Afin d'étudier les changements de fibres nerveuses nociceptives (intraépidermiques IENFs) dans les neuropathies douloureuses (PN), nous avons développé des protocoles qui pourraient examiner directement les modifications morphologiques tridimensionnels observés dans IENFs nociceptifs. Analyse tridimensionnelle de IENFs a le potentiel d'évaluer les changements morphologiques des IENF en PN.
Une biopsie de la peau est couramment utilisé pour quantifier la densité des fibres nerveuses intraépidermiques (IENFD) pour le diagnostic de neuropathie périphérique 1,2. À l'heure actuelle, il est de pratique courante de collecter 3 biopsies cutanées mm de la jambe distale (DL) et la cuisse proximale (PT) pour l'évaluation des polyneuropathies dépendant de la longueur 3. Toutefois, en raison de la nature multidirectionnelle de IENFs, il est difficile d'examiner chevauchement structures nerveuses à travers l'analyse de l'imagerie en deux dimensions (2D). Alternativement, l'imagerie en trois dimensions (3D) pourrait fournir une meilleure solution à ce dilemme.
Dans le présent rapport, nous présentons les méthodes d'application de l'imagerie 3D pour étudier neuropathie douloureuse (PN). Afin d'identifier IENFs, des échantillons de peau sont traités pour l'analyse d'immunofluorescence d'un produit de gène de la protéine 9.5 (PGP), un marqueur neuronal casserole. À l'heure actuelle, il est de pratique courante pour diagnostiquer petits neuropathies de fibres en utilisant IENFD dissuaderminées par PGP immunohistochimie en utilisant la microscopie en fond clair 4. Dans la présente étude, nous avons appliqué double analyse d'immunofluorescence pour identifier IENFD totale, en utilisant PGP, et IENF nociceptive, grâce à l'utilisation d'anticorps qui reconnaissent la tropomyosine-récepteur-kinase A, le récepteur (Trk A) une forte affinité pour le facteur de croissance nerveuse 5. Les avantages de IENF co-marquage avec PGP et Trk anticorps de prestations de l'étude des PN par coloration clairement fibres PGP-positives, nociceptifs. Ces signaux de fluorescence peuvent être quantifiés pour déterminer les changements IENFD et morphologiques nociceptifs de IENF associés à PN. Les images fluorescentes sont acquises par microscopie confocale et traitées pour l'analyse 3D. 3D-imagerie fournit des capacités de rotation pour analyser plus avant les modifications morphologiques associées à PN. Pris dans leur ensemble, fluorescent co-marquage, l'imagerie confocale et l'analyse 3D bénéficient clairement de l'étude des PN.
À l'heure actuelle, il est de pratique courante pour les médecins de quantifier la densité des fibres nerveuses intra-épidermique (IENFD) à partir de biopsies de peau poinçon, qui peuvent être utilisés pour diagnostiquer les petits neuropathies de fibres 3, 6-8. Les biopsies sont prises à partir de la jambe distale (DL), 10 cm au-dessus de la malléole externe, et la cuisse proximale (PT), 20 cm en dessous du épine iliaque antérieure 9. Tous IENF sont marquées d'utiliser le produit de gène de la protéine 9.5 (PGP), un marqueur neuronal pan 10-12. À l'heure actuelle, il est de pratique courante pour diagnostiquer petits neuropathies de fibres en utilisant IENFD déterminé par coloration avec PGP brightfield microscopie 6. En outre, plusieurs groupes de recherche ont utilisé des protocoles d'immunofluorescence pour PGP immunohistochimie 7-9. Neuropathie des petites fibres est souvent associée à la douleur neuropathique. Afin de mieux comprendre le rôle de IENF indispensables pour le traitement de la douleur, nous avons développé une technique de co-label IENF totale avec des fibres qui génèrent des douleurs. Nociceptive IENF, spécifiquement Aδ et les fibres de carbone, peuvent être étudiés à travers le co-marquage de IENF avec PGP et le marqueur nociceptive, tropomyosin-récepteur-kinase A (Trk A) 5. Trk A est le récepteur de haute affinité pour le facteur de croissance du tissu nerveux qui est essentiel pour le développement de la nociception. Les fibres nerveuses nociceptives A-positifs sont des fibres Trk peptidergiques qui expriment la substance P (SP) et la calcitonine de peptide lié au gène de (CGRP). Auparavant, Lauria et ses collègues ont appliqué la technique du double étiquetage pour étudier PN, co-marquage IENF PGP-positif avec un marqueur nociceptive 10. Dans notre précédente étude, nous avons démontré que Trk IENF A-positif, mais pas Trk IENF A-négatif, ont été régulés à la hausse dans un modèle animal de la neuropathie diabétique douloureuse 5. Cette technique de co-marquage permet de comparer la quantification des IENFD nociceptive au total IENFD et la possibilité d'étudier les changements morphologiques associés à PN. La capacité de visualiser nociceptive IENF et sociétésre quantification de IENFD total à IENFD nociceptive pourrait fournir une preuve objective de la présence de la douleur, et peut-être un aperçu de la gravité de la douleur associée à la PN. Cette technique est également applicable à la peau des modèles animaux. En comparaison avec les études précédentes, le protocole actuel décrit les méthodes d'analyse d'image 3D, créant la possibilité d'éviter des erreurs qui pourraient se produire dans l'analyse d'images 2D.
Mesure de IENFD a été largement utilisé pour déterminer le degré de neuropathies périphériques 13,14. À l'heure actuelle, le protocole le plus couramment utilisé ne mesure que les densités de fibres nerveuses qui traversent la membrane basale de l'épiderme, elle ne tient pas compte de branchement axonal et / ou les modifications morphologiques des nerfs. En outre, l'analyse IENFD actuelle n'a pas été montré une corrélation IENFD avec la présence de la douleur chez PN 15.</…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été financé par les Instituts de subventions de la Santé nationale K08 NS061039-01A2, le Programme de recherche en neurologie et Discovery, et l'Institut Alfred Taubman Medical Research de l'Université du Michigan. Ce travail utilise la morphologie et l'analyse des images de base de la recherche sur le diabète Michigan et centre de formation, financée par les National Institutes of Health subvention 5P90 DK-20572 de l'Institut national du diabète et des maladies digestives et rénales. Les auteurs tiennent à remercier Robinson Singleton et Gordon Smith (Université de l'Utah) pour leur généreux don d'échantillons de peau humaine pour soutenir le développement initial de la technique d'immunohistochimie de biomarqueurs nociceptive.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
10X PBS | Fisher Scientific | BP399-4 | To make up 1X PBS |
Image-IT FX Signal | Invitrogen | I36933 | Image-IT |
Protein Gene Product 9.5 (Polyclonal rabbit) | AbD Serotec | 7863-0504 | PGP |
Tropomyosin Related-Kinase A (Polyclonal goat) | R&D Systems | AF1056 | Trk A |
Alexa Fluor 488 donkey α-rabbit | Invitrogen | A21206 | AF488 donkey α-goat |
Alexa Fluor 647 donkey α-goat | Invitrogen | A21447 | AF647 donkey α-goat |
Albumin, from Bovine Serum | Sigma-Aldrich | A7906-100 | BSA |
Triton X- 100 | Sigma-Aldrich | T9284 | TX-100 |
Non-calibrated Loop | LeLoop | MP 199025 | inoculating Loop |
96-well assay plate | Corning Incorporated | 3603 | Well plate |
Prolong Gold antifade reagent with DAPI | Invitrogen | P36931 | DAPI |
Microscope Cover Glass 22×22 mm | Fisher Scientific | 12-541-B | Coverslips |
Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | Microscope Slides |
Olympus Fluoview Laser Scanning Confocal Microscope | Olympus | FV500 | Confocal Microscope |
Optimum Cutting Temperature | Sakura | 4583 | OCT |
Leica cryostat | Leica | CM1850 | Cryostat |