Medição de contratilidade isométrica da artéria mesentérica Mouse usando fio miografia

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

A técnica de myograph do fio é usada para investigar as funções do músculo liso vascular e tela novas drogas. Nós relatamos um protocolo detalhado para medir a contratilidade isométrica da artéria mesentérica de rato e para a seleção de novos relaxantes do músculo liso vascular.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Sun, J., Yang, G. M., Tao, T., Wei, L. S., Pan, Y., Zhu, M. S. Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography. J. Vis. Exp. (138), e58064, doi:10.3791/58064 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

A técnica de myograph do fio é usada para avaliar a contratilidade da musculatura de Lisa vascular em resposta à despolarização, GPCR agonistas/inibidores e drogas. É amplamente utilizado em muitos estudos sobre as funções fisiológicas do músculo liso vascular, a patogênese de doenças vasculares, como hipertensão e desenvolvimento de fármacos relaxante músculo liso. O rato é um animal modelo amplamente utilizado com uma grande piscina de doença modelos e variedades geneticamente modificadas. Nós introduzimos esse método para medir a contração isométrica de artéria mesentérica de rato em detalhe. Um segmento de 1,4 mm da artéria mesentérica resistência de rato foi isolado e montado em uma câmara de myograph, passando dois fios de aço por meio de seu lúmen. Após etapas de equilíbrio e normalização, o segmento de navio foi potencializado por uma solução de alta-K+ duas vezes antes do ensaio de contração. Como um exemplo da aplicação desse método no desenvolvimento de drogas, Nós medimos o efeito relaxante de uma substância natural romance, neoliensinine, isolado de uma erva chinesa, embriões da semente de Lótus (Nelumbo nucifera Gaertn.) no mouse mesentérico artérias. Os segmentos de embarcação montados na câmara de myograph foram estimulados com uma solução de alta-K+ . Quando a força de tensão atingiu uma fase estável e sustentada, doses cumulativas de neoliensinine foram adicionadas para a câmara. Encontramos que essa neoliensinine teve um efeito relaxante dose-dependente na contração do músculo liso, sugerindo assim, que tem atividade potencial contra a hipertensão. Além disso, como o segmento de navio pode sobreviver pelo menos 4 horas após a montagem e manter a contratilidade induzida pela solução high-K+ por muitas vezes, sugerimos que o sistema de myograph do fio pode ser utilizado para o moroso processo de despistagem de drogas.

Introduction

O sistema de myograph de pequeno vaso usado aqui foi para medir a contração isométrica dos vasos de resistência pequena com diâmetro interno que variam de 100 a 400 µm. isolados pequenos vasos (cerca de 2 mm de comprimento) foram inseridos por dois fios de diâmetro de 40 µm e foram então montado sobre as garras do micrômetro-lado e lado do transdutor sequencialmente. Esta técnica de myograph foi sugerida primeiramente em 19721 e então desenvolvida principalmente por Mulvany e seus colegas2,3,4,5,6. Agora é uma técnica madura com equipamento estável, desempenho fácil e um padrão de normalização procedimento7,8,9. Utilizamos este método com algumas modificações para medições na artéria mesentérica de rato.

Músculo liso vascular as linhas das paredes de quase todos os vasos sanguíneos. Sua função fundamental é gerar forças através da contração em resposta a vários estímulos. A contratilidade normal do músculo liso vascular é essencial para a regulação da pressão de sangue e nutrição complementar10. Regulamento anormal da pressão arterial resulta em uma variedade de doenças, incluindo hipertensão, insuficiência cardíaca e isquemia. Vários estudos têm sugerido que a pressão anormal de sangue sempre é associada com disfuncional músculo liso vascular contratilidade7,11,12,13. O método myograph permite investigação da contratilidade isométrica dos navios de rato induzida por vários estímulos, incluindo vasoconstritores, inibidores e drogas. Medições bem sucedidas de contração nos ajudará a compreender os mecanismos de manutenção da pressão arterial e a patogênese de doenças associadas a músculo liso vasculares e explorar novas abordagens terapêuticas.

Muitas ervas chinesas têm sido amplamente utilizadas para tratamento clínico de doenças vasculares; no entanto, seus ingredientes eficazes geralmente permanecem desconhecidos. Assim, o isolamento e identificação dos componentes eficazes é muito importante para o desenvolvimento de novos medicamentos. Tecnologia multi fio myograph oferece uma abordagem simples para a seleção de componentes ativos em ervas. Nós temos relatado vários estudos utilizando o sistema de myograph de pequeno vaso para investigar a contração de artéria mesentérica de rato e identificados compostos naturais com atividade anti-hipertensão12,13,14. Aqui, descrevemos o detalhada do protocolo para o método de myograph e avaliar o efeito relaxante do neoliensinine isolada de embriões de sementes de Lótus (Nelumbo nucifera Gaertn.) 14.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Manipulações de animais foram aprovadas pelo cuidado institucional do Animal e Comissão de utilização (IACUC) da Universidade modelo Animal Research Center de Nanjing.

1. preparação da solução

  1. Preparar a solução de Tyrode-HEPES (H-T) usando 137,0 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 1.8 mM CaCl2, 1 mM MgCl2∙6H2O, 5,6 mM D-glicose e 10 mM HEPES, pH 7.3-7.4.
  2. Preparar a solução de Tyrode HEPES sem cálcio (Ca2 +-livre H-T) usando 140,6 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 1 mM MgCl2∙6H2O, 5,6 mM D-glicose e 10 mM HEPES, pH 7.3-7.4.
  3. Preparar a solução de Tyrode HEPES usando 124 mM KCl (alta K+) usando 15,7 mM NaCl, 124,0 mM KCl, 1.8 mM CaCl2, 1 mM MgCl2∙6H2O, pH de 5,6 mM D-glicose e 10 mM HEPES, 7.3-7.4.

2. preparação do experimento

  1. Pré-aqueça o H-T e High-K+ soluções usando banho maria a 37 ° C.
  2. Ligue o sistema de myograph, o hardware de aquisição de dados e o computador.
  3. Com cuidado, encha todas as câmaras de myograph com 5 mL de solução de H-T cada.
  4. Preencher dois pratos de Petri com 20 mL de 4 ° C H-T e Ca2 +-livre soluções H-T, respectivamente e armazenar no gelo.
  5. Encha um prato de Petri 10 cm revestido com 20 mL de solução de H-T e mantê-lo em temperatura ambiente.

3. Mouse dissecação de artéria mesentérica

  1. Eutanásia em um 8-12-week-old C57BL/6J masculino ou feminino do mouse por deslocamento cervical. Segure o mouse com o abdômen voltado para cima.
  2. Umedeça o abdômen com etanol a 70%. Em seguida, cortar a pele com a tesoura ao longo da linha mediana ventral da virilha e fazer incisões desde o início da primeira incisão para baixo para as pernas em ambos os lados. Puxamos a pele para trás em ambos os lados; Faça incisões semelhantes para abrir o peritônio.
  3. Com uma tesoura, corte o esófago, cólon e outros tecidos conectivos para isolar completamente o trato gastrointestinal com alimentação vasculatura do corpo.
  4. Com fórceps, mova o segmento isolado na cápsula contendo o frio H-T preparado no passo 2.4 e delicadamente, lave o tecido na solução H-T várias vezes para lavar o sangue.
  5. Transferir o segmento isolado para o prato de Petri revestida, preparado na etapa 2.5 e faz dissecação da artéria mesentérica em temperatura ambiente.
  6. Suavizar o estômago, jejuno, íleo e ceco no sentido horário, e fixar o estômago e o ceco no lado esquerdo e direito, respectivamente.
  7. Esticar a cama da vasculatura mesentérica e corrigir o intestino com pinos para expor as artérias mesentéricas dissecadas.
    Nota: Nestas condições, as artérias estão no topo das veias.
  8. Ligue a fonte de transmissão de luz de um microscópio estereoscópico e dissecar as artérias sob o microscópio. Certifique-se de que o tecido inteiro está imerso na solução.
  9. Prenda os tecidos adiposo em torno das artérias com fórceps e isolar as artérias cortando todos os tecidos conjuntivos com tesoura de dissecação. Evite ferir as artérias.

4. arterial montagem

  1. Transferência e imergir a árvore de artéria mesentérica o frio Ca2 +-livre solução do H-T (preparada na etapa 2.4), fixando as artérias em excesso com a pinça.
  2. Corte uma parte de 1,4 mm da artéria proximal à parede intestinal de uma arcada mesentérica e usar duas pinças para abrir ambos os lados deste segmento de artéria cuidadosamente.
  3. Prepare-se dois segmentos de 2,5 cm de comprimento de fio de aço inoxidável e colocá-los no mesmo prato.
  4. Delicadamente, prenda uma extremidade da artéria usando fórceps e Introduza cuidadosamente os dois fios no lúmen da artéria um por um com a ajuda de outra pinça. Certifique-se que os fios são mantidos em linha reta e não toque o endotélio.
  5. Usando duas pinças, prenda os dois fios de aço fora do navio roscado simultaneamente e transferir cuidadosamente o navio do prato de Petri a uma câmara de myograph anteriormente preenchida com solução de H-T (passo 2.3).
  6. Que se lixe os mordentes separados para fazer espaço para montagem. Prenda os dois lados de um dos dois fios inseridos usando duas pinças e coloque o recipiente na abertura mandíbula (figura 1A).
  7. Envolva ambos os lados do fio preso por parafusos da mandíbula conectado para o micrômetro (figura 1B).
  8. Fixe o parafuso esquerdo girando no sentido horário. Endireitar o fio usando fórceps da direita e, em seguida, fixar o parafuso da direita girando no sentido horário (Figura 1). Certifique-se de que o navio está sempre dentro da abertura da mandíbula, mas não toque no queixo para evitar danos.
  9. Feche as duas mandíbulas usando o micrômetro (Figura 1). Certifique-se que as duas garras estão perto o suficiente, mas que não tocam uns aos outros e que o fio não fixado na parte superior do fio fixo.
  10. Usando a pinça direita, cuidadosamente dobre o fio retirado no canto da mandíbula conectado para forçar o transdutor e envolvê-la no sentido horário em torno do parafuso do lado direito (Figura 1E). Em seguida, fixe o parafuso. Repita essa etapa no lado esquerdo do fio e fixar o parafuso do lado esquerdo (Figura 1F).
  11. Mova a mandíbula ligeiramente afastada girando cuidadosamente o micrômetro (Figura 1). Evite esticar o navio. Use a pinça para mover o fio no lado de micrômetro para o plano horizontal do fio ao lado do transdutor. Gire o micrômetro cuidadosamente para que a lacuna entre as duas garras só pode acomodar os dois fios.
  12. Repita as etapas 4.2 – 4.11 para montar as artérias para as outras câmaras. Conecte todas as câmaras para o equipamento, cobrir as câmaras, anexar o fornecimento de oxigênio a 100% e uma sonda de temperatura e começar aquecendo-se a 37 ° C. Abra o software de gráfico e pressione o botão Iniciar na janela de Visualização de gráfico para iniciar a gravação.
  13. Equilibrar-se por cerca de 20 min.

5. normalização

Nota: A fim de padronizar as condições experimentais e obter a capacidade de resposta fisiológica confiável dos navios, um processo de normalização é necessário15. De acordo com a relação entre a força activa e a circunferência interna do navio, o sistema de myograph do fio tem um programa de normalização de padrão para avaliar a circunferência interna (IC) do navio montado5,8, 9. Brevemente, calcular IC (µm), ler o micrômetro e o valor de entrada como o valor de X e o transdutor de saída de força, ou seja, descansando a tensão parede (mN/mm), como o valor de Y. O programa irá retornar uma curva equipada de (X, Y) e calcular o IC correspondente à pressão transmural de 100 mmHg (IC100). A embarcação é definida como a circunferência interna normalizada (IC1) quando a capacidade de resposta ativa é máxima.

  1. Conjunto de forças para zero para todos os canais no dispositivo e equilibrar por mais 1-2 minutos.
  2. Selecione configurações de normalização do "menu DMTe configurar os parâmetros da seguinte forma:
    Calibração de ocular (mm/div): 0,36; Alvo de pressão (kPa): 13,3; IC1/IC100: 0,9; On-line com média de tempo (segundos): 2; Atraso de tempo (segundos): 60. Clique no botão para fechar a janela de Configurações de normalização de DMT Okey .
  3. Selecione o canal de interesse do menu de DMT para abrir uma janela de normalização de DMT para o canal correspondente. Inserir os valores constantes na janela da seguinte forma: a1 de pontos de extremidade de tecido: 0.1; A2 de pontos de extremidade de tecido: 4; Diâmetro de fio (µm): 40. A janela exibe o comprimento do navio calculado como 1,40 mm.
  4. Leia o micrômetro da câmara de tecido apropriado. Digite o valor na caixa de leitura do micrômetro e clique o botão Adicionar ponto . Esse valor é o valor inicial de X (X0). Depois de um tempo de atraso 60 s, a janela exibe a força e a pressão eficaz (ERTP) correspondente a esse valor de micrômetro. Simultaneamente, a caixa de leitura micrômetro se torna ativa.
  5. Estica o navio sendo normalizado girando o micrômetro no sentido anti-horário. Digite o valor de micrômetro na caixa de leitura do micrômetro e clique o botão Adicionar ponto . Esperar por um tempo de atraso de 60 s novamente.
  6. Repita a etapa 5.5, continuar a esticar o navio e adicionar valores de micrômetro até a janela exibe o valor de "micrômetro X1", que é a configuração de micrômetro calculado necessária para esticar a embarcação para sua IC1.
  7. Defina o micrômetro para X o valor1 .
    Nota: A tensão normalizada é geralmente 1-2 mN.

6. artéria contração gravação

Nota: Todas as soluções, incluindo o H-T e High-K+ solução usado nesta seção, foram preparadas na etapa 2.1.

  1. Após a normalização, equilibrar o navio na câmara para 15-20 min.
    Nota: Estas é nenhuma necessidade de mudar a solução nesta etapa.
  2. Desafie o recipiente com solução High-K+ duas vezes.
    1. Para desafiar o navio, substitua a solução H-T com 5 mL de solução de High-K+ para induzir a contração por 10 min, seguido por lavagem com 5 mL de solução de H-T 3 - 4 vezes.
      Nota: Contração típica tem uma força máxima sobre 3 mN e uma força constante e sustentada em torno de 2,5 mN12. Se o primeiro desafio gera uma força máxima abaixo de 2,5 mN ou a força sustentada diminui com o tempo ou o segundo desafio gera uma força muito menor do que a dose pela primeira vez, o navio é Descartado e não será usado para investigação futura.
  3. Desafie o vaso com 5 mL de solução de High-K+ para induzir a contração. Depois de 5 min, adicione 0,5 µ l de solução-mãe (10mm em DMSO) neoliensinine14 na câmara para relaxar o navio em uma concentração final de 1 µM de neoliensinine.
  4. Quando a força é estável (isto geralmente leva vários minutos), adicionar outra 0,5 μL de solução-mãe de neoliensinine na câmara para aumentar a concentração de µ l 2 µM. adicionar 1 da solução-mãe cada vez para aumentar a concentração de 4, 6, 8 e 10 µM para gerar t curva de dose-resposta.
    Nota: O estoque e as concentrações de trabalho variam entre drogas.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Podemos medir a contratilidade isométrica de artéria mesentérica de rato usando um sistema multi fio myograph e avaliou o efeito relaxante da neoliensinine purificado a partir de embriões de sementes de Lótus (Nelumbo nucifera Gaertn.) 14. a artéria mesentérica resistência do rato foi isolada, limpo dos tecidos conjuntivos e cortada em segmentos de 1,4 mm. O segmento de artéria foi inserido por dois fios de aço em Ca2 +-livre solução H-T em uma placa de Petri, e em seguida o segmento foi montado em duas mandíbulas de uma câmara de myograph (Figura 2A). Após a montagem do segmento, os dois fios foram ajustados para ser paralela, perto mas não tocando um ao outro (Figura 2B). Antes da medição da força, o segmento de navio foi normalizado e potencializado duas vezes pela solução High-K+ a fim de estabilizar o navio. Durante o processo de normalização, o navio foi esticado várias vezes até atingir o valor de100, IC e cada ciclo estiramento incluiu uma forte contração, relaxamento rápido e uma força de manutenção em 60 s (Figura 3). A contração do músculo liso vascular induzido pela solução High-K+ geralmente mostrou duas fases, uma fase sólida e uma fase sustentada (Figura 3). O segmento de navio pode ser usado para novas experiências se o High-K+-contração evocada aparece normal e reprodutíveis. Uma medida típica com neoliensinine é representada na Figura 4. Quando a força de tensão induzida por High-K+ atingido uma fase sustentada, adicionamos doses cumulativas de neoliensinine (1, 2, 4, 6, 8 e 10 µM) através dos furos da tampa da câmara. Como as doses aumentaram, a força é reduzida de forma dose-dependente. O resultado indicou que neoliensinine é uma substância relaxante do músculo liso vascular que potencialmente age como um candidato drogas anti-hipertensão14.

Figure 1
Figura 1: um esquema do arterial, procedimento de montagem. As linhas azuis representam os fios, e o retângulo vermelho representa a artéria. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 2
Figura 2: um segmento de artéria mesentérica de rato montado na câmara de myograph. (A) um segmento de artéria mesentérica de rato montado sobre duas mandíbulas usando dois fios de aço. A barra branca = 2 mm. (B) uma microscópica imagem do segmento de artéria mesentérica de rato montado em painel (A). Barra preta = 0,5 mm. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 3
Figura 3: Representante traçados originais mostrando o processo de normalização e potencialização pela solução High-K+ . Após a segunda estimulação High-K+ , a experiência regular pode ser executada. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 4
Figura 4: rastreamento representativo de artéria mesentérica de rato que é contratada pela alta-K + solução e então relaxou, adicionando doses acumulativos de neoliensinine. Como as doses aumentaram, a força reduzida de forma dose-dependente clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Hipertensão é um desafio da saúde pública generalizada devido a suas complicações graves, incluindo cardiovascular e renal doenças16. Compreender a patogênese da hipertensão e explorar mais anti-hipertensivos drogas tornou-se uma tarefa urgente neste campo. Pressão arterial é gerado e mantido pela resistência periférica da circulação. De acordo com a lei de Poiseuille, as relativamente pequenas artérias geram uma grande proporção de resistência circulatória e servem como o produtor dominante de pressão arterial3,10. Assim, a medição de resistência de pequenas artérias, em vez de grandes artérias é mais adequada para estudos da pressão arterial. A tecnologia de myograph do fio é uma das melhores modalidades de estudar as funções fisiológicas das artérias pequenas-resistência e patogênese de doenças vasculares.

O sistema de myograph de fio pequeno vaso tem sido bem documentado em outros relatórios e foi usado para medir a contração do rato artérias mesentéricas8 e mouse artérias como a aorta9. Aproveitando-se da manipulação genética, uma variedade de modelos de doença e modelos de despistagem de drogas, o mouse tornou-se um animal modelo amplamente utilizado em muitos campos. Portanto, aqui, nós fornecemos um protocolo modificado deste método para a medição de contração de artéria mesentérica de rato. Neste relatório, Nós medimos com êxito a contratilidade das artérias mesentérica rato com modificações dos buffers de fundamentais e etapas de montagem. Muitos estudos sobre ex vivo vasocontractility medição usado soluções contendo NaHCO3, tais como soluções de Krebs, para imitar a solução salina fisiológica. No entanto, tais buffers de necessita de CO2 para ajustar o valor de pH durante a medição, resultando na produção de CaCO3. Selecionamos a solução H-T como o sistema de tampão e encontrado funcionou bem. Desde que a temperatura tem pouco efeito sobre oKum valor p de HEPES, o valor de pH da solução é convenientemente ajustado à temperatura ambiente e permanece inalterado em 37 ° C 17. Além disso, usamos Ca2 +-livre solução H-T quando orientando os fios através do lúmen do vaso a fim de evitar a constrição de vasos por Ca2 +. Outra modificação neste protocolo é o procedimento de montagem. Alguns relatórios8,9 e o manual do dispositivo5 recomendam guiando o segundo fio após o primeiro fio de fixação no maxilar. Encontramos que ele funciona melhor quando os dois fios são guiados através do lúmen do vaso antes de montar o vaso porque esse método pode reduzir possíveis danos do transdutor devido ao espaço limitado da câmara.

Apesar da grande reprodutibilidade do método, prestemos mais atenção a alguns passos fundamentais. O mais importante é evitar danos aos navios causada por fórceps e a tesoura. Durante a dissecção do vaso, o operador deve usar o fórceps suavemente quando esticando o tecido adiposo e usar a tesoura com cuidado ao cortar os tecidos conjuntivos. Além disso, o recipiente para a fixação de aperto deve ser feito com cuidado, e danos ao endotélio devem ser evitados quando orientando os fios porque o navio de endotélio danificado irá suscitar respostas anormais, por exemplo. , o vaso danificado mostra força aparente tensão após estimulação com acetilcolina, enquanto o navio normal mostra um efeito relaxante. A explicação para este fenômeno é que o endotélio danificado não pode produzir óxido nítrico corretamente. Observe que, no experimento envolvendo contração relacionados ao endotélio, o status de endotélio devem ser testado antes da medição de força. Além disso, deve também cuidadosamente montamos o navio sobre o tubarão porque o transdutor é facilmente danificado, se aplicada com uma força difícil. Finalmente, normalmente não usamos um valor de incremento constante sobre o micrômetro ao realizar a normalização. Inicialmente o valor do incremento é 30 ou 20 µm e 10 µm após a pressão eficaz atinge 11-12 kPa. Este método pode reduzir o tempo de normalização e pode impedir a distensão excessiva, atenuando, assim, danos dos vasos.

Embora nossa investigação centrou-se em artérias mesentéricas rato, este método também pode ser usado para a aorta, brônquios e outras pequenas embarcações, incluindo renal, cérebro e artérias pulmonares. Uma vez que este sistema inclui quatro canais, é conveniente para medição de quatro amostras paralelas simultaneamente. Além disso, uma cama vascular mesentérica inteira pode fornecer pelo menos quatro segmentos da artéria, assim é muito fácil de projetar diferentes grupos experimentais. De acordo com nossa experiência, cada segmento de artéria sobrevive pelo menos 4 horas e mantém boas respostas para a solução de High-K+ sobre pelo menos 6 repetições. Esta propriedade é extremamente útil para medições dos efeitos de várias adições de várias drogas de candidato. No entanto, também existem limitações para o sistema de myograph do fio. O experimento de myograph fio ex vivo só é capaz de medir vasocontractility isométrica, mas ele geralmente deve ser combinado com outras medições para análise complexa do navio.

Em resumo, nós descrevemos um método para a medição da contratilidade isomérica na artéria mesentérica rato usando um sistema multi fio myograph. Esse método pode ser usado para avaliar as funções do músculo liso vascular e ao afrouxamento da tela do músculo liso.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Os autores não têm nada para divulgar.

Acknowledgments

Agradecemos He de Qi de Wei de Dr. (Universidade de Soochow, Suzhou, China) e Dr. Yan Ning Qiao (Shaanxi Normal University, Xi ' an, China) pela assistência técnica. Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de ciências naturais da China (Grant, 31272311, 81373295 e 81473420) e o projeto financiado pela prioridade acadêmica programa desenvolvimento de Jiangsu instituições de ensino superior (Grant no. ysxk-2016).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Multi wire myograph system DMT 610-M
Stainless steel wire DMT 400447
Geuder dissection scissor DMT 400431
Dumont forceps DMT 300413
PowerLab/8SP ADInstruments ML785
Software ADInstruments LabChart 5
NaCl SigmaAldrich S5886
KCl SigmaAldrich P5405
CaCl2 SigmaAldrich C4901
MgCl2·6H2O SigmaAldrich M2393
D-Glucose SigmaAldrich G6152
HEPES Sangon Biotech A100511-0250
NaOH SigmaAldrich S8045
DMSO SigmaAldrich D2650

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bevan, J. A., Osher, J. V. A direct method for recording tension changes in the wall of small blood vessels in vitro. Agents and Actions. 2, (5), 257-260 (1972).
  2. Mulvany, M. J., Halpern, W. Mechanical properties of vascular smooth muscle cells in situ. Nature. 260, (5552), 617-619 (1976).
  3. Mulvany, M. J., Halpern, W. Contractile Properties of Small Arterial Resistance Vessels in Spontaneously Hypertensive and Normotensive Rats. Circulation Research. 41, (1), 19-26 (1977).
  4. Mulvany, M. J., Nyborg, N. An increased calcium sensitivity of mesenteric resistance vessels in young and adult spontaneously hypertensive rats. British Journal of Pharmacology. 71, (2), 585-596 (1980).
  5. Mulvany, M. J. Procedures for investigation of small vessels using small vessel myograph. Danish Myo Technology. Denmark. (2004).
  6. Halpern, W., Mulvany, M. J., Warshaw, D. M. Mechanical properties of smooth muscle cells in the walls of arterial resistance vessels. The Journal of Physiology. 275, 88-101 (1978).
  7. Michael, S. K., et al. High blood pressure arising from a defect in vascular function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, (18), 6702-6707 (2008).
  8. Bridges, L. E., Williams, C. L., Pointer, M. A., Awumey, E. M. Mesenteric artery contraction and relaxation studies using automated wire myography. Journal of Visualized Experiments. (55), (2011).
  9. del Campo, L., Ferrer, M. Wire Myography to Study Vascular Tone and Vascular Structure of Isolated Mouse Arteries. Springer. New York. (2015).
  10. Fisher, S. A. Vascular smooth muscle phenotypic diversity and function. Physiological Genomics. 42, (3), 169-187 (2010).
  11. Crowley, S. D., et al. Distinct roles for the kidney and systemic tissues in blood pressure regulation by the renin-angiotensin system. The Journal of Clinical Investigation. 115, (4), 1092-1099 (2005).
  12. Qiao, Y. N., et al. Myosin phosphatase target subunit 1 (MYPT1) regulates the contraction and relaxation of vascular smooth muscle and maintains blood pressure. The Journal of Biological Chemistry. 289, (32), 22512-22523 (2014).
  13. He, W. Q., et al. Role of myosin light chain kinase in regulation of basal blood pressure and maintenance of salt-induced hypertension. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 301, (2), H584-H591 (2011).
  14. Yang, G. M., et al. Isolation and identification of a tribenzylisoquinoline alkaloid from Nelumbo nucifera Gaertn, a novel potential smooth muscle relaxant. Fitoterapia. 124, 58-65 (2018).
  15. Slezák, P., Waczulíková, I., Bališ, P., Púzserová, A. Accurate Normalization Factor for Wire Myography of Rat Femoral Artery. Physiological Research. 59, (6), 1033-1036 (2010).
  16. Kearney, P. M., et al. Global burden of hypertension: analysis of worldwide data. The Lancet. 365, (9455), 217-223 (2005).
  17. Good, N. E., et al. Hydrogen Ion Buffers for Biological Research. Biochemistry. 5, (2), 467-477 (1966).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics