Summary
여기서는 체외에서 감각 및 운동 신경에서 섬유아세포와 슈완 세포를 정화하는 방법을 제시합니다.
Abstract
말초 신경계의 주요 세포는 슈완 세포 (SCs) 및 섬유 아세포입니다. 이 세포 는 신경 성 위축인 유전자 발현 및 기타 생물학적 과정의 다른 패턴에 관여하는 감각 및 운동 표현형을 뚜렷하게 표현하여 신경 재생에 영향을 미칩니다. 본 연구는 고도로 정제된 쥐 감각및 운동 SCs 및 섬유아세포를 더 빠르게 얻기 위한 프로토콜을 설치했습니다. 신생아 쥐(7일)의 복부 근루(motor nerve)와 등쪽 뿌리(감각신경)는 4-5일 동안 배양되었고, 이어서 감각및 운동 섬유아세포 및 SC의 분리를 순차적으로 결합하였다. 면역 세포화학 및 유동 세포측정 분석 의 결과는 감각및 운동 SCs 및 섬유아세포의 순도가 >90%였다는 것을 보여주었습니다. 이 프로토콜은 많은 수의 감각 및 운동 섬유아세포/SC를 더 빠르게 획득하는 데 사용될 수 있으며, 이는 감각 및 운동 신경 재생의 탐사에 기여합니다.
Introduction
말초 신경계에서, 신경 섬유는 주로 축축산, 슈완 세포 (SC) 및 섬유 아세포로 구성되며, 또한 소량의 대식세포, 미세 혈관 내피 세포 및 면역 세포1을포함합니다. SC는 축축을 1:1 비율로 감싸고 엔도뉴리움이라고 하는 결합 조직 층에 의해 동봉됩니다. 축삭은 매심이라고 불리는 단을 형성하기 위하여 그 때 함께 묶이고, 각 근막은 회음관으로 알려져 있는 결합 조직 층으로 싸여 있습니다. 마지막으로, 전체 신경 섬유는 에피뇌란이라고 불리는 결합 조직의 층으로 싸여 있습니다. 엔도뉴리움에서, 전체 세포 인구는 48% SC로 이루어져 있고, 나머지 세포의 상당 부분은 섬유아세포2를포함한다. 더욱이, 섬유아세포는 에피뇌리움, 회음관 및 엔도뉴리움3을포함한 모든 신경 구획의 중요한 구성 요소입니다. 많은 연구는 SC와 섬유 아세포가 말초 신경 부상후재생 과정에서 중요한 역할을 한다는 것을 지적했다4,5,,6. 말초 신경의 편부 후, 천동맥 섬유아세포는 SC와 섬유아세포 사이의 에클레인-B/EphB2 신호 전달 경로를 통해 세포 분류를 조절하여 상처5를통해 축축재를 더욱 안내한다. 말초 신경 섬유아세포는 테나신-C 단백질을 분비하고 β1-integrin 신호 전달 경로를 통해 신경 재생 중 SC의 이동을향상시킨다 7. 그러나, 위의 연구에서 사용된 SCs및 섬유아세포는 감각과 운동 신경을 모두 포함하는 상골 신경에서 파생되었습니다.
말초 신경계에서 감각 신경(afferent neuros)은 수용체에서 중추 신경계(CNS)까지 감각 신호를 실시하며, 모터 신경(efferent nerves)은 CNS에서 근육으로 신호를 전한다. 이전 연구는 SC가 뚜렷한 모터 및 감각 표현형을 표현하고 말초 신경재생을지원하기 위하여 신경 영양인을 분비한다는 것을8,9를표시했습니다. 최근 연구에 따르면, 섬유아세포는 또한 다른 모터와 감각 표현형을 표현하고 SC10의이동에 영향을 미친다. 따라서, 모터와 감각 신경 섬유아세포/SC 간의 차이의 탐구는 말초 신경 특정 재생의 복잡한 근본적인 분자 메커니즘을 연구할 수 있게 해줍니다.
