Высокая-контент
1Department of Medicine, Division of Endocrinology, Stanford University School of Medicine

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

Критические проблемы для области исследования диабета должны понять молекулярные механизмы, которые регулируют репликацию β-клеток островков и разработать методы стимуляции регенерации β-клеток. При этом метод высокого содержания скрининга для выявления и оценки репликации способствующего активности β-клеток малых молекул представлена.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Zhao, Z., Abdolazimi, Y., Armstrong, N. A., Annes, J. P. A High-content In Vitro Pancreatic Islet β-cell Replication Discovery Platform. J. Vis. Exp. (113), e54298, doi:10.3791/54298 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

Диабет включает в себя совокупность расстройств, разделяющих общую конечную точку нарушенного гомеостаза глюкозы. Хотя патогенетические механизмы диабета подтипов различны, они имеют следствием пониженной β-клеточной массы, то есть, потери производства инсулина мощностью 1,2. В настоящее время стратегии лечения диабета полагаются на хроническое введение экзогенного инсулина, фармакологической стимуляции выработки инсулина или повышения чувствительности к инсулину, и редко, трансплантация островков поджелудочной железы или всей поджелудочной железы 3,4. К сожалению, успех этих стратегий является кратковременным и / или не в достаточной степени перепросматривать функцию эндогенного инсулина. Несмотря на полезность разработки метода для стимуляции регенерации β-клеток, ни один такой подход не существует. Следовательно, главная цель исследования диабета заключается в разработке методов для создания новых бета-клеток или расширить эндогенного β-клеточной массы 5 6,7. Важно отметить, что основным источником новых бета-клеток в естественных условиях предварительно существующие бета-клеток , а не специализированные клетки - предшественники 8,9. Хотя бета-клетки, кажется, имеют ограниченные возможности репликации, небольшое увеличение массы β-клеток (~ 30%) может быть достаточно, чтобы восстановить гомеостаз глюкозы во многих диабетиков. Кроме того, на месте фармакологической стимуляции массы β-клеток в потенциально недорогой и масштабируемая стратегия лечения. При этом метод скрининга высокого содержания для идентификации и характеристике небольших молекул, которые стимулируют рост β-клеток представлена.

Разнообразие экспериментальных методов в пробирке , могут быть использованы для идентификации генных продуктов и / или молекулы ТНАт способствуют репликации первичного β-клеток. Ранние попытки для измерения индукции репликации β-клеток использовали плода культуры грызун поджелудочных желез или неповрежденные культуры изолированных островковых для измерения [3 H] тимидина, BrdU включение или митотических тела в пределах альдегид-тионина или инсулина , окрашенном населения в ответ на конкретные условия обработки 10, 11. Эти подходы в пробирке и близкие его варианты имеют ряд ограничений. Известные недостатки включают в себя (1) использование эмбриональных клеток , которые, в отличие от зрелых бета-клеток, демонстрируют высокую скорость репликации базальной β-клетки и рост регулируется в различимыми 12; (2) субъективный характер экспериментатора-зависимого судебного решения событий репликации β-клеток; (3) труд и время интенсивного характера экспериментатора-зависимого подсчета событий репликации β-клеток замедл экспериментальную пропускную способность; (4) использование ядерного инкорпорации / пятно / внешний вид, чтобы идентифицировать репликацию дажеTS и не перекрываются цитоплазматический краситель для выявления бета-клеток приводит к приписывание уточненного событий репликации не-β-клеток в бета-клетки.

Совсем недавно зрелые первичные бета-клетки были использованы для оценки влияния трансгенов избыточная экспрессия, а также продукт гена или соединение лечения на репликацию β-клеток 13-16. Тем не менее, эти исследования также полагались на субъективном подсчета событий репликации, цитоплазматический staining- или неспецифических методов идентификации β-клеток и / или трудоемких шагов , которые ограничивают пропускную способность , например, индивидуальный слайд-луночного покрытия клеток или неповрежденной островок парафин и обработка 17. Следует отметить, что человеческий β-клеток методологии скрининга репликации на основе изображений, похожий на тот , представленный здесь, был опубликован 18; Тем не менее, успешное использование этого анализа не было продемонстрировано и использование человеческих островки для первичного скрининга не может быть широко FEAскорее.

Альтернативной стратегией для выявления репликации промотирующее веществ для оценки индукции роста β-клеточных линий. Первоначальные усилия использовали трансформированных бета-клеточные линии , такие как min6 клетки или INS 832/13-клетки 14,19-21. Тем не менее, эти клеточные линии демонстрируют-безудержный рост и имеют мало общего с хорошо дифференцированных -клеток 22. Следовательно, рост индукции мощность минимальна, неясного отношение и иногда трудно пересказать. Улучшенная стратегия для скрининга на основе клеточной линии утилизирует "обратимо трансформировали" клетки, рост арестованы в отсутствие тетрациклина (доксициклин) экспрессия 23,24 антигена -зависимая SV40 T. Тем не менее, неясно, будет ли вернуть эти клетки к "нормальной" β-клеток, как состояние после удаления доксициклина. К сожалению, использование этих клеток дало обобщенные стимулирующие рост соединений, которые, кажется, не имеют немедленного утилиты24. В целом, использование клеточных линий для изучения регуляции роста клеток типа , где отображаются минимальное спонтанную активность репликации может иметь ограниченную применимость.

Репликации скрининга платформы β-клеток , представленные здесь используют зрелые первичные крысы бета-клетки , чтобы сохранить в регуляции роста естественных условиях в максимально возможной степени, островок-клеточные культуры состава смешанного клеточного типа , который позволяет идентифицировать деятельности , способствующих росту LINEAGE-ограниченным, мульти -ну форматирование, чтобы максимизировать пропускную способность и автоматизированный анализ для устранения смещения и облегчить пропускную способность. Успешное использование этой платформы позволило выявить несколько соединений , которые способствуют репликации β-клеток 25,26. Кроме того, исследование было использовано для изучения зависимости структура-активность и химических экспериментов эпистазу обеспечить механистических понимание молекулярной регуляции репликации β-клеток. Представленная платформа была успешно адаптирована FOг лентивирусов RNAi на основе исследование репликации β-клеток дорожками 25. Ограничения анализа включают ограниченный масштабируемость (использование первичных клеток), использование грызуна, а не человеческих островковых клеток (хотя анализ может быть адаптирован для исследования островковых человека), расходы, связанные с изображениями на основе антител и использование первичного островкового, использование дисперсных островках (нарушена островок архитектуры), чтобы облегчить автоматизированное получение изображений и зависимость от наличия автоматизированного микроскопа с приобретением изображения и возможности анализа. Несмотря на то, снисходительный в естественных условиях методики скрининга для выявления генных продуктов или соединений , которые стимулируют регенерацию β-клеток на месте было бы идеально, такая платформа еще не доступна 27. Следовательно, описанная платформа подходит для исследователя, заинтересованного в исследовании большинство аспектов репликации β-клеток.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Этот протокол был проведен в соответствии с Animal Care и использование комитета Institutional (IACUC) из школы Стэнфордского университета медицины. Описанный протокол масштабируется для выделения островковых клеток из шести 250 - 300 г (8 - 9 недель) самцов крыс Sprague Dawley, которых достаточно для создания 228 лунки 384-луночный планшет для оценки репликации островковых клеток.

