Summary
يصف لنا طريقة جديدة لإيصال بلازميد الحمض النووي في خلايا urothelial الماوس المثانة في فيفو عن طريق قسطرة مجرى البول وانهانسر. يوفر طريقة سريعة وملائمة لتوليد نماذج الماوس أصلي من أمراض المثانة.
Abstract
نماذج الماوس المهندسة وراثيا (جيمس) قيمة للغاية في الكشف عن رواية رؤى البيولوجية في آليات بدء وتطور البشرية من الأمراض مثل السرطان. الفئران المحورة وراثيا والشرطي بالضربة القاضية قد استخدمت مرارا ل overexpression الجينات أو الاجتثاث في أنسجة محددة أو الخلية أنواع فيفو. ومع ذلك، يمكن توليد نماذج الماوس germline تستغرق وقتاً طويلاً ومكلفة. ومكنت التطورات الأخيرة في تحرير تكنولوجيات وجدوى توفير والبلازميدات الحمض النووي من خلال العدوى الفيروسية الجينات السريع توليد نماذج سرطان الماوس أصلي غير germline للعديد من الأجهزة. المثانة هو جهاز الذي كان من الصعب لناقلات الأمراض الفيروسية للوصول، بسبب وجود طبقة glycosaminoglycan تغطي أوروثيليوم. هنا، يمكننا وصف طريقة جديدة وضعت في مختبر لتقديم والبلازميدات الحمض النووي بشكل فعال في أوروثيليوم المثانة الماوس في فيفو. عن طريق تقطير إينترافيسيكال من بلازميد الدنا بكاج-التجارة والنقل وانهانسر من المثانة جراحيا المكشوفة، نظهر أن يمكن تسليمها بلازميد الحمض النووي على وجه التحديد إلى الخلايا urothelial المثانة لتعبير عابر. لدينا أسلوب يوفر طريقة سريعة وملائمة أوفيريكسبريشن وضربه قاضية للجينات في المثانة الماوس، ويمكن تطبيقها على بناء جيمس سرطان المثانة وغيرها من أمراض الجهاز البولي.
Introduction
نماذج الماوس المهندسة وراثيا (جيمس) تضطلع بدور أساسي في توسيع معارفنا حول التنمية الحيوانية والجينات وظائفها في فيفو، وآليات المرض التقدم1،2. وتوضع جيمس Germline تقليديا بطريقتين. الأول هو إنشاء الفئران المعدلة وراثيا عن طريق الحقن برونوكليار من الحمض النووي بلازميد متبوعاً بزرع zygotes في الإناث بسيودوبريجنانت. والآخر هو توليد تدق-/نوك-في الفئران باقترانها مثلى في الخلايا الجذعية الجنينية ووضع التركيبات. الشرطي بالضربة القاضية للجينات في نوع النسيج أو الخلية المحددة لمصلحة ينطوي على تربية الآليلات المهندسة وراثيا مع لجنة المساواة العرقية وفلكس مواقع لأجيال متعددة. العملية كلها يمكن أن تكون مكلفة وتستغرق وقتاً طويلاً، لا سيما إذا كان الهدف لاستهداف جينات متعددة الأنسجة على وجه التحديد. مؤخرا، طبقت تكنولوجيات تحرير الجينات مثل مجمع إينتيرسباسيد بانتظام يكرر المتناوب قصيرة (كريسبر) على عدة أجهزة من الفئران للحث على التعديلات الخاصة بالانسجة الوراثية للسرطان أصلي النمذجة3، 4،5،،من67 أو الطفرات المرض الصحيح في الموقع8،9. في هذه الدراسات، تم تسليم ناقلات جرنة عادة عن طريق العدوى أدينوفيرال أو لينتيفيرال للجهاز أو حقن الوريد ذيل هيدرودينامية. والسهولة النسبية لتوصيل المكونات كريسبر إلى الرئتين والكبد تحسنت كثيرا الراحة والكفاءة للسرطان النمذجة في هذه الأجهزة مقارنة بنماذج الماوس Cre-لوكس أساس التقليدية.
أوروثيليوم المثانة حيث تنشأ معظم أورام المثانة. طبقة جليكوسامينوجليكان على سطح urothelial قمي، الذي يعمل كحاجز للانضمام للفيروسات المعدية10،11يعوق تسليم ناقلات الحمض النووي إلى urothelium المثانة لعلاج السرطان النمذجة أو الجينات. استخدمت عدة عوامل المعالجة مثل Syn3 ودوديسيل-β-د-مالتوسيدي لتعطيل هذا الحاجز وتعزيز إتش العدوى الكفاءة12،،من1314. ما إذا كانت الفيروسات المرتبطة بالغدة (آفس) يمكن أن تصيب فعالية المثانة قد لا أفيد. وعموما، سيكون من المستصوب أسلوب تسليم على أساس غير فيروسية. وهنا يصف لنا طريقة جديدة وضعت في مختبر لكفاءة تقديم بلازميد الحمض النووي ل urothelium الماوس عن طريق قسطرة مجرى البول وانهانسر. لنهجنا لا تنطوي على المعالجة الكيميائية لطبقة جليكوسامينوجليكان أو إنتاج الفيروس، فإنه إلى حد كبير يبسط إيصال والبلازميدات الحمض النووي في أوروثيليوم المثانة الماوس، وينبغي تسهيل الدراسات المختلفة في فيفو أمراض المثانة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
وأجريت جميع الإجراءات الموصوفة هنا وفقا للمبادئ التوجيهية والأنظمة من "رعاية الحيوان المؤسسية" واستخدام اللجنة (إياكوك) من جامعة كاليفورنيا سانتا كروز.
1-بلازميد وإعداد الأدوات
- لكل المثانة ترانسفيكت، وإعداد على الأقل 20 ميليلتر من بلازميد الحمض النووي (1 ميكروغرام/ميليلتر).
- إضافة 1 ميليلتر تريبان الأزرق إلى 20 ميليلتر من حل بلازميد في أنبوب ميكروسينتريفوجي 1.5 مل. ماصة مزيج جيد.
- اﻷوتوكﻻف الجراحية جميع الصكوك وتعقيم مساحة العمل مع الإيثانول 70%. رش الأدوات الجراحية والقفازات مع الإيثانول 70% وكثيراً ما أو استخدام التعقيم حبة من زجاج عند تنفيذ الخطوات التالية للحفاظ على ظروف معقمة.
2-أنايسثيتيزينج الحيوان
- استخدام نظام تخدير أعلى جدول لتخدير الحيوان مع إيسوفلوراني. قم بتشغيل الدبابة2 س وضبط مقياس الأكسجين في التدفق إلى 1 لتر في الدقيقة.
- مكان ماوس C57BL/6J الإناث الكبار في قاعة التعريفي. تشغيل وضبط المبخر isoflurane إلى 3% للاستقراء. ينبغي أن يكون الماوس في التخدير داخل الحد الأدنى 2 إدارة البوبرينورفين مسكن (0.1 مغ/كغ) تحت الجلد عند إزالة الماوس من قاعة التعريفي للتسكين وقائية.
ملاحظة: في هذا البروتوكول، الفئران الإناث تستخدم، كما أنها أسهل للعمل مع خلال قسطرة مجرى البول. البروتوكول يعمل أيضا للفئران الذكور، ولكن يلزم الحذر عند تنفيذ الخطوة 3. - تطبيق مرهم العيون لعيون الحيوان لمنع جفاف. ضع الماوس أنايسثيتيزيد مواجهة على وسادة تدفئة مع انفها في مخروط الآنف. تشغيل تبديل الدارة الجوي السماح isoflurane الذهاب من خلال مخروط الآنف.
- كبح جماح الرأس ومخروط الآنف بشريط لاصق. ضبط المبخر isoflurane إلى % 2 للصيانة.
- كبح جماح أطرافه بشريط لاصق. إجراء اختبارات تو-قرصه للتأكد من الحيوان في التخدير العميق ويحلق ثم منطقة البطن.
3-البول استنزاف وشطف المثانة
- تطبيق مواد التشحيم للقسطرة (24 ز، طول 2.11 سم، القطر الخارجي 0.045 سم) والتأكد من أن سطحه الخارجي مغطى تغطية كاملة.
- أدخل القسطرة في فتح مجرى البول، ودفع ببطء حتى يصل إلى المثانة، وهو الوقت الذي ينبغي أن تدفق البول خارجاً عن طريق القسطرة. اضغط برفق في البطن للمساعدة على استنزاف البول.
- تحقق إذا كانت القسطرة يتم إدراج بشكل صحيح في المثانة عن طريق مراقبة البول التلقائي التدفق الخارج. تجنب ثقب في جدار المثانة ومجرى البول، وتطبيق مواد التشحيم عدة مرات إذا لزم الأمر.
- تجاهل البول مع ماصة داخل دورق نفايات.
- "الماصة؛" ميليلتر 80 من الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) في نهاية القسطرة، الخارجي مع الطرف الآخر لا يزال في المثانة. إرفاق حقنه 1 مل بعناية بالقسطرة. ادفع برفق حقنه حقن برنامج تلفزيوني في المثانة. ترك بعض برنامج تلفزيوني بالقسطرة تجنب خلق فقاعات الهواء في المثانة.
- إزالة المحاقن. انتظر حتى برنامج تلفزيوني لاستنزاف خارج المثانة. اضغط برفق في البطن لإجلاء PBS.
- تجاهل برنامج تلفزيوني في القسطرة مع ماصة في الكأس النفايات.
- تكرار الغسيل (خطوات 3.4 3.6) برنامج تلفزيوني لمرتين أخريين.
ملاحظة: من الضروري العمل بلطف أثناء هذه الخطوات الغسيل. تدفق الدم في القسطرة أو فشل تلقائي خارج السائل يشير عادة إلى الرصاصات من خلال مجرى البول. من المهم أيضا تجنب إدخال فقاعات الهواء، كما أنها سوف تنخفض كفاءة انهانسر.
4-بلازميد التسليم
- تطبيق الإيثانول 70% في البطن الماوس واستخدام مشرط لشق عمودي 1 سم لفتح الجلد البطن فوق المثانة.
- "الماصة؛" على الأقل 20 ميليلتر بلازميد بالإضافة إلى حل تريبان الأزرق في نهاية القسطرة الخارجي، ونعلق المحاقن.
- حقن الحل بلازميد في المثانة. إذا كانت المثانة يتحول الأزرق، الحقن غير ناجحة. ترك بعض السائل في القسطرة تجنب خلق فقاعات الهواء في المثانة.
- الاستيلاء على فتحه الاحليل الخارجية استخدام الملقط، ثم قم بإزالة القسطرة والمحاقن. استخدام سلسلة لتشديد فتحه الاحليل الخارجية. جعل اثنين من حلقات السلسلة، وثم التعادل مع عقده اثنين.
ملاحظة: تشديد الاحليل مهم لمنع الدفق للسائل بلازميد. - قم بتشغيل مولد انهانسر مع المعلمات التالية: 33V، 50 مللي وقت العمل، ووقت الفاصل الزمني 950 مللي ثانية.
- عقد المثانة مع ملاقط وقرصة المثانة مع قطبين. دفع دواسة القدم القيام انهانسر.
ملاحظة: يتم تعيين النبضات الكهربائية إلى حدوث 5 مرات مع فترات قصيرة بعد كل دفع دواسة. وقد نشل الماوس في هذه العملية. تضغط على دواسة القدم أكثر من مرة واحدة ويمكن زيادة كفاءة التسليم، ولكن النبضات الكهربائية كثيرة جداً يمكن أن تضر سلامة الأنسجة أوروثيليوم.- تجنب أي اتصال بين الملاقط والأقطاب، وهذا سوف يولد شرارة.
5-استرداد
- خياطة فتح البطن والجلد بخياطة جراحية معقمة ومقاطع. تطبيق اليود على الجرح.
- إزالة الحيوان من النظام إيسوفلوراني. إدارة مسكن البوبرينورفين (0.1 مغ/كغ) تحت الجلد لتخفيف الألم بعد الجراحة.
- إبقاء هذا الحيوان على لوحة تدفئة وإعادته إلى القفص المنزل بعد الشفاء التام. تحقق من هذا الحيوان على الأقل مرة واحدة يوميا للتنقل العادي، والشرب وتغذية السلوكيات وأي علامات على العدوى حتى الشق هو تلتئم، ثم قم بإزالة القصاصات. إدارة حقن البوبرينورفين مسكن اللاحقة إذا كان الحيوان يعرض أعراض الألم مثل تخفيض الاستمالة، وزيادة النزعة العدوانية، وحناجرهم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
وللتدليل على نجاح توصيل الجينات في أوروثيليوم المثانة، استخدمنا بلازميد15 بكاج-التجارة والنقل انهانسر. تم حقن 20 ميليلتر بلازميد والحل تريبان الأزرق عن طريق مجرى البول، وكانت تدار من النبضات الكهربائية 5. بعد 48 ساعة، ونحن تشريح المثانة الماوس ولاحظ بقع من الأسفار بروتينات فلورية خضراء تحت مجهر fluorescence تشريح، بينما سلبي التحكم في المثانة التي لم تطرأ انهانسر أظهر أي إشارة التجارة والنقل (الشكل 1A). عندما أجرينا الفلورة تلطيخ من أنسجة المثانة مقطعة مع سيتوكيراتين (كورونا) 5، CK18، والأجسام المضادة بروتينات فلورية خضراء، وجدنا أن بروتينات فلورية خضراء إشارة كانت حاضرة في مظلة، والمتوسطة، والخلايا القاعدية، ولكن ليس في العضلات طبقة (الشكل 1B)، يشير إلى خصوصية جيدة بلازميد إيصالها إلى أوروثيليوم. حوالي 15% الخلايا urothelial هي التجارة والنقل+، وينبغي أن تكون هذه الطبيعة الاستنساخ مثالية للسرطان النمذجة منذ بدء الأورام عادة من الخلايا الفردية.
رقم 1: النجاح في إيصال بلازميد بكاج-التجارة والنقل إلى أوروثيليوم المثانة الماوس. (أ) مقارنة بين المثانة التي خضع انهانسر (يمين) إلى مثانة مراقبة سلبية (يسار) تبين أن انهانسر بنجاح تشغيل المثانة الخضراء. الفلورة (ب) تلطيخ من أنسجة المثانة مقطعة عرض الفسيفساء نمط التعبير للتجارة والنقل+ الخلايا في مظلة (CK18+)، والمتوسطة (CK5+CK18+), والقاعدية (CK5+) طبقات urothelial. شريط مقياس في A يناظر 1 مم، وفي ب 50 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
انهانسر يعزز نفاذية غشاء الخلية، وهو عبارة عن تقنية قوية للجينات اليكتروترانسفير16. إيصال الجينات إلى القوارض الحية التي انهانسر قد استخدمت كثيرا في بيولوجيا الأعصاب الحقول17،،من1819،،من2021. تطبيقاتها المحتملة في أجهزة أخرى كثيرة لم تستكشف على نطاق واسع. على حد علمنا، لدينا الأسلوب الموصوفة هنا هو التقرير الأول لإيصال الجينات الناجحة التي انهانسر إلى urothelium المثانة. ويوفر العديد من المزايا لطرق العدوى إتش/لينتيفيروس-تعتمد. أولاً، الأسلوب انهانسر أسهل وأكثر أماناً وأرخص لاعتماد لأن تستخدم ناقلات الأمراض الوراثية غير الفيروسية وتسليم والبلازميدات الحمض النووي لجهاز معين المواقع في فيفو بسيط نسبيا. وثانيا، فإنه يتجنب الاستجابات المناعية المضيف غير المرغوب فيها التي غالباً ما ترتبط بالتسليم بالفيروس ناقلات22. ثالثا، في حالة المثانة، أنه ينفي الحاجة إلى المعالجة الكيميائية طبقة جليكوسامينوجليكان، والذي عادة ما يمنع ملزم الفيروس إلى الخلايا urothelial.
الخطوات الأكثر أهمية في هذا البروتوكول هي القسطرة وشطف وحقن بلازميد. المزيد من الحيطة والتعامل مع لطيف ضرورية لضمان أن لا بيرس القسطرة من خلال جدار المثانة أو مجرى البول عند إجراء الإدراج وإرفاق/إزالة المحاقن. تطبيق مواد التشحيم يكفي تغطية كامل الخارجي سطح القسطرة ضروري أيضا. السبب المحتمل آخر للفشل هو إدخال فقاعات الهواء إلى المثانة أثناء الشطف وبلازميد الحقن، نظراً لأنها سوف تنخفض الموصلية الكهربائية. لمنع هذا، نوصي بترك بعض السائل دائماً في القسطرة عند تنفيذ تلك الخطوات.
يجب أن تعمل لدينا بروتوكول للفئران الكبار في أي سن، نظراً لأننا لم يلاحظ فرقا في كفاءة إيصال بين الأصغر سنا (شهران) وكبار السن (1 سنة) الفئران. عدة عوامل يمكن أن تؤثر كفاءة إيصال بلازميد. ونحن نوصي 20 ميليلتر من بلازميد كحجم الحد الأدنى لحقن حسب المبلغ الأدنى قد لا يغطي بما فيه الكفاية السطح الداخلي للمثانة. زيادة حجم بلازميد وتركيز عموما غلة أعلى من الاختراق، ولكن لوحظ أي فائدة إضافية لوحدات التخزين يتجاوز 60 ميليلتر. إعطاء مزيد من النبضات الكهربائية ولمس مختلف المساحات السطحية للمثانة مع أقطاب سيكون أكبر الأثر في تعزيز كفاءة التسليم. يتم تعيين المعلمات انهانسر الموصوفة في هذا البروتوكول للسماح بيرميبيليزيشن الخلايا urothelial مع المحافظة على سلامة الأنسجة، حيث يميل الجهد العالي للحث على موت الخلايا. من الممكن أن يعدل هذه المعلمات لمزيد من التحسين. الماوس للاختلافات والتعامل مع الباحث يمكن أن تؤثر على الكفاءة إلى حد كبير. تبعاً لهدف المشروع، نوصي بإجراء تجارب لتحديد معايير أفضل لكل تجربة محددة. على سبيل المثال، في نمذجة بدء السرطان والنمو الاستنساخ، قد رغبت في اختراق أقل.
كدليل على-من-مبدأ لدينا طريقة التسليم، يمكن تصور في المثانة لها في أقرب وقت ح 36 بعد انهانسر تعبير بروتينات فلورية خضراء، ويمكن أن تستمر لمدة أسبوعين على الأقل. مع هذا الأسلوب الجديد، من الممكن الآن لتسليم والبلازميدات الحمض النووي إلى المثانة الماوس سريعة وغير مكلفة للجينات overexpression أو أسفل-التنظيم والتحرير الجينوم. فإنه يفتح آفاقاً جديدة لدراسة التنمية المثانة، والأمراض، فضلا عن بناء نماذج سرطان المثانة أصلي الرواية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب يعلن أي المصالح المتنافسة.
Acknowledgments
ونشكر الأستاذ بن تشن والدكتور تشانغ يو هوانغ كندي للمساعدة في إعداد نظام انهانسر. أيد هذا العمل منح من سانتا كروز السرطان مجموعة المزايا والمعاهد الوطنية للصحة إلى Z.A.W.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| BD 1mL TB Syringe | Fisher | 148232E | |
| Buprenorphine | Sigma | B9275-50MG | |
| Dumont Tweezers | Roboz Surgical Instr | RS-5005 | Treat with 70% ethanol before surgical use |
| ECM830 SQ Wave Electroporator | Harvard Apparatus | 450052 | |
| Exel International Disposable Safelet I.V. Catheters | Fisher Scientific | 14-841-21 | 24G, 2.11 cm length, 0.045 cm outer diameter |
| Extra Fine Micro Dissecting Scissors | Roboz Surgical Instr | RS-5135 | Treat with 70% ethanol before surgical use |
| Isoflurane | Vet one | 501017 | |
| K&H Heated Resting Mat for Small Animals, 9 By 12 Inches | Amazon | n/a | Cover the heat mat with paper towels |
| Ophthalmic ointment | Fisher | NC0849514 | |
| PBS, pH7.4 | Life Technologies | 10010049 | |
| Pipet tips 200 µL | USA Scientific | 1111-0206 | |
| Pipet Tips, Universal Fit; 0.1 to 10 µL | Fisher | 02707438(CS) | |
| PIPETMAN NEO P2 | Gilson | F144561 | |
| PIPETMAN NEO P200N | Gilson | F144565 | |
| plasmid CAG-GFP | Addgene | 16664 | |
| Platinum tweezertrode 5 mm | Harvard Apparatus | 450489 | 5 mm diameter |
| Scissors | Roboz Surgical Instr | RS-5880 | Treat with 70% ethanol before surgical use |
| String cord | Amazon | n/a | Mandala Crafts 150D 210D 0.8mm 1mm leather sewing stitching flat waxed thread string cord |
| Tape, Scotch | Fisher | 19047257 | |
| Therio-gel Veterinary Lubricant | PBS animal health | 353-736 | |
| Trypan Blue Stain | Life Technologies | 15250061 | |
| V-1 Table top system anesthesia | VetEquip | 901806 | |
| Vicryl violet suture 18" FS-2 cutting 5-0 | Fisher | NC0578475 | |
| Walgreens Povidone Iodine 10% | Walgreens | 953982 | |
| Wound clip | Fisher | 018045 | |
| Wound clip applier | Fisher | 01804 |
References
- Sharpless, N. E., Depinho, R. A. The mighty mouse: genetically engineered mouse models in cancer drug development. Nat Rev Drug Discov. 5 (9), 741-754 (2006).
- Heyer, J., Kwong, L. N., Lowe, S. W., Chin, L. Non-germline genetically engineered mouse models for translational cancer research. Nat Rev Cancer. 10 (7), 470-480 (2010).
- Maddalo, D., et al. In vivo engineering of oncogenic chromosomal rearrangements with the CRISPR/Cas9 system. Nature. 516 (7531), 423-427 (2014).
- Xue, W., et al. CRISPR-mediated direct mutation of cancer genes in the mouse liver. Nature. , (2014).
- Sanchez-Rivera, F. J., et al. Rapid modelling of cooperating genetic events in cancer through somatic genome editing. Nature. 516 (7531), 428-431 (2014).
- Romero, R., et al. Keap1 loss promotes Kras-driven lung cancer and results in dependence on glutaminolysis. Nat Med. 23 (11), 1362-1368 (2017).
- Platt, R. J., et al. CRISPR-Cas9 knockin mice for genome editing and cancer modeling. Cell. 159 (2), 440-455 (2014).
- Yin, H., et al. Genome editing with Cas9 in adult mice corrects a disease mutation and phenotype. Nat Biotechnol. 32 (6), 551-553 (2014).
- Yang, Y., et al. A dual AAV system enables the Cas9-mediated correction of a metabolic liver disease in newborn mice. Nat Biotechnol. 34 (3), 334-338 (2016).
- Negrete, H. O., Lavelle, J. P., Berg, J., Lewis, S. A., Zeidel, M. L. Permeability properties of the intact mammalian bladder epithelium. Am J Physiol. 271 (4 Pt 2), F886-F894 (1996).
- Lilly, J. D., Parsons, C. L. Bladder surface glycosaminoglycans is a human epithelial permeability barrier. Surg Gynecol Obstet. 171 (6), 493-496 (1990).
- Ramesh, N., et al. Identification of pretreatment agents to enhance adenovirus infection of bladder epithelium. Mol Ther. 10 (4), 697-705 (2004).
- Yamashita, M., et al. Syn3 provides high levels of intravesical adenoviral-mediated gene transfer for gene therapy of genetically altered urothelium and superficial bladder cancer. Cancer Gene Ther. 9 (8), 687-691 (2002).
- Engler, H., et al. Ethanol improves adenovirus-mediated gene transfer and expression to the bladder epithelium of rodents. Urology. 53 (5), 1049-1053 (1999).
- Matsuda, T., Cepko, C. L. Electroporation and RNA interference in the rodent retina in vivo and in vitro. P Natl Acad Sci USA. 101 (1), 16-22 (2004).
- Yarmush, M. L., Golberg, A., Sersa, G., Kotnik, T., Miklavcic, D. Electroporation-based technologies for medicine: principles, applications, and challenges. Annu Rev Biomed Eng. 16, 295-320 (2014).
- Saito, T., Nakatsuji, N. Efficient gene transfer into the embryonic mouse brain using in vivo electroporation. Dev Biol. 240 (1), 237-246 (2001).
- Boutin, C., Diestel, S., Desoeuvre, A., Tiveron, M. C., Cremer, H. Efficient in vivo electroporation of the postnatal rodent forebrain. PLoS One. 3 (4), e1883 (2008).
- Saito, T. In vivo electroporation in the embryonic mouse central nervous system. Nat Protoc. 1 (3), 1552-1558 (2006).
- Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., Khiroug, L. S. Gene delivery to postnatal rat brain by non-ventricular plasmid injection and electroporation. J Vis Exp. (43), (2010).
- Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. (6), e239 (2007).
- Follenzi, A., Santambrogio, L., Annoni, A. Immune responses to lentiviral vectors. Curr Gene Ther. 7 (5), 306-315 (2007).