현재, 항체 매개 세포분석11,,12,순차면역파닝13 및 라미닌 서브스트라툼(14)의 적용을 포함하여 SC 및 섬유아세포를 정화하는 여러 가지 방법이 있다.14 그러나, 위의 모든 방법은 섬유아세포를 제거하고 SC만 보존합니다. 고도로 정제된 SC 및 섬유아세포는 유동 세포측정 선별기술(15)에의해 얻어질 수 있지만, 시간이 많이 소요되고 비용이 많이 드는 기술이다. 따라서, 본 연구에서는, 많은 수의 섬유아세포와 SC를 더 빠르게 얻기 위해 감각과 운동 신경 섬유아세포 및 SC를 정화및 분리하기 위한 간단한 차동 소화 및 차분 준수 방법이 개발되었다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
이 연구는 난통 대학의 제도적 동물 관리 지침에 따라 수행되었다. 동물 과목을 포함한 모든 절차는 중국 장쑤성 실험동물 관리위원회의 승인을 받았습니다.
1. 모터 및 감각 신경 섬유아세포 및 SC의 격리 및 문화
- 중국 난통 대학의 실험 동물 센터에서 제공하는 7일 된 스프라그-Dawley(SD) 쥐(n=4)를 사용하십시오. 쥐를 5% 이소플루란을 함유한 탱크에 2-3분 동안 놓고, 동물이 천천히 숨을 쉬고 독립적인 활동이 없는 다음, 참수 전에 75%의 에탄올을 사용하여 소독합니다.
- 가위를 사용하여 뒤쪽 피부를 약 3cm 동안 자르고 척추를 제거하십시오. 척수를 노출하기 위해 신중하게 척추 운하를 엽니 다.
- 60mm 페트리 접시에 2-3mL의 얼음 차가운 D-행크스의 균형 잡힌 소금 용액(HBSS)으로 척수를 유지합니다.
- 해부학 적 구조에 기초하여, 해부 현미경에서 복부 뿌리 (모터 신경)와 다음 등대 뿌리 (감각 신경)를 소비한다. 다음으로, 얼음 차가운 D-행크스의 균형 잡힌 소금 용액(HBSS)에 넣습니다.
- HBSS를 제거한 후, 신경을 가위로 3-5mm 조각으로 자르고 18-20 분 동안 37 °C에서 0.25 %(w /v) 트립신으로 소화하십시오. 다음으로, 소화를 막기 위해 10% 태아 소 혈청(FBS)을 함유한 DMEM3-4mL로 보충한다.
- 혼합물을 약 10회 위아래로 부드럽게 피펫하고 원심분리기는 800 x g에서 5분간 피펫을 합니다. 그 후, 상체를 버리고 10 % FBS로 보충 DMEM의 2-3 mL에서 침전을 중단합니다.
- 400 메쉬 필터를 사용하여 셀 서스펜션을 필터링한 다음, 5% CO2의존재시 37°C에서 60mm 페트리 접시 및 배양으로 세포를 접종한다. 배양 4-5일 후, 90%에 도달한 후 0(p0) 섬유아세포 및 SC를 분리한다.
- SC의 격리 및 문화(그림 1)
- 1x PBS를 사용하여 세포를 한 번 씻으시면 됩니다. 60mm 페트리 접시당 0.25%(w/v) 트립신(37°C)의 1mL을 추가하여 실온에서 8-10s의 세포를 소화합니다. 그 후, 추가 3 DMEM의 mL 10% FBS 소화를 중지.
- 혼합물을 부드럽게 날려 서 파이펫으로 SC를 분리합니다. 그런 다음 5 분 동안 800 x g에서 SC를 수집하고 원심 분리합니다.
- 상체를 버리고 10% FBS, 1% 페니실린/연쇄상구, 2 μM 포스콜린 및 10 ng/mL HRG로 DMEM의 3mL에서 침전을 중단한 다음, 코팅되지 않은 60mm 페트리 접시로 세포를 접종한다. 30-45분 동안 37°C에서 배양한 후 섬유아세포(몇 가지 섬유아세포가 SC로 소화)를 접시 바닥에 부착합니다.
- 상체(SC 포함)를 다른 폴리 L-리신(PLL)-코팅 된 중간 접시 및 배양에 2 일 동안 37 °C로 옮김한다.
- 섬유아세포의 격리 및 배양(도 1)
- SC를 제거한 후(1.8단계와 같이) 1x PBS로 접시에 남은 섬유아세포를 세척한 다음 트립신 1mL을 추가하여 37°C에서 2분 동안 섬유아세포를 소화합니다.
- 소화를 종료하려면 10% FBS로 보충된 DMEM을 추가합니다. 파이펫을 사용하여 섬유아세포를 날려 버리고 수집하여 원심분리기를 800 x g에서 5분 동안 수집합니다.
- 상체를 버리고, 10% FBS를 함유하는 DMEM의 2mL로 침전을 중단한 다음, 코팅되지 않은 60mm 페트리 접시에서 세포를 접종한다. 37°C에서 30-45분 동안 배양한 후 섬유아세포가 접시의 바닥에 부착한다. 상체(몇 가지 수의 SC 포함)를 폐기합니다. 그런 다음 2 일 동안 37 °C에서 섬유 아세포 접시 및 문화에 10 % FBS로 보충 된 DMEM 3 mL을 추가합니다.
- p1 세포를 90%의 합류에 도달할 때까지 통과합니다. 그런 다음 1.8 및 1.9 섹션에 설명된 대로 차동 소화 및 차동 준수로 다시 정화합니다.
- 2 일 동안 배양 한 후 p2 섬유 아세포 및 SC를 소화 한 다음 세포를 수집, 카운트 및 면역 세포 화학 (ICC)에 대한 PLL 코팅 슬라이드에 1 x 105 숫자 / 잘 접종.
2. 세포 순도의 식별을위한 ICC
- 37°C에서 24시간 동안 세포를 배양하고 모터 및 감각 섬유아세포 및 SC의 차동 소화 및 차동 준수 후 ICC 염색을 수행한다.
- 모터와 감각 섬유아세포 및 SC를 1x PBS로 세척하고 실온에서 18분 동안 4% 파라포름데히드(pH 7.4)의 200 μL/well에서 수정합니다.
- 블로킹 버퍼(0.1% 트리톤 X-100 in 0.01 M PBS의 5% 염소 세럼 포함)로 시료 섬유아세포(0.01 M PBS 포함 5% 염소 세럼 포함)를 PBS 세이미로 세척한 후 37°C에서 45분 동안 차단 버퍼로 시료 섬유아스트를 차단한다.
- 차단 버퍼를 제거하고 다음 1 차 항체로 배양하십시오 : 마우스 단일 클론 항 CD90 항체 (섬유 아세포에 대한 특정 마커) (1:1000) 섬유 아세포 및 마우스 항 S100 항체 (SC에 대한 특정 마커) (1:400) 4 °C에서 하룻밤 사이에 SCs에 대한.
- 1차 항체를 버리고, PBS 세 번 세척하고, 다음 이차 항체와 함께 배양하십시오: 알렉사 플루어 594 염소 항마우스 IgG (1:400) 섬유아세포용 및 488-공주 염소 항마우스 IgG (1:400) 실온에서 SCs용 1.5 h.
- 샘플을 PBS로 세 번 세척하고 실온에서 10 분 동안 5 μg / mL Hoechst 33342 염료로 핵을 얼룩지게하십시오. 1x PBS로 샘플을 세 번 세척하고 유리 슬라이드에 장착 매체 (20 μL / 슬라이드)를 사용하여 장착하십시오.
- 각 웰에 대한 세 임의의 필드에 공초점 레이저 스캐닝 현미경으로 셀 사진을 촬영합니다. 총 핵 및 CD90 양성 세포, S100 양성 세포의 수를 평가한 다음 CD90 양성 세포 및 S100 양성 세포의 백분율을 각각 계산합니다. 삼중에서 염색을 수행합니다.
3. 세포 순도의 식별을 위한 유동 세포 분석(FCA)
- FCA16에의해 이전에 설명된 바와 같이 모터 및 감각 섬유아세포 및 SC의 순도를 평가한다. 간략하게, p2 모터와 감각 섬유아세포 및 SC를 0.25%(w/v) 트립신으로 소화하고, 세포 펠릿을 재일시 중단하고 15분 동안 실온에서 고정 매체로 배양한다.
- 섬유아세포 및 마우스 항S100 항체(1:400, 200 μL)를 위해 마우스 단클론 항체(0.1 μg/106세포, 200 μL)를 사용하여 충류 배지 및 프로브로 세포를 배양하여 30분 동안 실온에서 SC용으로 배양한다.
- 488-접합 염소 안티 마우스 IgG로 세포를 30 분 동안 배양. FACS 구경을 사용하여 흐름 세포 측정을 수행하고 셀 퀘스트 소프트웨어를 사용하여 데이터를 분석하십시오.
- 488-접합 염소 안티 마우스 IgG (섬유 아세포 그룹) 및 마우스 IgG1 카파 [MOPC-21] (FITC) - 등형 제어 (SCs 그룹)로만 세포를 배양하여 부정적인 대조군역할을합니다.
4. 통계 분석
- 모든 데이터를 의미 ±SEM으로 제시합니다. t p&0.05에서 통계적 유의성 설정. p 트리플리케이트로 모든 에세이를 수행합니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
가벼운 현미경 관찰
SCs와 섬유아세포는 신경 조직에서 1차 세포 배양에서 얻어진 2개의 주요 세포 집단입니다. 1h 접종 후 대부분의 세포가 접시의 바닥에 부착되고 세포 형태가 둥글고 타원형으로 변경되었습니다. 24시간 배양 후, SC는 양극성 또는 삼극성 형태를 나타내었고, 이들의 길이는 100에서 200 μm 사이입니다. 48 h 후, 세포의 집계 및 증식이 발생, 많은 세포는 종단, 어깨 대 어깨, 월풀 또는 울타리 와 같은 배열에 집계되었다. SC보다 큰 다른 섬유 아세포는 평평하고 불규칙한 모양을 나타냈다. 장기간 배양 시간으로, SC와 섬유아세포의 수는 점차 증가했습니다. SC는 섬유아세포의 공간 사이에 함께 클러스터되거나 섬유아세포 의 표면에 위치하였다(그림2A, 2B). 세포는 섬유아세포와 SC를 분리하기 위한 차분소화 및 차동 준수를 받는다. 8-10s에 대한 소화 후, SC는 둥글게 나타났고 쉽게 날아가며 섬유아세포는 평평하고 접시바닥에 부착되어있습니다(그림 2C, 2D). 차동 소화 및 차동 준수 후 두 번, 1차 배양된 SCs및 섬유아세포는 분리되었고, 모터및 감각성 SCs 및 섬유아세포의 전형적인 세포 형태가 관찰되었다(그림2E-2H).
ICC에 의한 모터 및 감각 섬유아세포 및 SC의 순도 평가
감각 및 모터 섬유아세포는 CD90을 사용하여 표지되고 공초점 레이저 스캐닝현미경(도 3A, 3D)을사용하여 시각화하였다. Hoechst 33342 염료는 세포핵(도 3B, 3E)을표지하는 데 사용되었다. 섬유아세포 면역염색 및 핵염색(도 3C, 3F)의병합된 이미지는 CD90 및 Hoechst 공동 표지 세포의 92.51%와 92.64%가 각각 모터 및 감각 섬유아세포(그림3G)에존재했다고 나타났다.
감각 및 모터 SC는 각각 S100을 사용하여 표지되고 공초점 레이저 스캐닝현미경(도 4A, 4D)을사용하여 시각화되었다. Hoechst 33342 염료는 세포핵(도 4B, 4E)을표지하는 데 사용되었다. SC 면역스테인닝 및 핵염색(도 4C, 4F)의병합된 이미지는 각각 모터 및 감각 SC(그림Figure 44G)에서S100 및 Hoechst 공동 표지 셀의 91.61%와 93.56%의 존재를 나타냈다.
FCA에 의한 감각 및 모터 섬유아세포 및 SC의 순도 평가
차동 소화 및 차동 준수 를 두 번 한 번 후, 1 차 배양 섬유 아세포와 SC는 격리되었다. 그림B 5A에나타난 바와 같이, 모터 및 감각 Fb 배양에서 세포의 거의 >90%는 M2로 표시된 섬유아세포였으며, 나머지 &10%(M1로 표시)는 Figure 5SC였습니다. Figure 5
그림 1: 감각 및 모터 섬유아세포 및 SC의 분리 및 정제 단계를 보여주는 회로도다발표. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: (A) 1차 배양 모터 및 (B) 감각 섬유아세포 및 SC의 세포 형태를 보여주는 위상 대조 현미경. 10 s에 대한 소화 후, SC의 세포 형태는 둥근 (화살표에 의해 표시된 바와 같이), 섬유 아세포는 평평하게 유지하고 접시의 바닥에 부착된 동안(C : 모터 섬유 아세포 및 SC; D: 감각 섬유 아세포 및 SCs). 차동 소화 및 차동 준수 후, SCs와 섬유아세포는 격리되었고 모터와 감각 섬유아세포의 전형적인 세포형태(E: 모터 섬유아세포; F: 감각 섬유 아세포) 및 SCs(G : 모터 SCs; H: 감각 SC)가 표시되었다. (스케일 바: 50 μm). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: ICC에 의한 모터 및 감각 섬유아세포의 순도 식별. CD90(A 및 D,레드), 호흐스트 33342 핵염색(B 및 E,블루) 및염색(C 및 F)의병합에 대한 항체와 면역스테인링을 보여주는 배양모터(A-C)와감각 섬유아데스(D-F)의 형광 현미경 사진.D-FA (G)배양 섬유아세포의 순도의 통계 분석. (스케일 바: 100 μm). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4: ICC에 의한 모터 및 감각 SC의 순도 식별. 배양모터(A-C)와감각 SC(D-F)의 형광D-F현미경 사진은 S100(A 및 D,레드),A Hoechst 33342 핵염색(B 및 E,블루) 및염색(C 및 F)의병합에 대한 항체와 면역스테인링을 나타낸다. (G)배양 된 SC의 순도에 대한 통계 분석. (스케일 바 : 100 μm). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5: FCA에 의한 감각 및 모터 섬유아세포 및 SC의 순도 식별. 배양된 모터 및 감각 섬유아세포/SC의 CD90 양성 세포/S100 양성 세포(M2)의 백분율을 나타내는 FCA 그래프.AB 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
말초 신경의 2개의 중요한 세포 인구는 SCs와 섬유아세포를 포함했습니다. 주로 배양 된 섬유 아세포 및 SC는 말초 신경 발달 및 재생 중에 섬유 아세포 및 SC의 생리학모델링을 정확하게 지원할 수 있습니다. 연구 결과는 P7 쥐 sciatic 신경 세포가 S100 양성 SCs의 대략 85%, OX7 양성 섬유세포의 13% 및 OX42 양성 대식세포의 단지 1.5%를 포함하는 것을 보여주었습니다13. 섬유아세포의 수는 SC보다 적지만, 섬유아세포의 초기 증식율은 SC보다 빠릅니다. 따라서, Ara-C는 많은 연구에서 섬유아세포를 제거하기 위해 가장 일반적으로 사용되는 항미통제이다. 그러나, Ara-C는 세포 미토시스에 특이적이지 않으며, 분열의 격렬한 단계에서 SC의 증식을 억제할 수도 있다. 항체 매개 낭포리시스 또는 면역파닝 방법으로 섬유아세포가 분실되거나 사망했습니다. 흐름 세포분석 선별 기술은 고순도 섬유아세포 및 SC를 동시에 얻기 위해 사용될 수 있지만, 많은 수의 세포가 필요하며, 세포 획득률은 낮게 유지된다. 우리의 지식의 최선을 다해, 이것은 감각과 운동 SCs 및 섬유 아세포의 정화 방법을 보여주기 위하여 첫번째 연구 결과이었습니다.
이 연구에서는, 많은 수의 감각 및 운동 섬유아세포 및 SC를 동시에 차동 소화뿐만 아니라 차동 준수를 순차적으로 결합하여 세포에 해를 끼치지 않는 것으로 나타났습니다. ICC 염색 및 FCA의 결과는 모든 감각 및 모터 SCs/섬유아세포가 고순도(>90%)이었다는 것을 보여주었습니다. 이 방법의 중요한 단계는 차동 소화시간을 제어하는 것입니다. 시간이 너무 짧으면 SC가 분리하기가 어렵고 시간이 너무 길면 일부 섬유아세포가 SC로 소화됩니다. 와이즈의 연구에서, 얼음 차가운 Accutase 섬유 아 세포에서 SC를 분리 하는 데 사용 됩니다., 하지만 이것은 트립신 보다 더 비싼17. 트립신과의 차동 소화는 SC와 섬유아세포를 분리하는 데 효과적으로 도움이 될 수 있습니다. 이 프로토콜의 한계는 해부 현미경으로 더 많은 연습을 필요로 신생아 쥐에서 감각과 운동 신경을 소비하는 것이 쉽지 않다는 것입니다. 배양 프로토콜은 감각 및 운동 신경 섬유아세포 및 SC의 생물학적 특성을 연구하고, 신경 재생을 촉진하기 위해 감각 및 운동 신경 재생 또는 섬유아세포 및 SC 이식 메커니즘에 매우 유용합니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
저자는 공개 할 것이 없습니다.
Acknowledgments
이 연구는 중국의 국가 주요 연구 개발 프로그램 (그랜트 번호 2017YFA0104703), 중국의 국립 자연 재단 (보조금 번호 31500927)에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Alexa Fluor 594 Goat Anti-Mouse IgG(H+L) | Life Technologies | A11005 | Dilution: 1:400 |
| CoraLite488-conjugated Affinipure Goat Anti-Mouse IgG(H+L) | Proteintech | SA00013-1 | Dilution: 1:400 |
| Confocal laser scanning microscope | Leica Microsystems | TCS SP5 | |
| Cell Quest software | Becton Dickinson Biosciences | ||
| D-Hank's balanced salt solution | Gibco | 14170112 | |
| DMEM | Corning | 10-013-CV | |
| Dissecting microscope | Olympus | SZ2-ILST | |
| Fetal bovine serum (FBS) | Gibco | 10099-141C | |
| Forskolin | Sigma | F6886-10MG | |
| Fluoroshield Mounting Medium | Abcam | ab104135 | |
| Fixation medium/Permeabilization medium | Multi Sciences (LIANKE) Biotech, Co., LTD | GAS005 | |
| Flow cytometry | Becton Dickinson Biosciences | FACS Calibur | |
| Mouse IgG1 kappa [MOPC-21] (FITC) - Isotype Control | Abcam | ab106163 | Dilution: 1:400 |
| Mouse monoclonal anti-CD90 antibody | Abcam | ab225 | Dilution: 1:1000 for ICC, 0.1 µg for 106 cells for Flow Cyt |
| Mouse anti-S100 antibody | Abcam | ab212816 | Dilution: 1:400 |
| Polylysine (PLL) | Sigma | P4832 | |
| Recombinant Human NRG1-beta 1/HRG1-beta 1 EGF Domain Protein | R&D Systems | 396-HB-050 | |
| 0.25% (w/v) trypsin | Gibco | 25200-072 |
References
- Stierli, S., et al. The regulation of the homeostasis and regeneration of peripheral nerve is distinct from the CNS and independent of a stem cell population. Development (The Company of Biologists). , (2018).
- Schubert, T., Friede, R. L. The role of endoneurial fibroblasts in myelin degradation. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 40 (2), 134-154 (1981).
- Dreesmann, L., Mittnacht, U., Lietz, M., Schlosshauer, B. Nerve fibroblast impact on Schwann cell behavior. European Journal of Cell Biology. 88 (5), 285-300 (2009).
- Lavdas, A. A., et al. Schwann cells engineered to express the cell adhesion molecule L1 accelerate myelination and motor recovery after spinal cord injury. Experimental Neurology. 221 (1), 206-216 (2010).
- Parrinello, S., et al. EphB signaling directs peripheral nerve regeneration through Sox2-dependent Schwann cell sorting. Cell. 143 (1), 145-155 (2010).
- Benito, C., Davis, C. M., Gomez-Sanchez, J. A. STAT3 Controls the Long-Term Survival and Phenotype of Repair Schwann Cells during Nerve Regeneration. Journal of Neuroscience Research. 37 (16), 4255-4269 (2017).
- Zhang, Z. J., Jiang, B. C., Gao, Y. J. Chemokines in neuron-glial cell interaction and pathogenesis of neuropathic pain. Cellular and Molecular Life Sciences. 74 (18), 3275-3291 (2017).
- Hoke, A., et al. Schwann cells express motor and sensory phenotypes that regulate axon regeneration. Journal of Neuroscience. 26 (38), 9646-9655 (2006).
- Brushart, T. M., et al. Schwann cell phenotype is regulated by axon modality and central-peripheral location, and persists in vitro. Experiment Neurology. 247, 272-281 (2013).
- He, Q., et al. Differential Gene Expression in Primary Cultured Sensory and Motor Nerve Fibroblasts. Frontiers in Neuroscience. 12, 1016 (2018).
- Weinstein, D. E., Wu, R. Chapter 3, Unit 17: Isolation and purification of primary Schwann cells. Current Protocols in Neuroscience. , (2001).
- Palomo Irigoyen, M., et al. Isolation and Purification of Primary Rodent Schwann Cells. Methods in Molecular Biology. 1791, 81-93 (2018).
- Cheng, L., Khan, M., Mudge, A. W. Calcitonin gene-related peptide promotes Schwann cell proliferation. Journal of Cell Biology. 129 (3), 789-796 (1995).
- Pannunzio, M. E., et al. A new method of selecting Schwann cells from adult mouse sciatic nerve. Journal of Neuroscience Methods. 149 (1), 74-81 (2005).
- Shen, M., Tang, W., Cao, Z., Cao, X., Ding, F. Isolation of rat Schwann cells based on cell sorting. Molecular Medicine Reports. 16 (2), 1747-1752 (2017).
- He, Q., Man, L., Ji, Y., Ding, F. Comparison in the biological characteristics between primary cultured sensory and motor Schwann cells. Neuroscience Letters. 521 (1), 57-61 (2012).
- Weiss, T., et al. Proteomics and transcriptomics of peripheral nerve tissue and cells unravel new aspects of the human Schwann cell repair phenotype. Glia. 64 (12), 2133-2153 (2016).