1. Подготовка материала

  1. Подготовьте носитель для нанесения покрытий до начала выделения островковых клеток путем сбора кондиционированной среды клеток карциномы мочевого пузыря крысы 804G поддерживают при слиянии в течение 3 -х дней (20 мл RPMI1640) в 15 см блюдо культуры ткани 28. Стерильный фильтр и магазин (-20 ° С), кондиционированную среду для последующего использования.
  2. Стерилизовать хирургических инструментов (один 12 см Щипцы Зубчатые ткани, один 11,5 см тонкие ножницы, один 14,5 см хирургические ножницы, два 16 см изогнутые щипцы, один 12 см изогнутые кровоостанавливающего, один 12 см скальпелем) и одно сито ткани 30 меш до инициализироватьiating островок изоляции.
  3. Готовят панкреатический раствор пищеварение путем растворения 60%: 40% смесь очищенного класс I: коллагеназы класса II (общая активность коллагеназы 300000 - 400000 единиц) в 60 мл 1x Хэнкса сбалансированный солевой раствор (HBSS) с добавлением кальция и магния. Нагрузка 10 мл панкреатического буфера пищеварения в 10 мл шприцев (шесть) с 1 "22 G иглы и место на льду.
    Примечание: 10 мл переваривания раствор инъецируют на крысу. Масштаб соответственно.
  4. Приготовьте 4,5 мл анестезирующего коктейля в вытяжном шкафу при смешивании 1,3 мл кетамина (100 мг / мл), 0,2 мл ксилазина (100 мг / мл) и 3 мл ФБС. Подготовьте обезболивающий коктейль в течение 1 часа инициирования выделения островковых клеток.
  5. Приготовьте промывочный буфер путем добавления 25 мл сыворотки новорожденного теленка до 500 мл HBSS. Поместите промывочного буфера на льду для последующего использования.
  6. Готовят 1 бутылка островковых среды , которая находится в 500 мл низкий уровень глюкозы в среде Игла в модификации Дульбекко (DMEM), 50 мл фетальной бычьей сыворотки (FBS), 5000 ед / мл пенициллина и 5000 мкг / мл стрептомицина.
  7. Готовят островковых функцию среды из раствора функциональность / жизнеспособность (500 мл) с 2% FBS, 2 мМ глутамина, 5 мМ глюкозы, 5000 ед / мл пенициллина и 5000 мкг / мл стрептомицина. Храните функции островковых среды (4 ° C) для последующего использования.
  8. Приготовьте 40 мл блокирующего буфера, добавляя 2,5 мл ослиного сыворотки и 0,12 мл Тритона Х-100 в 37,38 мл 1х фосфатно-буферном солевом растворе (PBS). Хранить блокирующий буфер (4 ° С) для последующего использования.
  9. Получить необходимые антитела до начала протокола.
    Примечание: PDX-1 (TRITC) и Ki-67 (FITC) совместное окрашивание используется для скрининга репликации первичного β-клеток. Для анализа репликации клонального специфических, выполняют иммунофлюоресценции окрашивания дополнительных маркеров идентичности клеток (инсулин, глюкагон, виментина или соматостатина; TRITC) наряду с ядерными (DAPI), PDX (Cy5) и Ki-67 (FITC) окрашивания. Альтернативный представителькация маркеры, например, PCNA, также могут быть использованы.
  10. Подготовить план 228-обработки скважин с каждым условием лечения выполняется в четырех экземплярах. Включите положительности (5-Iodotubercidin [1 мкМ] или дипиридамола [15 мкМ]) и транспортного средства управления (ДМСО 1: 666 разведение) скважин.

2. Кровоснабжение поджелудочной железы

  1. Обезболить крыс путем внутрибрюшинной инъекции разведенного раствора анестетика коктейль (0,30 мл / 100 г массы тела). После того, как крыса полностью под наркозом и не реагирует на вредные стимулы, выполнять шейки дислокации.
  2. Поместите эвтаназии крыса в положении лежа на спине (черепно-хвостового ориентации) на стопку бумажных полотенец и распылить брюшной области с 70% этанола.
  3. Откройте брюшной полости с U-разрез (база в лобковой области) и втягивания кожи в ростральной направлении на грудь, чтобы обнажить брюшную полость.
  4. Осторожно возьмите в двенадцатиперстную кишку с помощью двух пар изогнутых щипцов, найдите двенадцатиперстной ввод общей ЪIle протока (сфинктер Одди) и зажать отверстие в двенадцатиперстной сосочка с изогнутым кровоостанавливающего.
  5. Поднимите изогнутую кровоостанавливающего, используемый для фиксации общего желчного протока сосочек и захватить желчный проток ближе к печени с помощью изогнутых щипцов. Используйте тупой диссекции с изогнутыми щипцами, чтобы изолировать и подвергать желчный проток.
  6. Переставьте крыса с головным проксимальных и ноги дистальной.
  7. Вводить иглу общего желчного протока (КБР) в или только дистально по отношению к месту соединения кистозных и общего печеночного протоков поджелудочной с раствором переваривания -loaded 10 мл шприц и медленно вводят 10 мл раствора поджелудочной железы пищеварения. При введении, поддерживают КБР скальпелем. Переставьте иглу, если проток и поджелудочной железы не раздувать.
  8. Удалите завышенные поджелудочной железы с использованием изогнутых щипцов и тонкие ножницы, чтобы отделить его от нисходящей ободочной кишки, кишечника, желудка и селезенки. Поместите завышенные поджелудочную железу на льду в 50 мл пробирку, содержащую 5 мл Примечание: Для получения максимального выхода островковой, собрать все поджелудочных желез в течение 30 мин и место только 1 или 2 поджелудочных желез в каждой 50 мл переваривания трубки.

3. Диссоциация ПЖ

  1. После того, как все поджелудочных желез собраны, поместите пробирками в ванну воды C 37 ° в течение 15 мин. Аккуратно вихревой трубы через каждые 3 мин.
  2. Через 15 мин, энергично встряхивать ( по вертикали) в трубки 10 раз и добавляют 10 мл холодного буфера для промывки. Энергично встряхните в трубки еще 5 раз и место на льду.
  3. Заполните пробирками до 50 мл холодной промывочного буфера и взболтайте труб 5 раз.
  4. Центрифуга пробирки при 97 мкг при 4 ° С в течение 1 мин и сливают надосадочную жидкость. Будьте осторожны, чтобы не выбивать гранулированной ткани.
  5. Добавить 25 мл промывочного буфера и вновь приостановить ткань, осторожно встряхивая. Повторите шаги 3.4 и 3.5 в два раза больше.
  6. Поместите сито ткани 30 меш по улerile 250 мл химический стакан и залить суспензии ткани на сито. Ополосните переваривания трубку с дополнительными 20 мл промывочного буфера и вылить на сетку. Непереваренные панкреатические и жировые ткани удаляются на этом шаге.
  7. Налейте отфильтрованный материал на две свежие 50 мл пробирки и гранул ткани путем центрифугирования при 97 мкг в течение 1 мин при температуре 4 ° С. Сцеживать супернатант и инвертировать трубки для отвода избыточного буфера.

4. Очистка Островков

  1. Добавьте 20 мл раствора диатризоат холодной polysucrose / натрия (1,119 г / мл плотности) к гранулированной ткани поджелудочной железы. Гомогенно повторно приостанавливать содержимое каждой пробирки, осторожно пипеткой вверх и вниз в пять раз.
  2. Аккуратно наложения раствора диатризоат polysucrose / натрия с 10 мл HBSS. Поддерживать острую раздела жидкость, медленно добавляя HBSS вдоль стенки трубы.
  3. Центрифуга переваривается поджелудочных желез при 560 х г в течение 15 мин (4 ° С) с медленным ускорением и без тормоза.
  4. Колорадоllect Островок слой из интерфейса с использованием 10 мл пипетки и место островки в свежих 50 мл пробирки. Не объединять островки на данном этапе.
  5. Добавить 40 мл промывочного буфера в каждую 50 мл трубки и спина в течение 1 мин при 140 х г при температуре 4 ° С.
  6. Выливают надосадочную жидкость и повторно приостанавливать объединенные островки в 50 мл буфера для промывки путем инвертирования трубок несколько раз. Центрифуга пробирки в течение 1 мин при 97 мкг при 4 ° С, чтобы собирать островки в гранулу.
  7. Слейте промывочный буфер и повторить промывку. Доведите островки в капот культуре ткани и аспирата супернатант.
  8. Повторное приостановить каждую пробирку островками в 6 мл островковых среды.
  9. Передача островки из каждой 50 мл трубки в лунку шесть хорошо блюдо культуры ткани. Вихревой блюдо 6-луночного собирать островки в середину колодца и наблюдать за качество и чистоту островковых под микроскопом.
  10. Вручную собирать островки с использованием 1 мл пипеткой и переносят отборные островки в соседнийлунку, содержащую 6 мл островковых сред. Повторите островок закрученного и собирание чистоты до> 90% достигается.
  11. Передача Очищенный островки до 10 см блюдо культуры ткани, содержащей 20 мл островковых среды.
  12. Место островки в инкубаторе тканевых культур (37 ° С, 5% СО 2) в течение ночи (Фигура 1А).
  13. При подготовке металлизированный островковых клеток, пальто лунки 384-луночного планшета с 40 мкл 804G кондиционированной среды на лунку. Выдержите в течение ночи в инкубаторе тканевых культур.

5. Дисперсия и покрытие из островковых клеток

  1. На следующий день, аккуратно отсоединить островковых клеток от 10 см чашку с клеточным скребком и передавать островки в 50 мл пробирку.
  2. Гранул островки центрифугированием в течение 1 мин при 22 мкг при комнатной температуре. Аспирируйте супернатант.
  3. Промыть островки с 20 мл теплого PBS и переливать, как указано выше.
  4. Повторное приостановить островки в 0,25% трипсина (150 мкл на поджелудочной железе у крыс) И инкубируют при температуре 37 ° С в течение 10 мин. Пипетка островки вверх и вниз 10 раз, используя 1 мл пипетку через 5 и 10 мин инкубации.
  5. Через 10 мин оценивают пробу 20 мкл трипсином островках под микроскопом, чтобы обеспечить полное переваривание и подсчитывать островковых клеток с помощью гемоцитометра. Если непереваренные Островки остаются, продолжают инкубацию еще в течение 3 - 5 мин и пипеткой вверх и вниз 10 раз больше. Повторите по мере необходимости.
    Примечание: Типичный выход ~ 125000 - 150000 островок клеток на крысу.
  6. Удалить 804G кондиционированной среды покрытием 384-луночного планшета из инкубатора и удалить носитель с использованием 12-луночного коллектора аспиратора.
  7. Приостановка островковых клеток при плотности 45000 клеток на мл в островковых функции среды и пластины 70 мкл (3,150 клеток) на лунку с многоканальной пипеткой (Фиг.1В).
    Примечание: Поскольку бета-клетки, расположенные в наружных скважин, как правило, мигрируют в направлении периметра использовать пластины строк C до N и столбцов 4до 21 к пластине 228 скважин с островковых клеток, выделенных из 6 крыс.
  8. Поместите пластину в культуральную инкубаторе ткани в течение 48 часов, чтобы позволить адгезию клеток.

6. Островок-клеточная культура Лечение, Фиксирование и Окрашивание

  1. Подготовьте 200 мкл транспортных средств и соединений (условия обработки выполняются в четырех экземплярах) в 2 раза концентрации в функции островковых среды. Расположить соединения в стерильный 96-луночный планшет для облегчения многоскважинных пипетированием.
  2. Осторожно снимите островок среды с 12-луночного коллектора аспиратора и заменить функции островковых среды (35 мкл / лунку) с помощью пипетки 12-луночного. Удалить и заменить носитель из одной строки в то время , чтобы ограничить риск сушки (рис 1C).
  3. Начинать лечение путем передачи 35 мкл / лунку растворах соединений 2x. Возвращение пластины в инкубатор для лечения продолжительностью 48 ч.
  4. После 48 часов лечения, переливать средства массовой обработки опрокидыванием планшета. </ Li>
  5. Аккуратно промывать островковых клеток с 50 мкл на лунку 1x PBS (1 мин). Добавьте PBS с помощью пипетки многоканальный.
  6. Декантируйте PBS и зафиксировать клетки, путем добавления 50 мкл на лунку холодного 4% параформальдегида (PFA), разведенного в 1x PBS. Инкубируйте клетки в течение 15 мин при температуре 4 ° С.
  7. Промыть клетки три раза (5 мин каждый) опрокидыванием планшета, чтобы удалить PFA и осторожно добавляя 60 мкл PBS на лунку, как указано выше.
  8. Приготовьте 15 мл раствора антигена извлечения путем смешивания 14,25 мл формамида, и 0,75 мл 0,15 М цитрата натрия (рН 6). Сделать извлечения раствора антигена непосредственно перед использованием.
  9. Удалить PBS из лунки опрокидыванием планшета и добавляют 60 мкл раствора извлечения антигена в каждую лунку. Нагревают пластину в ванне 70 ° C воды в течение 45 мин. Поместите нагревательный блок в верхней части пластины во время этой инкубации, чтобы предотвратить коробление мульти-луночного планшета с.
    Примечание: Вода должна быть на полпути пластины юбка; планшет не должен быть погружен в воду.
  10. Вымойте клеток с 60 мкл на лунку 1x PBS три раза (5 мин каждый раз). Добавить PBS с многоканальным пипетку и переливать PBS опрокидыванием планшета.
  11. С помощью пипетки многоканальный добавить 40 мкл на лунку блокирующего буфера и инкубируют в течение 30 мин при комнатной температуре. Удалите блокирующий буфер опрокидыванием планшета и декантации.
  12. Добавьте 40 мкл мышиного антитела против человеческого Ki-67 (1: 200) и козьего антитела против человеческого PDX-1 (1: 100) антитела, разбавленного в блокирующем буфере, в каждую лунку и инкубировали при 4 ° С в течение ночи.
  13. На следующий день, сливают раствор анти-тела и промыть клетки с 1x PBS три раза (5 мин каждая), как описано выше. Слейте PBS.
  14. Добавить 40 мкл на лунку разводили (1: 200) биотинилированного осла против мышиного IgG и родамин-конъюгированного с ослиного анти-IgG козьего в блокирующем буфере. Инкубировать в течение 1 часапри комнатной температуре.
  15. Вымойте клетки с 1x PBS три раза, 5 мин каждый. Добавьте 40 мкл разведенных (1: 400 в блокирующем буфере) флуоресцеина-конъюгированный стрептавидин в каждую лунку. Инкубировать 30 мин при комнатной температуре.
  16. Вымойте клетки с 1x PBS три раза, 5 мин каждый. Добавить 40 мкл на лунку DAPI (300 нМ в блокирующем буфере), и инкубируют в течение 15 мин при комнатной температуре.
  17. Вымойте клеток с 1x PBS в два раза и оставить клетки в 40 мкл 1x PBS. Планшет теперь готов для анализа.

Анализ репликации 7. β-Cell

Примечание: Протокол анализа должен быть установлен для высокого скрининга микроскопа контента, используемого для измерения репликации β-клеток. В своей простейшей композиции, этот протокол представляет собой анализ двухцветного где тождеством маркер используется для определения бета-клеток (PDX-1 + -клеток) и маркер репликации (Ki-67) используется для определения клеточного деления событий.

  1. Определение объектов (бета-клетки), основанные на averagе интенсивность флуоресценции PDX-1 окрашивания (549 нм фильтра) в пределах приблизительной окружности (длина: ширина <1,6) в пределах ожидаемой площади пикселя ядра β-клеток (рис 2А).
  2. Далее, установить параметры для выявления событий репликации (Ki-67-положительности) на основе средней интенсивности флуоресценции (485 нм фильтра) в пределах PDX-1 + области (рис 2B).
    Примечание: Время экспозиции должны быть установлены, чтобы позволить сравнения интенсивности пикселей через изображения. Параметры протокола анализа регулируют таким образом, что машина вызовы последовательно исключает неспецифическое окрашивание, мусора и клеточных агрегатов, которые могут отрицательно повлиять на качество данных.
  3. Анализ минимум 500 бета-клеток на лунку, чтобы максимизировать точность и предел изменчивости.
    Примечание: Индекс репликации базальный β-клеток в островковых культурах крыс, как ожидается, будет 0,5 - 3%. Как правило, 40 изображений на лунку, более чем достаточно, чтобы идентифицировать 500 -клеток.
  4. Перед анализомвся пластина, анализировать выбранный отрицательности (ДМСО обработанных) и положительного контроля (5-iodotubercidin [1 мкМ] или дипиридамола [15 мкМ]) -обработанной скважин для оценки достоверности протокола анализа. При анализе правильно установлено, положительные соединения управления вызывают по крайней мере двукратное увеличение доли репликации бета-клеток.
  5. Прочитайте всю пластину после того, как протокол анализа проверяется.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Для оценки бета-клетки или репликацию α-клеток, необходим протокол анализа четыре цвета. Во-первых, объекты идентифицируются с помощью DAPI окрашивания (Channel 1, 386 нм). Далее, бета-клетки (событие 1) подсчитываются: объекты , которые со-экспресс PDX-1 + (канал 2, 650 нм) и пери-ядерный инсулин (канал 3, 549 нм). Впоследствии, тиражирование бета-клетки (событие 2) подсчитываются: бета-клетки (событие 1) , которые совместно выражают Ki-67 (канал 4, 485 нм) (рисунок 3). Процент репликации -клеток рассчитывается следующим образом: (событие 2 / событие 1) × 100 Для того, чтобы количественно оценить репликацию α-клеток, общие объекты идентифицируются с помощью DAPI окрашивания (канал 1), а затем альфа-клетки (событие 1) занумерованы отсутствие PDX-1 окрашивания (канал 2) и наличие перинуклеарном глюкагона окрашивания (канал 3). Репликация альфа-клетки (событие 2) количество альфа-клеток , которые со-экспресс Ki-67 (канал 4) (рисунок 4).Процент реплицирующимися альфа-клеток рассчитывается следующим образом: (событие 2 / событие 1) х 100.

Перед началом эксперимента, план лечения соединение производится (Таблица 1А). Здесь, в небольшом масштабе Анализ проводили с использованием отрицательного контроля (ДМСО обработанных) и положительного контроля (дипиридамол лечение [15 мкМ]) условия для оценки PDX-1, бета-клетки и репликации α-клеток в 384-луночного формата ( 49 изображений на лунку). Экспериментальные данные показывают , дипиридамол выборочно поощрять PDX-1 + -клеток и репликацию β-клеток , но не репликацию α-клеток. Среднее число выявленных PDX-1-клеток на лунку была 5541 ± 555 для ДМСО-обработанных и 6439 ± 363 для дипиридамола обработанных условиях (р <0,01); демонстрируя дипиридамол-зависимый увеличение PDX-1 числа клеток (таблица 1В, сверху). Средний процент PDX-1 + -клетка репликация (ДМСО + PDX-1 + Ki-67 + </ SUP> / ДМСО + PDX-1 +) составляет 3,35 ± 0,50% для ДМСО обработанных и 10,10 ± 0,98% для условий дипиридамола лечение (р <0,01) (таблица 1В, внизу). Важно отметить, что аналогичные PDX-1 ставки + -клетка репликации в скважинах затем анализировали на бета-клетки (строки CF) и репликации α-клеток (строки ГДж): ДМСО = 3,3 ± 0,66 (строки CF) и 3,4 ± 0,23 (строк ГДж) (р = 0,80); дипиридамол = 9,8 ± 0,86 (строки CF) и 10,4 ± 0.1.1 (строки ГДж) (р = 0,43). Следовательно, эти скважины, хотя и окрашивали для различных маркеров клеточной линии дифференцировки (инсулин и глюкагон), ответил так же, как медикаментозное лечение.

Далее скоростей репликации -клеток и альфа-клеток , рассчитывали из необработанных данных (таблица 2). Среднее количество бета-клеток (событие 1) было увеличено в ответ на лечение дипиридамолом: ДМСО 3930 ± 488 против. дипиридамол 4589 ± 218 (р <0,05). Следует отметить, что существует значительное снижение числа бета-клеток (3930 ± 488) по сравнению с PDX-1 клеток (5541 ± 555) (р <0,01). Это является результатом за исключением PDX-1 + -клеток , что инсулин - от графа β-клеток, например, дельта-клеток или клеток β-клеток - предшественников, а также дополнительной жесткости требующих -клеток быть инсулин +. Следует отметить, что количество альфа-клеток (событие 1) не увеличивалась с лечения дипиридамолом (ДМСО 1465 ± 123 против дипиридамол 1,467 ± 74,7; р = 0,93). Следовательно, дипиридамол селективно увеличивает количество β-клеток. Число репликации -клеток (событие 2) увеличивается в ответ на лечение дипиридамолом (DMSO 131 ± 31 против дипиридамола 476,5 ± 39,6; р <0,01) , но количество тиражирование альфа-клеток (событие 2) , не является (ДМСО 10,25 ± 3 против дипиридамола 9,0 ± 1,6; р = 0,5). Наконец процент тиражирование бета-CeLLS и альфа-клетки вычисляется ((событие 2 / событие 1) х 100). Действительно, дипиридамол увеличивает процент репликации бета-клеток , но не альфа-клетки (сокращенная на рисунке 5). Важно отметить, что базальная скорость репликации β-клеток здоровой культуры колеблется между экспериментами (0,5 - 3%), но должны быть очень последовательно через скважин в рамках эксперимента. Поскольку базальная репликация является переменной величиной, скорость репликации β-клеток соединением-индуцированной также неодинакова экспериментов; Тем не менее, складчато-индуцирование репликации β-клеток последовательно через экспериментов и позволяет эффективность соединения с достоверностью по сравнению через экспериментов. Следует отметить, что скорость репликации α-клеток составляет ~ 5 раз ниже, чем скорость репликации β-клеток и культуры содержат ~ 1/3, как много альфа-клеток, как бета-клетки; следовательно, репликации α-клеток индекса показывает изменчивость увеличилась по сравнению с индексом репликации в β-клеток. Чтобы ограничить изменчивость, изображения на лункуувеличивается с 49 (используемый здесь) до максимум 81.

Рисунок 1
Рисунок 1: Изолированные и дисперсные Крыса Островки. (A) микрофотография здоровых изолированных островков крыс; Шкала 100 мкм бар показано на рисунке. (B) Микрофотографии (5X и 10X цели) дисперсных островках крыс 1 час после нанесения покрытия; 100 мкм (слева) и 200 мкм (справа) шкала баров показано на рисунке. (C) Микрофотографии (5X и 10X цели) дисперсной крысы островки 48 ч после нанесения покрытия; 100 мкм (слева) и 200 мкм (справа) шкала баров показано на рисунке. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

фигура 2
Рисунок 2: Автоматизированная идентификация PDX-1 + + островковых клеток. (А) Соединение обработанных островковых клеток дисперсная крысы окрашивали на PDX-1. PDX-1 + объекты обведены синим цветом; исключенные объекты обведены оранжевым цветом. Масштабная линейка 150 мкм показано на рисунке. (В) То же поле островковых клеток , окрашенных для Ki-67. PDX-1 + Ки-67 + двойные-позитивные клетки обведены зеленым цветом. Масштабная линейка 150 мкм показаны. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3
Рис . 3: Автоматизированная идентификация Репликация бета-клеток Репликация бета-клетки обозначены DAPI (левый верхний угол, синие кружки), PDX-1 (правый верхний угол, зеленые круги), инсулин (левый нижний угол, пурпурного кружки) и Ki-67 (правый нижний угол, красные кружки) со-еXpression. Объединенное изображение (справа) показывает несколько реплицирующиеся бета-клеток. Масштабная линейка 150 мкм показаны. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 4
Рисунок 4:. Автоматическая идентификация реплицироваться альфа-клеток Репликация a-клетки идентифицируют с помощью DAPI (левый верхний угол, синие кружки), отсутствие PDX-1 (правый верхний угол, зеленые кружки), глюкагон (левый нижний угол, пурпурные кружки) и Ki-67 (правый нижний угол, красный круг) коэкспрессией. Объединенное изображение (справа) показывает редкий тиражирование дублет альфа-клеток (желтая стрелка). Масштабная линейка 150 мкм показаны. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.


Рис . 5: Дипиридамола Индуцирует PDX-1 + - и β-клеток репликации , но не α-клеток репликации Графическое представление PDX-1-клетки (вверху слева), β-клеток (справа вверху) и α-клеток (внизу слева) репликация в ДМСО и дипиридамола обработанных скважин показаны. Полосы представляют собой среднее независимо обработанных скважин (PDX-1 репликации, п = 8; β-клеток и репликации α-клеток, п = 4). Столбики ошибок указывают стандартное отклонение (* р <0,01). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

<TD> 3,77
А. Лечение: Окрашивание:
4 5
С ДМСО дипиридамол Инсулин, DAPI, PDX-1, Ki-67
D ДМСО дипиридамол Инсулин, DAPI, PDX-1, Ki-67
Е ДМСО дипиридамол Инсулин, DAPI, PDX-1, Ki-67
F ДМСО дипиридамол Инсулин, DAPI, PDX-1, Ki-67
г ДМСО дипиридамол Глюкагон, DAPI, PDX-1, Ki-67
ЧАС ДМСО дипиридамол Глюкагон, DAPI, PDX-1, Ki-67
я ДМСО дипиридамол Глюкагон, DAPI, PDX-1, Ki-67
J ДМСО дипиридамол Глюкагон, DAPI, PDX-1, Ki-67
B. Количество PDX-1 + клеток
ДМСО дипиридамол
4 5
С 5158 6249
D 6365 6795
Е 4830 6974
F 5988 6408
г 5574 6532
ЧАС 5939 6411
я 5612 6387
J 4862 5759
Процент PDX-1 + Ki-67 + клеток
ДМСО дипиридамол
4 5
С 3,04 9,99
D 3,91 10.57
Е 2,51 8,58
F 10.14
г 3,44 10.1
ЧАС 3,06 10.69
я 3,58 9,07
J 3,52 11.74

Таблица 1: Представитель Экспериментальный план и PDX-1 + -клеток репликация данных. (A) Набросок плана лечения показан. Лунки обрабатывали ДМСО (колонка 4) или дипиридамол (столбец 5). Окрашивание проводили с использованием DAPI, анти-PDX-1, анти-инсулина (обычный шрифт) или анти-глюкагон (наклонным шрифтом) и Ki-67 (B) Общее число PDX-1 + клеток (вверху, DAPI +PDX-1 +) на лунку и процент репликации клеток PDX-1 (внизу, DAPI + PDX-1 + Ки-67 + / DAPI + PDX-1 + х 100) на лунку показаны.

Событие 1:
ДМСО дипиридамол
4 5
С 3557 4352 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+)
D 4387 4542 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+)
Е 3462 4879 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+)
F 4315 4585 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+)
г 1594 1567 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+)
ЧАС 1477 1439 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+)
я 1491 1390 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+)
J 1298 1474 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+)
Событие 2:
ДМСО дипиридамол
4 5
С 113 425 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+), Ki-67 (+)
D 152 511 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+), Ki-67 (+)
Е 97 466 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+), Ki-67 (+)
F 163 504 # DAPI (+) PDX-1 (+) Инсулин (+), Ki-67 (+)
г 13 9 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+) , Ki-67 (+)
ЧАС 10 9 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+) , Ki-67 (+)
я 6 11 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+) , Ki-67 (+)
J 12 </ EM> 7 # DAPI (+) PDX-1 (+) , глюкагон (+) , Ki-67 (+)
% Репликации:
ДМСО дипиридамол
4 5
С 3,18 9,77
D 3,47 11.25
Е 2.8 9,55
F 3,78 10.99
г 0,82 0,57
ЧАС 0,68 0,63
я 0,4 0,79
J 0,92 0,48

Таблица 2: Представитель β-клеток и α-клеток данных репликации Общее количество бета-клеток (Событие 1: DAPI + PDX-1 + инсулин +; верхний строки таблицы УТС, нормальный шрифт).), Α-клетки (Событие 1 : DAPI + PDX-1 + глюкагона +; сверху строки таблицы GH, наклонным шрифтом), тиражирование бета-клеток (событие 2: DAPI + PDX-1 + инсулин + Ki-67 +; средний строки таблицы CF, нормальный шрифт) и α -клеток (Событие 2: DAPI + PDX-1 + глюкагона + Ki-67 +; средний строки таблицы GH, наклонным шрифтом)на лунку показаны. Кроме того, процент репликации -клеток (DAPI + PDX-1 + инсулин + Ki-67 + / DAPI + PDX-1 + инсулиновой + X 100; нижней строк таблицы УТС, нормальный шрифт) и альфа-клеток (DAPI + PDX -1 + глюкагона + Ki-67 + / DAPI + PDX-1 + глюкагона + х 100; нижняя строки таблицы ГДж, наклонным шрифтом) на лунку показаны.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Экспериментальные методы исследования молекулярных путей, которые контролируют рост β-клеток и регенерации являются важными инструментами для исследователей диабета. При этом, крыса-островок на основе скрининга платформа для идентификации и характеристики малых молекул стимуляторы репликации β-клеток представлена.

В то время как большинство аспектов этого протокола легко выполняются опытными исследователями, несколько шагов требуют определенной техники. Во-первых, во время островковых изоляции, катетеризация желчного протока, не нарушая ее целостности требует практики. Полезным стратегия состоит в том, чтобы минимально раздуть желчный проток, чтобы обеспечить надлежащее позиционирование иглы до полного дозирования панкреатический раствора пищеварения. Во-вторых, эффективная изоляция островок из экзокринной ткани требует пристального внимания к продолжительности пищеварения и соответствующей агитации. Следует соблюдать осторожность, чтобы обеспечить равномерный нагрев по всей дайджеста через прерывистым закрученной. В-третьих, экспериментальный успех зависитs по опытным дискриминации между островками и экзокринной мусора во время ручного сбора островковых клеток поджелудочной железы; этот навык улучшается с практикой. В-четвертых, островковых дисперсия и покрытие выполняется таким образом, что все островки диспергируют в смесь одиночных клеток и небольших кластеров из двух или трех ячеек. Переедания и переваривания островками перед металлизированный мешают экспериментальной работы. Свежеиспеченный гальваническим островок-клетки должна составлять примерно 50% сплошности перед распространением и позволяли закрепляться в течение 48 часов без помех. На рисунке 1 показан внешний вид успешных культур островковых клеток в различные моменты времени после нанесения покрытия. В-пятых, средства массовой информации изменения для островковых-клеточных культур сделаны тщательно, чтобы избежать срыва слабо прикрепленных клеток. В-шестых, извлечение антигена должно быть сделано осторожно, чтобы избежать коробления мульти-луночного планшета, но достаточно для того, чтобы успешное Ki-67 окрашивание, которое чувствительно к обоим недо- и чрезмерного воздействия повышения температуры; деформированные пластины не могут быть использованы дляавтоматизированное получение изображений. Обратите внимание, чрезмерное поджелудочной железы пищеварение, воздействие мусора экзокринной ткани и / или трипсином являются распространенными причинами для отказа островок клеточной культуры.

Одним из ограничений этого протокола является опора на специфических маркеров экспрессии для идентификации β-клеток и событий репликации. Использование отдельных маркеров имеет потенциал, чтобы ввести в заблуждение. Например, PDX-1 выражается -клеток, подмножество соматостатина-экспрессирующих б-клеток и β-клеток - предшественников 29,30; Следовательно, соединения, которые повышают репликацию PDX-1-клеток может быть специфически воздействуя на популяции не-β-клеток. Следовательно, подтверждающие исследования, которые используют альтернативные маркеры β-клеток необходимы. Точно так же, Ki-67 выражение не является идеальным маркером для репликации и дополнительных показателей , таких как BrdU и фосфо-гистона 3 следует использовать 31. Второе ограничение этого анализа является то, что соединения, которые индуцируют репликацию β-клеток может simultaneменно увеличить β-клеток апоптоз или де-дифференциацию. Следовательно, важно , чтобы оценить , индуцирует ли соединение абсолютное увеличение числа β-клеток, и / или индуцирует β-апоптоз клеток и сохраняют ли обработанные соединением бета-клеток нормальной функции (глюкозой секрецию инсулина стимулируется) 32. Третье ограничение данного анализа является скромным пропускная способность, связанная с использованием первичных островковых клеток; Островки из шести крыс генерирует 228 экспериментальные скважины, которые позволяет ~ 55 соединений, которые будут демонстрироваться в четырех экземплярах (плюс положительным и отрицательным контролем). Дополнительное ограничение описанного скрининга репликации β-клеток платформы является использование островками крысы, а не человека островками. Различия между островками человека и крысы являются достаточно потребовать, чтобы все репликации способствующего соединения, идентифицированные с использованием крыс островковых культур подтверждены с использованием культур островковых человека. Однако, учитывая ограниченную доступность и высокую стоимость человека островками, первичный скрининг с человека Islets непрактично для большинства исследователей.

Основными преимуществами этого протокола являются: 1) использование свежеизолированных первичных островки для поддержания нормального ограничения роста в максимально возможной степени, 2) использование формата 384-а, чтобы обеспечить умеренное скрининга (как правило, островки выделяют из шести крыс достаточно для 228 скважин) и 3) использование автоматизированных систем сбора и анализа изображений для ускорения темпов экспериментов и ограничить смещение. В противоположность этому , обычно используемые альтернативные подходы опираются на ручной получения изображения и субъективной оценки событий репликации β-клеток или целых островковой включения радиоактивного тимидина , который не разграничивает клеточных linages, например , по сравнению с фибробластами репликации β-клеток 15,17. Таким образом, представленный протокол представляет собой важный и улучшенный инструмент для исследования роста регуляции бета-клеток.

Мы представляем различные адаптированныйиспользует для этого скрининга платформы. Во- первых, абсолютное увеличение числа β-клеток может быть измерена путем подсчета количества PDX-1 + - или инсулин + -клетках. Для учета изменчивости числа посеянных клеток на лунку большим числом повторов на каждое условие может быть включено (как правило, п = 8). Во-вторых, платформа может быть адаптирована для лентивирусов на основе избыточной экспрессии или выбивание / вниз эксперименты с целью выявления путей, участвующих в репликации, β-клеток. Таким образом, описанная методика эксперимента является широко применимы для идентификации соединений и молекулярных путей, которые регулируют репликацию β-клеток.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
250 g male Male Sprague Dawly Rat Charles River Stain # 400
12 cm teeth tisuue forceps Fine Science Tools 11021-12
11.5 cm fine scissors Fine Science Tools 14058-11
14.5 cm surgical scissors Fine Science Tools 14001-14
16 cm curved forceps Fine Science Tools 11003-16
12 cm curved hepostat Fine Science Tools 13011-12
12 cm scalpel handle Fine Science Tools 10003-12
Tissue sieve-30 mesh Bellco Glass 1985-85000
Cizyme RI, 375,000 CDA units VitaCyte 005-1030
Hanks' Balanced Salt solution (Ca++ and Mg++) Gibco 24020-117
Ketamine HCl (200 mg/20 ml) JHP Pharmaceuticals NDC# 42023-113-10 to make anesthetic cocktail 
Xylazine (5 g/50 ml) LLOYD NADA# 139-236 to make anesthetic cocktail 
Histopaque 1077 Sigma H-1077 to make histopaque 1100
Histopaque 1119 Sigma H-1119 to make histopaque 1100
Newborn Calf Serum 500 ml Hyclone SH30118.03
Hanks' Balanced Salt solution Hyclone SH30268.01
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Low Glucose  Hyclone SH30021.01
Functionality/Viability Solution  Mediatech 99-768-CV
RPMI1640 media  Hyclone SH30096.01 to make conditioned medium
804G rat bladder carcinoma cell-line Available upon request to make conditioned medium
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 26160
GlutaMax-I Gibco 35050-061
Penicillin (5,000 IU/ml/Strptomycin (5 mg/ml)  MP Biomedicals 1670049
Formamide 500 ml Fisher BioReagents BP227-500
Antigen Unmasking Solution 250 ml (pH 6.0) Vector Laboratories H-3300 to make 0.15 M Sodium Sitrate solution
Dextrose, Anhydrous EMD Chemicals DX0145-1 to make 1 M glucose solution
Nomal Donkey Serum (Powder) Jackson ImmunoResearch 017-000-121
Triton X-100 Sigma T8787-100ML
Mouse anti-human Ki67 antibody BD Biosciences 556003
Goat anti-human PDX-1 antibody R&D Systems AF2419
Polyclonal Guinea Pig anti-insulin antibody Dako 2016-08
Polyclonal Rabbit anti-glucagon antibody Dako 2014-06
Polyclonal Rabbit anti-somatostatin antibody Dako 2011-08
Polyclonal chicken anti-vimentin antibody abcam ab24525
Biotin-SP-conjugated, Donkey Anti-Mouse IgG Jackson ImmunoResearch 715-065-150
StreptAvidin, Alex Flour 488 conjugated  Invitrogen S32354
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Goat IgG  Jackson ImmunoResearch 705-025-147
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Guinea Pig IgG  Jackson ImmunoResearch 706-025-148
Rhodamine-conjugated Donkey Anti-Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 711-025-152
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Guinea Pig IgG  Jackson ImmunoResearch 706-175-148
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Goat IgG Jackson ImmunoResearch 705-175-147
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 711-175-152
Cy 5-conjugated Donkey Anti-Chicken IgG Jackson ImmunoResearch 703-175-155
DAPI Millipore S7113
Disposable Reagent Reservoir 25 ml Sorenson BioScience 39900
384 well, black/clear, tissue culture treated plate BD Falcon 353962
96 well, black/clear, tissue culture treated plate Costar 3603
Multi-channel pipettor Costar 4880
12-channel vaccume aspirator Drummond 3-000-096
Cell Scraper Falcon 353085
Isotemp Water Bath Model 2223  Fisher Scientific
High-content screening instrument: ArrayScan VTI Thermo Scientific

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Butler, A. E., et al. Beta-cell deficit and increased beta-cell apoptosis in humans with type 2 diabetes. Diabetes. 52, (1), 102-110 (2003).
  2. Kloppel, G., Lohr, M., Habich, K., Oberholzer, M., Heitz, P. U. Islet pathology and the pathogenesis of type 1 and type 2 diabetes mellitus revisited. Surv Synth Pathol Res. 4, (2), 110-125 (1985).
  3. Harlan, D. M., Kenyon, N. S., Korsgren, O., Roep, B. O. Current advances and travails in islet transplantation. Diabetes. 58, (10), 2175-2184 (2009).
  4. Nath, D. S., et al. Outcomes of pancreas transplants for patients with type 2 diabetes mellitus. Clin Transplant. 19, (6), 792-797 (2005).
  5. Nichols, R. J., New, C., Annes, J. P. Adult tissue sources for new beta cells. Transl Res. 163, (4), 418-431 (2014).
  6. Pagliuca, F. W., et al. Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro. Cell. 159, (2), 428-439 (2014).
  7. Kushner, J. A., MacDonald, P. E., Atkinson, M. A. Stem cells to insulin secreting cells: two steps forward and now a time to pause. Cell Stem Cell. 15, (5), 535-536 (2014).
  8. Dor, Y., Brown, J., Martinez, O. I., Melton, D. A. Adult pancreatic beta-cells are formed by self-duplication rather than stem-cell differentiation. Nature. 429, (6987), 41-46 (2004).
  9. Meier, J. J., et al. Beta-cell replication is the primary mechanism subserving the postnatal expansion of beta-cell mass in humans. Diabetes. 57, (6), 1584-1594 (2008).
  10. Chick, W. L., Lauris, V., Flewelling, J. H., Andrews, K. A., Woodruff, J. M. Effects of glucose on beta cells in pancreatic monolayer cultures. Endocrinology. 92, (1), 212-218 (1973).
  11. Brelje, T. C., Sorenson, R. L. Role of prolactin versus growth hormone on islet B-cell proliferation in vitro: implications for pregnancy. Endocrinology. 128, (1), 45-57 (1991).
  12. Chen, H., et al. PDGF signalling controls age-dependent proliferation in pancreatic beta-cells. Nature. 478, (7369), 349-355 (2011).
  13. Liu, H., et al. Glycogen synthase kinase-3 and mammalian target of rapamycin pathways contribute to DNA synthesis, cell cycle progression, and proliferation in human islets. Diabetes. 58, (3), 663-672 (2009).
  14. Metukuri, M. R., et al. ChREBP mediates glucose-stimulated pancreatic beta-cell proliferation. Diabetes. 61, (8), 2004-2015 (2012).
  15. Wang, P., et al. A high-throughput chemical screen reveals that harmine-mediated inhibition of DYRK1A increases human pancreatic beta cell replication. Nat Med. 21, (4), 383-388 (2015).
  16. Schisler, J. C., et al. Stimulation of human and rat islet beta-cell proliferation with retention of function by the homeodomain transcription factor Nkx6.1. Mol Cell Biol. 28, (10), 3465-3476 (2008).
  17. Fueger, P. T., Hernandez, A. M., Chen, Y. C., Colvin, E. S. Assessing replication and beta cell function in adenovirally-transduced isolated rodent islets. J Vis Exp. (64), (2012).
  18. Walpita, D., et al. A human islet cell culture system for high-throughput screening. J Biomol Screen. 17, (4), 509-518 (2012).
  19. Miyazaki, J., et al. Establishment of a pancreatic beta cell line that retains glucose-inducible insulin secretion: special reference to expression of glucose transporter isoforms. Endocrinology. 127, (1), 126-132 (1990).
  20. Song, W. J., et al. Phosphorylation and inactivation of glycogen synthase kinase 3beta (GSK3beta) by dual-specificity tyrosine phosphorylation-regulated kinase 1A (Dyrk1A). J Biol Chem. 290, (4), 2321-2333 (2015).
  21. Hohmeier, H. E., et al. Isolation of INS-1-derived cell lines with robust ATP-sensitive K+ channel-dependent and -independent glucose-stimulated insulin secretion. Diabetes. 49, (3), 424-430 (2000).
  22. Cozar-Castellano, I., et al. Lessons from the first comprehensive molecular characterization of cell cycle control in rodent insulinoma cell lines. Diabetes. 57, (11), 3056-3068 (2008).
  23. Efrat, S., Fusco-DeMane, D., Lemberg, H., aL Emran, O., Wang, X. Conditional transformation of a pancreatic beta-cell line derived from transgenic mice expressing a tetracycline-regulated oncogene. Proc Natl Acad Sci U S A. 92, (8), 3576-3580 (1995).
  24. Wang, W., et al. Identification of small-molecule inducers of pancreatic beta-cell expansion. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, (5), 1427-1432 (2009).
  25. Annes, J. P., et al. Adenosine kinase inhibition selectively promotes rodent and porcine islet beta-cell replication. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, (10), 3915-3920 (2012).
  26. Zhao, Z., et al. Repurposing cAMP-modulating medications to promote beta-cell replication. Mol Endocrinol. 28, (10), 1682-1697 (2014).
  27. Chen, C. A., Carolan, P. J., Annes, J. P. In vivo screening for secreted proteins that modulate glucose handling identifies interleukin-6 family members as potent hypoglycemic agents. PLoS One. 7, (9), e44600 (2012).
  28. Izumi, K., Hirao, Y., Hopp, L., Oyasu, R. In vitro induction of ornithine decarboxylase in urinary bladder carcinoma cells. Cancer Res. 41, (2), 405-409 (1981).
  29. Serup, P., et al. The homeodomain protein IPF-1/STF-1 is expressed in a subset of islet cells and promotes rat insulin 1 gene expression dependent on an intact E1 helix-loop-helix factor binding site. Biochem J. 310, (Pt 3) 997-1003 (1995).
  30. Szabat, M., Luciani, D. S., Piret, J. M., Johnson, J. D. Maturation of adult beta-cells revealed using a Pdx1/insulin dual-reporter lentivirus. Endocrinology. 150, (4), 1627-1635 (2009).
  31. Rieck, S., et al. Overexpression of hepatocyte nuclear factor-4alpha initiates cell cycle entry, but is not sufficient to promote beta-cell expansion in human islets. Mol Endocrinol. 26, (9), 1590-1602 (2012).
  32. Wang, P., et al. Diabetes mellitus--advances and challenges in human beta-cell proliferation. Nat Rev Endocrinol. 11, (4), 201-212 (2015).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics