Abstract
表面电位是起着微生物到基材表面的密合性的主导作用,一个经常被忽视的物理特性。开尔文探针力显微镜(KPFM)是原子力显微镜(AFM)的模块,其测量在纳米尺度表面之间的接触电势差。 KPFM的通过AFM的组合允许同时产生表面电位和生物标本的地形图,如细菌细胞。在这里,我们采用KPFM检查表面电位对微生物的粘附性医学相关的表面的效果,如不锈钢和金。表面电位的地图显示在不同的材料基板微生物膜在表面电位差。的工序高度图形生成显示在表面电位差在衬底表面和微生物之间的边界区域。变化在细胞膜表面电位已经与变化S IN细胞代谢和蠕动。因此,KPFM表示可被用来考察微生物膜表面电位在粘结到各种基底的表面的变化的有力工具。在这项研究中,我们展示的过程来描述个人的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 USA100细胞的表面电位使用KPFM不锈钢和黄金。
Introduction
对生产设备表面和皮肤伤口生物膜存在一个问题,医疗行业作为生物膜是顽抗移走,并可能导致疾病传播和抗菌药物耐药率增加。附件是在生物膜形成的第一步,是由于它的可逆性1-3中最关键的步骤。基材表面特性发挥的微生物附着了至关重要的作用。因素,如表面硬度,孔隙度,表面粗糙度,和疏水性已被证明以进行微生物附着;然而,一些研究考察的基材表面电位(SP)对微生物粘附的作用已经做了4,5。带负电荷的表面防止苏云金芽孢杆菌的孢子附着到云母,硅和金6。变化细胞膜电位是指示改变的细胞附着和蠕动5,7的。已经观察到,电坎ogeneous表面更容易促进微生物黏附5。表征细菌的表面电位在纳米可以提供一种新的方式来理解细菌附着动力学到各种表面,从而可以在防生物结垢策略的发展提供帮助。不像用于表征细菌,如电泳光散射,ζ电位和等电点测定的电动力学的其他方法,开尔文探针力显微镜(KPFM)允许单个细胞而不是整个培养8-11的检查。想要以比较细胞 - 细胞或生物膜电特性与高准确度和精度时,这是有利的。
KPFM是原子力显微镜(AFM)的模块。 AFM是作为扫描隧道显微镜(STM)12的直接结果。利用STM首次公布的图像是由格尔德Binnig和海因里希Rorhrer于1982年12完成12高分辨率图像的含义。 STM也可以使用专门的探针针尖13的液体进行。这显示出由Lindsay 等 ,谁使用STM和AFM图像的DNA分子在10mM的HClO 4和水,在金电极13。 KPFM已被证明在确定的DNA和蛋白质分析25和生物分子与配体相互作用26的表面电位。
KPFM操作,通过测量的AFM导电悬臂刀片和一个理想的导电性样品之间的接触电势差(CPD)( 图1,I)14,15。样品不一定必须是导电的( 即,生物SAMPLES)。成像可以进行对云母,玻璃和硅表面(非导电),只要该非导电表面是薄且有一个基本的导电材料6,7。在CPD相当于表面电位的电压,并且可以被描述为在尖端(φ 尖 )和样品(φ 样品 )之间的功函数的差,通过负电子电荷除以( - E)。当导电针尖被带到靠近一个样品表面由于在费米能量的差( 图1,二,一 )15(由距离 d分开),静电力(F ES)被产生。在这一点上,针尖和样品(E v)的的真空能量处于平衡和对准。在使前端接近样品表面时,尖端与样品表面接触到电接触,并作为平行平板电容器( 图1,二B )14,15。在该点上,该尖端与样品表面的费米能量变得对准,达到稳态平衡( 图1,二,二)。针尖与样品表面将收取和为 V CPD将形成因于 E V's和功函数的差。 A F ES作用于电接触面积,由于形成V CPD。这个力通过外部V DC到具有相同大小的形成V CPD前端应用程序随后无效( 图1,二,三)。此DC电压施加消除表面电荷中的电接触的面积,并且V DC必要消除第V CPD在 F ES的量等于所述差在SA之间的功函数mple面和小费15。应当指出的是,尖的功函数是已知的,它是由制造商提供。在所有KPFM方法,AC电压(V AC,大约100 - 500毫伏)也被施加到尖端,以便产生所述针尖和样品14之间振荡电力。这个测量的变化以V CPD和/ 或 F ES时提供更好的分辨率。在这点上,变化的频率或电振荡的振幅可通过V DC被纠正,以及表面可以产生潜在的地图。从这些地图的特定区域的数据,可以进一步分析,以提供关于特定地形特征的电信息。
(1)提升模式,(2)调幅(AM)模式,及(3)的频率调制(FM)模式14,16:KPFM可以在三种模式下操作。升降模式为初始增量arnation KPFM的。升降机模式依赖于在其中振荡尖端在表面拖动以获得地形图像的两遍方法。用于第二遍的前端被升高的样品上方的预设距离(10 - 100 nm),而扫描背面横过相同的面积。由于此两遍方法,升降模式,相比AM-和FM KPFM,花费的时间最长为图像采集。提高尖端远离所述表面确保只有长范围 F ES被测量。此外,地形和表面电位测量之间的串扰被解耦在增加横向分辨率和灵敏度为代价的。
AM-KPFM提高通过使用双频率同时测量样品形貌和表面电位(单程扫描)14横向分辨率和灵敏度。在AM模式,悬臂机械振荡,一般为5%,低于它的第一谐振频率(f 0),并且电振荡(叔hrough一个V AC)在其第二谐振频率(f 1)。变化的f 0的引线的振幅地形数据的生成,而变化f中1的幅度时,由于改变在F中ES和 V CPD,得到表面电位的测量数据。 f 0的和f悬臂1通过显著频率和能量为信号串扰最小化14是分开的。原子力显微镜头电子箱(HEB)分离出两个信号给这两个地形和一次扫描同时表面电位的数据。 FM-KPFM提高对生物表面14的分辨率甚至比AM-KPFM。 FM-KPFM作品不同于AM-KPFM,它衡量的变化静电力梯度,而不是静电力(F ES)15。像AM模式,FM模式利用双频率和SINGLe通扫描机制获取地形,同时表面电位数据14。在FM模式中,悬臂机械振动在f 0和在低的改进的频率振荡电(F 模 ,典型的是1 - 5千赫)。经静电相互作用,女0和f MOD叠加可产生边带f 0的±˚F 国防部 。这些边带是变化的静电力非常敏感,并且可以从f 0的通过AFM的HEB分离。既然调频KPFM测量变化的静电力梯度,尖端顶点的形状和它的维护/完整性发挥整体表面电位分辨率14,15关键的作用。采用调幅表面电位分辨率和FM模式中的1纳米的范围内横向14 -16。应当指出的是KPFM成像能够在非极性液体中来实现,并且更近来,已经显示出在低离子(<10毫米)极性液体进行(在开环KPFM模式不需要一个偏压反馈,从而消除的DC偏置的应用),例如milliQ水中;然而,KPFM成像尚待于活细胞中的极性溶液17-20进行。带SP显像液相关的额外的挑战是,解决方案通常用于维持细胞( 即,磷酸盐缓冲盐水)具有高浓度的移动离子,这将导致法拉第反应,偏置感应电荷动力学,和离子扩散/再分配20。因此,对于这个实验中,测量是从干燥的和死的MRSA细胞上在环境条件下聚 - L - 赖氨酸官能不锈钢和金表面。成像可以在空气中进行或真空条件上是先前已经干燥或固定到表面20的生物样品。潮湿的条件下也被证明影响表面6的KPFM成像。
在这项研究中,我们采用FM-KPFM和AFM研究SP对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 USA100(MRSA)到聚-L-赖氨酸官能不锈钢和金表面的附着的作用。 MRSA最近获取了状态作为一个多药耐药(MDR)“超级病菌”,因为它的许多β内酰胺类抗生素和头孢菌素类21自然选择的阻力。 MRSA感染现在更加具有挑战性的,困难的,强大的治疗,导致使用更苛刻的抗菌剂,如万古霉素或具有在人类毒性较高的水平,因此不能被用作长期治疗22恶唑烷酮。不锈钢被选择,因为它的医疗相关性和作为金用作对比金属中的皮下注射针头,便盆,门把手,水槽等的材料共同使用。 FM-KPFM被用来研究是否微生物膜的SP时附着改变为衬底。
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Protocol
1.准备玻璃器皿和文化
- 在继续进行这个实验,准备5%绵羊血琼脂(SBA)板种植MRSA。孵育SBA板放置24小时,在37℃。此时间之后,单一的,良好的分离的菌落应存在以用于后续接种到液体介质中。商店划线SBA板的单菌落,在4℃下进行1 - 2个月。
注:羊的血琼脂平板进来20之间含有预先制备的包装 - 根据制造商25板,并通常由用加入了5%w / v的羊的血液中的胰蛋白酶大豆琼脂基。 - 制成500毫升的胰蛋白酶大豆肉汤(TSB)中补充有1%葡萄糖和0.1%的NaCl。在此之后,收集并清洗2玻璃试管。如果高温高压消毒的盖子是试管不可用,用铝箔作为上限。蒸压TSB和试管随着一箱1毫升枪头。
- 在生物安全柜或接近面包连接刻录机,吸管5毫升以前蒸压TSB为蒸压试管。要小心,以确保有足够的时间已经给出,让TSB和试管冷却至室温。从以前条纹5%SBA板,接种单菌落到6毫升TSB肉汤。一种将包含MRSA,并且第二试管将被用作阴性对照,以确保无菌。
- 取接种TSB试管,并放置在往复培养箱24小时,在37℃和在200rpm。在此时间后微生物的生长应该是在MRSA的试管表观而没有生长应该发生在控制试管。
- 就拿1毫升24小时的文化和吸管为6毫升新鲜TSB。孵育在37℃下6小时以200rpm。
- 吸取1毫升6小时亚文化到1.5 ml离心管。离心3分钟,在850×g下。除去上清液并在1ml去离子H 2 O的重新悬浮颗粒离心机,重复,并重新暂停。
- 取不锈钢和金的AFM样品盘(20毫米和分别10毫米直径),并清洗每一侧用5ml去离子H 2 O的持样品盘在用钳子优势手,并使用亚优势手来吸取在样品圆盘的每一侧5毫升后在含20ml去离子水中,2 O然后超声1分钟的烧杯中洗两边,地点样品盘。
- 超声用钳后,从烧杯中取出样品盘。放置的磁盘,使它们在对一个开放的培养皿的边缘上的60°角倾斜到纸巾上。使用培养皿的盖以覆盖干燥的磁盘。让磁盘,然后再继续充分干燥。干燥时间可以变化之间4 - 8小时。
- 干燥后,用钳子把样品盘成一个培养皿。
- 任选官能化的样品盘的表面与任何材料(例如,胶原蛋白,透明质酸,银纳米粒子等 )。
- 对于这个实验,使用聚-L-赖氨酸涂覆的衬底表面。对于聚L-赖氨酸官能化,吸管200 - 400微升0.1%的聚L-赖氨酸(以H 2 O)到样品盘,并让孵育1小时,在室温下,在培养皿。
- 1小时后,用钳子保持样品盘,和洗涤用1毫升去离子H 2 O的让干燥的纸巾按步骤2.2描述。
- 拿2个洗再悬浮细胞和板200 - 400微升样品上磁盘的生物安全柜内。如果样本盘被涂覆有聚-L-赖氨酸,孵育0.5小时,在室温下进行。
- 细胞在样品盘孵育后,轻轻洗掉样品盘用1毫升去离子H 2 O的让磁盘映像之前干通宵。
3. KPFM成像
注:在这个实验中,使用安捷伦5500系列ILM-AFM。
- 要启动AFM,打开计算机单元连同AFM的HEB和MAC III控制器。打开AFM成像软件( 如安捷伦PicoView)。一定要选择最初ACAFM或任何正确的名称是在AFM成像间歇性接触模式。
- 在优势手使用AFM镊子,并保持该弹簧加载的夹子保持件与次要手打开,放置一个KPFM悬臂进给头件。处理和传送的AFM头件,以原子力显微镜,因为这单元(至少在5500 ILM-AFM)时包含易碎压电晶体单元,其控制X,Y和Z扫描方向性要小心。
注意:在这种情况下,所用的KPFM悬臂分别Mikromasch导电DPE(低噪声)悬臂具有2.7牛顿/米80千赫和弹簧常数的平均谐振频率。悬臂与这些谐振频率和弹簧常数被选择,因为它们易于使用。悬臂具有较大弹簧常数和较高的谐振频率,也可以用于成像。 - 谨慎地装载头片插入AFM并连接相应的电线(在此情况下两根线需要被插入:激光和阶段提升电机)。
- 激光对准到悬臂的尖端。有的单位包含一个摄像头功能,这使得更容易对齐。如果相机的功能是不存在于原子力显微镜,对准到悬臂刀片如下所述:
- 旋转前端到后端的旋钮顺时针移动激光上层建筑悬臂芯片。当激光到达芯片它会被阻塞,将不再是可见的。仅转动旋钮几次。
- 转动前到后的旋钮,直到激光光斑重新出现。现在的激光是在芯片的边缘。
- 旋转左到右的旋钮来定位在悬臂的激光。由于激光经过悬臂就会消失,重新出现我ñ接二连三。激光点应该在磨砂玻璃罩,其中所述光电二极管单元将在后面坐可见。
- 转前端到后端旋钮逆时针向下移动悬臂当场朝向尖端直到在毛玻璃的斑点消失。
- 转前到后把手顺时针只稍稍顺序,以便它只是就座于悬臂刀片来定位激光。激光光斑将重新出现在毛玻璃。
注:这是激光定位方法跳水板悬臂。对于三角悬臂,校准过程稍有不同。
- 一旦激光对准,保持在“开启”位置的阶段提升电机10秒,以确保该悬臂和样品之间有足够的空间将所述样本到AFM时。
- 将样品在KPFM样品阶段。接地用铜线将样品。从AFM到样品台连接的相应导线。连接S踏歌的AFM。在大多数情况下,该阶段是使用磁铁保持在适当位置。
- 在AFM软件,调谐悬臂,然后开始在悬臂尖端到样品的方法。确保稳定时间被设定为不超过10毫秒,该方法的速度不超过2.0微米/秒,以避免尖的损伤。
- 一旦悬臂刀片是在样品表面上,选择的成像窗口的大小和理想成像区。优化的I和P增益随着悬臂设定点,使得地形成像优化。
- 一旦地形成像进行了优化,打开KPFM模块(FM或AM模式;在这里,使用FM模式)。应当指出的是KPFM成像是5微米×5微米的成像窗口之外非常具有挑战性。此外,对于最佳KPFM成像,使用带有慢扫描速度一512×512分辨率(0.02 - 0.05行/秒)。
- 对于FM-KPFM设置(不ACAFM设置),设置5之间的驱动百分比 - 10%。设置悬臂FR1之间equency - 5 kHz的2 kHz的带宽。置的I和P增益为FM-KPFM设置到0.3%。
- 不同的信号带宽和I和样品表面之间的P涨幅。为了优化SP成像,进一步调整信号带宽和I和P的收益,以获得最佳的图像。 I和P收益的推荐范围是0.22 - 0.35%。
- 过程和使用后的图像处理软件来收集数据SP分析收集KPFM图像。
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Representative Results
以测量的SP使用KPFM的能力依赖于原理,这两个样品表面和悬臂刀片是导电的,以某种程度。不锈钢和黄金采取行动,而MRSA被装导电表面。 KPFM拍摄图像15的MRSA细胞的两个表面上具有512×512的分辨率,并与扫描区域范围从5×5微米至10×10微米。扫描,进行与线速度范围为0.02行/秒至0.05行/秒。因此,有512个数据点每行512线扫描采集,扫描时间范围为2.84小时至7.11小时。采集到的图像的种类可以看出,在图2中 。KPFM操作使用双频率,正因为如此,地形图像同时与左右的表面的电特性数据收集沿。施加热的过滤器到SP的地图,以更容易地辨别在表面电势( 图2)的微小变化。从SP地图数据W作为分析后的图像处理软件来测定平均表面电位和标准偏差。使用R打开源代码统计程序进行统计分析。学生t检验进行到以P <0.05比较组正在考虑显著。
SP的图像进行分析,以确定微生物膜表面电位。这些是随后与不同基材表面上的生长比较。这是为了确定是否表面类型对微生物膜表面电位的效果进行。最初我们试图静态孵育MRSA细胞3小时在基板表面上。然而,没有任何附加的微生物是在AFM下可见。的SP数据进行清洁和聚L-赖氨酸的官能化表面被从5×5微米的扫描区域确定的。裸不锈钢和裸金基板SP扫描显示整个表面负电位(-0.045±0.057 V和-0.126±0.052 V,分别P = 0.047, 图3)。聚L-赖氨酸,使用以官能化表面以使它们更有利于细胞附着。官能表面呈转移到正的表面电位为不锈钢和金表面(0.133±0.063 V和0.126±0.030 V时,分别地, 图3)。我们随后研究的MRSA的膜电位在聚-L-赖氨酸官能不锈钢和金表面。人们发现,MRSA细胞膜电位之间不锈钢和金表面变化。相比他们的黄金对口不锈钢表面导致显著较大的正膜的SP的细胞。例如,MRSA细胞的SP,由正切换到负的SP。 MRSA表现出对不锈钢表面与0.160±0.022 V的SP和-0.025±0.016 V在金表面SP(P <0.001)阳性SP。
要显示KPFM,一个例子的全部功能的MRSA对不锈钢的阶梯高度的曲线图被提供( 图4)。这显示了在基片表面和微生物膜之间的表面电位差。
图原子力显微镜(i)和开尔文探针力显微镜(ⅱ)从(15)授权转载1.工作原理 。原子力显微镜的基本结构示于(i)中。在原子力显微镜中,锋利的尖端,通过电化学沉积附加到悬臂。 Mikromasch铂被覆的导电DPE(低噪声)悬臂是在该实验中使用过的210×30微米的尺寸,80千赫共振频率,和2.7牛顿/米的弹簧常数。悬臂被连接到一个较大的芯片,以便允许容易地搬运。一旦组装在AFM中,激光对准到悬臂刀片。在cantil变形过尖通过一个光电二极管检测到。偏转被用于产生外形图像。 (二A,B,C)显示KPFM的工作原理。悬臂被带到足够接近的表面,以允许发生电接触。在尖端和表面之间的表面电位差造成的尖端偏转。直流电压被施加到校正这一偏转。这个直流施加电压等于衬底表面的表面电位。取决于所使用的成像模式的类型(升降机,AM,FM),此工作原理略有不同。图1(ⅱ)已被修改为15。
图2.代表性地形和表面的MRSA潜在地图上的聚-L-赖氨酸官能不锈钢和金衬底 。图像(I和III)显示代表性地形图像对不锈钢和黄金的表面,分别为MRSA细胞。图像尺寸可以看出,在沿与相应的着色高度轮廓这些图像的X和Y轴。 (II和IV)示出在它们各自的表面上的MRSA的相应的SP地图。采用了标准的“黄金”彩色滤光片地形图像,同时采用了热过滤器到SP的图像更容易辨别SP小的变化。应当指出的是,基板表面上的SP并不均匀。 SP被认为是不均匀分布与两基板表面上明显的积极和消极的方面。这可以围绕MRSA细胞,其中异构的SP都在不锈钢和黄金基板观察可以看出。 请点击此处查看该图的放大版本。
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的衬底表面和MRSA细胞膜图3的表面电位 。 图3示出了由不锈钢(此处标记为SS)和金表面的相应KPFM数据,以及从15单元中的数据。星号表示与对应于比较的样品的星号的数量的采样之间的显著差异。 MRSA的数据被从连接到官能化的表面温育30分钟后的细胞回收。这是由于这样的事实,没有细胞被发现于3小时后附着到裸基板的表面进行。
MRSA对聚L-赖氨酸的官能不锈钢图4步骤高度面潜在图像 。使用后的图像处理软件,一步高度图形以显示capabili生成该软件的关系,以及,在所述基板表面与细胞膜之间的SP的显着的差别。选择的横截面面积被表示用灰色线对应的SP地图上。一个转变,从0.15 V在细胞表面,以0.21 V在基材表面上是显而易见。 请点击此处查看该图的放大版本。
公司 | 探头类型 | 弹簧常数(N / M) | 谐振频率(kHz) | 悬臂尺寸 | 提示弯心直径 |
庇护研究 | AC240TM-R3 | 2 | 70 | 长度= 240微米 宽度= 40微米</ TD> | 28纳米 |
布鲁克AFM探针 | SCM-PIT | 2.8 | 75 | 长度= 225微米 宽度= 28微米 | 20纳米 |
Mikromasch | 导电DPE(低噪声)悬臂 | 2.7 | 80 | 长度= 210微米 宽度= 30微米 | 40纳米 |
Nano和更多USA | PTSI-NCH | 42 | 330 | 长度= 125微米 宽度= 30微米 | > 25纳米 |
纳米科学仪器 | AppNano导电轻敲模式AFM探针。 | 40 | 300 | 长度= 125微米 宽度= 35微米 | 30纳米 |
纳米科学仪器 | AppNano导电轻敲模式AFM探针。 | 40 | 300 | 长度= 125微米 宽度= 35微米 |
表1.公司提供广泛KPFM探头。各种各样的公司现在提供KPFM技巧与不同先端尖直径,弹簧常数和共振频率。提示定制接近无限的,随着公司通常提供建立悬臂定制规格的预期实验。最KPFM探针是铂涂覆的硅氮化物。铂提供对悬臂传导功能。其他常见的涂层材料包括铱,铂+铱和金。大多数KPFM提示也可以交替使用电力显微镜(EFM)。提示顶点是KPFM悬臂重要。更大直径的提示牺牲更高的分辨率地形成像较少的电气噪声。相反,直径较小的提示(<25纳米)的报价提高了地形图像分辨率,但更容易电气噪声。在这项研究中,研究人员使用Mikromasch行为香港专业教育学院DPE(低噪音)悬臂。
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Discussion
KPFM被用作一种新的技术,用于获得表面电数据。它通常被用作研究化学电荷分布的方法和最近才开始被应用于对微观和纳米尺度的生物系统的研究。从收集到的数据,我们发现,微生物并未以容易地连接到清洗不锈钢和金表面,即使经过3小时的静态培养。聚-L-赖氨酸的官能表面呈30分钟后快速微生物附着。在功能化表面微生物的潜伏期较长时间导致电池过分拥挤样品表面,差的地形图像。表面功能化导致由负SP转向积极的SP不锈钢和黄金表面。以前的研究已经表明,微生物通常具有负的SP由于带负电的离子的周围细胞的螯合剂来保持渗透压和离子平衡23。它也被称为该磷酸基团中的革兰氏于革兰氏阳性微生物阴性微生物和磷壁酸的存在下进一步导致负的SP 24的形成。知识革兰氏阳性和阴性细胞膜的基本化学促使我们假定阳性基材的SP将导致快速微生物附着。然而,可以看出在图2 - 4,即有一个大的转变,从正到负的MRSA细胞的SP在不锈钢和金基板上。微生物附着可以最初从周围的膜负离子封存发生。经洗涤细胞,并让它们在基板表面上的干的,我们可能已被洗去这种离子的介质。此外,应该指出的是,KPFM数据是仅包括革兰氏阳性(MRSA)的细胞的外细胞壁区。它已被证明在某些情况下,一个微生物细胞膜电位,可以经的CaTiO的存在改变NIC抗菌肽或其他压力8。
KPFM相比对微生物的细胞培养物的标准zeta电位测量所述一个主要缺点是,在KPFM收集的数据被上死并干燥的细胞进行。 KPFM被用来研究的总体趋势在细胞表面电位变化与问候到不同的附着基片表面。 DC的应用电压到悬臂刀片(以抵消˚FES),以及一个导电样品表面的要求,限制标准KPFM露天成像。成像在极性液体目前不可能使用标准KPFM,并且因此使用KPFM活细胞成像是仍未可能的。的新的开环和双频KPFM模式发展已经在他们的在低离子溶液18-20能力图像的表面显示出前景。我们希望,在未来这种技术被进一步开发,使成像可以对LIV做Ë细胞培养。细胞在更自然的环境中的成像无疑将导致更精确的和现实的细胞膜的SP数据的生成。在这项研究中,我们想要应用此技术中一种新颖的方式来测量微生物细胞的膜电位,以及研究在医学相关的MRSA表面的粘附特性。在孵育观察到不同基材表面上的改变微生物膜的SP。这可能意味着衬底类型可影响细胞代谢。我们希望的是,这种初步的数据可能会导致纳米涂层固有电荷可能被应用到医疗表面或设备(包括其他材料,如绷带和纱布)中,为了防止微生物附着的产生。本文中所描述的协议的目的是帮助研究人员了解KPFM的原理,并显示方式中,它可以被应用到测量和创建的SP地图。
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
5500ILM Atomic Force Microscope | Agilent Technologies | #N9435S | |
AFM/STM Metal Specimen Discs | TED PELLA, INC. | #16219 | Stainless steel sample discs |
DPE (Low-Noise) Conductive SPM Probes | Mikromasch | #HQ:DPE-XSC11 | There are 4 Pt-coated cantilevers per chip. We utilized cantilever B for experiments. |
PELCO Gold Coated AFM/STM Metal Specimen Discs | TED PELLA, INC. | #16218-G | Gold sample discs |
PicoView Software | Agilent Technologies | #N9797B | 5500ILM Atomic Force Microscope imaging software |
Pico Image Software (Pico Image Basic) | Agilent Technologies | #N9797AU-1FP | 5500 ILM Atomic Force Microscope post-image processing software |
Scilogex D3024 High Speed Micro-Centrifuge | Thomas Scientific | #91201513 | Centrifuge used in cell-washing steps to separate cells (pellet) from media |
Trypticase Soy Agar with 5% Sheep Blood | BD | #221261 | Pre-made plates |
Tryptic Soy Broth | BD | #257107 | Comes as a dry powder. Instruction on how to make come on the container. |
References
- Seth, A. K., et al. In vivo modeling of biofilm-infected wounds: a review. J. Surg. Research. 178 (1), 330-338 (2012).
- Wolcott, R. D., Ehrlich, G. D. Biofilms and chronic infections. JAMA. 299 (22), 2682-2684 (2008).
- Hoiby, N., et al. The clinical impact of bacterial biofilms. Micro. Infect. 3 (2), 55-65 (2011).
- Zhang, W., Hughes, J., Chen, Y. Impacts of hematite nanoparticle exposure on biomechanical, adhesive, and surface electrical properties of E. coli cells. Appl. Environ. Microbiol. 78 (11), 3905-3915 (2012).
- Lorite, G. S., et al. Surface physicochemical properties at the micro and nano length scales: role on bacterial adhesion and Xylella fastidiosa biofilm development. PLoS One. 8 (9), (2013).
- Lee, I., Chung, E., Kweon, H., Yiacoumi, S., Tsouris, C. Scanning surface potential microscopy of spore adhesion on surfaces. Coll. Surf. Biointer. 92, 271-276 (2012).
- Tsai, C., Hung, H., Liu, C., Chen, Y., Pan, C. Changes in plasma membrane surface potential of PC12 cells as measured by Kelvin probe force microscopy. PLoS One. 7 (4), (2012).
- Jucker, B. A., Harms, H., Zehnder, A. J. Adhesion of the positively charged bacterium Strenotrophomonas (Xanthomonas) maltophilia 70401 to glass and Teflon. J. Bacteriology. 178 (18), 5472-5479 (1996).
- Soon, R. L., et al. Different surface charge of colistin-susceptible and -resistant Acinetobacter baumannii cells measured with zeta potential as a function of growth phase and colistin treatment. J. Anti. Chemo. 66, 126-133 (2011).
- Tariq, M., Bruijs, C., Kok, J., Krom, B. P. Link between culture zeta potential homogeneity and Ebp in Enterococcus faecalis. Appl. Environ. Microbiol. 78 (7), 2282-2288 (2012).
- Ayala-Torres, C., Hernandez, N., Galeano, A., Novoa-Aponte, L., Soto, C. Zeta potential as a measure of the surface charge of mycobacterial cells. Ann Microbiol. , (2013).
- Allison, D. P., Mortensen, N. P., Sullivan, C. J., Doktycz, M. J. Atomic force microscopy of biological samples. Nanomed. Nanobiotech. 2 (6), 613-634 (2010).
- Lindsay, S. M., et al. Scanning tunneling microscopy and atomic force microscopy studies of biomaterials at a liquid-solid interface. J. Vac. Sci. Technol. 11 (4), 808-815 (1993).
- Moores, B., Hane, F., Eng, L., Leonenko, Z. Kelvin probe force microscopy in application to biomolecular films: frequency modulation, amplitude modulation, and lift mode. Ultramicroscopy. 110 (6), 708-711 (2010).
- Melitz, W., Shen, J., Kummel, A. C., Kelvin Lee, S. probe force microscopy and its application. Surf. Sci. Reports. 66 (1), 1-27 (2011).
- Loppacher, C., et al. FM demodulated Kelvin probe force microscopy for surface photovoltage tracking. Nanotechnology. 16 (3), (2005).
- Domanski, A. L., et al. Kelvin probe force microscopy in nonpolar liquids. Langmuir. 28 (39), 13892-13899 (2012).
- Collins, L., et al. Dual harmonic Kelvin probe force microscopy at the graphene-liquid interface. Appl. Phys. Letters. 104 (13), 133103 (2014).
- Kobayashi, N., Asakawa, H., Fukuma, T. Nanoscale potential measurements in liquid by frequency modulation atomic force microscopy. Rev. Sci. Instru. 81, (2010).
- Collins, L., et al. Probing charge screening dynamics and electrochemical processes at the solid-liquid interface with electrochemical force microscopy. Nature Comm. 5, 2871 (2014).
- Pastar, I., et al. Interactions of methicillin resistant Staphylococcus aureus USA300 and Pseudomonas aeruginosa in polymicrobial wound infection. PLoS One. 8 (2), (2013).
- Brien, D. J., Gould, I. M. Does vancomycin have a future in the treatment of skin infections. Cur. Opin. Infec. Diseas. 27 (2), 146-154 (2014).
- Wang, P., Kinraide, T. B., Zhou, D., Kopittke, P. M., Peijnenburg, W. J. G. M. Plasma membrane surface potential: dual effects upon ion uptake and. 155 (2), 808-820 (2011).
- Gross, M., Cramton, S. E., Gotz, F., Peschel, A. Key role of teichoic acid net charge in Staphylococcus aureus colonization of artificial surfaces. Infect. Immun. 69 (5), 3423-3426 (2001).
- Sinensky, A. M., Belcher, A. M. Label-free and high-resolution protein/DNA nanoarray analysis using Kelvin probe force microscopy. Nat. Nanotechnol. 2, 653-659 (2007).
- Park, J., et al. Single-molecule recognition of biomolecular interaction via kelvin probe force microscopy. ACS Nano. 5 (9), 6981-6990 (2011).