Summary
Burada, ekrana yüksek yoğunluklu ekleme mutant kütüphanesi oluşturmak için mini-transpozon himar1 mariner dolayımlı mutagenez kullanılarak bir protokol açıklar izole edilmesi ve prototipik Pseudomonas aeruginosa'nın PAO1 in yeni alginat regülatörleri belirlemek.
Abstract
Pseudomonas aeruginosa yönlü metabolik yetenekleri olan bir Gram-negatif, çevresel bir bakteridir. P. aeruginosa kistik fibrozis (KF) hastalarda, kronik akciğer enfeksiyonları kuran bir fırsatçı bakteriyel patojendir. Ayrıca Mukus olarak bilinen alginat adlandırılan bir kapsüler polisakarit, bir aşırı antibiyotik kemoterapi ve bir ev sahibi savunma için planktonik hücrelerden daha fazla dirençli olan mukoid biyofilm oluşumunu teşvik eder. Buna ek olarak, sümüksü fenotipine nonmucoid gelen dönüşüm CF kronik enfeksiyonun başlaması için klinik bir belirteçtir. P. Alginate aşırı aeruginosa ağır hücresel enerji vergileri bir endergonic süreçtir. Bu nedenle, aljinat üretimi son derece P. düzenlenir aeruginosa. Alginat düzenleme daha iyi anlamak için, yeni bir aljinat regülatörü tanımlanması için mini-himar1 transposon mutagenez kullanılarak bir protokol açıklarbir prototipi gerginlik PAO1 s. Prosedürü iki temel aşamadan oluşmaktadır. İlk olarak, konakçı E. mini himar1 transpozonunda (pFAC) transfer alıcı P. içine coli SM10/λpir gentamisin ile takviye edilmiş Pseudomonas izolasyon agar levhaları üzerinde seçilmiştir, yüksek yoğunluklu bir ekleme mutant kütüphanesi oluşturmak için biparental konjügasyon yoluyla aeruginosa PAO1. İkincisi, biz ekranlı ve gentamisin kaset ve DNA dizilimi dışa dönük DNA primerleri kullanılarak ters PCR yoluyla ekleme sitesi haritasına mukoid koloniler izole. Bu protokolü kullanarak, (22 σ AlgT,) bir vahşi tip muca ana aljinat regülatör Algü için anti-sigma faktörü muca kodlayan ile gerginlik PAO1 iki roman aljinat regülatörleri, muce (PA4033) ve kinB (PA5484) belirledik . Bu, yüksek verimli mutajenez protokolü Colo değişime neden olan diğer hastalık oluşturma ilişkili genlerin tanımlanması için değiştirilebilirny morfolojisi.
Introduction
Alginat fazla üretmek için fırsatçı, Gram-negatif patojen Pseudomonas aeruginosa yeteneği bir biyofilm kurma yeteneğinde önemli bir faktördür. Alginatm aşırı üretimi genellikle Mukus adlandırılan bir fenotip. Kistik fibroz (CF) ile tutulmuş bireylerin balgam numune sümüksü koloni izolasyonu kronik enfeksiyonun göstergesidir ve doğrudan hastanın sağlığına 1 'de genel bir azalma ile ilişkilidir. Şu anda, bu anlaşılmaktadır P. aljinat düzenleme ve üretimi aeruginosa öncelikle iki operonlar oluşur. Arasında aljinat polimerin sentezi ve ihracat sorumludur (Alga - alg8 - alg44 - algK - alge - algG - algX - algL - Algı - algJ - - algF algD) ilk 12 genleri içeren aljinat bio-sentetik operonu, bir hücre dışı environme için periplazmant 2-5. İkinci operonu alternatif sigma faktörü Algü / T ile başlayan ve Muca, mucB ve mucD devam genlerin bir kümesidir. MucAB-D aljinat üretimi 6-8 negatif düzenleyicileri olarak sınıflandırılır ise Algü / T, pozitif bir düzenleyicisidir. Buna ek olarak, bu tür transkripsiyonel AlgB, AlgQ, Algr ve rpoN olarak düzenleyiciler, yanı sıra, transkripsiyon sonrası katabolik baskı ve kontrol, kinaz aktivitesi (KinB) ve zar içi proteoliz ile post-translasyonel değişikliği, aynı zamanda alginat dahil olmak gösterilmiştir düzenleme 9-14.
PFAC olarak bilinen mini himar1 transpozonunun vektör aslında Harvard Tıp Fakültesi'nde 15 Dr Mekalanos 'laboratuarda yaratılmış. PFAC plasmidi, iki 27 baz arasında ters çevrilmiş tekrarlar ve ortasında bir gentamisin direnç kaseti (aacC1: 534 bp) ile çevrili bir transpoze edilebilir elemanın oluşur hyperact kodlayan bir genmariner transposaz 16 ve bir gen kodlayan β-laktamaz (bla) (Şekil 1) ive. DQ366300 13: pFAC ve transpoze edilebilir eleman için sekans bilgileri, GenBank erişim numarası mevcuttur. PFAC olarak, ters PCR kullanılarak kromozomal sokma yerinin tanımlanması için kullanılan aacC1 geni arkasındaki bir çoklu klonlama bölgesinin (MCS) bulunmaktadır. Mini himar1 transpozonunda kullanarak önemli bir avantajı belirli bir konak faktörleri aktarılması (mutagenez) için gerekli olmasıdır. Ayrıca, P. genom genelinde bulunan TA dinükleotid ekleme siteleri yüksek bolluk var aeruginosa. Sırasıyla, genomları, örneğin, TA dinükleotid ekleme siteleri PAO1 yılında 94.404 ve 100.229 kez oluşur (6264404 bps, GenBank erişim numarası NC_002516.2) ve PA14 (GenBank erişim numarası NC_008463 6537648 bps). Çünkü genom, mini himar1 TA dinükleotidin bolluğu himar1 P. genomu içinde herhangi bir gerekli olmayan gen içine entegre olabilir aeruginosa. Bu, PAO1 genomuna açık okuma çerçevesinin başına yaklaşık 18 TA ekleme bölgelerini içerir.
Burada, P. Mukus sahip yeni regülatörleri belirlemek için bir mini transpozon himar1 dolayımlı mutagenez kullanılarak bir protokol açıklar aeruginosa. Daha özel olarak, E. biparentally bir mini transpozon içeren himar1 pFAC vektör konjüge nonmucoid prototrofik suşu PAO1 içine coli SM10/λpir. Transpozon genomuna entegre sonra, alıcı suşu Pseudomonas izolasyon agar E büyümesini inhibe eder (PIA) triklosan ihtiva eden kültürlenir coli. Dolayısı ile de, mutantlarının bir kütüphane
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1.. Bakteriyel Suşlarında hazırlanması ve Biparental Konjugasyon
- E. aşılamak 37 ° C'de gece boyunca bir çalkalama inkübatöründe gentamisin ve yerine 15 ug / ml 'si ile desteklenen Luria Broth'ta (LB), 5 ml coli SM10/λpir/pFAC
- P ismi aşılamak aeruginosa ırk LB 5 ml PAO1 ve bir çalkalama inkübatör içinde bir gece boyunca bir yer 42 ° C
- OD gecede kültürlerin 600 ölçmek ve PAO1 ve E. eşit miktarda karıştırın coli pFAC son hacim 1-1.4 ml arasında olduğu şekilde.
- 5 dakika boyunca 6000 x g'de santrifüjleyin karışımı ile gerçekleştirilmektedir.
- Bu arada, konjugasyon için LB plakaları kuru: 10-15 dakika boyunca 37 ° C'de inkübatör içinde açık plakaları bırakın.
- Hücre karışımından süpernatan 50 ul ama çıkarın.
- Tek bir küçük damlacık kuru LB plakası üzerine yüzer ve pipet kalan 50 ul hücre pelletini.
- Dikkatle (impo kuruması için bir davlumbaz plaka koyunRTANT Not:) plaka yayılmış hücreler, bu anlamlı konjugasyon etkinliğini azaltacaktır izin vermeyin.
- Damlacık kuruduktan sonra, LB plaka ters çevirin ve 4-6 saat boyunca 37 ° C'de inkübe edin.
- Hücre karışımı inkübe edilirken, gentamisin, 300 ug / ml 'si ile büyük (150 OD x 15 mm) PIA plakaları hazırlar. Kullanmadan önce, 15-20 dakika boyunca 37 ° C'de bir inkübatör içinde yerleştirilerek kalan nemi çıkarmak.
- Hücre karışımının kuluçka tamamlandıktan sonra steril bir aşılama döngü kullanarak hücreleri toplamak ve 1 ml LB ve girdap veya pipet ihtiva eden bir mikrosantrifüj tüpü içinde, iyice karıştırın.
- Büyük PIA levhalar 300 ug / ml gentamisin içeren hücreleri üzerine düzgün biçimde yayılmış. (ÖNEMLİ: vb), 500 ul: 10 ul, Levha 2: 50 ul, Levha 3: 100 ul, Plate 4 Bu adım için, bu örneğin Plate 1 (plakalarını ayırmak için hücre karışımı hacimleri artmaktadır eklemek için en iyi .
- 37 ° C'de gece boyunca inkübe° C.
2. Algılama ve Mucoid Kolonileri İzolasyonu
- Inkübatör plakaları kaldırmak ve mukoid koloniler için inceleyin.
- Küçük tabaklar PIA ve gentamisin'den 300 ug / ml (OD 100 x 10 mm) üzerine, izolasyonu için tek bir koloni sümüksü ve çizgi izole edin.
- 37 ° C de bir gece inkübe
- Önceki gecede kültüre adımı 2.2 tekrarlayın.
- Tekrar mukoid izolatın stabilitesini belirlemek için 2.2-2.4 adımları iki kere daha.
- Nihai izole aşamasından sonra, tek bir koloni ile sümüksü LB 4,5 ml aşılamak ve 37 ° C'de gece boyunca çalkalayıcıda inkübe
- Ertesi gün, her mükoid mutant için etiket 3. mikrosantrifüj tüpleri.
- Genomik DNA ekstre etme ve transpozon ekleme sitesinin tanımlanması için 2 boruların (Protokol: 3) içine bir gece boyunca kültür iki 1.25 ml'lik numuneler hazırlayın.
- Ayrıca, bir appropriat içine 1 ml gecede kültür pipetleyerek her mukoid mutant arşivi% 10 kaymağı alınmış süt ihtiva eden eşit hacimde ely etiketli cryovial. -86 ° C'de saklayın
3. gDNA sınırlama sindirimi ve ligasyon
- Istediğiniz yöntemi (örn.. Fenol-kloroform, spin kolon, vb) kullanılarak sümüksü mutanta gDNA ayıklayın.
- GDNA konsantrasyonunu belirlemek, sınırlama endonükleaz SalI 2 ug ile 1 ul bir toplam sindirmek, büyükbaş hayvan serum albümini, Sall enzim tamponu (100 mM NaCl, 50 mM Tris-HCI, 10 mM MgCI2, 5 ul 0.5 ul , 1 mM Dithiothrietol (DTT), oda sıcaklığında pH 7.9), 50 ul toplam hacim elde etmek dH 2 O uygun hacmi.
- 37 ° C de bir gece DNA Digest (Dikkat:. Kısıtlama enzimi verimliliğine bağlı olarak, bir gece boyunca sindirmek için ek bir 1 ul ekleyin ve 1-2 saat boyunca 37 ° C'de inkübe etmek gerekli olabilir Bu, bir gece boyunca özetle ek olarak).
- Dige arındırınHer tercih edilen bir yöntem (örneğin, agaroz jel saflaştırma spin kolonları) ve tamponun 25 ul ile elüte kullanılarak sted DNA.
- ~ 10-20 ng / ul tercih edilen bir konsantrasyon, ligasyon tamponu, 1.5 ul (330 mM Tris-asetat pH 7.5, 660 mM potasyum asetat, 100 mM magnezyum asetat, 5 mM ile saflaştırılmış DNA 11 ul karıştırılması ile sindirilmiş DNA ligate DTT), 100 mM ATP, 1.5 ul, 1 ul DNA ligaz.
- Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe karışımı, ve daha sonra 70 ° C'de 15 dakika boyunca inkübe edilerek enzimi inaktive (Not: daha uzun süre oda sıcaklığında karışımın, ligasyon başarısını arttırabilir.)
4. Ters PCR (RAPD'yi) ve Dizi Analizi
- Ileri ve geri primerler aşağıdaki ve koşulları termodöngüleme kullanarak ligasyonu ürün üzerinde IPCR gerçekleştirin:
-İleri Primer (Gm3OUT): GGGCATACGGGAAGAAGTGA
-Ters Primer (Gm5OUT): GACTGCCCTGCTGCGTAACA
Termosikler Condiular:
1.. 1 dakika boyunca 94 ° C.
2. 1 dakika boyunca 94 ° C.
3. 2 dakika süreyle 58 ° C.
4. 2 dakika boyunca 72 ° C.
5. 8 dakika boyunca 72 ° C.
6. 10 ° C tutun.
Tekrar 34 döngüleri için 2-4.
(NOT: AMPLİFİYE RAPD'yi ürünler 4 ° C'de saklanabilir) - Başarılı RAPD'yi amplifikasyon onaylamak için agaroz jel elektroforezi gerçekleştirin.
- Gm3OUT ve Gm5OUT primerleri kullanılarak RAPD'yi ürün üzerinde sıralama yapmak. Ekleme site ve himar1 yönünü dışarı eşleştirilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Şekil 1 'de gösterildiği gibi, mini-transpozon himar1 mariner vektörü, pFAC, TA yerleştirme siteleri ile σ 70 bağımlı promoteri ve bir çok klonlama bölgesinin (MCS) ile aacC1 gentamisin direnç kasedi komşu olan iki 27 bp ters çevrilmiş tekrar içerir. Buna ek olarak, vektör pFAC yüksek ölçüde aktif himar1 transposaz, β-laktamaz (bla) ve tra aktarma operon'u şifreleyen genleri içerir. TA yerleştirme siteleri P. genomuna entegrasyon için etkin bir imkan aeruginosa suşları. Belirlenmesi ve sümüksü mutantlar seçiminde doğruluk aljinat düzenleme ile ilgili gen loci belirlenmesinde genel başarısı için kritik öneme sahiptir. Sümüksü ve nonmucoid izolatların örnekleri Şekil 1 'de gösterilmektedir.
Daha doğru bir sümüksü mutantlann tespit edilmesi için, tamamlanan çekimleri birden çok büyük levhaların (150 mm) üzerine, kaplama gerekir. Cell karışımları steril PBS içinde yeniden süspansiyona alınmış ve PIA levhaları artı gentamisin (300 ug / ml) üzerine yayılarak kaplama olmalıdır. PBS içinde hücre karışımı seyreltileri / plaka 1.000-3.000 koloniler arasında olmasının amacı ile plakaları üzerine yayılır. Yukarıdaki protokole dayanarak, her çekimleri 15-20 büyük plakaları üzerinde ~ 20.000 mutantların bir banka üretmek gerekir. 37 ° C'de plakalar için en uygun kuluçka süresi 24-36 saat arasındadır. Nedeniyle aljinat aşırı üretimi, mukoid koloni açık renkli veya beyaz ve krem ya da yapışkan bir görünüme sahip olmalıdır. Sümüksü koloniler ayırt edilemez ise, daha sonra oda sıcaklığında ek 24-36 saat boyunca inkübe edilir. Sümüksü mutantlar iyi gentamisin ile normal bir PIA plaka üç kez geçirilerek izole edilmiştir. Bu süre boyunca, mukoid fenotip istikrarı belirleyebilirsiniz. Arıtılmış sümüksü koloni IPCR ile genomik DNA çıkarma ve genlerin tanımlanması için kullanılacaktır. RAPD'yi ürünleri agaroz jeli el ile görselleştirilebilirectrophoresis (Şekil 2). Eğer başarılı olursa, uygun boyutta bir tek Amplikon olmalıdır. Sınırlama hazmı ve ligasyon uğramıştır PAO1 genomik DNA, bir negatif kontrol olarak da kullanılabilir. Şekil 2'de gösterildiği gibi, PAO1 içinde RAPD'yi amplikonun bir olmaması, ancak biz, sırasıyla, bir tek ~ 1400 bp'lik amplikonu ve PAO1-ve2 ve PAO1-VE13 in ~ 1000 bp tespit vardır. Bu amplikonların büyüklüğü PAO1-ve2 ve dahili PAO1-VE13 in PA5484 (kinB) in PA4033 (muce) promotör bölgesi içine himar1 denizci transpozon yerleştirilmesi karşılık gelir. RAPD'yi amplikonların DNA dizilemesi GM5OUT astar ile gerçekleştirilmelidir. Hedef dizisini analiz etmek için Basic Local Alignment Search Tool (BLAST) kullanırken, pFAC ve TA dinükleotidin 5 'ucunda ters tekrar P. genomundaki himar1 ekleme yeri ve yönü işareti aeruginosa (Şekil 2 g ").
Şekil 1. Mini himar1 mariner transposon vektörü, pFAC ve mukoid mutantların bir temsili şematik diyagramı. PFAC plazmid seçimi için iki ters çevrilmiş tekrarlar ile himar1 denizci transpozon elemanı ve bir gentamisin direnç kasedi (aacC1) içermekte olup, bu hiperaktif himar1 transposaz kodlayan bir gen ve bir koşullu replikon. Mini-himar1 mariner transposon P. yüksek yoğunluklu sokulmasına neden olabilir çünkü alt tabaka (TA dinükleotid) bolluğu aeruginosa. İki P. genomlarında TA dinükleotidleri sayısı aeruginosa suşları, PAO1 ve PA14 kırmızı gösterilmiştir. Kırmızı oklar, bu yordamı kullanarak tanımlanan sümüksü mutantlar gösterir.om/files/ftp_upload/51346/51346fig1highres.jpg "target =" _blank "> bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için buraya tıklayınız.
Şekil 2. PAO1 (negatif kontrol), PAO1-VE2 (1396 bp) ve PAO1-VE13 (999:. İleri Gm3OUT ve Ters Gm5OUT astar ve 1 kB merdiven kullanarak RAPD'yi büyütmesi Temsilcisi RAPD'yi ve sıralama sonuçları A)% 1 agaroz jel elektroforezi bp). P. üç soylarından genomik DNA aeruginosa ekstre edilmiş ve kendi kendine bağlanmasını takiben Sall sınırlama enzimleri ile sindirilmiştir. Metin. B) 'de tarif edildiği gibi kapalı dairesel DNA IPCR için şablon olarak kullanılmıştır PAO1 referans genom ile karşılaştırmalı dizi analizi, himar1 Marin kesin konumunu belirlerPAO1-ve2 ve PAO1-VE13 in er transpozon ekleme. Kırmızı etiketli sekans pFAC içinde ters tekrarın 5 'ucunu gösterir. TA sokma alanın altı edildi. Bu iki diziden bir BLAST araması PAO1 genomu içindeki himar1 transpozonun tam konumu ve yönlenişinin eşler.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu yöntem, bu değişiklikler ile başka Pseudomonas türleri de kullanılabileceğini belirtmek önemlidir: K. inkübe fluorescens ve P. 30 ° C'de putida ve P. 42 ° C 'de stutzeri, P. stutzeri gentamisin 150 ug / mL 'si ile takviye edilmiş LB levhaları üzerinde kültür olmalıdır; adım 1.11, P. stutzeri hücreler LB 500 ul yerine 1 ml transfer edilmelidir. Ayrıca, bu protokol için iki kritik adımlar vardır. İlk olarak, alıcı suşu, uygun bir sıcaklıkta kültürlenir olmalıdır. Örneğin, PAO1 rekombinasyon 15 sıklığını artırmak için 42 ° C'de inkübe edilmelidir. Alıcı soy doğru sıcaklıkta kültürlendi değilse eğer mutant kütüphanesinin etkinliği önemli ölçüde azaltılmıştır. İkinci olarak, yüksek ölçüde tekrarlanabilir RAPD'yi, ancak gDNA tamamen dairesel kovalent olarak kapalı bir DNA DNA ligasyonu yoluyla yapılabilir emin olmak için sindirilmiştir gerekir. BenBu doğru yapılır f, RAPD'yi ürün, agaroz jel üzerinde bir grup olarak görünecektir. Birden fazla bantlar ayrılır, bunlar birden çok eklemeler mutant var olduğunu göstermektedir. Biz RAPD'yi sonuçları Önemle Southern Blot sonuçları (~% 100) ile ilişkili olduğu bulundu. Bu yüzden, mutant RAPD'yi başına eklemelerin sayısı için Southern blot analizi yerine kullanılabilir.
PFAC mini-transpozon himar1 mariner herhangi transkripsiyon terminatörü vardır ve gentamisin kasetinin ekspresyonunu tahrik eden bir σ 70 bağımlı promoteri ile düzenlenir. Biz himar1 ekleme konumu ve yönelimi, belirli bir genin düzenlenmesi üzerindeki etkileri farklı olduğu görülmektedir. Bir genin ortasında entegre edildiğinde genler inaktive edilmiştir. Bunun bir örneği, bir dönüştürme PAO1 (PAO1-VE13) 11 Mukus neden duyusal kinaz geni kinB (PA5484) inaktivasyonu olan. Ayrıca, u da yapabilirsinizgenin ekspresyonunu düzenleyen p-, geni ile aynı doğrultuda yukarı kodlama bölgesinin takılıysa. Bunun bir örneği, himar1 muce (PA4033) 13 ekspresyonunu tahrik PAO1-VE2 vardır. Bu protokolün sınırlama büyüme için önemli olmayan sadece düzenleyici genler tespit edilebilir olmasıdır. Buna ek olarak, bu yöntem kullanılarak tanımlanmış olan mukoid mutantlan doğal olarak oluşabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazar Hongwei D. Yu Baş Bilim Görevlisi ve Progenesis Teknolojileri kurucularından, LLC.
Acknowledgments
Bu çalışma, Biyomedikal Araştırma Mükemmellik Batı Virginia IDeA Ağı Ulusal Havacılık ve Uzay Dairesi Batı Virginia Uzay Grant Konsorsiyumu (NASA WVSGC), Kistik Fibrozis Vakfı (CFF-YU11G0) ve NIH P20RR016477 ve P20GM103434 tarafından desteklenmiştir. Biz bu çalışma ile teknik yardım için Vonya M. Eisinger teşekkür ederim.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Luria Broth | Difco | 240230 | via Fisher Scientific |
| Pseudomonas isolation agar | Difco | 292710 | via Fisher Scientific |
| Small Plates (100 O.D. x 10 mm) | Fisher Scientific | 08-757-13 | |
| Large Plates (150 O.D. x 15 mm) | Fisher Scientific | 08-757-14 | |
| Glycerol | Fisher Scientific | BP229-4 | |
| Benchtop Shaking Incubator | New Brunswick Scientific | Innova 4080 | shake at 200 rpm |
| Cabinet Incubator | VWR | 1540 | |
| Benchtop Microcentrifuge | Sorvall | 75-003-287 | via Fisher Scientific |
| SmartSpec Plus Spectrophotometer | Bio-Rad | 170-2525 | or preferred method/vendor |
| Diposable Inoculation Loops | Fisher Scientific | 22-363-597 | |
| 1.5 ml Microcentrifuge Tubes | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| 2.0 ml Cryogenic Vials | Corning | 430659 | via Fisher Scientific |
| 15 ml Tubes | Fisher Scientific | 05-539-12 | |
| Skim Milk | Difco | DF0032-17-3 | via Fisher Scientific |
| DNeasy Blood and Tissue (250) | Qiagen | 69506 | or preferred method/vendor |
| QIAquick PCR Purification Kit (250) | Qiagen | 28106 | or preferred method/vendor |
| QIAprep Spin Miniprep Kit (250) | Qiagen | 27106 | or preferred method/vendor |
| FastLink II DNA Ligation Kit | Epicentre Technologies | LK6201H | via Fisher Scientific |
| Accu block Digital Dry Bath | Labnet | NC0205808 | via Fisher Scientific |
| Sal1, restriction endonuclease | New England BioLabs | R0138L | |
| EasyStart Micro 50 | Molecular BioProducts | 6020 | via Fisher Scientific |
| Taq DNA Polymerase | New England BioLabs | M0267L | |
| iCycler, Thermocycler | Bio-Rad | 170-8740 | |
| LE agarose | Genemate | 3120-500 | via Fisher Scientific |
| Gentamycin Sulfate | Fisher Scientific | BP918-1 | |
| 2.0 ml Cryogenic Vials | Corning | 430659 | via Fisher Scientific |
References
- Govan, J. R., Deretic, V. Microbial pathogenesis in cystic fibrosis: mucoid Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cepacia. Microbiol. Rev. 60, 539-574 (1996).
- Chitnis, C. E., Ohman, D. E. Genetic analysis of the alginate biosynthetic gene cluster of Pseudomonas aeruginosa shows evidence of an operonic structure. Mol. Microbiol. 8, 583-593 (1993).
- Franklin, M. J., et al. Pseudomonas aeruginosa AlgG is a polymer level alginate C5-mannuronan epimerase. J. Bacteriol. 176, 1821-1830 (1994).
- Franklin, M. J., Ohman, D. E. Mutant analysis and cellular localization of the AlgI, AlgJ, and AlgF proteins required for O acetylation of alginate in Pseudomonas aeruginosa. J. Bacteriol. 184, 3000-3007 (2002).
- Deretic, V., Gill, J. F., Chakrabarty, A. M. Gene algD coding for GDPmannose dehydrogenase is transcriptionally activated in mucoid Pseudomonas aeruginosa. J. Bacteriol. 169, 351-358 (1987).
- Mathee, K., McPherson, C. J., Ohman, D. E. Posttranslational control of the algT (algU)-encoded sigma22 for expression of the alginate regulon in Pseudomonas aeruginosa and localization of its antagonist proteins MucA and MucB (AlgN). J. Bacteriol. 179, 3711-3720 (1997).
- Boucher, J. C., Schurr, M. J., Yu, H., Rowen, D. W., Deretic, V. Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis: role of mucC in the regulation of alginate production and stress sensitivity. Microbiology. 143, 3473-3480 (1997).
- Martin, D. W., Holloway, B. W., Deretic, V. Characterization of a locus determining the mucoid status of Pseudomonas aeruginosa: AlgU shows sequence similarities with a Bacillus sigma factor. J. Bacteriol. 175, 1153-1164 (1993).
- Damron, F. H., Goldberg, J. B. Proteolytic regulation of alginate overproduction in Pseudomonas aeruginosa. Mol. Microbiol. 84 (4), 595-607 (2012).
- Browne, P., Barret, M., O'Gara, F., Morrissey, J. P. Computational prediction of the Crc regulon identifies genus-wide and species-specific targets of catabolite repression control in Pseudomonas bacteria. BMC Microbiol. 10, 300 (2010).
- Damron, F. H., Qiu, D., Yu, H. D. The Pseudomonas aeruginosa sensor kinase KinB negatively controls alginate production through AlgW-dependent MucA proteolysis. J. Bacteriol. 191, 2285-2295 (2009).
- Damron, F. H., et al. Analysis of the Pseudomonas aeruginosa regulon controlled by the sensor kinase KinB and sigma factor RpoN. J. Bacteriol. 194, 1317-1330 (2012).
- Qiu, D., Eisinger, V. M., Rowen, D. W., Yu, H. D. Regulated proteolysis controls mucoid conversion in Pseudomonas aeruginosa. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 8107-8112 (2007).
- Schurr, M. J. Which bacterial biofilm exopolysaccharide is preferred, Psl or alginate. J. Bacteriol. 195, 1623-1626 (2013).
- Wong, S. M., Mekalanos, J. J. Genetic footprinting with mariner-based transposition in Pseudomonas aeruginosa. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 10191-10196 (2000).
- Lampe, D. J., Akerley, B. J., Rubin, E. J., Mekalanos, J. J., Robertson, H. M. Hyperactive transposase mutants of the Himar1 mariner transposon. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 11428-11433 (1999).
