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Biology

拘束されていない全身プレチスモグラフィを使用したマウスにおける呼吸機能の測定

Published: August 12, 2014 doi: 10.3791/51755

Summary

呼吸生理学の評価は、伝統的に、動物の拘束や鎮静を必要とする技術、に頼っています。非拘束全身プレチスモグラフィは、しかし、動物モデルにおける呼吸生理学の正確な、非侵襲的、定量的な分析を提供する。また、この技術は長期的な研究を可能にしたマウスの繰り返し呼吸評価を可能にする。

Abstract

呼吸機能障害は、世界での罹患率および死亡率の主要な原因の一つであり、死亡率は上昇し続けている。げっ歯類モデルにおいて肺機能の定量的評価は、今後の治療法の開発における重要なツールである。一般的に侵襲容積脈波と強制振動を含む呼吸機能を評価するための技術を使用していました。これらの技術は貴重な情報を提供するが、データ収集に起因麻酔および/または動物の侵襲的な計測のための必要性にアーチファクトおよび実験的変動性を伴うことができる。これとは対照的に、拘束されていない全身プレチスモグラフィー(UWBP)は呼吸パラメータを分析することで、正確な、非侵襲的、定量的な方法を提供しています。この技術は、従来のプレチスモグラフィー技術に共通で麻酔し、拘束の使用を回避する。このビデオでは、機器のセットアップ、キャリブレーションおよび肺機能の記録を含むUWBP手順を紹介します。それ収集したデータを分析するだけでなく、動物の動きに起因する実験的な外れ値や工芸品を特定する方法を説明します。この技術を用いて得られた呼吸パラメータは一回換気量、分容積、吸気デューティサイクル、吸気流量及び呼気時間を吸気時間の比率を含む。 UWBPは専門的なスキルに依存しており、実行するのに安価ではありません。潜在的なユーザーにとって最も魅力的なキーUWBPの特徴、そして、同じ動物で肺機能の反復測定を実行する機能である。

Introduction

肺機能障害は、世界で罹患率および死亡率の主要な原因の1つである。条件は咳、胸の痛みや呼吸困難の代名詞不十分な酸素交換、ことを特徴としている。世界的な死亡率1〜10%のための呼吸器疾患を占めている。世界保健機関によると、死亡率に起因永続的な喫煙、汚染および職業的刺激物に上昇するように設定されている。 UWBP強く2を分析し、従来の生化学的および組織学的を補完する肺の生理機能を研究するための有用な付加である。肺の評価のために使用される他の手順はUWBPと同じ利点を提供しない。侵襲プレチスモは、動物が3,4麻酔されるので、結果として呼吸測定は、必ずしも自然な状態を反映していない必要があり、一般的に使用される技術である。さらに、機械的な換気および化学的な課題のための必要条件は、将来の測定値3,4を排除する。呼吸データを収集する別の方法は、UWBP 5と比較して、呼吸パラメータの細かい変化に敏感で強制振動によるものである。強制振動は、しかし、侵襲的技術であり、データ収集5-7の動物の終端を必要とする。

UWBPは、特殊なチャンバー内に動物を配置することを含む。吸気の間、呼気が暖められると水蒸気圧の上昇、肺内の加湿ガス8の熱膨張を引き起こす。この効果は、プレチスモグラフ室8内の圧力の上昇を作成する風量の純変化を引き起こす。反対は、動物からの呼吸波形を生成する呼気中に発生します。波形解析は、その後、呼吸トレースから測定するために使用される:呼吸数(呼吸/分)、全呼吸サイクル時間(秒)、吸息/呼気時間チタン(Ti / Teを、秒)により、各一回換気量(Pに圧力の変化T)。

UWBPは、動物モデルにおける呼吸生理学の正確な、非侵襲的、定量的な分析を提供し、呼吸器疾患および肺機能6,9の進行を測定するために使用することができる。他の容積脈波法に反して、UWBPは、麻酔、拘束や工芸品と実験変動6,9を生成する侵襲的な操作の使用を回避する。麻酔は、呼吸を抑制することができる心拍数を変化させ、10を制御するために挑戦することができる。拘束は、コルチコステロンおよびエピネフリンリリース11,13経由による追加的なストレスに呼吸の増加を誘導する。 UWBPの重要な特徴は、長期的な研究には、影響を受けやすいこと、生理的な評価を繰り返される。 UWBP強く、肺生理学の長手方向の評価のために推奨され、将来の呼吸の薬剤の査定のための貴重なスキルを提供しています。

ブレオマイシン、オボアルブミン、および低酸素症は、いくつかの研究において、呼吸課題を誘導するために利用されているとUWBPが正常に正確な肺の生理学的な評価7,9,13-16を測定している。記載されたプロトコルは、標準的な成人の実験マウス用に設計されている。しかし、UWBPは、ラット、モルモット、および非ヒト霊長類17-20などの他の動物に適応されている。 UWBPは、肺機能不全の評価に限定されるものではなく、肺の成熟3の評価のために使用されてきた。UWBPの汎用性、シンプルさと再現性が動物で肺機能を評価するための優れた手法を確立した。さまざまなソフトウェアが(資機材の表を参照)、この手順に従うことが要求されます。経験豊かな科学者は、1時間以内に、マウスでは、このプロトコルを実行することができるであろう。

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Protocol

注:以下の実験手順は、モナッシュ大学の動物倫理委員会によって承認され、科学的目的のための動物の管理と使用(2006)の実践のためのオーストラリアの規範に従って行われる。代表的な結果を生成するために使用される成体雌C57BL / 6マウスをモナッシュ動物Servicesから入手した。マウスを、12時間の明暗サイクルで、特定病原体を含まない、温度および湿度制御された部屋で飼育した。これらのマウスは、餌と水を自由に摂取させた。

1。初期セットアップ

  1. USBケーブルを介して記録するためのデータ収集マシンにラップトップ/デスクトップを接続します。
  2. BNCケーブルを経由してデータ収集機の「入力1」に「出力1」からブリッジ·アンプを接続します。
  3. オクタルブリッジアンプの「チャンネル1」への圧力変換器を挿入します。上のデータ収集機を回して、解析ソフトウェアを開きます。ソフトウェアは自動べき自動的(資機材の表を参照)機器のセットアップを検出する。
  4. ソフトウェアのセットアップツール·バーに見つかったオープンチャンネル設定。変更チャンネル数は1に記録されている。
  5. 室内圧力とブリッジアンプを校正する水柱装置を測定するための気圧計を設定します。水柱装置は、プラスチックチューブによって接続された2つの5ミリリットル血清シリンジピペットを含む。
  6. 水で列を記入し、水位が定規とバランスしていることを確認。プラスチックチューブの一枚は、各ピペットの上部に接続します。 図2は、セットアップ水柱を示しています。

2橋アンプキャリブレーション

注:水柱への空気の注入は、1cmのH 2 O撓みを作 ​​成するために必要とされるブリッジ増幅器を較正する。これは条件の単一のセットの下で発生し、ユーザの装置に依存しているでしょう。明確にするための手順は、Dこの研究室では、キャリブレーションを実行する方法emonstrate。

  1. 300μlに1mlシリンジを撤回。水柱の右側のチューブの端に活栓にシリンジを取り付けます。注:ストップコックをシリンジと水柱に開放されていることを確認し、室内の空気を閉じた。水位は、この時点でバランスされていない場合は、室内の空気と水の塔に開いていること、これが水を再調整しますので、ストップコックを回します。水柱の左側のチューブは、シリンジの急落によって誘発される圧力の変化を測定するために圧力変換器に接続されるべきである。
  2. 圧力トランスデューサ(変換器のトップリング)上のコネクタに左側に水柱からチューブを取り付けます。
  3. ソフトウェアの右側にメイン画面で1チャンネルと「ブリッジ·アンプ」を(資機材の表を参照)を選択するために、次の発見スクロールダウンメニューを選択します。
  4. 入力する5 mVの、20Hzのローパス、への設定が「反転」ボックスをチェックし、「ゼロ」をクリックします。 〜0mVにトレースを設定するために「ゼロ」をクリックしてください。見やすく1:4にウィンドウサイズを小さくしてください。
  5. すべてがセットアップすると、3秒のためにそれを残して、1ミリリットルの注射器を押し下げる。圧力が変更されているので、これはソフトウェア上で突然のスパイクが表示されます。 300μlを押されると、圧力を1cmによって水柱の中の水を移動します。この既知の値は、ブリッジ·アンプを校正するのに役立ちます。
    NOTE:起因300μlの押下にチャンバ内の圧力の増加は、後の計算に使用されるP K値に相当する。
  6. ブリッジアンプウィン​​ドウの左下隅に見られる「入力装置」を選択します。
  7. 前そうでなければ「ゼロ地域」として知られているスパイクの「バックグラウンド·トレース」を強調表示します。
    1. 次の「ポイント1」の横にある矢印をクリックして、このは、BACが生成されます-0.002 MV-0.002 mVの(値が正確に0mVになることはありません)の範囲内でkground信号。
    2. バックグラウンド信号ウィンドウに隣接したウィンドウで入力し、「0」。
  8. シリンジが押下されたときから「グラフの増加圧力領域」を強調表示します。次のポイント2にある矢印をクリックし、値は0.9〜1.2 mV程度の範囲であるべきである。
    1. タイプ「1」の横に「増加圧力」ウィンドウにウィンドウ内。ステップ2.7および2.8上で視覚的に明確にするためのオクタルブリッジアンプの損傷を示している可能性があり、指定した範囲外で見つかった3。値の対応してます。
  9. ウィンドウの右上隅で発見'単位を定義」を選択し、「CMH 2 O」に進みます。このオプションが利用できない場合は、手動で入力することができる。 [OK]をクリックします。
  10. (2.1参照)「ブリッジアンプ」メニューに戻ります。 1 mVのを選択し、「ゼロ」にアンプを設定;。これは、キャリブレーションを完了し、水柱を安全に取り外すことができます。

3録音肺機能

  1. マウス(g)を秤量する。注:前の生理的評価に1週間容積脈波室環境にマウスをご紹介します。これは順化を支援し、後日、この手順を実行する際のストレスを軽減します。 UWBPのセットアップを示す全体概略については、 図4を参照してください。
  2. 直腸体温計で体温を測定します。挿入前ワセリンで温度計に注油。温度読み取りを記録し、80%(v / v)のエタノールで潤滑油をきれい。そのような新生児の仔マウスのような非常に小さい動物を使用する場合は、平均体温値が代わりに赤外線温度計を用いて測定することができる。
  3. プレチスモ室の1穴の端に温度/相対湿度プローブを配置します。温度、湿度、barometrを記録内でマウスを配置する前に、容積脈波室内のIC圧力。
  4. 容積脈波チャンバ内にマウスを置き、わずかに開いた端部を覆う。これは、マウスが順応することができます。チャンバを閉じます。
  5. 一つの穴を持つプレチスモ室側に挿入された温度/湿度プローブを用いて、今2穴の反対側にある変換器と注射器を挿入します。
  6. 約15〜45秒間、ソフトウェアプログラムおよび記録を押し「スタート」。動物が動いていないデータのレコード5-10秒。運動は、動物の基礎呼吸生理を変化させ、悪い結果をもたらす。呼吸は、プログラム上の直線経路で発振する必要があります。これらは、使用可能なデータです。注:排尿または排便のプレチスモグラフィーチャンバー内の温度および湿度の上昇につながる可能性がある。これは分析中に結果を不明瞭にします。排尿や排便の際には、すぐに録画を停止およびPLをきれいに80%(v / v)エタノールでethysmographyチャンバ。データは拒否されるべき次善の結果、視覚的に表現するために、図6を参照してください。
  7. 45秒間記録した後、プレス機のソフトウェア上の「停止」(資機材の表を参照)のプログラム。容積脈波室からマウスを取り出し、すぐに室内の温度と湿度を記録します。これは動物にストレスを可能として、継続的に45以上の秒間記録しません。
  8. 80%(v / v)のエタノールでスプレーチャンバと拭いて、そのケージにマウスを返します。
  9. チャンバーを乾燥し、次のマウスへ進む前に、ベースライン温度と湿度に戻れるように。繰り返します、その後の動物のための3.1〜3.9を繰り返します。注:複数の動物が研究されている場合は、それぞれの新しい動物の前に近くのベースライン値、チャンバの温度と湿度の戻りがチャンバに入れていることを確認します。

4。プレチスモグラフ分析

いいえテ:そのような一回換気量(V T)および分時換気量等の呼吸パラメータを計算するために以下の変数を測定する必要がある:呼吸数(呼吸/分)、全呼吸サイクル時間(秒)、吸息/呼気時間チタン(Ti / Teとによりそれぞれ一回換気量(P T)。秒)、圧力の変化は、1トレースから測定可能な変数を示している 。次の手順は、これらの変数を測定するために(資機材の表を参照)ソフトウェアを使用しています。分析する際に、盗聴や移動を含む微量の領域を避ける。再現性のある結果を得るためには、良好な呼吸トレースの少なくとも5秒が必要です。異なる呼吸トレースの例については図5および図6を参照してください。

