Protocol
1. إعداد يرقات
- لتحليل يرقة المطلوب للتحرك أو موقف تفضيل، وتنمو اليرقات في ظل ظروف قياسية لعمر المطلوبة لفحص 10 باستخدام ذبابة الغذاء القياسية 11.
- إجراء التصفية شبكة التي تمتد الشاشة الحريرية الصف النايلون شبكة فوق قمع. تأمين شبكة في الرقبة قمع مع الشريط المطاطي. وضع قمع في كوب.
- لجمع اليرقات لتحليلها، مغرفة ملعقة-كاملة من الأغذية التي تحتوي على يرقات تستخدم علفا من زجاجة الثقافة ويغسل بالماء RT الصنبور على تصفية شبكة، وجمع اليرقات الفردية مباشرة من شبكة مع الرسام 10.
2. إعداد الفحص أنابيب
- الاستعداد لتوصيل أنابيب الاختبار، وتغلي بعناية 4٪ هلام أجار وتصب في طبق بتري على عمق 1.5 سم. هذا وسوف توفر المكونات لجانبي الأنبوب عندما يتم وضع الحيوان. الحل 4٪ كثيفة بما فيه الكفاية لمنع اليرقات من صenetrating المقابس.
- التأكد من أن أنابيب نظيفة واضحة قبل إدخال اليرقة. إذا لم تكن كذلك، وهذا قد منع الحركات من يجري تسجيلها.
- لضمان اليرقات لديها ما يكفي من الرطوبة للحركة، وإعداد زجاجة ضغط تحتوي على كمية صغيرة من الماء الساخن. قلب الزجاجة، توجيه بعناية منفذ نحو بالوعة والضغط برفق لطرد الماء من أنبوب صغيرة.
- إدراج منفذ زجاجة في أنبوب الاختبار. ضغط على زجاجة لتقديم بخار الماء في أنبوب الاختبار حتى تظهر طبقة رقيقة من التكثيف على جدار الأنبوب. الفيديو 1 يظهر يرقة تتحرك في أنبوب مع كمية مناسبة من الرطوبة.
- لاغلاق اليرقة في الأنبوب، وإزالة هلام أجار 1.5 سم سميكة من طبق بتري ومكان على سطح شبكة لتسمح بتدفق الهواء تحت آغار بحيث يمكن إدراج قابس أجار في أنبوب. اضغط احدة من نهاية أنبوب الاختبار في هلام مرتين لإدراج اثنين من المقابس من هلام إلى نهاية واحدة.
- مع paintbالاندفاع، ضع يرقة واحدة في أنبوب ما يقرب من 1.5 بوصة العميق وختم الأنبوب عن طريق الضغط على نهاية أقرب اليرقة إلى هلام أجار. فإن الضغط الناتج طرد المكونات الثاني من هلام أجار من الطرف المقابل وختم الحيوان داخل الأنبوب.
- أنابيب مكان في الجهاز MB5 متعدد شعاع ذبابة الفاكهة مراقبة النشاط (DAM)، وتعديل المواقف الأنابيب 'حتى أن الحيوانات لا يمكن أن تتحرك خارج نطاق من أجهزة الاستشعار.
- للتأكد من أن فحص الأنابيب لا تنزلق من تحت الحمراء إطار القراءة للجهاز أثناء النقل، وعقد أنبوب في مكان بواسطة الربط حلقة من المعجون حول كل أنبوب حيث إنها تجري اتصالات مع جهاز تسجيل.
3. قياس آخر
- سجل النشاط في حاضنة لمنع قراءات دقيقة التي قد تحدث بسبب الظلال، ومصابيح الفلورسنت أو لتغيرات درجة الحرارة في المختبر. انظر الشكل 5 لترتيب المقترح للنظام.
- مجموعة حاضنة إلى 20 درجة مئوية (انظر الشكل 1). لتجنب تسجيلات كاذبة بسبب تدخل من مصادر الضوء ساطع أثناء التسجيل، إطفاء الأنوار حاضنة الفلورسنت واستخدام مصدر مستقل ضوء LED أثناء التسجيل في الحاضنة. إجراء المحاكمة دون أي الحيوانات لضمان ظروف الإضاءة لا تثير aberrantly أجهزة الاستشعار. يجب أن تكون هناك أية بيانات حركة سجلت بعد هذا الاختبار.
- السماح اليرقات حتى يتأقلم إلى 20 ° C إعدادات الحاضنة لمدة 5 دقائق قبل بدء الفحص.
- لضبط النظام DAM لفترات التسجيل المطلوب (على سبيل المثال، 1 دقيقة)، تأكد من تحميل DAM برنامج تسجيل نظام لاستضافة الكمبيوتر 12 وفتح ملف النظام DAM قبل ربط غرفة تسجيل واجهة PSIU.
- لضبط التردد التسجيل المطلوب الذي سيتم حفظ البيانات، حدد تفضيلات ثم انقر فوق أو تحت خيار الفاصل الزمني القراءة لتحديد الأطر الزمنية المختلفة التي البياناتسيتم تخزين. على سبيل المثال، حدد القراءة الأوقات الفاصلة من 1 ثانية إلى 1 ساعة.
- لتحديد المعلمة متفاوتة لتسجيل البيانات، اختر تفضيلات ثم حدد المربعات المقابلة تحت نوع بيانات الناتج (التهم، والتحركات والمواقف ويسكن، انظر الجدول 1). توفر كل معلمة تحليلا فريدا للنشاط اليرقات داخل الأنبوب.
- لبدء التسجيل، توصيل جهاز العرض إلى وحدة واجهة التيار الكهربائي (PSIU) باستخدام كابل الهاتف CAB6. ربط PSIU إلى التيار الكهربائي. وهناك ضوء أخضر تشير الاتصال المناسب.
- ربط PSIU من خلال الناقل التسلسلي العالمي (USB) برقية إلى ماكنتوش أو جهاز كمبيوتر ويندوز لتسجيل البيانات. فتح برنامج DAM SystemMB1v6x على الكمبيوتر لبدء تلقائيا تسجيل البيانات.
- بعد وقت جمع المطلوبة كاملة، حدد إنهاء، ثم قم بإنهاء الآن على الشاشة النشاط DAM. وبعد ذلك يتم حفظ البيانات تلقائيا تحت DAM بيانات النظام. خذ هذا الملف البيانات (على سبيل المثال، مراقبة 1) واسحب في مجلد منفصل. وسوف تخزن البيانات الأولية من برنامج DAM بحيث يمكن بعد ذلك تتم معالجتها.
4. إعداد بيانات للتجهيز (DAM FileScan)
- لمعالجة البيانات الخام إلى صيغة مفهومة فتح التطبيق DAM FileScan واختر تحديد مجلد بيانات الإدخال. ثم اختر مجلد البيانات والملف المطلوب، وحدد الخيار المسح الضوئي. وأخيرا تحديد طول بن لفترة القراءة المطلوبة. وهذا تنظيم البيانات الخام إلى المعايير المحددة من قبل المشغل وهذا البرنامج سوف يقدم تقريرا البيانات التي تم جمعها في هذا النطاق معين.
- حدد نوع بيانات الناتج لتحليل وضع الحركة المطلوبة (مراقبة التهم، والتحركات، يسكن). ضمن القائمة قراءات إضافية، حدد المبلغ إلى بن (هذا إذا كان طول بن أكبر من نظام الفاصل الزمني للقراءة مختارة).
- اسم الملف بشكل مناسب وحفظها. سيتم تخزين الملف في نفس الموقع مثل مجلد من الخطوة 3.9.
- من أجل جمع متوسط التحركات، عملية البيانات الخام الناتجة عن الخطوة 4. لإنشاء جدول في برنامج جداول البيانات، فتح ملف تم حفظه سابقا (الخطوة 4.3)، وعندما تظهر نافذة معالج استيراد النص، حدد النهاية لفتح ملفات البيانات في شكل جداول.
ملاحظة: اعتمادا على نوع البيانات التي تم تحليلها، وسيتم قراءة جدول البيانات بشكل مختلف. عادة لقياس تحركات الشاشة أو التهم الموجهة إليه، وسوف يتم تسجيل الفترة الزمنية للدراسة من الناحية العددية، في حين أن كل أنبوب القراءة الفردية سيحصل بريد إلكتروني معين. عند عرض البيانات في جدول البيانات، والأعمدة KZ تمثل فتحات الأنابيب فحص 16/01 على التوالي. الصفوف تمثل نقاط البيانات التي تم جمعها. - على سبيل المثال، إذا تم جمع التحركات لمدة 20 دقيقة في 1 دقيقة فترات، ومتوسط 20 الصفوف لحساب متوسط عدد التحركات / دقيقة وقياسات أخرى.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
ويبين الشكل 1 نتائج من دراسة استجابة الحرارة من سيطرة الطور الثالث اليرقات، ث 1118، وذلك باستخدام جهاز مراقبة للكشف عن الاختلافات في الحركة اليرقات في سبع درجات حرارة مختلفة. تم غسلها اليرقات ووضعها في الجهاز النشاط DAM كما هو موضح أعلاه، ووضعها في حاضنة لتعيين درجة الحرارة المطلوبة. وبعد ذلك يسمح الجهاز للتأقلم مع البيئة لمدة 5 دقائق قبل بدء التسجيل. تم تحليل كل يرقة بشكل فردي لتنقل أكثر من دقيقة الفترة 20 ومتوسط عدد من التحركات في الدقيقة حسبت لكل حيوان وبلغ متوسط لكل مجموعة من 32 الحيوانات. وقد تم تحليل البيانات ورسوم بيانية باستخدام برنامج جدول بيانات. اليرقات أظهرت نشاطا متزايدا بشكل كبير، حيث ارتفعت درجة الحرارة في المقابل 5-35 ° C بزيادات 5 درجة، باستثناء فترة انقطاع في هذا الاتجاه عند 20 درجة مئوية و 25 درجة مئوية.
للتحقق من أن الاختلافات فصول التوجيه الجامعييتم الكشف عن دينار بين السيطرة والمسخ وصفها سابقا قاصر النشاط، اليرقات الخاملة (IAV 1) تم اختبارها. وقد تم تحليل البيانات والتحركات / دقيقة لكل واحد من 32 الحيوانات وتم حساب متوسط الحين. كما هو مبين في الشكل 2، وتحليل يشير إلى أن يرقات الخاملة كانت المحمول أقل بكثير من السيطرة. بينما هم أصغر بكثير من يرقات العمر الثالث، وكان آخر من الأولى والثانية يرقات العمر أيضا قابلة للقياس، كما هو مبين في الشكل (3). آخر من يرقات العمر الثالث في كل دقيقة من الفحص 20 دقيقة وقد تبين أن تبقى متسقة نسبيا طوال الفترة ( الشكل 4).
وسجلت الرقم 1. ث 1118 تنقل اليرقات في درجات حرارة تتراوح بين 5 ° C - 35 ° C EAC يمثل ح عمود متوسط حركة 32 الحيوانات الطور الثالث مع التحركات الفردية في الدقيقة الواحدة في المتوسط بين مجموعة. * جميع المتوسطات تختلف اختلافا كبيرا عن بعضها البعض إلا 10 ° C و 15 ° C (P = 0.116) (رسائل مختلفة تشير إلى وجود فرق كبير، طالبة اختبار t).
الشكل 2. الطور الثالث اليرقات السيطرة مقارنة الخاملة (IAV 1) اليرقات في 20 ° C. IAV 1 اليرقات المعرض أقل بكثير التنقل بالمقارنة مع السيطرة.
الشكل 3. قياس النشاط من الأولى والثانية والثالثة يرقات العمر على مدى فترة تسجيل 20 دقيقة في 20 ° C. N = 32 لكل مرحلة اليرقات.
: المحافظة على together.within صفحة = "دائما"> 
الرقم 4. رسم بياني عرض متوسط عدد من التحركات التي تحدث في كل دقيقة من الفاصل الزمني للتسجيل 20 دقيقة. ويعاير 32 الثالثة يرقات العمر عند 20 درجة مئوية. يمثل الخط الأحمر في عدد من التحركات في الدقيقة متوسط لكامل فترة 20 دقيقة.
ويصور الشكل 5. رسم بياني يوضح ذبابة الفاكهة مراقبة النشاط انشاء والاتصال به إلى وحدة واجهة PSIU وجهاز كمبيوتر سطح المكتب، وداخل الحاضنة، ولكن خلال تسجيل الحاضنة هو أن تغلق.
| وصف | معلمة |
| بيانات السجلات في كل مرةيرقة تعبر شعاع، وتسجل التهم الإضافية إذا تحرك يرقة بينما ضمن حزمة واحدة. | التهم |
| بيانات السجلات فقط عند إعادة وضع ذبابة بين الحزم منفصلة، فإنه لا يسجل التنقل داخل شعاع. | التحركات |
| يسجل موقف الحيوانات في كل ثانية على الفاصل الزمني للتسجيل. يكشف هذه البيانات تفضيل موقف بوصفها وظيفة من الوقت الذي يقضيه في كل جهاز استشعار على مدى مقايسة. | كمن |
| يحلل هذا الإعداد الموقف العام الحيوان داخل أنبوب، مشيرا الذي استشعار الحيوان واثار أثناء الحركة. | موقف |
| يحدد هذا الإعداد التردد الذي يتم حفظ البيانات التي تم جمعها خلال إطار زمني محدد لكمبيوتر سطح المكتب. | تسجيل الفاصل |
الجدول 1. وصف measuالمعلمات rement (التهم، والتحركات، يسكن والمراكز).
فيديو 1. DAM نظام فحص الأنبوب قبل الإدراج في جهاز التشغيل. يتم توفير الرطوبة بواسطة التكثيف من التنفس. هذا المستوى يكفي للحفاظ على الحركة اليرقات طوال فترة الدراسة دون التسبب في الحيوان لتعويم أو السباحة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ويتأثر النشاط من يرقات ذبابة الفاكهة من قبل مجموعة متنوعة من العوامل بما في ذلك النمط الجيني 8، سن 13 ودرجة الحرارة المحيطة 2. على الرغم من أن وسائل videographic قوية قادرة على تحليل مفصل للغاية تم تطويرها من قبل أولئك الذين يدرسون الحركة 5، هذا المستوى من التفصيل قد تكون زائدة عن الحاجة لأولئك الذين يرغبون في تحديد المعايير الأساسية للنشاط. الطريقة الموصوفة هنا يستخدم الجهاز الذي يتوفر في العديد من المختبرات، من السهل أن تعمل، يولد نتائج استنساخه للغاية، وغير معقول حتى بالنسبة لأولئك الذين البحوث الأولية التركيز ليس الحركة. وتبين نتائج سبيل المثال أن هذا الاختبار يمكن أن تستخدم للكشف عن تغيرات كبيرة في الحركة في اليرقات يتعرض لدرجات حرارة مختلفة (الشكل 1)، والأنماط الجينية المختلفة (الشكل 2).
عندما تم قياس اليرقات في درجات حرارة تتراوح بين 5 ° C - 35 ° C، علىزيادة النشاط مع درجة الحرارة، باستثناء فترة انقطاع في التيار بين 20 درجة مئوية و 25 درجة مئوية (الشكل 1). وقد تبين من قبل أينسلي وزملاء العمل التي تستخدم علفا أوائل الثالثة يرقات العمر تفضل درجات الحرارة داخل +/- 2 ° C من النمطية 25 ° درجة الحرارة ثقافة C. ومع ذلك، عندما تدخل اليرقات تجول منتصف الثالثة مرحلة الطور أنهم يفضلون برودة بعض الشيء درجات الحرارة 2. تلك النتيجة يتسق مع ملاحظة أن النشاط الحركي لليرقات الطور الثالث، هو أكبر عند 20 درجة مئوية من 25 درجة مئوية، مما يشير إلى أن جزءا من الحيوانات يعاير كانت في مرحلة التيه وأكثر نشاطا في انخفاض درجات الحرارة، وأقل من ذلك في درجة الحرارة العادية للثقافة 25 ° C.
يوفر هذا الأسلوب البساطة والموضوعية والإنتاجية قوية، ولكن هناك قيود. التطبيقات المذكورة أعلاه تمثل المقايسات التي تحدث خلال فترة زمنية قصيرة نسبيا، ويرجع ذلك جزئيا الحالي مجموعة المتابعة لا العلاقات العامةأوفيد اليرقات مع مصدر الغذاء. ان ضمان التغذية الكافية من الضروري دراسة التغيرات في النشاط على مدى فترات طويلة من الزمن أو لقياس إيقاع الساعة البيولوجية على المدى الطويل. المقابس أجار 4٪ قد تقيد تبادل الغازات بين الغرفة والبيئة الخارجية، مما قد يؤدي إلى اليرقات التي تعاني من ظروف نقص الأوكسجين. ولكن هذا لا يبدو أن تؤثر على النشاط خلال فترة الاختبار 20 دقيقة، لأنه عندما تم تحليل متوسط التحركات في الدقيقة اليرقات خلال كل دقيقة من هذه الفترة، اليرقات لم تظهر لإظهار أي تغيير في النشاط خلال فترة التسجيل (الشكل 4) .
لأن الموقف سجلات الجهاز باستمرار أنه يمثل تحسنا في التقاط المزيد من الحركة مقارنة مع الطرق غير الآلية المذكورة، ولكن بعض الحركة يفعل الهروب الكشف. حركات صغيرة جدا من الحيوانات قد لا يؤدي الى رد من هذا الجهاز، واليرقات يمكن أن تتحرك بطريقة كفافي داخل التحتية واحدةشعاع أحمر دون كسر الحزم المجاورة، مما أدى إلى قراءات منخفضة بشكل غير دقيق. ومع ذلك، منذ أن من المتوقع أن تحدث في جميع الفئات العلاج هذا النوع من الخطأ، فمن غير المحتمل أن تسبب نتائج مضللة. على الرغم من يرقات العمر الثالثة هي التركيز الرئيسي لهذا التحليل، فإن الجهاز قادر على قياس حركة أصغر بكثير يرقات العمر الأول والثاني وكذلك (الشكل 3). كما هو متوقع، وعدد من التحركات المسجلة في الدقيقة الواحدة في الحيوانات الأصغر سنا أقل من ذلك من أكبر الحيوانات الطور الثالث.
على الرغم من أن مجموعة كاملة من الاستخدامات لهذا الجهاز لم يتم بعد تظاهر، وهناك مجموعة متنوعة من التعديلات الأخرى التي يمكن أن تنويع استخدامات هذا الجهاز للدراسات التي تنطوي على اليرقات. على سبيل المثال، فإن الجهاز يسمح للقياس "يسكن"، الذي يمثل الوقت الذي يقضيه في منطقة العزم من الأنبوب. قد توفر هذه المعلومات القيمة عندما يعملون في مختلف ذبابة الفاكهة اليرقات سيارات الاجره في لssays. عن طريق وضع الجهاز على جانبها بحيث يتم الموجهة الأنابيب عموديا بدلا من أفقيا، يمكن للمرء أن قياس انجذاب بالجاذبية اليرقات. لقياس انجذاب ضوئي، يمكن إنشاء التدرج الضوء في أنابيب، واختبار ما إذا كانت اليرقات لديها تفضيل للضوء أو غيابها. لدراسة الكيميائي، ويمكن وضع مادة كيميائية اختبار على واحد من المقابس أجار والموقف من اليرقات ثم قد تكشف عن تحديد تفضيلهم لأو تجنب هذه المادة الكيميائية.
نظام مراقبة يسمح تحليل مختلف المعلمات الحركة، وتلخيصها في الجدول 1. عن طريق اختيار جميع المعلمات أثناء الإعداد المسبق فحص (راجع الخطوة 3.6)، المجرب يمكن أن تختار المعلمة التي لتحليل بعد الفحص. ومع ذلك، إذا لم يتم تحديد أي مكان، أن البيانات لن تكون متاحة للالتحليل اللاحق. وتجدر الإشارة إلى أنه بعد كل فترة محددة من الوقت، يتم تجميد البيانات في التهم الحالية وحفظها في الكمبيوتر المضيف. جمع البيانات ثم إعادة تعيين لصفر بعد هذه الفترة، ويبدأ مرة أخرى، تقديم سلسلة من نقاط البيانات الفاصل الزمني. لا بد من إنهاء يدويا لإنهاء تسجيل البيانات.
وستركز الدراسات المستقبلية التي تنطوي هذه الطريقة على استخدام المعلمة يسكن وتطبيقاتها المختلفة. كما أنه قد يكون من الممكن وضع بروتوكول من شأنه أن يسمح للدراسات تحدث على مدى فترة أطول من الزمن، مثل الدراسات الإيقاعية، من خلال توفير المواد الغذائية وتبادل المقابس أجار على مزيد من المواد المنفذة للغازات 14. سيحتاج مستويات الرطوبة التي تخضع للرقابة أيضا، كما الظروف الجافة تمنع تنقل 15. حاليا، هذا البروتوكول يوفر، طريقة فعالة من حيث التكلفة بسيطة دقيق لتقييم المعايير الأساسية لنشاط اليرقات في إطار مجموعة من الظروف التجريبية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Drosophila Activity Monitor, Multibeam, 16 tubes, including wires | TriKinetics Inc. | MB5 | |
| Power Supply Interface for Activity Monitor | TriKinetics Inc. | PSIU24 | |
| Glass 80 x 5 mm tubes for Activity Monitor (100) | TriKinetics Inc. | PGT 5x80 | |
| DAMsystemMB1v6x Data Acquisitions Software for Macintonsh OSX (Intel) | www.trikinetics.com | free download | |
| DAMFileScan 108x software for Macintosh | www.trikinetics.com | free download | |
| USB software (PSIUdrivers.zip). | www.trikinetics.com | free download | |
| DAMSystem Notes 308 | www.trikinetics.com | free download | |
| Zeiss Stemi 2000C- Stereo Microscope | Spectra Services | SP-STEMI2000C-BS | |
| Carbon Dioxide | Maine Oxy | anaesthesia | |
| Fly Pad | Genesee | 59-114 | surface for sorting anaesthetized flies |
| Small paint brush | Winsor & Newton | #2 ROUND | or similar, used for sorting anaesthetized flies |
| Silk Screen Printing Mesh (160) | msj-gallery.com | SM160W63-3YD | pore sized used in this protocol was ~ 0.1 mm |
| Tegosept | Genesee | 20-258 | preservative |
| Ethanol (190proof) | Pharmco | 111000190 | used to dissolve Tegosept |
| 6 oz Square Bottom Bottle (PP) | Genesee | 32-130 | |
| "Flugs" for Plastic Fly bottles | Genesee | 49-100 | |
| Drosophila Vials, Wide (PS) | Genesee | 32-117 | |
| Flugs for wide plastic vials | Genesee | 49-101 | |
| Yellow Degerminated Corn Meal | Gold Medal | ||
| Drosophila agar | LabScientific | FLY 8020 | |
| Baker's Yeast - Red Star | King Arthur Flour | 1270 | |
| Granulated Sugar - Extra Fine | Domino |
References
- Tracey, W. D. Jr, Wilson, R. I., Laurent, G., Benzer, S. painless, a Drosophila.gene essential for nociception. Cell. 113, 261-273 (2003).
- Ainsley, J. A., Kim, M. J., Wegman, L. J., Pettus, J. M., Johnson, W. A. Sensory mechanisms controlling the timing of larval developmental and behavioral transitions require the Drosophila.DEG/ENaC subunit. Pickpocket1. Dev. Biol. 322 (1), 46-55 (2008).
- Pandey, U. B., Nichols, C. D. Human disease models in Drosophila. melanogaster.and the role of the fly in therapeutic drug discovery. Pharmacol. Rev. 63 (2), 411-436 (2011).
- Cattaert, D., Birman, S. Blockade of the central generator of locomotor rhythm by noncompetitive NMDA receptor antagonists in Drosophila.larvae. J. Neurobiol. 48 (1), 58-73 (2001).
- Caldwell, J. C., Miller, M. M., Wing, S., Soll, D. R., Eberl, D. F. Dynamic analysis of larval locomotion in Drosophila. hordotonal organ mutants. PNAS. 100 (26), 16053-16058 (2003).
- Nichols, C. D., Bechnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. J. Vis. Exp. (61), (2012).
- Godoy-Herrera, R. The development and genetics of digging behavior in Drosophila. arvae. Heredity. 56, 33-41 (1986).
- Sinadinos, C., Cowan, C. M., Wyttenbach, A., Mudher, A. Increased throughput assays of locomotor dysfunction in Drosophila. larvae. Journal of Neuroscience Methods. 203 (2), 325-334 (2012).
- Homyk, T., Sheppard, D. E. Behavioral mutants of Drosophila melanogaster. I. Isolation and mapping of mutations which decrease flight ability. Genetics. 87 (1), 95-104 (1977).
- Chattopadhyay, A., Gilstrap, A. V., Galko, M. J. Local and global methods of assessing thermal nociception in Drosophila. larvae. J. Vis. Exp. (63), e3837 (2012).
- Model Organisms I: yeast, Drosophila and C. elegans. Science Education Database. , JoVE. Cambridge, MA. Available from: https://www.jove.com/science-education-database/3/essentials-of-biology-1-yeast-drosophila-and-c-elegans (2015).
- Woods, J. K., Kowalski, S., Rogina, B. Determination of the spontaneous locomotor activity in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (86), e51449 (2014).
- Troncoso, B., Godoy-Herrera, R., Waldo, M. The development of larval movement patterns in Drosophila). Heredity. 58 (1), 321-329 (1987).
- Helfrich, C., Engelmann, W. Circadian rhythm of the locomotor activity in Drosophila. melanogaster.and its mutants ‘sine oculis’ and ‘small optic lobes. Physiological Entomology. 8 (3), 257-272 (1983).
- Johnson, A. W., Carder, W. J. Drosophila, ociceptors mediate larval aversion to dry surface environments utilizing both the painless TRP channel and the DEG/ENaC subunit, PPK1. PLoS ONE. 7 (3), (2012).
