Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Encyclopedia of Experiments

Зебрафиш Оптогенетика: Активация генетически модифицированных соматосензорных нейронов для изучения личиночные поведенческие реакции

Overview

Это видео описывает оптогенетические методы, активируя генетически модифицированные соматосензорные нейроны и записывая полученную поведенческую реакцию с помощью высокоскоростной видеокамеры.

Protocol

1. Гора Личинки для экспериментов поведения

  1. Сделайте 1,5% низкорастучей агарозы в ddH2O и храните в тепловом блоке 42 градусов по Цельсию, чтобы предотвратить его затвердевение.
  2. Используя стеклянную пипетку Pasteur, перенесите одну из предварительно экранированных личинок в трубку с 1,5% низкой талой агарозой с как можно меньшей голубой/эмбриональной водой.
  3. Перенесите личинки в каплю агарозы на небольшую чашку Петри.
  4. Под рассеченным микроскопом положение личинки спинной вверх.
  5. Когда агароза затвердела, отрежьте агарозу тонким лезвием бритвы (#11 скальпелем), оставив клин агара вокруг всей личинки.
  6. Сделайте два диагональных разреза по обе стороны от желтка; заботиться, чтобы не ник личинки.
  7. Заполните область, окружающую агарозу, эмбрионом/голубой водой.
  8. Вытяните агарозу от ствола и хвоста личинки(рисунок 1).

2 . Подготовка высокоскоростной камеры и программного обеспечения для визуализации

  1. Установить высокоскоростную камеру на вскрытии области.
  2. Подключите камеру к компьютеру.
  3. Включите компьютер.
  4. Включите высокоскоростную камеру.
  5. Открытое программное обеспечение для видео/изображений (мы используем программное обеспечение для визуализации AOS и опишем процедуры его использования здесь, но другое программное обеспечение для визуализации одинаково приемлемо).
  6. Отрегулируйте настройки камеры соответственно(т.е. 1000 кадров в секунду (fps), 50% триггер буфера или других предпочтительных настроек).
  7. Начните запись.

3. Активировать одиночные нейроны используя лазер 473 nm

  1. Прикрепите стимулятор, лазерный и оптический кабель.
  2. Включите стимулятор.
  3. Установите стимулятор максимум до 5 вольт и продолжительность импульса 5 мсек.
  4. Включите лазер в соответствии с инструкциями производителя.
  5. Используйте рассечение микроскопа, чтобы распоить кончик оптического кабеля вблизи клеточного тела нейрона с выражением ChEF-tdTomato(рисунок 1).
  6. Доставка импульса синего света для активации сенсорного нейрона.
  7. Запись поведения с помощью высокоскоростной камеры, установленная на уровне 500 или 1000 кадров в секунду.
  8. Повторите эксперимент по желанию, ожидая 1 мин между каждой активацией, чтобы избежать привыкания. (Мы записываем как минимум три ответа на каждый нейрон).
  9. Чтобы освободить личинок, разохлайте агарозу типсами, заботясь о том, чтобы не травмировать животное. Это животное может быть разрешено развиваться дальше и процедура может быть повторена на более старой стадии, чтобы охарактеризовать развитие поведения. Эмбрион также может быть перемонтирован для конфокальной визуализации активированной клетки с высоким разрешением, чтобы соотнести поведение с клеточной структурой, как описано ниже.
  10. Передача личинки в культурную тарелку со свежей голубой/эмбриональной водой. Мы используем пластину из 24 колодец для отслеживания отдельных личинок.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Figure 1
Рисунок 1. Диаграмма смонтированных личинок зебры и репрезентативных нейронов, участвующих в личиночковой сенсорной реакции. Личинки зебры были частично смонтированы в 1,5% низкорастучую агарозу (представленную разбитыми линиями, окружающими рострльную часть личинки). Тригеминальный нейрон (в голове) и нейрон Рохон-Борода (в стволе) изображены красным цветом. Клетки Маутнера очерчены пунктирной линией в личинке. Оптический кабель (белый) показан расположенным над телом клетки нейрона RB.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Low Melt agarose  Sigma A9045 or equivalent
Petri dish (100x15 mm) Any Any
Non-Sterile scalpel blades Fine Scientific Tools, Inc. 10011-00 or equivalent
blue/embryo water 10 L ddH2O 0.6 g Instant Ocean 6 drops methylene blue
High speed camera AOS Technologies, Inc. X-PRI (130025-10) or equivalent
Glass Pasteur pipette Fisher 1367820B or equivalent (10-15 mm diameter)
473 nm portable laser Crystal lasers CL-473-050 or higher power, with TTL option
S48 Stimulator Astro-Med, Inc. Grass Instrument division S48K or equivalent
Tricaine Sigma A5040
200 μm optic fiber ThorLabs AFS200/220Y-CUSTOM Patch Cord, Length: 3 m, End A: FC/PC, End B: FC/PC, Jacket: FT030
50 μm optic fiber ThorLabs AFS50/125Y-CUSTOM Patch Cord, Length: 3 m, End A: FC/PC, End B: FC/PC, Jacket: FT030
24 culture plates Genesee 25-102 or equivalent

DOWNLOAD MATERIALS LIST

Tags

Пустое значение выпуск
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter