Une fistule aortocaval a été créée en perforant l’aorte infra-rénale murine à travers les deux murs dans le cava vena inférieur et a été suivie par la création d’une sténose dans son écoulement par l’intermédiaire de la ligature partielle du cava vena inférieur. Ce modèle reproductible peut être utilisé pour étudier la sténose veineuse centrale.
La sténose veineuse centrale est une entité importante contribuant à l’échec artériovenous de fistule (AVF). Un modèle aVF murine a été modifié pour créer une ligature partielle du cava inférieur de veine (IVC) dans le courant sortant de la fistule, imitant la sténose veineuse centrale. Les aspects techniques de ce modèle sont introduits. L’aorte et l’IVC sont exposés, suite à une incision abdominale. L’aorte infra-rénale et l’IVC sont disséqués pour le clampage proximal, et l’aorte distale est exposée pour la perforation. L’IVC au milieu entre la veine rénale gauche et la bifurcation aortique est soigneusement disséqué pour placer un 8-0 suture sous l’IVC. Après le clampage de l’aorte et de l’IVC, une AVF est créée en perforant l’aorte infra-rénale à travers les deux murs dans l’IVC avec une aiguille de 25 G, suivie d’une ligature d’un cathéter intra-veineux (IV) de 22 G et d’IVC ensemble. Le cathéter est ensuite enlevé, créant une sténose veineuse reproductible sans occlusion. L’aorte et l’IVC sont non-clamped après confirmation de l’hémostasie primaire. Ce nouveau modèle de sténose veinenelle centrale est facile à réaliser, reproductible, et facilitera les études sur l’échec de l’AVF.
Les fistules artérioveineuses (AVF) sont les accès les plus communs pour l’hémodialyse, avec la patency supérieure et l’infection réduite comparée à d’autres accès tels que des greffes ou des cathéters veineux centraux. Cependant, jusqu’à 60% de l’AVF ne parviennent pas à mûrir1,2,3; un examen systématique récent a indiqué que les taux de patency primaire à 1 an étaient seulement 60%4. La sténose le long de l’écoulement veineux provoque principalement l’échec de la maturation AVF5,6. Il y a certains endroits caractéristiques enclins à la sténose proximale à la fistule : le segment de balancement juxtaanastomotic pour la fistule radiocéphalique, la région céphalique d’arc pour la fistule brachiocéphalique et la veine centrale pour la fistule avec précédemment placé ipsilateral subclavian ou interne cathéters de veine jugulaire7,8.
La sténose veineuse centrale est souvent asymptomatique dans les patients sans AVF, mais peut causer l’oiséème d’extrémité ipsilateral par l’hypertension veineuse aussi bien que l’échec de la maturation de fistule une fois défié par le fluxdefistule 9. La pathophysiologie de la sténose veineuse centrale est très probablement liée à l’inflammation et à la cascade activée de coagulation après le placement de dispositif. En outre, le mouvement constant de la pointe du cathéter ainsi que l’écoulement accru de la fistule peuvent altérer le stress de cisaillement, ayant pour résultat le dépôt de plaquette et l’épaississement de mur veineux10. Pour comprendre les mécanismes de base sous-jacents à l’échec de la VVA causée par la sténose veineuse centrale, un modèle animal imitant la sténose veineuse centrale avec une AVF est nécessaire.
Nous avons établi un modèle de fistule d’aortocaval murine qui est facile à exécuter et maître et récapitule le cours clinique de l’AVF humaine. 11 Nous avons appliqué les concepts et la technique de plusieurs modèles murins précédemment établis pour créer un modèle murine nouveau d’AVF avec la sténose veineuse. Nous introduisons un modèle de fistule aortocavale murine avec une sténose IVC dans la fistule de sortie qui peut être employée pour l’étude de la sténose veineuse centrale.
Le modèle aVF murine a été utilisé pour étudier les mécanismes de base et les événements moléculaires conduisant à la maturation AVF13,14. Dans cette étude, nous avons modifié un modèle aVF murine établi pour créer un nouveau modèle de fistule aortocaval murine avec une sténose IVC dans le tractus sortant de la fistule. Notre modèle de ligature est semblable à plusieurs modèles murins précédemment décrits qui emploient la ligature vasculair…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par le National Institute of Health (NIH) des États-Unis Grant R01-HL128406; le prix I01-BX00236 du Programme d’examen du mérite du Ministère des Anciens Combattants des États-Unis pour la recherche et le développement en laboratoire biomédical; ainsi qu’avec les ressources et l’utilisation des installations au va Connecticut Healthcare System, West Haven, CT.
20-60 Mhz scan head | VisualSonics Inc. | RMV-704 | |
8-0 Sterile Micro Suture, 6mm (140 µ), 3/8 Circle, TAP Point Needle | AROSuture | T06A08N14-13 | polyamide monofilament sutures |
Induction Chamber, 2 Liter 3.75"W x 9.00"D x 3.75"H |
VetEquip | 941444 | |
Isoflo, Isoflurane liquid | Zoetis | 26675-46-7 | |
Mice, C57BL/6J | The Jackson Laboratory | 664 | |
Pet Bed Microwave Heating Pad | Snuggle Safe | 6250 | |
PrecisionGlide Needle 25G | BD | 305122 | |
Surflo I.V. Catheter 22G | Terumo | SR-OX2225CA | 0.85mm outer diameter |
Vascular clamp | Roboz Surgical Instrument | RS-5424 | |
Vevo770 High Resolution Imaging System | VisualSonics Inc. | 770 |