la media ± SD de experimentos representativos individuales. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Discussion

A continuación, ofrecemos un protocolo completo para la generación, la expansión, la congelación, descongelación y de organoides colorrectal humano. Si bien hemos establecido culturas organoides humanos alguna vez hace 17 años, que a veces ha sido difícil establecer la tecnología en otros laboratorios sin la formación práctica. Anticipamos que estos protocolos se sustituya dicha formación.

Wnt-3A-medio condicionado es uno de los reactivos más importantes para tener éxito en el establecimiento y mantenimiento de un organoid cultivo a largo plazo. De hecho, los cultivos podrían organoides "accidente" cuando se expone al medio conditoned-Wnt-3A con baja actividad. Dado que el medio acondicionado-Wnt-3A se hace en casa, hay varios aspectos que deben ser tomados en cuenta cuando se genera un medio activo. Activo Wnt-3A sólo puede producirse en un medio con alta calidad de suero bovino fetal (FBS) que proporciona las señales de crecimiento adecuados para células L y la estabilización de hidrófobomoléculas de Wnt-3A. Cuando la actividad de Wnt-3A es baja (es decir, superior / ratios de FOP, ver más abajo) bajos, es por lo general las FBS que está causando el problema.

Comercial Wnt recombinante funciona mal, por lo que no recomendamos usarlo como control positivo para el ensayo indicador de TOP / FOP Wnt. La relación entre TOP / Renilla y FOP / Renilla es una indicación de la actividad de Wnt del medio condicionado, por lo que un buen lote de medio acondicionado Wnt-3A da una relación de TOP / FOP mayor que 25, en comparación con el valor TOP / FOP de el control negativo: medio no expuesto a las células productoras de 3A-Wnt. Noggin recombinante y R-espondina pueden ser reemplazados por Noggin y R-espondina condicionados a medio 28, 29.

El protocolo actual también describe un ensayo funcional para CFTR el ensayo de esquí alpino. Recientemente hemos demostrado la relación entre el genotipo CFTR y FIS y cómo esto refleja genoty CFTR publicadorelaciones PE-fenotipo obtenidos a partir de los registros clínicos (www.CFTR2.org) 25. Utilizando este ensayo, se identificaron dos individuos con mutaciones CFTR extremadamente raras cuyo organoides fueron sensibles a ivacaftor (VX-770) 25. prescripción posterior de este fármaco resultó en la respuesta clínica clara, resaltando el valor de la prueba FIS para que coincida con fármacos específicos con los pacientes con mutaciones raras en la ausencia de datos de ensayos clínicos. Esencial para la cuantificación de FIS son las condiciones de crecimiento y de ensayo óptimas, indicados sólo por una fracción limitada de organoides no hinchables (normalmente por debajo de 5%). Los altos niveles de plomo escombros a la subestimación de la inflamación, como una mayor proporción de estructuras, no hinchable no viables son reconocidos por el software de análisis de imágenes.

Las correlaciones entre las respuestas in vitro de la FIS y biomarcadores CFTR dependiente previamente establecidos (concentración de cloruro en sudor y intestmediciones de corriente inal) a nivel personalizado eran fácilmente demostrable en nuestros estudios previos 19, 25. Esto apoya la idea de que la medición de la función residual utilizando FIS en sujetos con FQ pueden complementar los enfoques actuales como un marcador de diagnóstico o pronóstico de una manera personalizada. El rendimiento del ensayo FIS en comparación con otros biomarcadores de la función de CFTR, tales como mediciones de la concentración de cloruro de sudor en vivo y mediciones de corriente intestinales en ex vivo biopsias rectales, permite un mejor control de la variabilidad técnica. También proporciona una lectura totalmente CFTR dependiente y un gran rango dinámico mediante el uso de una titulación de Fsk que precisa los tipos de función CFTR residual.

Sin embargo, el ensayo FIS refleja sólo el impacto del genotipo individual de la variabilidad de la eficacia del fármaco, mientras que la modulación de la enfermedad de CF se ve afectada por más que solamente la función de CFTR. para Drug respuesta, el ensayo es un reflejo de una respuesta tisular potencial. Aunque muy preciso en la medición de CFTR, la variación humana en la farmacocinética no se incorpora, en oposición a otro in vivo 7, 8 o mediciones directas CFTR ex vivo 32. Como se discutió previamente, modificadores CF (no tanto genéticos como ambientales) también influyen en el fenotipo, causando una desconexión entre las observaciones in vitro o biomarcadores CFTR y fenotipo clínico 2. Además, la identificación de posibles mutaciones que responden utilizando líneas celulares 33 está asociado con un menor impacto en los pacientes que necesitan para obtener una biopsia rectal para el establecimiento de organoides.

Drogas múltiples CFTR de metas están actualmente en desarrollo 1. Se prevé que los ensayos clínicos no permiten una predicción correcta de la eficacia clínica bobre la base CFTR estado mutacional solo. Como el ensayo de FIS mide la función de CFTR y la respuesta al fármaco funcionalmente, puede ser el método de elección para determinar qué fármaco funciona mejor para qué paciente. El ensayo FIS también puede ser útil para la identificación de los grupos de pacientes a ser incluidos en los ensayos de registro y para el desarrollo de nuevas modalidades de drogas. La estimulación de organoides colorrectal con plasma antes y durante el tratamiento puede ayudar aún más para cuantificar cantidades funcionales de circulación moduladores de CFTR en la sangre, lo que podría facilitar la dosificación personalizada y la selección de dosis de los fármacos en los ensayos clínicos 30, 31. Finalmente, FIS puede ser útil para una mejor comprensión básica de la función de CFTR y de sus interacciones con otros modificadores genéticos -SO ahora en gran parte desconocidos- de su función.

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Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el programa HIT-CF de los holandeses CF fundación (CNSF), ZonMW (40-00812-98-14103), el Fondo de Investigación del Hospital Infantil Wilhelmina y CZ, y Zilverenkruis / Achmea. Nos gustaría dar las gracias a S. Heida-Michel, M. Geerdink, KM de Winter-de Groot, y G. Berkers (Departamento de Neumología Pediátrica, el Hospital de Niños Wilhelmina, UMC Utrecht), y RHJ Houwen (Departamento de Gastroenterología Pediátrica, Wilhelmina hospital de niños, UMC Utrecht) para acercarse a los pacientes y obtener las biopsias para la generación de un CF Biobanco.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Advanced Dulbecco’s Modified Eagles Medium with Nutrient Mixture F-12 Hams (Ad-DF) 500 ml  Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #12634 stored at 4 °C
GlutaMax Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #35050 stored at 4 °C
Hepes Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen # 15630-056 stored at 4 °C
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #15140-122 stored at -20 °C
96 well culture plate Cellstar #655180
24 well culture plate Cellstar #662160
6 well culture plate Cellstar #657160
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (-) CaCl2 (-) MgCl2) (DPBS) Life Technologies: Gibco #14190-094 stored at 4 °C
Dulbecco’s Modified Eagles Medium  (DMEM) 500 ml  Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #31966-021 For Wnt-3A Conditioned Medium Production. Stored at 4 °C
Fetal Bovine Serum (FBS) Bovogen #SFBS LOT#11113 For Wnt-3A Conditioned Medium Production. Stored at -20 °C
L Wnt3A cell line ATCC #CRL-2647 For Wnt-3A Conditioend Medium Production.
TOP/FOP plasmids Millipore  #17-285 For measuring Wnt activity
pTK-Renilla Promega  #E2241 For measuring Wnt activity
HEK-293 ATCC #CRL-1573 For measuring Wnt activity
Dual-Luciferase Reporter Assay System Promega  #E1910 For measuring Wnt activity
Zeocin  Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #R250-01 For Wnt-3A Cell line selection
B27 supplement  Thermo Fisher Scientific:  Invitrogen #17504-044 stored at -20 °C
N-Acetylcysteine Sigma Aldrich #A9165-5G stored at -20 °C
Nicotinamide Sigma Aldrich #N0636 stored at -20 °C
Human Epithelial Growth Factor (hEGF) PrepoTech #AF-100-15 stored at -20 °C
Gastrin Sigma Aldrich #G9145 stored at -20 °C
TGFb type I Receptor inhibitor (A83-01)  Tocris #2939 stored at -20 °C
Y-27632 dihydrochloride (RhoKi) Selleckchem #S1049 stored at -20 °C
p38 MAPK inhibitor (p38i) (SB202190) Sigma Aldrich #S7067 stored at -20 °C
Primocin InvivoGen #ant-pm-1 stored at -20 °C
Human Noggin (hNoggin) PrepoTech #120-10C stored at -20 °C
Human R-spondin 3 (hRspo-3) R&D Systems #3500-RS/CF stored at -20 °C
Vancomycin Sigma Aldrich #861987- 250mg stored at -20 °C
Gentamycin Life Technologies: Gibco #15710-049 stored at -20 °C
Ethylenediamine tetraacetic acid (EDTA) Sigma Aldrich #431788 Stored at 4 °C
Matrigel Corning #354230 stored at -80 °C
TryplE Express  Life Technologies: Gibco #12605-010 for trypsinizing organoids for freezing
Recovery Cell Culture Freezing Medium Life Technologies: Gibco #12648010 for freezing
Calcein Life Technologies: Gibco #C3100MP stored at -20 °C
Forskolin R&D Systems #1099-50 mg stored at -80 °C
Lumacaftor (VX-809) Selleckchem #s1565 stored at -80 °C
Ivacaftor (VX-770) Selleckchem #s1144 stored at -80 °C
Name of Reagents/Material Solvent Stock Concentration Final Concentration
GlutaMax 200 mM 2 mM
Hepes 1 M 10 mM
Penicillin/Streptomycin 10K U/ml 10K µg/ml 100 U/ml 100 µg/ml
Zeocin  100 mg/ml  125 µg/ml
B27 supplement  100x 1x
N-Acetylcysteine MiliQ H2O 500 mM
Nicotinamide DPBS 1 M 10 mM
Human Epithelial Growth Factor (hEGF) DPBS 0.1% BSA 0.5 mg/ml 50 ng/ml
Gastrin DPBS 100 µM 10 nM
TGFb type I Receptor inhibitor (A83-01)  DMSO 5 mM 500 nM
Y-27632 dihydrochloride (RhoKi) DMSO 10 mM 10 µM
p38 MAPK inhibitor (p38i) (SB202190) DMSO 30 mM 10 µM
Primocin 50 mg/ml  100 µg/ml
Human Noggin (hNoggin) DPBS 0.1%BSA 100 µg/ml 100 ng/ml
Human R-spondin 3 (hRspo-3) varies per lot 300 ng/ml
Vancomycin 10 mg/ml 50 µg/ml
Gentamycin 10 mg/ml 50 µg/ml
Ethylenediamine tetraacetic acid (EDTA) MiliQ H2O 0.5 M 2 mM
Calcein DMSO 10 µg/ml 3.3 ng/ml
Forskolin DMSO 10 mM variable
Lumacaftor (VX-809) DMSO 20 mM variable
Ivacaftor (VX-770) DMSO 20 mM variable

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References

  1. De Boeck, K., Amaral, M. D. Progress in therapies for cystic fibrosis. Lancet Respir Med. 4, (8), 662-674 (2016).
  2. Cutting, G. R. Cystic fibrosis genetics: from molecular understanding to clinical application. Nature Rev Genet. 16, (1), 45-56 (2015).
  3. Sosnay, P. R., Siklosi, K. R., et al. Defining the disease liability of variants in the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator gene. Nature Genet. 45, (10), 1160-1167 (2013).
  4. Zielenski, J. Genotype and phenotype in cystic fibrosis. Respiration. 67, (2), 117-133 (2000).
  5. Van Goor, F., Hadida, S., et al. Rescue of CF airway epithelial cell function in vitro by a CFTR potentiator, VX-770. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 106, (44), 18825-18830 (2009).
  6. Van Goor, F., Hadida, S., et al. Correction of the F508del-CFTR protein processing defect in vitro by the investigational drug VX-809. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 108, (46), 18843-18848 (2011).
  7. Accurso, F. J., Rowe, S. M., et al. Effect of VX-770 in persons with cystic fibrosis and the G551D-CFTR mutation. N Engl J Med. 363, (21), 1991-2003 (2010).
  8. Ramsey, B. W., Davies, J., et al. A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation. N Engl J Med. 365, (18), 1663-1672 (2011).
  9. De Boeck, K., Munck, A., et al. Efficacy and safety of ivacaftor in patients with cystic fibrosis and a non-G551D gating mutation. J Cyst Fibros. 13, (6), 674-680 (2014).
  10. Boyle, M. P., Bell, S. C., et al. A CFTR corrector (lumacaftor) and a CFTR potentiator (ivacaftor) for treatment of patients with cystic fibrosis who have a phe508del CFTR mutation: a phase 2 randomised controlled trial. Lancet Respir Med. 2, (7), 527-538 (2014).
  11. Wainwright, C. E., Elborn, J. S., et al. Lumacaftor-Ivacaftor in Patients with Cystic Fibrosis Homozygous for Phe508del CFTR. N Engl J Med. 373, (3), 220-231 (2015).
  12. Van Goor, F., Yu, H., Burton, B., Hoffman, B. J. Effect of ivacaftor on CFTR forms with missense mutations associated with defects in protein processing or function. J Cyst Fibros. 13, (1), 29-36 (2014).
  13. Neuberger, T., Burton, B., Clark, H., Van Goor, F. Use of primary cultures of human bronchial epithelial cells isolated from cystic fibrosis patients for the pre-clinical testing of CFTR modulators. Methods Mol Biol. 741, 39-54 (2011).
  14. Randell, S. H., Fulcher, M. L., O'Neal, W., Olsen, J. C. Primary epithelial cell models for cystic fibrosis research. Methods Mol Biol. 742, 285-310 (2011).
  15. Karp, P. H., Moninger, T. O., et al. An in vitro model of differentiated human airway epithelia. Methods for establishing primary cultures. Methods Mol Biol. 188, 115-137 (2002).
  16. Sato, T., Vries, R. G., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, (7244), 262-265 (2009).
  17. Sato, T., Stange, D. E., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology. 141, (5), 1762-1772 (2011).
  18. Clevers, H. Modeling development and disease with Organoids. Cell. 165, (7), 1586-1597 (2016).
  19. Dekkers, J. F., Wiegerinck, C. L., et al. A functional CFTR assay using primary cystic fibrosis intestinal organoids. Nature Med. 19, (7), 939-945 (2013).
  20. Dekkers, J. F., van der Ent, C. K., Beekman, J. M. Novel opportunities for CFTR-targeting drug development using organoids. Rare Diseases. 1, (1), e27112 (2014).
  21. Servidoni, M. F., Sousa, M., et al. Rectal forceps biopsy procedure in cystic fibrosis: technical aspects and patients perspective for clinical trials feasibility. BMC gastroenterology. 13, 91 (2013).
  22. Ommen, D. D. Z. -V., Vijftigschild, L. A. W., et al. Limited premature termination codon suppression by read-through agents in cystic fibrosis intestinal organoids. J Cyst Fibros. 15, (2), 158-162 (2016).
  23. Dekkers, J. F., Gogorza Gondra, R. A., et al. Optimal correction of distinct CFTR folding mutants in rectal cystic fibrosis organoids. Eur Respir J. (2016).
  24. Dekkers, J. F., Van Mourik, P., et al. Potentiator synergy in rectal organoids carrying S1251N, G551D, or F508del CFTR mutations. J Cyst Fibros. (2016).
  25. Dekkers, J. F., Berkers, G., et al. Characterizing responses to CFTR-modulating drugs using rectal organoids derived from subjects with cystic fibrosis. Sci Transl Med. 8, (344), 344ra84 (2016).
  26. Li, H., Sheppard, D. N., Hug, M. J. Transepithelial electrical measurements with the Ussing chamber. J Cyst Fibros. 3, 123-126 (2004).
  27. Sheppard, D. N., Carson, M. R., Ostedgaard, L. S., Denning, G. M., Welsh, M. J. Expression of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in a model epithelium. Am J Physiol. 266, (4 Pt 1), L405-L413 (1994).
  28. Farin, H. F., van Es, J. H., Clevers, H. Redundant sources of Wnt regulate intestinal stem cells and promote formation of Paneth cells. Gastroenterology. 143, (6), 1518-1529 (2012).
  29. Drost, J., et al. Organoid culture systems for prostate epithelial and cancer tissue. Nat Protoc. 11, (2), 347-358 (2016).
  30. Vijftigschild, L. A. W., Berkers, G., et al. β2-adrenergic receptor agonists activate CFTR in organoids and subjects with cystic fibrosis. Eur Respir J. 48, (3), 768-779 (2016).
  31. Dekkers, R., et al. A bioassay using intestinal organoids to measure CFTR in human plasma. J Cyst Fibros. 14, (2), 178-181 (2015).
  32. Graeber, S. Y., et al. Intestinal Current Measurements Detect Activation of Mutant CFTR in Patients with Cystic Fibrosis with the G551D Mutation Treated with Ivacaftor. Am J Respir Crit Care Med. 192, (10), 1252-1255 (2015).
  33. Van Goor, F., et al. Ivacaftor potentiation of multiple CFTR channels with gating mutations. Journal of Cystic Fibrosis: Official Journal of the Eur Cyst Fibrosis. 11, (3), 237-245 (2012).

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