Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

הקרנת Assay עבור סטרס חמצוני בתוך הקו Cell חתולים Astrocyte, G355-5

Published: July 13, 2011 doi: 10.3791/2841

Summary

שיטת ההקרנה לזהות סביבות הסלולר חמצוני היא למדוד את החמצון של CM-H2DCFDA. לאחר חמצון מן הלא למתחם ניאון ניאון בתוך, תא CM-H2DCFDA שינויים. שינוי זה של הקרינה נמדדת cytometry זרימה ומציין את מספר התאים בסביבה חמצוני.

Abstract

לעתים קרובות, הציע מנגנון של וירוס המושרה נזק עצבי הוא סטרס חמצוני. האסטרוציטים יש תפקיד חשוב בשליטה על סטרס חמצוני של מערכת העצבים המרכזית (CNS). האסטרוציטים לעזור לשמור על הסביבה homeostatic עבור נוירונים, כמו גם נוירונים להגנה מפני מינים החמצן מגיב (ROS). CM-H2DCFDA הוא אינדיקטור התא חדיר עבור נוכחות של ROS. CM-H 2 DCFDA נכנס לתא כמתחם לא ניאון, ואז הוא הופך ניאון לאחר esterases הסלולר להסיר את קבוצות אצטט, ואת מתחם מתחמצן. מספר תאים, נמדד על ידי cytometry זרימה, כי הם מצאו להיות fluorescing ירוק הוא אינדיקציה למספר התאים נמצאים במצב חמצוני. CM-H 2 DCFDA רגיש חמצון על ידי מספר גדול של ROS שונים. חוסר הספציפיות, שלגביו ROS יכול לחמצן CM-H 2 DCFDA, עושה את זה תרכובת עוצר ערך לשימוש בשלבים הראשונים של חקירת הפתוגנזה, כמו זו assay יכול לשמש מסך עבור הסביבה הסלולרית חמצוני ללא תלות חמצן רדיקלי או שילוב של ROS אחראים התנאים הסלולר. ברגע שזה נקבע כי ROS נוכחים ידי חמצון של CM-H 2 DCFDA, אז ניסויים נוספים ניתן לבצע כדי לקבוע אילו ROS או שילוב של רוס מעורבים בתהליך הפתוגנזה בפרט. תוצאות המחקר הזה מראים כי עם תוספת של חמצן עלייה CM-H 2 DCFDA לזרוח זוהה יחסית שולטת מלוחים, המציין כי assay זה מבחן חשוב לאיתור סביבה חמצוני בתוך G355-5 תאים, חתולים תא astrocyte קו.

Protocol

1. Cell תרבות של האסטרוציטים חתולים ולטיפול עם H 2 O 2

  1. תא התרבות קו G355-5 ב בקבוקון 75 ס"מ 2 עם התקשורת DMEM בתוספת חומרים מזינים ב 37 ° C ו 5% CO 2 ומחוברות עד 60% (~ 5 ימים). החלף את המדיה כל 1-2 ימים או לפי הצורך לשמור על תרבות בריאה.
  2. הסר מדיה להוסיף 2 מ"ל של טריפסין 0.25%. הרם את התאים על ידי pipetting עבור 45 שניות - 1 דקות בטמפרטורת החדר (RT).
  3. העבר במהירות את ההשעיה על צינור חרוטי 15 מ"ל המכיל 10 מ"ל של התקשורת. מערבבים בעדינות.
  4. צנטריפוגה XG ב 300, 23 מעלות צלזיוס במשך 3 דקות כדי לקבל גלולה. בטל supernatant מבלי להפריע גלולה.
  5. הוסף 6-7 מ"ל של התקשורת טריים resuspend התאים.
  6. הוסף את ~ 1 מ"ל של התאים היטב בכל צלחת 6 באר. הוסף 2-3 מ"ל של התקשורת זה טוב לדגור עד ומחוברות 80-90%.
  7. הכן פתרון 100μM של מי חמצן (H 2 O 2) בתקשורת.
  8. הסר מדיה מכל טוב ולהחליף או 2 מ"ל התקשורת טרי (שליטה), 2 מ"ל של H 2 O 2 (טיפול) או 2ml של DPBS. לדגור על 37 ° C CO, 5% 2 עבור 3 ח
  9. הסר פתרונות ולהוסיף 1 מ"ל של טריפסין להרים את התאים. העברת התאים צינור 1.7 Eppendorf מ"ל מכיל 0.5 DPBS מ"ל. צעד זה צריך להתבצע על כל אחד בנפרד גם כדי למנוע מוות של תאים מן טריפסין דגירה ממושכת.
  10. ספין על XG 300 דקות 3, לבטל את supernatant ו resuspend ב 1 מ"ל של DPBS.