  1. 、フルスクリーンに画面を開き1、ビューを設定します。1と、使用可能なデータの5秒を選択します。この代表的なスナップショットが図5に示されている。
  2. プロの一番上に見つかったミニデータパッドウィンドウを開きますDATAPADタブでグラム。チャンネル1を選択し、右側の列の左側の欄の「周期測定」と「平均的なサイの高さ」を選択します。
    1. 「オプション」を選択して、1秒(msec)の最小ピーク検出のためのスケールを設定します。これは、すべてのピーク値の検出を可能にし、小さな振動を生成小動物を使用する場合に非常に重要になるであろう。
    2. 「OK」をクリックします。これは(P、T)の測定」各一回換気量による圧力たわみ」を紹介します。
  3. ミニデータパッドには「イベント数」に続いて、選択 'サイクルの測定」と「OK」をクリックしてください。これは「周波数」(f)の測定を紹介します。
    1. 周波数は呼吸/分に変換する必要がある。これは、60秒して値を掛け、(min)を記録する全体的な時間で答えを割ることによって行われます。
  4. ミニデータパッドで、['CYCLE測定期間 'が続く'をクリック '' [OK]をクリックします。これは「総呼吸サイクル時間」(T TOT、秒)の測定を紹介します。
  5. 次のステップは、ピーク吸気と呼気時間値を生成するために、マクロ命令を作成するために使用される。カーソルが直接ピーク/トラフの最大を超えていることを確認し、9シーケンシャル山と谷にコメントを追加します。 図5に示すように振動のピークから始めます。
  6. 続いて、選択ウィンドウ:データパッド、右側の欄の左側の列、「期間」で「選択情報」をクリックし、「OK」をクリックして表示されるウィンドウで列1。
  7. マクロプログラムの先頭に記述され選択してから、録音を開始。今selectコマンド:「ファイルのスタート」、「行く」、「検索」と「検索」をクリックします。
  8. コマンドを選択します。「検索」とのコメントを検索 '。提供さ 'を含む'ボックスにコメントボックスの入力したのと同じフレーズを入力します。 」を選択前のポイントに 'タブを選択し、「検索」。
  9. コマンドを選択します。「データパッドに追加 '。次に、マクロを選択:マクロコマンドを繰り返しを開始します。表示される繰り返し回数ウィンドウは9に設定してください。
  10. コマンドを選択します。「次を検索」。コマンドを選択します。「データパッドに追加 '。最後に、マクロコマンドと終了を繰り返しを選択します。
    1. 今マクロを選択して録音を停止。動物番号の後にマクロを保存し、名前を付けます。注:各動物のためのマクロを設定するには、マクロは、長手方向の研究のために使用することができますし、時間を節約できます。
  11. マクロは、現在、各コメントの間にインスピレーション(のT i)および有効期限(T eは )時間を取得するために実行することができます。データは、データパッドのチャンネル1の下に表示されます。有効期限とインスピレーションが連続発生し、データは、この順序で表示されます。
    1. データは手動で吸気と呼気の値に分割する必要がある。平均T iおよびT 電子メールを取得するために各パラメータの4つのデータ値を平均する。
  12. プライマリ値が導出されると一回換気量(V T、ml)を計算することができる。一回換気量を得るためにDrorbaughとフェン8の式が使用されます。
    V T(ミリリットル)=(P T / P K)×(V K)×((T CORE(P B - P C))/(T CORE(P B - P C) - T、C(P B - P CORE)))

    どこ
    V T:換気量
    P kは :1ミリリットルの各注入による圧力の振れ(2.5ステップを参照してください)
    T コア :各動物の中核温度
    P C:茶における室温度X相対湿度での水の蒸気圧mber
    T C:動物室の温度
    P コア :体温で圧力(体温で水蒸気圧×1.0)
    P t各一回換気量による圧力たわみ
    V K:キャリブレーションのための容量注入
    P Bは :気圧の圧力
  13. 一回換気量が計算されると、以下のパラメータも決定することができる。
    • 分容量(ml /分)= V T XF
    • 分容量(ml /分/ kg)=(V T XF)/本体重量(kg)
    • V T(ミリリットル/キログラム)= V T(ミリリットル)/本体重量(kg)
    • 吸気デューティ·サイクル(%)= T I / T TOT
    • 吸気流量(ミリリットル/秒)= V T / T iは
    • 吸気時間と呼気時間の時間の比率= T I / T E
    • 全サイクル時間(秒EC)=インスピレーション時間(秒)+有効期限(秒)

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Representative Results

この手順が正しく実行されたときに、一貫性のある振動トレースデータ分析ソフトウェアで作成される。手順は、リストされた呼吸パラメータを決定するために、簡単な計算の計算を使用してセットアップした後、数分以内に呼吸器のトレースを提供します。 図5対照(健常)マウスから、適切な呼吸トレースを表します。動物は活発に動いていないときに適切な振動データが生成される。

UWBPコントロールおよび肺線維症コホート間の肺機能の非常に有用で信頼性の高い評価である。7は制御グラフと比較して14日目でのブレオマイシン誘発性肺線維症のマウスの肺機能を実証する図7は、視覚的な違いを示していますブレオマイシン投与7と一致している。前述したように、手順は、私たちは、呼吸parameteの変化を観察することを可能に繰り返すことができるこれら二つのグループの間の時間をかけて、RS。

得られた結果は、平均±SEMとして表現さ​​れる。これは、単純なExcelスプレッドシートに収集したデータをコピーして貼り付けることをお勧めします。これは、ステップ4.13&4.14で論じ計算を実施するために有用となるであろう。呼吸機能は、 図8に示されているように二つのグループの間で視覚的に比較することができる。

図1
呼吸サイクルの図1。異なるコンポーネントは、気圧容積脈波。このグラフは、b)による、各一回換気量(PT)の圧力の変化、c)参照)により、インスピレーション(ΔPIに圧力のa)の変化を示してを使用して示されている原因満了圧力の変化(ΔPE)、d)の総呼吸サイクル時間(Ttot)、e)の吸気時間(Ti)とf)の満了時間(テ)。 大きな画像を見るにはここをクリックしてください。

図2
図2気圧計、水カラムの設定の視覚的表現は、同図には、キャリブレーション処理のための指標と水柱を設定する際に読者を支援するために設計されている。水は定規によって助けつの列内のレベルであることに注意してください。 2つの列は、プラスチックチューブ15cmのを介して接続されている。右(65センチ)上のチューブを、1mlシリンジに、左(75センチ)のデータ収集装置に接続された圧力変換器に接続されている。注:チューブの長さは、水1センチ移動させるのに必要な量(300μl)を決定します。 表示するにはここをクリック拡大表示。

図3
図3。芸能は2.4とブリッジアンプキャリブレーションの2.5を繰り返します 。この図は、装置のキャリブレーションのためのステップ2.7および2.8を示している。それは、正確な結果を得るために、ブリッジアンプを補正することが重要です。 大きな画像を見るにはここをクリックしてください。

図4
図4 UWBPセットアップの全体概略 。左に動物を含むプレチスモグラフィチャンバーの一方の側に接続された湿度/温度プローブである。右にキャリブレーションシリンジ及び圧力変換器有力であるコンピュータ上で呼吸トレースを生成するデータ収集システムへの容積脈波室から。 大きな画像を見るにはここをクリックしてください。

図5
図5 UWBPを用いた場合に得られるのC57Bl / 6対照マウスからの呼吸呼吸トレースの例。この呼吸トレースは対照動物から適切な、一貫性のあるデータを示す。ナイン連続したコメントは、4.1から4.13の手順に従って、記載されて呼吸パラメータを得るために、呼吸振動の山と谷で添加される。時間が(cm.H 2 O)x軸(秒)、y軸に沿った圧力の変化に沿って表現される。 viには、ここをクリックしてくださいEW拡大表示。

図6
図UWBPを使用する際にC57BL / 6マウスから得られた異なる次善のトレースの6例。最適以下の結果は、適切なデータとして混乱し、貧困層の分析のための最も一般的な原因ですことができます。この図は、分析に使用すべきではありません、最も一般的な次善の痕跡を示している。これらの呼吸トレースは、動物がスニッフィングや動物の基礎呼吸生理学を変え移動している間にa)は呼吸トレースが記録さを証明している。b)は時間の経過とともに増加次第に振動を生じた記録されたトレースは通常、結露や構築湿度によって引き起こされます。しかし、トレースがエタノールでまたは較正手順を繰り返して、プレチスモグラフィチャンバーを拭くことによって補正することができる。c)のトレース動物または研究者が機器を従事している間プレチスモ室運動中に記録された。時間がx軸(秒)、y軸に沿った圧力の変化(cm.H 2 O)に沿って表現されます。 拡大画像を見るにはここをクリックしてください。

図7
図7 UWBPを使用する際に誘導された肺線維症を有するC57BL / 6マウスから得られた呼吸トレースの例。この呼吸トレースはこの資料に記載されUWBP手順を用いた場合に得られる誘発肺と動物から適切な、一貫性のあるデータを示している。ナイン連続したコメントは、4.1から4.13の手順に従って、記載されて呼吸パラメータを得るために、呼吸振動の山と谷で添加される。時間がrepreですx軸(秒)、y軸に沿った圧力の変化に沿ってsented(cm.H 2 O)。 大きな画像を見るにはここをクリックしてください。

図8
コントロールとブレオマイシンとの間で比較図8。呼吸機能がここに表現されているものと同様の結果をユーザーに許可しますUWBPを使用した後、容積脈波解析を実行する。C57BL / 6マウスに挑戦 。この図は、ブレオマイシン誘発動物(点線灰色の線)と、対照動物(黒の実線)との間の生理学的な違いを示しています。これらのグラフは、a)の有効期限(秒)での比較、b)のインスピレーションの時間(秒)、c)のインスピレーションのデューティ·サイクル(%)、d)の吸気流量(ミリリットル/秒)を示すe)の呼吸数(呼吸/分)、f)の分容積(ml /分/ kg)を、g)の一回換気量(ミリリットル/ kg)およびh)の合計サイクル時間(秒)。肺機能データは、ブレオマイシンチャレンジ後0日、7日に動物の同じコホートで縦方向に採取し、14された。代表的なデータをMurphy から適応されました。(2012)16。 大きな画像を見るにはここをクリックしてください。

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Discussion

ここで説明する技術は、非拘束および無麻酔のマウスの呼吸パラメータの評価のための非侵襲的方法である。このプロトコルの長所は、最小限の人工物で縦方向に肺機能を測定するために、そのシンプルさと精度が含まれています。いくつかの制限と手続きについて記載すべき重要なステップは、しかし、があります。第一に、そして最も重要なのは、マウスが5秒以上室内に落ち着いている必要があります。追加されたストレスは、マウスの呼吸パターンを破壊し、したがって多様な結果( 図6a)を提供します。この欠点は、可能性のままであり、時間に予想されるであろう。しかし、そのホームケージにマウスを交換し、それを簡単にこれを修正します定住する​​ための時間を可能にします。それは、動物は、適切な/使用可能なデータの5秒を得るために、チャンバ環境内で快適に感じることが重要です。さらなる配慮がチャンバ環境に関して必要とされる。環境で、u呼吸力学にnrelated、大きく結果に影響を与えることができます。評価が増加する期間、チャンバ上昇する湿度および温度、ならびに著しく換気に影響を与え、利用可能な酸素を減少させることができる。換気のタイミングは、湿度と温度槽ならびに利用可能な酸素21の減少を増加させる。チャンバ内の小さなリークが熱産生22,23から作成された熱ドリフトを低減するのを助けることができる。議論プロトコルがリストされている機器や計測機器に固有のものです。セクション2においてブリッジ増幅器の較正は、読者の機器に依存する。そのようなチューブの長さなどの要因が異なる場合は、空気の300μlの注射は1 cm.H 2 Oたわみが発生しないことがあります。

分析の時間に応じて、生理学的な違いもある。げっ歯類は、最終的には変化を発生する、自然に夜行性の生き物と概日サイクルである実験24のタイミング時に呼吸が、考慮されるべきである。それは、時間が必要であると実験データが正確コホート間で比較することができるように、実験を計画する。これは、トレースの動きに留意することも重要である。振動は直線パターンで実行していない場合、それが原因室の結露や湿度チャンバ内( 図6b)、または無効シールの蓄積に対して、通常。最終的に、これらの制限を考慮することができるとUWBPプロセスは、正確な呼吸測定を提供するために適切に行う。この方法は、新生児、標準的な実験用マウスでの呼吸の変化を測定するための修飾(小さ ​​なチャンバーサイズ)を必要とすることに留意することも重要である( 例えば 、<2週間後のC57Bl / 6)そのサイズの動物の呼吸の圧力変化を検出するために。

UWBPは、かなりの利点を示すが、それはまた、論争を運ぶ。調べでは、議論に慣れると、この技術は研究課題のために適切であるかどうか情報に基づいた意思決定を行う必要があります。最初に、Drorbaughおよびフェン(1955)8は、チャンバ圧の上昇が触発空気が肺の値に温め、加湿されることにより引き起こされると考えられる。反対は期限切れが発生しました。これは一回換気量の計算を可能にした。その後の研究は、圧力変化が気流25の生成中に肺胞圧力を変化させることによって引き起こされたと考えられる。この作品は、気道抵抗の計算のための容積脈波を使用することを述べた。 Enhorning (1998)26証拠を提供し、その一回換気量、呼吸数及び気道抵抗プレチスモグラフィーチャンバー内の全ての影響の圧力変動。チャンバー内の空気が加熱され、身体条件に加湿されたときに圧力変動が3分の2減少し、増加した抵抗を介して増幅された<SUP> 21。これらすべてのコンポーネントは、圧力変動を反映するように、特定の呼吸パラメータの測定値が正確であるかどうか論争がある。結果として、容積脈波から得られた一回換気量は、定性的ではなく定量的に評価する26であると結論された。上部および下部の両方の気道抵抗は気管支収縮27の測定の不確かさを作成プレチスモグラフィシステムの構成要素である。それはUWBP侵襲的な分析を相互に使用されるべきである著者の意見である。これは、実際には、単にUWBPデータに基づいて原稿特定の雑誌の政策は受理されませんされています。これは、読者のための別の考慮事項となります。

要約すると、UWBPは長期的な研究に特に適し標準的な実験用げっ歯類、呼吸パラメータの変化を測定する有用な方法である。この技術の主な利点は、化学的な侵襲的処置の回避である課題や麻酔の必要条件。これは研究者が最も密接に自然に発生するイベントを表しており、実験的な変動性を減少させる生理学的データを収集することができます。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
LabChart 7 software (for Macintosh) ADINSTRUMENTS MLU60/7 used in protocol step 4
PowerLab 8/30 (model ML870) ADINSTRUMENTS PL3508
Octal Bridge Amp (model ML228) ADINSTRUMENTS FE228
Black BNC to BNC cable (1 m) ADINSTRUMENTS MLAC01
Macintosh OS Apple Inc. Mac OS X 10.4 or later
Surgipack Digital Rectal Thermometer Vega Technologies MT-918
Grass volumeteric pressure transducer PT5A Grass Instruments Co. Model number PT5A; serial No. L302P4.
1 ml Syringe Becton Dickinson (BD) 309628
5 ml Serological syringe pipettes Greiner Bio One 606160 Connected via plastic tubing
Balance/Scales VWR International, Pty Ltd SHIMAUW220D Any weighing balance with of 0.1 gram resolution
HM40 Humidity & temperature meter Vaisala HM40A1AB
Barometer Barometer World 1586
Laboratory tubing Dow Corning 508-101 Used to connect water column to the syringe and pressure transducer
Cylindrical Perspex Chamber Dynalab Corp. Custom built cylindrical chamber with internal dimensions as follows: 50 mm(w) x 1,500 mm(l). There are two lids for each side, with dimensions 80 mm(l) x 80 mm(w). Each lid has a 60 mm wide circular hole cut on the face of the lid 50 mm deep. This allows the chamber to fit into the lid. A rubber ring is fitted around each hole of the lid where the chamber will fit. For attachment of syringe and pressure transducer, the openings are 5 mm in diameter. For attachment of humidity probe, the openings are 25 mm in diameter.
80% Ethanol (4 L) VWR International, Pty Ltd BDH1162-4LP

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. World Health Organization, World Health Statistics. , WHO, Geneva, Switzerland. (2008).
  2. Jones, C. V., et al. M2 macrophage polarization is associated with alveolar formation during postnatal lung development. Respir. Res. 14 (41), 14-41 (2013).
  3. Campbell, E., et al. Stem cell factor-induced airway hyperreactivity in allergic and normal mice. Am. J. Pathol. 154 (4), 1259-1265 (1999).
  4. Card, J. W., et al. Cyclooxygenase-2 deficiency exacerbates bleomycin-induced lung dysfunction but not fibrosis. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 37 (3), 300-308 (2007).
  5. Berndt, A., et al. Comparison of unrestrained plethysmography and forced oscillation for identifying genetic variability of airway responsiveness in inbred mice. Physiol. Genomics. 43 (1), 1-11 (2011).
  6. Flandre, T., et al. Effect of somatic growth, strain, and sex on double-chamber plethysmographic respiratory function values in healthy mice. J. Appl. Physiol. 94 (3), 1129-1136 (2003).
  7. Petak, F., et al. Hyperoxia-induced changes in mouse lung mechanics: forced oscillations vs. barometric plethysmography. J. Appl. Physiol. 90 (6), 2221-2230 (2001).
  8. Drorbaugh, J. E., Fenn, W. O. A barometric method for measuring ventilation in newborn infants. Pediatrics. 16 (1), 81-87 (1955).
  9. Milton, P. L., Dickinson, H., Jenkin, G., Lim, R. Assessment of respiratory physiology of C57BL/6 mice following bleomycin administration using barometric plethysmography. Respiration. 83 (3), 253-266 (2012).
  10. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR J. 53 (1), 55-69 (2012).
  11. Hildebrandt, I., et al. Anesthesia and other considerations for in vivo imaging of small animals. ILAR J. 49 (1), 17-26 (2008).
  12. Meijer, M. K., et al. Effect of restraint and injection methods on heart rate and body temperature in mice. Lab Anim. 40, 382-391 (2006).
  13. Hamelmann, E., et al. Noninvasive measurement of airway responsiveness in allergic mice using barometric plethysmography. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 156 (3), 766-775 (1997).
  14. Lim, R., et al. Human mesenchymal stem cells reduce lung injury in immunocompromised mice but not in immunocompetent mice. Respiration. 85 (4), 332-341 (2013).
  15. Murphy, S., et al. Human amnion epithelial cells prevent Bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 20, 909-923 (2011).
  16. Murphy, S., et al. Human amnion epithelial cells do not abrogate pulmonary fibrosis in mice with impaired macrophage function. Cell Transplant. 21 (7), 1477-1492 (2012).
  17. Wichers, L. B., et al. A method for exposing rodents to resuspended particles using whole-body plethysmography. Part. Fibre Toxicol. 13 (12), (2006).
  18. Chong, B. T. Y., et al. Measurement of bronchoconstriction using whole-body plethysmograph: comparison of freely moving versus restrained guinea pigs. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 39 (3), 163-168 (1998).
  19. Lizuka, H., et al. Measurement of respiratory function using whole-body plethysmography in unanesthetized and unrestrained nonhuman primates. J. Toxicol. Sci. 35 (6), 863-870 (2010).
  20. McGregor, H., et al. The effect of prenatal exposure to carbon monoxide on breathing and growth of the newborn guinea pig. Pediatr. Res. 43, 126-131 (1998).
  21. Lundblad, L., et al. A reevaluation of the validity of unrestrained plethysmography in mice. J. Appl. Physiol. 93, 1198-1207 (2002).
  22. Bartlett, D., Tenney, S. M. Control of breathing in experimental anemia. Respir. Physiol. 10 (3), 384-395 (1970).
  23. Malan, A. Ventilation measured by body plethysmography in hibernating mammals and in poiiulotherms. Respir. Physiol. 17 (1), 32-44 (1973).
  24. Seifert, E. L., Mortola, J. P. The circadian pattern of breathing in conscious adult rats. Respir. Physiol. 129 (3), 297-305 (2002).
  25. DuBois, A. B., et al. A new method for measuring airway resistance in man using a body plethysmograph: Values in normal subject and in patients with respiratory disease. J. Clin. Invest. 35 (3), 327-335 (1956).
  26. Enhorning, G., et al. Whole-body plethysmography, does it measure tidal volume of small animals. Can. J. Physiol. Pharmacol. 76 (10-11), 945-951 (1998).
  27. Zhang, Q., et al. Does unrestrained single-chamber plethysmography provide a valid assessment of airway responsiveness in allergic BALB/c mice. Respir. Res. 10 (61), (2009).

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生理学、問題90、拘束されていない全身プレチスモグラフ、肺機能、呼吸器疾患、げっ歯類
拘束されていない全身プレチスモグラフィを使用したマウスにおける呼吸機能の測定
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Lim, R., Zavou, M. J., Milton, P.More

Lim, R., Zavou, M. J., Milton, P. L., Chan, S. T., Tan, J. L., Dickinson, H., Murphy, S. V., Jenkin, G., Wallace, E. M. Measuring Respiratory Function in Mice Using Unrestrained Whole-body Plethysmography. J. Vis. Exp. (90), e51755, doi:10.3791/51755 (2014).

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