الكشف عن Epitopes الحساسة للتحييد في المستضدات المعروضة على الجسيمات الشبيهة بالفيروسات (VLP) المستندة إلى اللقاحات باستخدام م المقايسة التقاط

في مختبري، نقوم بتطوير أنظمة إنتاج لناقلات الفيروسات والجسيمات الشبيهة بالفيروسات، أو اللقاحات القائمة على VLP. يسمح فحص التقاط VLP بالكشف الحساس جدا عن المستضدات المستهدفة المعروضة على VLPs. في هذا المقايسة، نستخدم الأجسام المضادة المحايدة على نطاق واسع الموجهة ضد إزالة الأسطح المحايدة لإثبات تعرض هذه الأسطح على سطح VLP.

وهذا تقييم هام للجودة بالنسبة للمرشحين للقاح، حيث أن الملوثات المضادة للفلور التي تظهر الأسطح الحساسة للتحييد هي وحدها القادرة على الحصول على استجابة تحييدية للأجسام المضادة في اللقاحات. ابدأ بتعليق الخرز المغناطيسي إما عن طريق الأنابيب صعودا وهبوطا ، أو الاختلاط على الدوار بمعدل 50 دورة في الدقيقة لمدة خمس دقائق على الأقل. وفي الوقت نفسه، وإعداد حل الأجسام المضادة التي تحتوي على bNABs.

استخدام 10 ميكروغرام من كل bNAB في 200 ميكرولتر من الأجسام المضادة ملزمة وغسل العازلة لكل رد فعل. لكل رد فعل، نقل 50 ميكرولتر من محلول حبة المغناطيسي في أنبوب رد فعل 1.5 ملليلتر، ثم وضع الأنابيب على رف الفصل المغناطيسي. انتظر حتى تجمع الخرز في الكرة أنبوب لضمان أن يتم جمع جميع الخرز، ثم إزالة supernatant.

إزالة المغناطيس وتعليق الخرز في 200 ميكرولتر من الحل bNAB المعدة مسبقا. احتضان لمدة 30 دقيقة إلى ثلاث ساعات في حين خلط على الدوار في 50 دورة في الدقيقة في درجة حرارة الغرفة. بعد الحضانة، ضع أنابيب التفاعل في رف الفصل المغناطيسي، وانتظر، وأزل الناسخ الفائق.

إزالة الأنابيب من المغناطيس وغسل الخرز عن طريق إعادة تعليق في 200 ميكرولتر من الأجسام المضادة ملزمة وغسل العازلة. كرر الغسيل مع ربط الأجسام المضادة والغسالة العازلة، وإزالة أكبر قدر ممكن من العازلة الغسيل عند الانتهاء. إضافة العينات إلى bNABs حبة ملزمة.

إذا كانت وحدة تخزين العينة المضافة أقل من ملليلتر واحد، أضف برنامج تلفزيوني لضبط حجم العينة إلى ملليلتر واحد، ثم أعد تعليق الخرز عن طريق الأنابيب برفق. احتضان العينات والخرز لمدة 2.5 ساعة على الدوار في درجة حرارة الغرفة، وضمان أن الخرز البقاء في التعليق والحل مختلطة تماما أثناء الحضانة. ضع الأنابيب على المغناطيس وأزل الناسخة ، ثم اغسل الخرز المغناطيسي عن طريق تعليقها في 200 ميكرولتر من مخزن الغسيل المؤقت.

تعليق الخرز في 100 ميكرولتر من العازلة الغسيل ونقل التعليق إلى نظيفة، أنبوب رد فعل مقاوم للحرارة. ضع الأنبوب على حامل الفصل المغناطيسي وأزل الناطقة تماما. لإعداد عينات STS-PAGE المشوهة، قم بتعليق الخرز في 20 إلى 80 ميكرولتر من حاجز لايملي واحتضانه عند 95 درجة مئوية لمدة خمس دقائق.

تابع مباشرة مع SDS-PAGE، وضع الأنابيب على رف مغناطيسي لفصل الخرز من الحل. بدلا من ذلك، تخزين العينات في ناقص 20 درجة مئوية. تظهر هنا نتيجة تمثيلية ل VLPs تم التقاطها لأول مرة من كريات زراعة الخلايا الخالية من الخلايا وكريات VLP باستخدام bNABs ، ثم خضعت لتحليل البقع الغربية للكشف عن البروتينات الأساسية الفيروسية.

كانت الخرز المستخدمة في فحص الالتقاط مغلفة بثلاثة bNABs مختلفة موجهة ضد إزالة الأسطح المحايدة من البروتينات الجليكوبروتين المغلف والأجسام المضادة متساوية النمط التي تعمل كعناصر تحكم سلبية. باستخدام الخرز المغلف بالأجسام المضادة النظيرية ، لم يكن من الممكن اكتشاف بروتينات Gag في عينات VLP التي تحتوي على VLPs أصلع ، أي VLPs سلبي Env ، أو VLPs عرض Env ، مما يدل على أن الربط غير المحدد ل VLPs للخرز المغلفة بالأجسام المضادة البشرية لم يتوسط التقاط VLP. كما لم تكن VLPs الأصلع ملزمة بالخرز المغلف ب bNABs ، وبالتالي ، لم يكن من الممكن اكتشاف بروتينات Gag في تحليل البقع الغربية.

في المقابل ، تم اكتشاف جميع bNABs الثلاثة التي تلتقط VLPs التي تعرض بروتينات Env – ، لذلك ، تم اكتشاف بروتينات Gag بسهولة ، مما يدل على وجود epitopes تحييد في البروتينات Env-glycoproteins المعروضة على VLPs. حاسمة لنجاح المقايسة: خلط شامل من VLPs مع الخرز المغلفة بالأجسام المضادة. ويتحقق ذلك على أفضل وجه باستخدام وحدات تخزين أكبر من 500 ميكرولتر تحت الدوران.

بدلا من ذلك، يمكن أن يتم إعادة VLPs الملتقطة في ظل ظروف غير الحد. وهذا يمكن من تحليل VLPs استخدام المجهر المناعي الإلكترون، أو التحقيق في المستضدات المعروضة باستخدام PAGE الأصلي.