2. מכתים עבור ROS

  1. צעדים עבור כל מכתים צריך להתבצע עם חשיפה לאור מינימלי כדי למנוע הלבנת.
  2. הוסף 1 μl של CCCP 50 מ"מ לשלוט חיובית. לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 דקות 5.
  3. הוסף 5 μl של 10 CM-H פתרון mM DCFDA 2 לקבוצה 2 H 2 O. לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 דקות 15-30. כתם לא מתווסף המדגם מלוחים.
  4. לשטוף דגימות עם 2 מ"ל של DPBS להסיר כתם שיורי.
  5. ספין על XG 300 דקות 3 כדי לקבל גלולה.
  6. Resuspend תאים 0.5 מ"ל של DPBS. הוסף 1 μl PI לטעום כל, למעט מלח.
  7. העברת דגימות צינור הזרימה 5 מ"ל cytometer.
  8. הפעלה על cytometer את הזרימה.

3. תזרים cytometry

  1. הפעל דגימות על Beckman Coulter FC500 (או שווה ערך) מצויד 488 ננומטר ארגון לייזר עובר הלהקה הבאה: 525, 775 ו - 620 ננומטר, כל ± 20 ננומטר.
  2. הכן את שולטת המתאים: תאים בלא כתם, מוכתם CM-H 2 DCFDA בלבד, רק PI, מוכתם כפול (בקרה שלילית).
  3. הפוך את פרוטוקול יש histoplots הבאים: FS מול אס, לצרכן לעומת CM-H 2 DCFDA. זה צריך גם את היסטוגרמות הבאים: מספר התא לעומת FL1, fl2 ו FL3, התואמת את הכתמים.
  4. לפני הפעלת דגימות, לבדוק, ציוד נוזלים מיכל פסולת. לחמם את ציוד דקות לפחות 20.
  5. נקו את הציוד לבצע כיול עם חרוזים המתאים על פי הסטנדרטים היצרנים.
  6. בחר פרוטוקול שלכם ולהפעיל את הדגימות.
  7. נקו את הציוד כפי שנעשה בעבר.
  8. נקו את קו ואקום פי הסטנדרטים היצרנים.
  9. כבה את זרימת ולנקות את קו הראש / ואקום.
  10. כבה את התוכנה ואת המחשב.

4. נציג תוצאות:

Cytometry תוצאות תזרים נותחו באמצעות FlowJo 7.6 ואת שולטת כתם שימשו אובייקטיבית להגדיר את gating. על בסיס זה, תאים בריאים להופיע בצד שמאל של ההיסטוגרמה ו ROS (סטרס חמצוני) זוהה כמו שינוי של תאים ימינה. איור 1 מציג את תוצאות ההשפעה של חמצן על האסטרוציטים חתולים בריאים. מנתוני FL1 שימש למדוד את העוצמה של CM-H 2 DCFDA, אשר מעיד על קיומו של ROS. כצפוי, כמות גבוהה יותר של ROS זוהה במדגם שטופלו H 2 O 2. זה מוצג על ההיסטוגרמה כמו שינוי בעוצמת פלורסנט משמאל לימין. כאשר משווים תאים בריאים שטופלו DMEM לעומת DPBS, לא חל שינוי משמעותי בהיקף של ROS (איור 2).

איור 1
1. תרשים זרימה cytometry תוצאות של רמות של סטרס חמצוני של האסטרוציטים חתולים בריאים ההשפעה של H 2 O 2 על תאים בריאים. תוצאות המחקר מראות כי H 2 O 2 מעלה את רמות של ROS בתאים בריאים לעומת תאים ללא טיפול (DMEM).

איור 2
2. תרשים זרימה cytometry תוצאות הרמות של ROS שהתגלו תאים בריאים מודגרות עבור 3hrs עם DPBS.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

המנגנון המוצע לעתים קרובות של הנגיף המושרה נזק עצבי הוא סטרס חמצוני 1, 4, 7, 9, 13, 15, 16, 18-22, 27, 31. בעיקרון, מוצע כי באמצעות חשיפה ויראלי גליה (האסטרוציטים ו microglia) לשחרר רדיקלים תגובתי כגון, הידרוקסיד, אניון superoxide, תחמוצת החנקן, ו / או מי חמצן, שהם רעילים לנוירונים. באופן דומה, סטרס חמצוני יש גם הציע כמנגנון פתולוגיים מרכזי מתאמפטמין-Induced neurotoxicity 2, 6, 17. מאז הקבוצה מעוניינת את השפעת הווירוס וגם סמים של התעללות על מערכת העצבים המרכזית, אנו נבחר להשתמש מבחן מיון מהיר כדי לקבוע הנוכחי של ROS עודף האסטרוציטים. רוב גלוטתיון עצבי המיוצר על ידי האסטרוציטים, ומסר לאחר מכן את הנוירונים 5, 8, 10-12, 24, 26, 29, 30. לכן, את תפקיד האסטרוציטים ב סטרס חמצוני חשוב בשמירה על הסביבה homeostatic עבור נוירונים, כמו גם להגן על הנוירונים מפני ROS, ואת הסיבה בתרביות תאים astrocyte נבחרו לצורך מחקר זה.

CM-H 2 DCFDA ידוע גם בשם 2 ", 7'-dichlorofluorescein ו H2DCF. CM-H 2 DCFDA הוא אינדיקטור התא חדיר עבור נוכחות של מינים חמצן תגובתי. CM-H 2 DCFDA נכנס לתא כמתחם לא פלורסנט, אשר הופך ניאון לאחר esterases הסלולר להסיר את קבוצות אצטט, ואת המתחם הופך מחומצן. פעם בתוך התא לבין קבוצות אצטט מוסרים, CM-H 2 DCFDA ניתן חמצון על ידי מספר מינים ROS, כולל תחמוצת החנקן, אניונים peroxynitrite, מי חמצן, hydroperoxides אורגני 3, 14, 25, וכתוצאה מכך ירוק פלורסנט המוצר 23, 28. חוסר לציין את ROS, אשר יכול לחמצן CM-H 2 DCFDA, הופך אותו מגיב יקר בשלבים הראשונים של חקירת בפתוגנזה, שבה מנגנון סטרס חמצוני הוא האמין להיות משחק תפקיד, אך לא ידוע אשר חמצן רדיקלי יכול להיות מעורב, ולא מבחן בנפרד ROS. ברגע שזה נקבע כי ROS נוכחים ידי חמצון של CM-H 2 DCFDA, אז ניסויים נוספים ניתן לבצע כדי לקבוע, אשר ROS או שילוב של רוס מעורבים בתהליך הפתוגנזה בפרט. תוצאות המחקר הנוכחי מראות כי עם תוספת של חמצן עלייה CM-H 2 DCFDA לזרוח זוהה בהשוואה לשלוט מלוחים, המציין כי assay זה מבחן חשוב לאיתור סביבה חמצוני בתוך G355-5 תאים, קו חתולים תא astrocyte.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

אנו מודים מוצרים ReadiSorb על תמיכתם הנדיבה של מחקרים אלה.

Acknowledgments

אנו מודים מוצרים ReadiSorb על תמיכתם הנדיבה של מחקרים אלה.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM Cellgro 15-013-CV
MEM Vitamins Cellgro 25-020-cl 1% (v/v)
L-glutamine Hyclone 17-605E 1% (v/v)
Non Essential Amino Acids Hyclone 25-025-cl 1% (v/v)
FBS Hyclone SH30071.03 20% (v/v)
Essential Amino Acids Cellgro 25-030-cl 0.2% (v/v)
500ml vacuum filtration system VWR international 87006-076
15 ml conical tubes Falcon BD 352097
75 cm2 tissue culture flasks Falcon BD 353136
6 well tissue culture plate Falcon BD 353224
CM-H2DCFDA Invitrogen C6827
Propidium Iodide (PI) Sigma-Aldrich P4170-10mg
Trypsin Lonza Inc. 17-160F
H2O2 Sigma-Aldrich H6520
HyQ Antibiotic Hyclone SV30079.01 0.1% (v/v)
G355-5 cells ATCC CRL-2033 Normal feline brain

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bukrinsky, M. I., Nottet, H. S., Schmidtmayerova, H. L., Dubrovsky, H., Flanagan, C. R., Mullins, M. E., Lipton, S. A., Gendelman, H. E. Regulation of nitric oxide synthase activity in human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1)-infected monocytes: implications for HIV-associated neurological disease. J Exp Med. 181, 735-745 (1995).
  2. Cadet, J. L., Ali, S., Epstein, C. Involvement of oxygen-based radicals in methamphetamine-induced neurotoxicity: evidence from the use of CuZnSOD transgenic mice. Ann N Y Acad Sci. 738, 388-3891 (1994).
  3. Cathcart, R., Schwiers, E., Ames, B. N. Detection of picomole levels of hydroperoxides using a fluorescent dichlorofluorescein assay. Anal Biochem. 134, 111-116 (1983).
  4. Chao, C. C., Hu, S., Peterson, P. K. Glia: the not so innocent bystanders. J Neurovirol. 2, 234-239 (1996).
  5. Cooper, A. J., Kristal, B. S. Multiple roles of glutathione in the central nervous system. Biol Chem. 378, 793-802 (1997).
  6. Cubells, J. F., Rayport, S., Rajendran, G., Sulzer, D. Methamphetamine neurotoxicity involves vacuolation of endocytic organelles and dopamine-dependent intracellular oxidative stress. J Neurosci. 14, 2260-2271 (1994).
  7. Dawson, V. L., Dawson, T. M., Uhl, G. R., Snyder, S. H. Human immunodeficiency virus type 1 coat protein neurotoxicity mediated by nitric oxide in primary cortical cultures. Proc Natl Acad Sci U S A. 90, 3256-329 (1993).
  8. Desagher, S., Glowinski, J., Premont, J. Astrocytes protect neurons from hydrogen peroxide toxicity. J Neurosci. 16, 2553-2562 (1996).
  9. Dewhurst, S., Gelbard, H. A., Fine, S. M. Neuropathogenesis of AIDS. Mol Med Today. 2, 16-23 (1996).
  10. Dringen, R. Metabolism and functions of glutathione in brain. Prog Neurobiol. 62, 649-671 (2000).
  11. Dringen, R., Hamprecht, B. Glutathione restoration as indicator for cellular metabolism of astroglial cells. Dev Neurosci. 20, 401-407 (1998).
  12. Dringen, R., Pfeiffer, B., Hamprecht, B. Synthesis of the Antioxidant Glutathione in Neurons: Supply by Astrocytes of CysGly as Precursor for Neuronal Glutathione. J Neurosci. 19, 562-569 (1999).
  13. Everall, I. P. H. udson, L, R. W. K. erwin Decreased absolute levels of ascorbic acid and unaltered vasoactive intestinal polypeptide receptor binding in the frontal cortex in acquired immunodeficiency syndrome. Neurosci Lett. 224, 119-1122 (1997).
  14. Gabriel, C., Camins, A., Sureda, F. X., Aquirre, L., Escubedo, E., Pallas, M., Camarasa, J. Determination of nitric oxide generation in mammalian neurons using dichlorofluorescin diacetate and flow cytometry. J Pharmacol Toxicol Methods. 38, 93-938 (1997).
  15. Gendelman, H. E., Genis, P., Jett, M., Zhai, Q. H., Nottet, H. S. An experimental model system for HIV-1-induced brain injury. Adv Neuroimmunol. 4, 189-1893 (1994).
  16. Hayman, M., Arbuthnott, G., Harkiss, G., Brace, H., Filippi, P., Philippon, V., Thomson, D., Vigne, R., Wright, A. Neurotoxicity of peptide analogues of the transactivating protein tat from Maedi-Visna virus and human immunodeficiency virus. Neuroscience. 53, 1-6 (1993).
  17. Hirata, H., Ladenheim, B., Rothman, R. B., Epstein, C., Cadet, J. L. Methamphetamine-induced serotonin neurotoxicity is mediated by superoxide radicals. Brain Res. , 677-6345 (1995).
  18. Koka, P., He, K., Zack, J. A., Kitchen, S., Peacock, W., Fried, I., Tran, T., Yashar, S. S., Merrill, J. E. Human immunodeficiency virus 1 envelope proteins induce interleukin 1, tumor necrosis factor alpha, and nitric oxide in glial cultures derived from fetal, neonatal, and adult human brain. J Exp Med. 182, 941-951 (1995).
  19. Kong, L. Y., Wilson, B. C., McMillian, M. K., Bing, G., Hudson, P. M., Hong, J. S. The effects of the HIV-1 envelope protein gp120 on the production of nitric oxide and proinflammatory cytokines in mixed glial cell cultures. Cell Immunol. 172, 77-83 (1996).
  20. Koutsilieri, E., Gotz, M. E., Sopper, S., Sauer, U., Demuth, M., ter Meulen, V., Riederer, P. Regulation of glutathione and cell toxicity following exposure to neurotropic substances and human immunodeficiency virus-1 in vitro. J Neurovirol. 3, 342-349 (1997).
  21. Lipton, S. A. Similarity of neuronal cell injury and death in AIDS dementia and focal cerebral ischemia: potential treatment with NMDA open-channel blockers and nitric oxide-related species. Brain Pathol. 6, 507-517 (1996).
  22. Lipton, S. A., Yeh, M., Dreyer, E. B. Update on current models of HIV-related neuronal injury: platelet-activating factor, arachidonic acid and nitric oxide. Adv Neuroimmunol. 4, 181-188 (1994).
  23. Mills, E. M., Takeda, K., Yu, Z. X., Ferrans, V., Katagiri, Y., Jiang, H., Lavigne, M. C., Leto, T. L., Guroff, G. Nerve growth factor treatment prevents the increase in superoxide produced by epidermal growth factor in PC12 cells. J Biol Chem. 273, 22165-22168 (1998).
  24. Peuchen, S., Duchen, M. R., Clark, J. B. Modulation of the glutathione redox state in adult astrocytes. Biochem Soc Trans. 24, 449S-449S (1996).
  25. Possel, H., Noack, H., Augustin, W., Keilhoff, G., Wolf, G. 2,7-Dihydrodichlorofluorescein diacetate as a fluorescent marker for peroxynitrite formation. FEBS Lett. 416, 175-178 (1997).
  26. Sagara, J., Makino, N., Bannai, S. Glutathione efflux from cultured astrocytes. J Neurochem. 66, 1876-1881 (1996).
  27. Stefano, G. B., Smith, E. M., Paemen, L. R., Hughes, T. K. Jr HIV gp120 associated neurological deficits: a potential role for nitric oxide and other signal molecules. Advances in Neuroimmunology. 3, 47-57 (1993).
  28. Sundaresan, M., Yu, Z. X., Ferrans, V. J., Irani, K., Finkel, T. Requirement for generation of H2O2 for platelet-derived growth factor signal transduction. Science. 270, 296-299 (1995).
  29. Wang, X. F., Cynader, M. S. Astrocytes provide cysteine to neurons by releasing glutathione. J Neurochem. 74, 1434-1442 (2000).
  30. Wilson, J. X. Antioxidant defense of the brain: a role for astrocytes. Can J Physiol Pharmacol. 75, 1149-1163 (1997).
  31. Zenger, E., Collisson, E. W., Barhoumi, R., Burghardt, R. C., Danave, I. R., Tiffany-Castiglioni, E. Laser cytometric analysis of FIV-induced injury in astroglia. Glia. 13, 92-100 (1995).

Tags

Neuroscience גיליון 53 האסטרוציטים סטרס חמצוני cytometry זרימה CM-H2DCFDA
הקרנת Assay עבור סטרס חמצוני בתוך הקו Cell חתולים Astrocyte, G355-5
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Testa, M. P., Alvarado, O.,More

Testa, M. P., Alvarado, O., Wournell, A., Lee, J., Guilford, F. T., Henriksen, S. H., Phillips, T. R. Screening Assay for Oxidative Stress in a Feline Astrocyte Cell Line, G355-5. J. Vis. Exp. (53), e2841, doi:10.3791/2841 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter