Summary

Ex vivo Dyrkning af Hel, Udviklingslande Drosophila Brains

Published: July 27, 2012
doi:

Summary

Denne artikel beskriver en fremgangsmåde, ved hvilken man kan efterligne<em> In vivo</em> Udvikling af<em> Drosophila</em> Champignon kroppen i en<em> Ex vivo</em> Kultursystem.

Abstract

Beskriver vi en fremgangsmåde til ex vivo dyrkning af hele Drosophila hjerner. Dette kan bruges som et kontrapunkt til kroniske genetiske manipulationer for at undersøge cellebiologi og udvikling af centrale hjernens strukturer ved at tillade akutte farmakologiske interventioner og levende billeder af cellulære processer. Som et eksempel på en teknik, fungerer inden i vores laboratorium 1 har vist, at en hidtil ukendt subcellulær rum ligger mellem de axonale og somatodendritisk rum axoner i Drosophila centrale hjernen. Udviklingen af dette rum, benævnt axon første segment (AIS) 2, viste genetisk at afhænge af neuron-specifikke cyclin-afhængig kinase, cdk5. Vi viser her, at ex vivo behandling af vildtype-Drosophila larvestadium hjerner med cdk5-specifikke farmakologiske inhibitorer roscovitine og olomoucin 3 bevirker akutte ændringer i actin organisation, ogi lokalisering af celleoverfladeprotein fasciclin 2, som efterligner de ændringer, der ses i mutanter, der mangler cdk5 aktivitet genetisk.

Et andet eksempel på den ex vivo kulturen teknik er i henhold til ombygning af forbindelserne i embryonale champignon kroppen (MB) gamma neuroner under forvandling fra larve til voksen. Det champignon krop er centrum for olfaktoriske indlæring og hukommelse i fluen 4, og disse gamma neuroner beskære deres axonale og dendritiske grene under puppe udvikling og derefter igen udvider grene på et senere tidspunkterne at etablere voksne innervation mønster 5. Beskæring af disse neuroner i MB har vist sig at forekomme via lokal nedbrydning af neurit grene 6, ved en mekanisme, der udløses af ecdyson, et steroid hormon, der virker ved den ecdyson-receptoren B1 7, og som er afhængig af aktiviteten af ubiquitin-proteasom system 6. Vores fremgangsmåde til ex vivo dyrkning kan Be bruges til at afhøre yderligere mekanisme udviklingsmæssige remodellering. Fandt vi, at i ex vivo-kultur indstilling gamma neuroner i MB gentaget processen udviklingsmæssige beskæring med et tidsforløb der svarer til in vivo. Det var imidlertid væsentligt, at afvente 1,5 timer efter puparium dannelse før eksplantation vævet, for at cellerne forpligte irreversibelt til metamorfose, dissektion af dyr ved begyndelsen af ​​pupariation ført til ringe eller ingen metamorfose i kultur. Således, med passende modifikation, kan ex vivo-kultur fremgangsmåde anvendes til at studere dynamisk samt steady state aspekter centrale hjerne biologi.

Protocol

A. Fremstilling af medier Fremstille komplette medier med filter-steriliserende Schneider Drosophila medium suppleret med 10% kalvefosterserum og 1% penicillin / streptomycin. Medier skal fremstilles frisk hver gang. Alternativt kan en frisk aliquot af præ-frosne medier optøs før brug. Forud for dyrkning, og der tilsættes 10 ug / ml insulin og 2 ug / ml ecdyson til mediet. Lægemidler blev fremstillet som koncentrerede lagre og fryses i små portioner. Optøede alikvoter blev …

Discussion

Kroniske genetiske manipulationer af væv struktur og funktion, herunder mutationer og ekspressionen af ​​transgener, typisk producere en kombination af umiddelbare effekter og sene indirekte konsekvenser, der kan være meget svært at adskille. Som supplement til genetiske metoder med farmakologi kan lette søgning i tidsforløbet bag en fænotype. For eksempel har dette været en stærk tilgang til dissekere bidrag forskellige cytoskeletale komponenter under spermatogenesen i Drosophila 10.</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke alle de medlemmer af vores laboratorium for deres råd, nyttige diskussioner og kommentarer til manuskriptet. Vi vil også en særlig tak til Marta Koch og Bassem Hassan for den fremragende forslag om, at vi vente 1,5 time APF før dissekere hjerner til dyrkning i remodeling eksperimenter. Vi vil også gerne takke NHGRI imaging mulighed for brug af deres konfokal mikroskop. Dette arbejde blev støttet af Basic Neuroscience Program for NINDS Egne Research Program, NIH (Z01 NS003106).

Materials

Name of Reagent Company Catalog Number Final Concentration
Schneider’s Drosophila Media Invitrogen 21720-024  
Fetal Bovine Serum (heat-inactivated) Invitrogen 10082-147 10%
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122 1%
Insulin Invitrogen 12585-014 10μg/ml
Ecdysone Sigma-Aldrich H5142 2μg/ml
Roscovitine Sigma-Aldrich R7772 100μM
Olomoucine Sigma-Aldrich O0886 100μM
Normal Goat Serum Invitrogen 50062Z 1%
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific M9501 1%
Formaldehyde Sigma-Aldrich D4551 4%
Triton-X 100 Fisher Scientific BP151 0.5%
Phosphate Buffered Saline Invitrogen 70011-044 1X
Vectashield Vector Laboratories H1000  
Millicell Cell Culture Inserts Millipore PI8P01250  
Multidish, 4 well Thermo Scientific 176740  
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11251-20  
Microscope Slides Fisher Scientific 12-544-7  
Cover Glass Fisher Scientific 12-548-5M  

References

  1. Trunova, S., Baek, B., Giniger, E. Cdk5 regulates the size of an axon initial segment-like compartment in mushroom body neurons of the Drosophila central brain. J. Neurosci. 31 (29), 10451-10462 (2011).
  2. Nakada, C., et al. Accumulation of anchored proteins forms membrane diffusion barriers during neuronal polarization. Nat. Cell Biol. 5 (7), 626-632 (2003).
  3. Schmid, G., Strosznajder, J. B., Wesierska-Gadek, J. Interplay between the p53 tumor suppressor protein family and Cdk5: novel therapeutic approaches for the treatment of neurodegenerative disease using selective Cdk inhibitors. Mol Neurobiol. 34 (1), 27-50 (2006).
  4. Kahsai, L., Zars, T. Learning and memory in Drosophila: behavior, genetics, and neural system. Int. Rev. Neurobiol. 99, 139-167 (2011).
  5. Lee, T., Lee, A., Luo, L. Development of the Drosophila mushroom bodies: sequential generation of three distinct types of neurons from a neuroblast. Development. 126, 4065-4076 (1999).
  6. Watts, R. J., Hoopfer, E. D., Luo, L. Axon pruning during Drosophila metamorphosis: evidence for local degeneration and requirement of the ubiquitin-proteasome system. Neuron. 38 (6), 871-885 (2003).
  7. Lee, T., Marticke, S., Sung, C., Robinow, S., Luo, L. Cell-autonomous requirement of the USP/EcR-B ecdysone receptor for mushroom body neuronal remodeling in Drosophila. Neuron. 28 (3), 807-818 (2000).
  8. Connell-Crowley, L., Le Gall, M., Vo, D. J., Giniger, E. The cyclin-dependent kinase Cdk5 controls multiple aspects of axon patterning in vivo. Curr. Biol. 10 (10), 599-602 (2000).
  9. Truman, J. W., Riddiford, L. M. Endocrine insights into the evolution of metamorphosis in insects. Annu. Rev. Entomol. 47, 467-500 (2002).
  10. Noguchi, T., Miller, K. G. A role for actin dynamics in individualization during spermatogenesis in Drosophila melanogaster. Development. 130, 1805-1816 (2003).
  11. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Mol. Biol. Cell. 16 (11), 5127-5140 (2005).
  12. Brown, H. L. D., Cherbas, L., Cherbas, P., Truman, J. W. Use of time-lapse imaging and dominant negative receptors to dissect the steroid receptor control of neuronal remodeling in Drosophila. Development. 133, 275-288 (2006).
  13. Williamson, W. R., Hiesinger, P. R. Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging. J. Vis. Exp. (37), e1936 (2010).

Play Video

Cite This Article
Prithviraj, R., Trunova, S., Giniger, E. Ex vivo Culturing of Whole, Developing Drosophila Brains. J. Vis. Exp. (65), e4270, doi:10.3791/4270 (2012).

View Video