Summary

System til Effekt og cytotoksicitet Screening af inhibitorer Målretning Intracellulær<em> Mycobacterium tuberculosis</em

Published: April 05, 2017
doi:

Summary

Vi har udviklet en modulær højkapacitetsscreening system til at opdage hidtil ukendte forbindelser mod Mycobacterium tuberculosis, målretning intracellulære og i-bouillon voksende bakterier samt cytotoksicitet mod pattedyrværtscelle.

Abstract

Mycobacterium tuberculosis, the causative agent of tuberculosis (TB), is a leading cause of morbidity and mortality worldwide. With the increased spread of multi drug-resistant TB (MDR-TB), there is a real urgency to develop new therapeutic strategies against M. tuberculosis infections. Traditionally, compounds are evaluated based on their antibacterial activity under in vitro growth conditions in broth; however, results are often misleading for intracellular pathogens like M. tuberculosis since in-broth phenotypic screening conditions are significantly different from the actual disease conditions within the human body. Screening for inhibitors that work inside macrophages has been traditionally difficult due to the complexity, variability in infection, and slow replication rate of M. tuberculosis. In this study, we report a new approach to rapidly assess the effectiveness of compounds on the viability of M. tuberculosis in a macrophage infection model. Using a combination of a cytotoxicity assay and an in-broth M. tuberculosis viability assay, we were able to create a screening system that generates a comprehensive analysis of compounds of interest. This system is capable of producing quantitative data at a low cost that is within reach of most labs and yet is highly scalable to fit large industrial settings.

Introduction

Mycobacterium tuberculosis, det forårsagende middel af tuberkulose (TB), er en førende årsag til sygelighed og dødelighed i hele verden. Medikamentfølsomme TB er en behandlelige sygdom, der kræver flere antibiotika i en periode på 6 måneder. Trods en behandlelige sygdom, blev TB dødelighed anslået til 1,5 millioner i 2015 en. I de seneste 10 år har der været stigende bekymring over forekomsten af resistente M. tuberculosis. Multiresistent tuberkulose (MDR-TB) er defineret som TB der er resistent overfor mindst Isoniazid (INH) og Rifampicin (RMP), og de fleste MDR-TB-stammer er også modstandsdygtige over for vælge second-line TB lægemidler, hvilket begrænser behandlingsmuligheder . Virkningerne af lægemiddelresistens skabe en større udfordring til behandling af patienter med samtidig infektion med humant immundefekt virus (HIV); 400.000 patienter på verdensplan døde af HIV-associeret tuberkulose i 2015 1. Skuffende, USA Food and Drug Administration har godkendt kun én ny TB lægemiddel mod MDR-TB, bedaquiline, i de seneste 40 år 2. Fremskridt i at finde bedre og kortere TB terapier er et presserende behov for at være på forkant i kampen mod tuberkulose og multiresistent tuberkulose.

Traditionelt er TB lægemiddelscreeninger udført under in vitro vækstbetingelser i vækstmedium, hvorved forbindelser tilsættes til en voksende kultur og deres effektivitet til udryddelse mikroorganismerne bestemmes ved at tælle kolonidannende enheder (CFU) på fast medium. Da CFU tæller er arbejdskrævende, tidskrævende, og kostbar, har forskellige indirekte metoder blevet udviklet til at afhjælpe dette problem. Sådanne fremgangsmåder indbefatter Alamar Blue levedygtighedsassay 3, bestemmelse af fluorescens 4 fra grønt fluorescerende protein (GFP) eller luminescens 5 fra luciferase-udtrykkende bakterier, og skønnet over den samlede adenosintriphosphat (ATP) 6, 7.

Typisk TB er kendetegnet ved en M. tuberculosis-infektion i lungen, hvor bakterierne opholde sig og replikere inde i fagosomer af alveolære makrofager 8. Den enkle i-bouillon fænotypisk skærm kan passe ekstracellulære patogener; men i historisk perspektiv, ramte forbindelser mod M. tuberculosis identificeret ved anvendelse af denne fremgangsmåde ofte undlader at leve op til forventningerne i nedstrøms valideringsrutiner infektionsmodeller. Vi foreslår, at TB medicin er bedst udføres i en intracellulær værtscelle infektion model. Ikke desto mindre er intracellulære modeller besidder mange teknologiske og biologiske barrierer for high-throughput screening (HTS) udvikling. En stor hindring er kompleksiteten af ​​infektionsprocessen, eksemplificeret ved talrige trin og den omfattende fjernelse af ekstracellulære bakterier ved i-mellem vask. En anden stor forhindring er den lange tid retingelserne, som vækst detektion, normalt ved CFU regner dyrkningsplader, er en proces der tager over 3 uger at gennemføre. En løsning til at erstatte CFU tællinger er blevet tilvejebragt ved automatiseret fluorescerende mikroskopi i kombination med fluorescerende bakterier. Men denne løsning kræver en indledende udstyr investering, der er uden for rækkevidde for mange forskningslaboratorier,. En enkel, billig, og sygdom-relevant HTS metode ville i høj grad øge lægemiddelopdagelsesprocessen.

I denne undersøgelse rapporterer vi en ny, modulært HTS-system, der har til formål at give en hurtig og yderst skalerbar, men økonomisk, assay egnet til bestemmelse af aktiviteten af forbindelser mod intracellulær M. tuberculosis. Dette system består af tre moduler: (i) intracellulære, (ii) cytotoksicitet, og (iii) i-bouillon assays. Det kombinerede endelige resultat giver en omfattende beskrivelse af de sammensatte egenskaber, med yderligere information med hensyn til den potentielle virkemåde. Denne screening system er blevet anvendt i flere projekter med forskellige forbindelsesbiblioteker, der er målrettet virkemåde, herunder analyse af lægemiddelsynergi 9, stimulering af autophagy 10, og inhiberingen af M. tuberculosis -secreted virulensfaktor (ikke offentliggjort). Forbindelser med ukendt virkningsmekanisme er også blevet undersøgt 11. En modificeret version af denne metode blev også vedtaget af vores industrielle partner som den primære screeningsmetode til at identificere nye forbindelser mod intracellulær M. tuberculosis 11.

Protocol

1. bakteriestamme og Vækst Medium Gøre albumin dextrose og salt stamopløsning (ADS) ved at opløse 25 g bovint serumalbumin, 10,0 g dextrose og 4,05 g natriumchlorid i 460 ml deioniseret vand. Filter-sterilisere ADS og opbevares ved 4 ° C. Gøre 7H9 bouillon ved tilsætning af 4,7 g af 7H9 pulver og 2 ml af glycerol til 900 ml renset vand. Autoklaver 7H9 bouillon ved 121 ° C i 10 min og lad den afkøle til stuetemperatur, før der fortsættes. Gøre 7H9ADST ved tilsætning af 100 ml ADS og 0,5 …

Representative Results

High-throughput intracellulær screening under anvendelse af M. tuberculosis, der udtrykker luciferasegenet Figur 2A og Tabel 1 indeholder de rå data indsamlet af luminometeret, udtrykt i relative luminescerende enheder (RLU), der viser virkningen af en stigende koncentration af TB lægemiddel rifampicin på M. tuberculosis inde THP-1-celler. Figur 2A er et sca…

Discussion

Målet med denne undersøgelse var at skabe en enkel og omkostningseffektiv HTS fremgangsmåde under anvendelse af en human intracellulær infektion model for M. tuberculosis. Tuberkulose er en human sygdom karakteriseret ved infektion af alveolære makrofager af M. tuberculosis. På grund af biosikkerhed spørgsmål, har forskning med biologiske modeller af både bakterien og værten cellerne blevet anvendt i fortiden. Det har imidlertid vist sig, at brugen af surrogat bakterier og ikke-menneskelige m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by BC Lung Association and Mitacs.

Materials

RPMI 1640 Sigma-Aldrich R5886
L-glutamine Sigma-Aldrich G7513
Fetal bovine serum (FBS) Thermo Fisher Scientific 12483020
Middlebrook 7H9 Becton, Dickinson and Company 271210
Tween80 Fisher Scientific T164
Albumin, Bovine pH7 Affymetrix 10857
Dextrose Fisher Scientific BP350
Sodium Chloride Fisher Scientific BP358
kanamycin sulfate Fisher Scientific BP906
PMA Sigma-Aldrich P8139
MTT Sigma-Aldrich M2128
N,N-Dimethylformamide (DMF) Fisher Scientific D131
1M Hydrocholoric acid (HCl) Fisher Scientific 351279212
Acetic acid Fisher Scientific 351269
SDS Fisher Scientific BP166
Resazurin Alfa Aesar B21187
DMSO Sigma-Aldrich D5879
Glycerol Fisher Scientific BP229
THP-1 American Type Culture Collection TIB-202
M. tuberculosis H37Rv
96-well flat bottom white plate Corning 3917
95-well flat bottom clear plate Corning 3595
Transparent plate sealer Thermo Fisher Scientific AB-0580
Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific Biomate 3
Microplate spectrophotometer Biotek Epoch
luminometer Applied Biosystems Tropix TR717

References

  1. WHO. . Global tuberculosis report 2015. , (2016).
  2. Yajko, D. M., et al. Colorimetric method for determining MICs of antimicrobial agents for Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 33, 2324-2327 (1995).
  3. Khare, G., Kumar, P., Tyagi, A. K. Whole-cell screening-based identification of inhibitors against the intraphagosomal survival of Mycobacterium tuberculosis. Antimicrob Agents Chemother. 57, 6372-6377 (2013).
  4. Andreu, N., Fletcher, T., Krishnan, N., Wiles, S., Robertson, B. D. Rapid measurement of antituberculosis drug activity in vitro and in macrophages using bioluminescence. J Antimicrob Chemother. 67, 404-414 (2012).
  5. Mak, P. A., et al. A high-throughput screen to identify inhibitors of ATP homeostasis in non-replicating Mycobacterium tuberculosis. ACS Chem Biol. 7, 1190-1197 (2012).
  6. Pethe, K., et al. A chemical genetic screen in Mycobacterium tuberculosis identifies carbon-source-dependent growth inhibitors devoid of in vivo efficacy. Nat Commun. 1, 57 (2010).
  7. Hmama, Z., Pena-Diaz, S., Joseph, S., Av-Gay, Y. Immunoevasion and immunosuppression of the macrophage by Mycobacterium tuberculosis. Immunol Rev. 264, 220-232 (2015).
  8. Ramon-Garcia, S., et al. Synergistic drug combinations for tuberculosis therapy identified by a novel high-throughput screen. Antimicrob Agents Chemother. 55, 3861-3869 (2011).
  9. Lam, K. K., et al. Nitazoxanide stimulates autophagy and inhibits mTORC1 signaling and intracellular proliferation of Mycobacterium tuberculosis. PLoS Pathog. 8, e1002691 (2012).
  10. Sorrentino, F., et al. Development of an Intracellular Screen for New Compounds Able To Inhibit Mycobacterium tuberculosis Growth in Human Macrophages. Antimicrob Agents Chemother. 60, 640-645 (2015).
  11. Sun, J., et al. A broad-range of recombination cloning vectors in mycobacteria. Plasmid. 62, 158-165 (2009).
  12. . THP-1 (ATCC TIB-202) Available from: https://www.atcc.org/products/all/TIB-202.aspx (2016)
  13. Hansen, M. B., Nielsen, S. E., Berg, K. Re-examination and further development of a precise and rapid dye method for measuring cell growth/cell kill. J Immunol Methods. 119, 203-210 (1989).
  14. Invitrogen. . AlamarBlue assay. , (2008).
  15. . Handbook of anti-tuberculosis agents. Introduction. Tuberculosis (Edinb). 88 (2), 85-86 (2008).
  16. Riss, T. L., et al. . Cell Viability Assays. , (2004).
  17. Meyer, M., et al. In vivo efficacy of apramycin in murine infection models. Antimicrob Agents Chemother. 58, 6938-6941 (2014).
  18. Ballell, L., et al. Fueling open-source drug discovery: 177 small-molecule leads against tuberculosis. ChemMedChem. 8, 313-321 (2013).
  19. Grundner, C., Cox, J. S., Alber, T. Protein tyrosine phosphatase PtpA is not required for Mycobacterium tuberculosis growth in mice. FEMS Microbiol Lett. 287, 181-184 (2008).
  20. Wong, D., Bach, H., Sun, J., Hmama, Z., Av-Gay, Y. Mycobacterium tuberculosis protein tyrosine phosphatase (PtpA) excludes host vacuolar-H+-ATPase to inhibit phagosome acidification. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 19371-19376 (2011).
  21. Bach, H., Papavinasasundaram, K. G., Wong, D., Hmama, Z., Av-Gay, Y. Mycobacterium tuberculosis virulence is mediated by PtpA dephosphorylation of human vacuolar protein sorting 33B. Cell Host Microbe. 3, 316-322 (2008).
  22. Chanput, W., Peters, V., Wichers, H. . The Impact of Food Bioactives on Health: in vitro and ex vivo models. , 147-159 (2015).
  23. Maess, M. B., Wittig, B., Lorkowski, S. Highly efficient transfection of human THP-1 macrophages by nucleofection. J Vis Exp. , e51960 (2014).
  24. Ferguson, J. S., Weis, J. J., Martin, J. L., Schlesinger, L. S. Complement protein C3 binding to Mycobacterium tuberculosis is initiated by the classical pathway in human bronchoalveolar lavage fluid. Infect Immun. 72, 2564-2573 (2004).
  25. Andreu, N., et al. Optimisation of bioluminescent reporters for use with mycobacteria. PLoS One. 5, e10777 (2010).
  26. Queval, C. J., et al. A microscopic phenotypic assay for the quantification of intracellular mycobacteria adapted for high-throughput/high-content screening. J Vis Exp. , e51114 (2014).
  27. Christophe, T., et al. High content screening identifies decaprenyl-phosphoribose 2′ epimerase as a target for intracellular antimycobacterial inhibitors. PLoS Pathog. 5, e1000645 (2009).
  28. Pethe, K., et al. Discovery of Q203, a potent clinical candidate for the treatment of tuberculosis. Nat Med. 19, 1157-1160 (2013).
check_url/55273?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zheng, X., Av-Gay, Y. System for Efficacy and Cytotoxicity Screening of Inhibitors Targeting Intracellular Mycobacterium tuberculosis. J. Vis. Exp. (122), e55273, doi:10.3791/55273 (2017).

View Video