Introduction
乳腺癌细胞转移到骨髓病前是可检测1，只要小的肿瘤发展的血管2,3。转移过程是快，但效率不高。细胞迅速进入新的血管，在数百万个4天，但行程到远处器官5几年生存。尽管如此，一些微生存在骨和可以发现以单细胞或在从初诊患者1骨髓抽吸小细胞团块。这些细胞抗蚀辅助化疗，其施用于消除他们6的根本目的。这种阻力被赋予的，基本上，通过存活通过与骨髓微7,8-相互作用信令发起的。微转移可以在大约三分之一的妇女局部乳腺癌的发现，代表了生存的独立指标时，单因素分析分析9。一些microme转移瘤是开始增长，但复发模式依赖于细胞类型。例三阴性乳腺癌往往1〜4年之间复发，这表明穷人控制了休眠状态。其他类型的细胞，包括ER / PR +细胞，可以保持休眠长达20年，复发10的稳定，连续速率。而在ER +和ER-乳腺癌细胞系和肿瘤之间休眠的 基因表达签名的差异反映了不同的休眠潜力11，与骨髓基质相互作用可能代表到休眠一个显著的贡献。
休眠体内的研究是非常困难的，因为微是罕见的，是由寡不敌众造血细胞超过10倍6。因此，相关模型必须产生提供体外数据可以建议机制和产生体内检验的假设。一些休眠模式，包括MATHEmatical车型12,13， 在体外模型7,8,14,15， 体内异种移植模型16， 在体外组合和异种移植模型17,18和自发肿瘤和转移模型19，已经取得了一些见解，癌细胞休眠20 。这些模型有其自身的局限性和本身用于产生有关的分子信号和支配休眠到在多种生物相关模型中进行测试的相互作用的假设主要是有用的。
界定休眠的 分子机制，以导致在周期停滞，再分化和治疗抗性和机制的微环境造成复发的ER +细胞的相互作用的总体目标，我们开发了提供选择的相关内容的体外模型基质微环境7。这种模式，而在其康波相对稀疏堂费，是足够坚固，以允许研究者得出影响休眠显著职能特定的分子机制。这些实验产生可在体内直接测试假设。该模型依赖于我们证明是有关休眠中的几个关键要素。它们包括在一个克隆的密度，其中它们的相互作用是主要与基质和介质的可溶性组分，纤连蛋白基质和碱性成纤维细胞生长因子的存在下，用雌激素 - 依赖的乳腺癌细胞中，细胞培养物（FGF-2）在介质中。
我们特征在于支配系统在体外机制，包括诱导细胞周期阻滞由FGF-2的21中 ，通过TGFβ22介导的，生存通过PI3激酶7,8和ERK 8和形态发生分化信令上皮表型，这依赖于RhoA的失活，整45;5β1上调和间质纤维连接蛋白生存7,15结扎（ 图1）。 FGF-2对MCF-7细胞的体外细胞周期的影响开始在浓度至少一个对数低于10毫微克/毫升21,23。基本原理是基于FGF-2的表达治乳腺导管形态，循环扩张和衰退在许多哺乳动物系统24-27的时间控制。我们证明了FGF-2的诱导分化，包括导管形态发生在3D培养28，而FGF-2的表达通常失去了与人类肿瘤29的恶变。 FGR1的表达仍然完好无损调查中的29和MCF-7细胞乳腺癌继续对所有4 FGF受体30。在休眠的 上下文中，FGF-2是由出口和重沉积在骨髓基质31,32在那里它在造血干细胞33的保存功能。我们DEMonstrated的FGF-2诱导ER +乳腺癌细胞纤维连接蛋白基质，还含有丰富的骨髓，它诱导分化形态培养7休眠状态。在模型中，乳腺癌细胞的生长抑制，灭活的Rho一种贯穿RhoGap GRAF，再分化到上皮表型和重新表达整联α5β1lost与恶性进展。它们结合纤连蛋白通过整合素α5β1和激活存活信号使得它们对细胞毒药物治疗7,8,15（ 图1）的抵抗力。卢的GTP酶类的抑制先前已证明诱导休眠型34。
在这里，我们将概述的具体程序，将允许调查人员建立模型，并研究规范ER +乳腺癌细胞的休眠特异的分子和细胞机制。在这里介绍的实验来说明使用该模型的我们靶向PI3K途径（ 图1B）与Akt的抑制剂和PI3K抑制剂和Rho家族（ 图1B）与泛Rho抑制剂和作为Rho激酶（ROCK）抑制剂的所有成员。
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Protocol
1.克隆分析
- 制备的雌激素依赖性乳腺癌细胞系的单个细胞悬浮液使用步骤MCF-7和T47D细胞概述如下
- 从10cm的组织培养皿这是不超过50％的汇合与MCF-7或T-47D细胞吸出培养基（DMEM / 10％热灭活的胎牛血清/谷氨酰胺和青霉素/链霉素）。冲洗用PBS。孵育胰蛋白酶0.25％/ 2.21毫摩尔EDTA溶解在DMEM高葡萄糖，在37℃下进行1-4分钟。
- 检查细胞在相差显微镜下1分钟的间隔，以确保单细胞分布。悬浮细胞用2毫升吸管吹打上下数次以破坏细胞 - 细胞接触，以实现一个几乎不变的，单细胞的状态。
- 继续培养细胞中的胰蛋白酶在37℃至4分钟，如果你只有2分钟的潜伏期后观察细胞团块。如果他们仍然附着到e不要使用这些细胞克隆研究ACH胰酶消化后4分钟，因为其他错误将在菌落数收益率被引入。
注意：如果细胞结块，形成的菌落的数量将反映细胞比孵育数少的乘积。如果细胞过度胰蛋白酶，它们的克隆潜力可能会减少。 - 制备1500个细胞/ ml培养基的单细胞悬浮液为24孔板，或更小，（+ 500细胞/ ml，这取决于细胞类型或通道数），由在一个主管含有所需的整个卷系列稀释所有实验中的变量。
注意：我们的目标是一个最终细胞800细胞/ cm 2（约500至1100个细胞/ cm 2的范围内）的密度。我们的目标是产生大约100±50菌落，这允许相对容易计数，防止拥挤并允许足够菌落导致显著统计差异，当菌落增加或减少实验perturba系统蒸发散。
- 在克隆形成密度使用步骤细胞培养下文概述
- 孵育细胞一式四份孔24以及纤连蛋白包被的板在1500细胞的产克隆密度/孔从1500个细胞/ ml的主单细胞悬浮液管。通过制定3毫升和分配在每2个孔1毫升介质磨碎含有细胞用5毫升吸管的介质。
注：纤连蛋白包被的平板应该购买预涂覆从商业供应商。控制的质量的外涂层板，自动化过程导致不平坦的表面不适合于该测定。 - 吹打向上和向下混合悬浮液5毫升吸管，吸取涨3 mL细胞悬液，并填写2井每1ml。填补只2孔中从一个移液管的任何一个时间。再次归还剩余量在吸管的细胞悬液在主管，悬浮细胞吹打向上和向下，并拟定另有3毫升填补另外2 WELLS与每1ml。
注：主管的连续混合是必要的，因为细胞会不断沉降。制订足够的体积，以填补仅2个孔是必要的，以类似的细胞数增加至每孔，因为细胞中的吸移管沉淀为好。 - 工作迅速分发大量细胞，因为使细胞坐在悬浮液在室温和CO 2浓度将调节其克隆生成电位（未发表意见）。
- 吹打成井菌落检测的行为在优化细胞的空间分布。这样做通过缓慢吹打含有最终细胞浓度入井的中间暂停。不要使板进一步动作之前，细胞沉淀在底部。不要摇动板，因为圆形混合将有效地离心细胞井创造高细胞密度和不可数合流菌落周边6天。
注意：不要混用，除非必要，因为这比没有混合不太理想，在所有引进的细胞悬液卷后。如果需要以混合细胞，通过移动板来回在垂直的方向上，而在于在一个平面上这样做。 - 孵育细胞，在37℃，5％CO 2，而不更换培养基为6天。在一个6后以及天少量细胞不会显著影响营养或细胞因子组合物也没有原始介质的pH。
- 设计该试验的时间过程如下：孵育细胞上在第1天纤连蛋白涂覆的基质替换现有介质用1ml新鲜培养基或含有新鲜培养基的FGF-2 10上如下面第6天0天染色细胞纳克/毫升1.4）。 130进行3天的任何实验扰动，如下）。
- 孵育细胞一式四份孔24以及纤连蛋白包被的板在1500细胞的产克隆密度/孔从1500个细胞/ ml的主单细胞悬浮液管。通过制定3毫升和分配在每2个孔1毫升介质磨碎含有细胞用5毫升吸管的介质。
- 分子信号或粘附分子的设立实验扰动
- 在第3天，添加10056;升含有扰动剂的最终预期浓度的10倍，以1毫升培养基中的孔中的溶液。不要混用。继续孵育细胞在37℃，5％CO 2的额外的3天。
注：扰动剂可以包括多种抑制剂和粘附分子，受体或其它表面蛋白，细胞内信号通路，分子，因子，辅因子或结构蛋白的抑制剂的阻断剂，这可能在支持休眠状态中起作用。 - 第6天色斑殖民地，如下所示。
- 在第3天，添加10056;升含有扰动剂的最终预期浓度的10倍，以1毫升培养基中的孔中的溶液。不要混用。继续孵育细胞在37℃，5％CO 2的额外的3天。
- 染色殖民地
- 6天后在培养用新鲜的0.1％结晶紫在2％乙醇/ 10mM的硼酸钠（pH9.0）中的溶液染色细胞。抽吸培养基并添加1毫升结晶紫溶液到各孔20分钟。
- 通过与国内外开口朝下锐角变成一个冰桶洋溢着不断流动的自来水浸泡洗净他们板水在水槽。倾斜板水平角度水下后，开井下来，然后向后倾斜锐角在一个温和的流动动除去时。
- 重复浸渍2次或3次，直到水在孔的底部是不再蓝色。剧烈洗涤可除去细胞或菌落不太粘附由于实验介入，显著在数量和数据的误差加。
- 干板隔夜放置它们在邻近其相应的标记覆盖了台式毛巾倒挂。
- 菌落计数
- 计数在各后阱6天孵育，染色和干燥生长和休眠的菌落数。在倒置相差显微镜最佳为40X放大率计数菌落。计数> 30个细胞的集落作为生长和12个或更少细胞的集落，以相比生长的细胞，大EXPA非常大尺寸的外观形态nded细胞质大细胞质至细胞核的比率，在图1 7,15所示。
注：13-29细胞簇通常不计算在内，因为它们不是很频繁，直截了当休眠测定。他们如果能转移的扰动无论是增长还是在休眠细胞的增长潜力被计算在内。然后这些结果将需要与生物学意义相关联。
- 计数在各后阱6天孵育，染色和干燥生长和休眠的菌落数。在倒置相差显微镜最佳为40X放大率计数菌落。计数> 30个细胞的集落作为生长和12个或更少细胞的集落，以相比生长的细胞，大EXPA非常大尺寸的外观形态nded细胞质大细胞质至细胞核的比率，在图1 7,15所示。
2.克隆形成孵化的免疫荧光研究
- 在6孔板调整细胞数约为7,500-8,000细胞/孔，以对应于细胞数/表面积类似于24孔试验。
- 将一个圆，无菌，纤维连接蛋白包盖玻片到每口井基地的6孔板之前除了细胞成像研究。吸管细胞在3ml体积为每孔2个孔，在一个时间，在浓度概述的，如在1.2中描述的克隆形成实验段）。
- 细胞培养6天，如在1.2.4和1.2.5以上。加入扰动因素，在第3天在10倍浓度的300微升量，如在1.3中集落检测过程中的说明）。
- 染色的细胞在第6天用抗体与细胞黏附分子如整合素α4，α5，α6，β1，β3，例如，粘着斑复合分子FAK，桩蛋白和纽蛋白，例如，涉及能动性蛋白质如α微管蛋白，例如，信号通路成员如磷酸化Akt，磷酸-ERK，磷酸化p38，磷酸化JNK，例如，或任何其他蛋白质即调查其在休眠作用的目标，使用标准技术进行直接或间接的免疫荧光染色。
- 用钳子一天丙酮去除幻灯片6.修复/甲醇1：1 -20 °下进行20分钟，并风干。一个替代的固定剂，如多聚甲醛，也可以使用，如果有必要的。透细胞用0.1％的Triton X-100，0.1％柠檬酸钠2分钟˚F或检测细胞内的抗原。用PBS洗涤细胞。
- 对于间接免疫荧光染色，进行1小时，在室温下用5％BSA或与来自在其中产生的二次抗体的物种的10％免疫前血清块滑动。
- 孵育过夜，在4℃下用初级抗体与细胞粘附分子，焦复杂分子，信号传导途径的成员或任何其它蛋白，其调查其在休眠作用稀释至在PBS中由制造商推荐特定稀释度的目标0.1％TRITON X -100。
- 用PBS洗3次。孵育盖玻片用荧光团标记的抗体，在室温下搅拌2小时。作为一个例子，的Alexa Fluor 488驴抗小鼠IgG抗体可用于检测鼠单克隆初级抗体。山盖玻片细胞面朝下放在使用抗淬灭剂达皮载玻片上。密封用指甲油的周长。
- 对于直接免疫荧光法，开展BSA如上述2.4.2）阻挡，孵育荧光团共轭的第一抗体过夜，在4℃。用PBS洗3次。孵化与抗淬灭剂和DAPI和密封用指甲油的幻灯片。
- 盖滑动托盘铝箔和储存在4 °下成像和摄影随时随地长达数星期后。在使用放大1000倍配备有照相机任何荧光显微成像系统查看和照片细胞。
- 为纤维状的肌动蛋白染色，在1％牛血清白蛋白（BSA）30分钟，并在室温下孵育在BODIPY FL-Phallacidin（绿色）或罗丹明鬼笔环肽（红色）20分钟块滑动。添加抗淬灭剂和密封以上。
3.克隆形成孵化的分子生物学研究
- 蛋白质印迹
- 孵育ER +乳腺癌细胞MCF-7或T47D以20,000个细胞/ 60毫米的钢板和50,000细胞/ 100毫米的钢板上fibronec克隆密度镀锡在5％CO 2板在37℃。
- 孵育细胞以75,000细胞/ 100mm板为分子研究需要毫克量从裂解物蛋白质稍高的密度。最多可使用每个实验点十大板块，收集足够的蛋白质，使用Western印迹分子研究或RNA分离为北印迹。
- 细胞数量基凝胶负载是一个必要的辅助在大大不同大小的种植与休眠细胞比较蛋白的表达。通过胰蛋白酶处理收集细胞，并在0.2％台盼蓝的制备裂解物进行Western印迹，代替刮掉细胞用单刃刀片的计数血球的等分试样。
- 离心细胞以10,000 xg离心2分钟，通过抽吸除去培养基，加入200微升裂解缓冲液，超声处理的细胞在裂解缓冲液和测定的蛋白浓度。
- 通过将蛋白质产量通过细胞的数量计算每个细胞的蛋白质的量生成的量。加载裂解物成单独的聚丙烯酰胺凝胶，表示蛋白质的代表当量细胞数两者）当量的量，和b）蛋白质的量各孔中。至少25微克蛋白质应加载到每个孔中。
注意：这将允许生长和休眠细胞，这是在大小和蛋白质含量（ 图1）显著不同之间的比较。
- 流式细胞仪
- 收集从100毫米②塔板细胞通过胰蛋白酶消化，如在3.1，并通过标准荧光激活细胞分选使用伯或仲免疫荧光染色为任一细胞内或细胞外的抗原（FACS）协议分析，如在2.4中概述。
注意：通过胰蛋白酶消化从组织培养皿拆卸细胞不影响膜蛋白的浓度通过抗体标记来确定。
- 收集从100毫米②塔板细胞通过胰蛋白酶消化，如在3.1，并通过标准荧光激活细胞分选使用伯或仲免疫荧光染色为任一细胞内或细胞外的抗原（FACS）协议分析，如在2.4中概述。
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Representative Results
进行实验以概括的测定。实验的时间过程示于图2A中 。将细胞培养在克隆密度上-1天，FGF-2在新鲜的培养基中加入第0天和细胞进行培养，直到第6天，当它们被染色和菌落计数。任何扰动的系统都在100μl体积在10倍终浓度施用在第3天所需的。 图2B说明了生长和休眠菌落的典型外观。生长的菌落含有> 30个细胞和休眠的 殖民地包含12个或更少的细胞，其许多倍的大细胞质/细胞核的比例越来越大的细胞图2C表明一式四份进行了一次典型的实验结果。细胞的主要分布不加入FGF-2是由生长的克隆代表，而在FGF-2的存在下，克隆的绝大多数是处于休眠状态。
内容】“> 图3是在其中扰动剂加入在第3天的图中的实验的一个例子表示的剂量依赖性抑制休眠克隆通过抑制Rho家族GTP酶的由泛Rho抑制剂C3转移和一Rho激酶（ROCK）抑制剂Y27632。该测定可以评估对休眠克隆以及生长克隆加入抑制剂的ED 50。在该实验中，没有测定上生长克隆的效果，因为它仅用于说明本方法。图4和5表明，该测定可用于评估对休眠克隆存活抑制剂的联合作用。我们以前的研究已经表明，PI3K途径发生在休眠细胞中该模型和抑制二者PI3K和Akt的持续活化部分抑制休眠克隆7的生存。在这里，初步观察，证实牛逼Rho家族的小GTP酶的帽子非特异性抑制也部分抑制休眠克隆存活。在图4和5给出的数据表明，组合抑制PI3K的和其下游效应，AKT一体，具有Rho家族与C3转移和ROCK抑制剂的抑制可以几乎完全消除在一些情况下，休眠克隆的存活率。之前我们已经证实了休眠克隆存活的PI3K的抑制作用，但不是Akt的是由细胞不再表现出休眠表型，而是出现质和痛心7。在休眠克隆细胞中Rho家族已被广泛地用C3转移抑制和ROCK抑制剂也失去了典型休眠外观，假定fibrolastoid出现和竖起膜和还出现苦恼（ 图6）。这些实验证明，可在非常BR被查询的典范OAD的方式来实现用于管理休眠和耐疗法元素的理解。
图1：治理机制我们的体外模型休眠（A）的纤维连接蛋白涂层板带和不带FGF2 10毫微克/毫升7（放大100倍），经过6天的潜伏期和生长休眠MCF-7在克隆克隆密度。 （二）总结概述架构的数据FGFR和整合素α5β1平行的稳定状态的信号是需要激活和休眠保持7。 FGF-2上调导致G1逮捕21细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂，激活ERK 8和PI3激酶7的initiatesurvival信号和上调整合素α5β17，这几天后达到稳定状态。双信号通过量ħFGFR通过PI3K和独立地通过整合素α5β1的纤维连接蛋白结扎都需要活化的RhoA GAP GRAF 15的FAK的和膜定位和活化。这导致RhoA和一个宽容的稳定状态F-肌动蛋白（毒伞素染色的显微照片），上皮细胞重新分化和休眠15皮质重排失活。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2：在体外休眠测定的元素的休眠测定的时间分量的（A） 的图式。将细胞在INC孵育纤连蛋白包被的组织培养板中的克隆形成密度，在1,500细胞的最大密度/孔24孔平板的ubator在37℃和5％CO 2的第1天的培养基更换在第0天用新鲜培养基或含新鲜培养基的FGF-2 10毫微克/毫升，细胞被重新培养。将细胞用结晶紫染色溶液，如上所述，在第6的任何抑制剂或扰动剂每天都在100μl体积加入在第3天，在10倍所需浓度和细胞重新孵育直到每天6（B）的染色的外观生长和休眠的MCF-7菌落。生长的菌落含有> 30个细胞和休眠的殖民地包含12个或更少的细胞。休眠细胞比具有大细胞质/细胞核比例生长细胞较大煎饼状，很多次。 （放大100倍）。 （C）的图形展示孵育有和没有FGF-2的10纳克纤连蛋白包被的24孔板/ ml的1500的MCF-7人乳腺癌细胞的克隆形成潜力。无FGF-2，细胞的主要分布是由生长的克隆，而在FGF-的存在表示克隆2的绝大多数都处于休眠状态。实验一式四份进行。 （误差棒为+ SD）的
图3：休眠克隆通过泛Rho家族的剂量依赖性抑制抑制剂C3转移和ROCK抑制剂Y27632的T-47D细胞孵育以每孔24以及纤连蛋白包被的板1000细胞与FGF-2的克隆密度。 10ng / ml的6天。媒体，C3转移3或5微克/毫升，和ROCK抑制剂Y27632 0.1,1或10微克/毫升分别在第3天及休眠克隆在第6图为日起计算表明剂量依赖性抑制染色休眠克隆上6.天C3的ED 50为约3微克/毫升而ROCK抑制剂的是介于1和10微米在该测定。实验一式四份进行。 （误差棒为+ SD）的
图4：泛Rho家族抑制剂的C3结合效果与Akt的抑制剂或具有对休眠的T-47D克隆生存PI3激酶抑制剂的T-47D细胞在每1,000个细胞的克隆形成密度以及在24孔纤连蛋白包被的板用FGF-2的10毫微克/毫升为6天。媒体，C3转移5微克/毫升，Akt的抑制剂为25μM和LY29400220μM的被单独或在第3天与休眠克隆组合添加在第6天计数C3和AKT抑制剂的联合作用似乎是添加剂在这些浓度而C3和PI3K抑制剂的组合效应似乎是协同在抑制休眠克隆存活这些实验。实验一式四份进行。 （误差棒为+ SD）的
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图5：对ROCK抑制剂Y27632复合作用与Akt的抑制剂或具有对休眠的T-47D克隆生存PI3激酶抑制剂的T-47D细胞24以及纤连蛋白包被的板孵育每1,000个细胞的克隆形成密度以及与FGF-2 10毫微克/毫升为6天。媒体，ROCK抑制剂Y27632 3微克/毫升，Akt的抑制剂为25μM和LY29400220μM的被单独或在第3天与休眠克隆合并增加了对6 Y27632的联合作用日和AKT抑制剂不表现为计数添加剂在这些浓度，但Y27632和PI3K抑制剂的联合作用似乎大于加在抑制休眠克隆存活这些实验。实验一式四份进行。 （误差棒为+ SD）的
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图6：用C3转移和ROCK抑制剂Y27632治疗后存活的休眠的T-47D克隆的出现菌落测定法建立一式四份在24孔纤连蛋白涂覆的组织培养板中以1000个细胞/孔与FGF-2，如上所述，抑制剂加入第3天，在显示的浓度，细胞染色并拍照上一天，泛Rho家族抑制剂治疗的6细胞失去了传播的外观，变小，树突和出现心疼。 （放大100倍）。
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Discussion
我们的模型是由休眠的骨髓中的几个关键要素。它由雌激素敏感细胞，这是可能保持休眠的 骨髓长时间10的类型，它包括纤维连接蛋白，骨髓的关键结构元件，FGF-2，生长因子大量由骨髓基质合成的和大量沉积在骨髓细胞在克隆密度，其中它们之间的相互作用主要是与底层的31,32和温育的细胞外基质。而骨髓微环境是更为复杂，因为需要问特定机械问题这个简单的系统可以建立尽可能多的增加的复杂性。
该模型可以用来比较休眠用在多种方式生长的细胞，包括细胞生物技术，分子生物学技术和体内技术。细胞表型可以通过重新克隆，运动性来测定和侵袭研究35中 ，使用特异性阻断抗体或肽7非粘附肿瘤引发小球体形成36或由功能性研究相互作用与微环境。
在克隆形成实验的主要输出是菌落的数字计数值，要么生长或休眠状态，从而转化为细胞的生长或休眠克隆潜力。如上面暗示的，大量的变量具有的影响这一结果，所有这些都必须尽可能严格控制尽可能得到可重复的结果的可能性。这些包括细胞来源，整体通道数，冷冻保存技术和细胞培养物是冷冻保存的质量，因为解冻通道的数目，培养物从其中获得的单细胞制剂合流，的来源和质量胎牛血清，胰蛋白酶消化的持续时间和它们的再现性，持续时间在室温下放置细胞，吹打等效细胞数目到每个孔中，灵巧或均匀地分布在井的整个表面区域分配细胞的灵巧，的次数的板从培养箱中观察除去，几十间其他。除了代表普遍接受组织培养的质量控制，这些变量影响从实验休眠潜在的克隆实验。帧内实验变异性通常小于8-10％，然而，导致从实验的百分比变化进行实验是高度可重复的。通常情况下，数据的方差开始减少与该系统和花费进行该测定时，实验者的增加经验直接相关。
在休眠和生长的细胞基因的表达可以通过RT-PCR，Northern杂交，Western印迹，免疫沉淀/西式和功能性复合物沉淀/西式评估，免疫荧光或免疫组化，复用由微流体，拉曼光谱，流式细胞术和其他技术。这些技术可以用于测定特异性受体，其他膜蛋白，信号传导途径，转录因子，组蛋白修饰，细胞器和线粒体蛋白质，代谢途径和能源利用，紧张和力和相互作用，在对无数的方法的微环境中的作用休眠的作用。
我们以前的研究已经证明在休眠克隆7的生存，以及在维持休眠表型与皮质肌动蛋白15的上皮分布的PI3K途径显著的作用。我们还表明，RhoA的特异性，必须为了抑制为休眠表型，以被激活。这是相对于这里提出的数据，其中该Rho家族与泛抑制剂的失活减少休眠克隆生存。 Ť他的下划线使用化学抑制剂解剖机制的危险，有必要用遗传的方法来抑制或激活特定通路。为此目的，该方法适合于所述细胞的遗传操作，无论是由永久转染或转导或由瞬时转染15，siRNA或纳米颗粒。因为该测定为6天的持续时间，瞬时基因表达或干扰会造成第6天显著表型效应可被测量。
认识到其潜在的进入学习机制以及退出休眠，我们目前正在调查这些细胞逃脱休眠机制。在进入休眠知之甚少，执政从休眠状态退出机制的理解更是遥遥无期。我们已经报道的初步意见，即由间质损伤的炎症反应可以促进多尔的觉醒MANT MCF-7采用这种模式37细胞。该模型可以被应用到T-47细胞以及，另一个ER +乳腺癌细胞系。而ER-细胞不成为休眠响应于FGF-2，它可能会适应这一方法，以用在将来的调查不同分化剂其它癌症类型的细胞。
尽管被用于识别参与休眠钥匙机构一个非常有用的技术，但它仍是一个体外模型。然而，已经历休眠或在体外操作细胞可用于异种移植肿瘤形成能力进行测试。该系统的主要潜在优势，但是，是的，这将允许一个假设可以在高度复杂的体内休眠模型中进行测试的发展机制的鉴定。
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Disclosures
支持由国防部资助DAMD17-01-C-0343系和DAMD17-03-1-0524，新泽西州委员会关于癌症研究02-1140-CCR-E0和露丝·埃斯特林戈德堡纪念癌症研究（RW）
Acknowledgments
作者什么都没有透露。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| MCF-7 cells | ATCC | HTB-22 | |
| T47D cells | ATCC | HTB-123 | |
| BD BioCoat Fibronectin 24 Well Clear Flat Bottom TC-Treated Multiwell Plate | Corning | 354411 | |
| BD BioCoat Fibronectin 60 mm Culture Dishes | Corning | 354403 | |
| BD BioCoat Fibronectin 100 mm Culture Dishes | Corning | 354451 | |
| BD BioCoat 22x22mm #1 Glass Coverslip with a uniform application of human fibronectin | Corning | 354088 | |
| 6 Well tissue culture plate | CellTreat | 229106 | |
| Dulbecco Modified Eagle Medium High Glucose 10X Powder | Corning Life Sciences | 50-013-PB | |
| Heat Inactivated, Fetal Bovine Serum | Serum Source International | FB02-500HI | |
| 0.25% Trypsin/2.21 mM EDTA | Corning | 25-053-CI | |
| Penicillin-Streptomycin Solution, 100X | Corning | 30-002-CI | |
| L-Glutamine, 100x, Liquid | Corning | 25-005-CI | |
| Recombinant Human FGF basic | R&D Systems | 234-FSE-025 | |
| Akt Inhibitor (1L6-Hydroxymethyl-chiro-inositol-2-(R)-2-O-methyl-3-O-octadecyl-sn-glycerocarbonate) | CalBiochem | 124005 | |
| LY294002 | CalBiochem | 19-142 | Chenical PI3K inhibitor |
| C3 transferase | Cytoskeleton | CTO3 | Inhibits RhoA, RhoB, and RhoC, but not related GTPases such as Cdc42 or Rac1 |
| Y-27632 dihydrochloride | Santa Cruz Biotechnology | 129830-28-2 | |
| BODIPY FL-Phallacidin (green) | Molecular Probes | B607 | Fluorochrome for fibrillar actin staining |
| BODIPY FL-Rhodamine phalloidin (red) | Molecular Probes | R415 | Fluorochrome for fibrillar actin staining |
| Alexa Fluor 488 Donkey anti-Mouse IgG Antibody, ReadyProbes Reagent | Molecular Probes | R37114 | |
| ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI | Molecular Probes | P-36931 |
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