Summary

Ferric Chloride-induceret Trombose Mouse Model på Arteria carotis og mesenterium Vessel

Published: June 29, 2015
doi:

Summary

The FeCl3 induced thrombosis model in mice is described herein. A method to monitor thrombus growth by intravital microscopy observation on a mesenteric vessel and by blood flow measurement in the carotid artery is presented.

Abstract

Severe thrombosis and its ischemic consequences such as myocardial infarction, pulmonary embolism and stroke are major worldwide health issues. The ferric chloride injury is now a well-established technique to rapidly and accurately induce the formation of thrombi in exposed veins or artery of small and large diameter. This model has played a key role in the study of the pathophysiology of thrombosis, in the discovery and validation of novel antithrombotic drugs and in the understanding of the mechanism of action of these new agents. Here, the implementation of this technique on a mesenteric vessel and carotid artery in mice is presented. The method describes how to label circulating leukocytes and platelets with a fluorescent dye and to observe, by intravital microscopy on the exposed mesentery, their accumulation at the injured vessel wall which leads to the formation of a thrombus. On the carotid artery, the occlusion caused by the clot formation is measured by monitoring the blood flow with a Doppler probe.

Introduction

Studiet af de mekanismer, der er involveret i udviklingen af ​​trombose og evaluering af effektiviteten af ​​anti-trombotiske lægemidler kræver veletableret eksperimentelle dyremodeller. Store dyremodeller var de første til at blive brugt, da de giver store skibe mere ligner mennesker end gnavere 1. Men høje omkostninger, de større nødvendige faciliteter og vanskeligheden ved at manipulere dem er genetisk er store ulemper for deres brug og store dyr er nu begrænset til sene prækliniske studier, når foreløbige test på gnavere har givet afgørende resultater 2. Med bred tilgængelighed af transgene og knockout stammer og deres lille størrelse, der minimerer mængden af antitrombotiske lægemidler kræves for in vivo testning mus hovedsageligt bruges til trombose forskning. Derfor har flere modeller af trombotiske lidelser er udviklet i mus 3.

Mange etablerede trombose modeller forstyrre Intimet lag af karvæggen, efterfulgt af udsættelse af det sub endotel ekstracellulære matrix til blodgennemstrømningen inducere dannelsen af blodpropper 4. Tromberne kan skyldes eksponering af kollagen, som udløser blodplader aktivering eller / og fra eksponering af vævsfaktor som aktiverer koagulationskaskaden 5. Adskillige teknikker anvendes derpå til at nå det oprindelige fartøj skade. Pierangeli et al. Udviklet en mekanisk sprængning model med en mikrokirurgi værktøj på den femorale vene 6. Kikushi et al. Beskrev en model, som består i administration af et billede reaktiv forbindelse (Rose Bengal), der akkumuleres i lipiddobbeltlaget af endotelceller, efterfulgt af det specifikke excitation af karvæggen af interesse med grønt lys (540 nm) 7. Skaden kan også induceres af en kort høj intensitet puls laserbelysning 8. En anden teknik for det første fastsat på halspulsåren hos rotterbestår i topisk påføring af ferrichlorid (FeCl3) 9. I dette tilfælde er de fartøj blotlægning resultater fra frie radikaler genereret af FeCl3 som forårsager lipidperoxidation og destruktion af endotelceller 10. Skaden inducerer ekspression af flere adhæsionsmolekyler udløser blodpladeadhæsion og aggregering såvel som leukocytter rekruttering. Det er blevet påvist, at leukocytter, især neutrofiler, spiller en afgørende rolle i aktiveringen af blodkoaguleringskaskaden fører til thrombose 11. Denne metode er velegnet til at reproducere koagulationskaskaden; efterforskere skal huske på, at i denne musemodel, er trombose typisk induceret i sunde fartøjer mens trombose hos mennesker primært forekommer i syge f.eks. atherosclerotiske fartøjer.

Da denne model er meget enkel at implementere og er også effektiv i mus, er det nu det mest brugt trombose tilstandl for lille dyr in vivo studier. Desuden er denne teknik giver mulighed for at inducere dannelsen af ​​tromber i forskellige typer beholdere. Target fartøjer kan være arterier eller vener med stor diameter (carotis, femorale, vena cava) eller lille diameter (mesenterium, cremaster) 12-14. For nylig blev det også anvendt på den proksimale arteria cerebri media at udvikle en model for slagtilfælde 15. Den trombose dannelse kan være direkte observeret af intravital mikroskopi efter fluorescerende mærkning af blodplader og leukocytter eller overvåges ved at måle blodgennemstrømningen faldet med en temperaturføler eller en Doppler probe 12,16,17. Adskillige parametre såsom okklusion tid, thrombedannelse tid eller trombe størrelse kan derefter undersøges. De fysiologiske forskelle mellem fartøjer undersøgte resultat i betydelige variationer i tromber opnået. Derfor efterforskere vælge normalt målkarret i henhold til de parametre, som de ønsker at measure og / eller sygdommen indstilling de ønsker at undersøge. Typisk model på halspulsåren er mere relevant for forskning i aterotrombose relateret til myokardieinfarkt eller slagtilfælde mens undersøgelser af vena cava er mere relevante for forskning i dyb venetrombose. Tilgængeligheden af ​​de forskellige fartøjer bestemmer også den metode, der anvendes til at måle trombe vækst. For eksempel, er let at få adgang gør denne model velegnet til intravital mikroskopisk observation og undersøgelse af dynamikken i trombedannelse de mesenteriske fartøjer. Halspulsåren er mindre tilgængeligt men større muliggør blod flowmålinger og giver en fremragende model til at studere okklusiv thrombose.

Ferrichlorid induceret thrombosemodel har tilvejebragt enorme fremskridt i forståelsen af ​​denne patologi. Det har været anvendt i mange undersøgelser, der fokuserer på den rolle, von Willebrand faktor i trombose dannelse 18,19. Kombineret med genetisk modifikation teknikker, har det kunnet pege på mange specifikke gen involveret i trombotiske lidelser. Lamrani et al. for eksempel har vist, at en knock-in for JAK2 V617F-genet er associeret med en accelererende dannelse af ustabile koagel 20. Zhang et al. Har undersøgt den fysiologiske konsekvenser af P2Y12 blodplade-receptoren og viste, at transgene mus, der overudtrykker specifikt denne receptor i blodplader kun, udviste en mere hurtig og stabil thrombedannelse i mesenterialarterie såret med FeCl3 21. Den afgørende rolle, Tissue-plasminogenaktivator (tPA) og urokinase-plasminogenaktivator (uPA) i fibrin nedbrydningsprocessen er også blevet undersøgt i denne fremgangsmåde 22. Endvidere denne model giver også en enkel og nøjagtig måde at teste de fibrinolytiske kapacitet i mange nye lægemidler in vivo. For eksempel har Wang et al. Brugt denne model til the præklinisk validering af en hidtil ukendt rekombinant plasminogenaktivator målrettet mod aktiverede blodplader 23. Denne metode også gjort det muligt validering af terapeutiske proteiner isoleret fra spyt af flåter, vampyr flagermus, og myg eller fra giften af slanger med specifik identifikation af målet 24-27. Disse eksempler viser alsidigheden af ​​den ferrichlorid model. I denne artikel har vi fokus på to metoder og studere ferrichlorid induceret trombose på to forskellige skibstype; mesenteriske fartøj og halspulsåren.

Protocol

Alle forsøg med dyr blev godkendt af Alfred Medical Research og Uddannelse Precinct Animal Ethics Committee (E / 1534/2015 / B). Alle kirurgiske manipulationer blev udført i fuld bedøvelse og dyrene ikke oplever smerte på noget tidspunkt. Alle beskrevne forsøg er ikke-inddrivelse. 1. Fremstilling Skære tynde bånd af filterpapir (1 mm x 2 mm). Frisk forberede 2 opløsninger af ferrichlorid på 4% (vægt / volumen) og 6% (vægt / volumen) fortyndet i deioniseret van…

Representative Results

Den fluorescerende intravital mikroskopi observation af mesenteriet vil afsløre akkumuleringen af rhodamin 6G mærkede blodplader og leukocytter langs karvæggen såret af FeCl3. Den gradvise dannelse af en delvis trombe overvåges i en 200 um mesenteriet fartøj (figur 1). En thrombe langsomt vises, og er klart identificerbare efter det første minut af eksponering for FeCl3 (figur 1, t = 60 sek). 40 sekunder efter fjernelse af filtrerpapiret gennemvædet med <su…

Discussion

Ferrichlorid induceret thrombosemodel er et fremragende forskningsværktøj. Som vist i denne undersøgelse, er det ekstremt let at implementere og når de anvendes i kombination med intravital mikroskopi eller Doppler flowmeter, det giver en god overvågning i realtid af thrombedannelse. Justering af tid eksponering og koncentrationen af FeCI3, det giver også mulighed for at producere enten ikke-okklusive eller okklusive tromber.

Men denne fremgangsmåde har også nogle begræns…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende teknisk support fra Joy Yao og Dr. Karen Alt, samt finansiering fra NHMRC og NHF.

Materials

Whatman chromatography paper GE Healthcare 3030917
Iron (III) chloride 40 % (w/v) VWR 24212.298
Rhodamine 6G Sigma R4127
Inverted microscope  Olympus IX81
Digital black-and-white camera  Olympus XM10
Doppler flowmeter Transonic TS420
Nano-doppler flow probe Transonic 0.5 PBS
Ketamine Hospira  0409-2051-05
Xylazine (Rampun) Bayer 75313 
Petri dish Sarstedt 82.1472
Insulin syringe (29 G) BD Ultra-Fine 326103
Cotton tipped applicators BSN medical 211827A
Dynek dysilk sutures Dynek Pty Ltd CS30100
Dulbecco's phosphate buffer saline (PBS) Gibco life technologies 21600-069
Heating pad Kirchner T60

References

  1. Leadley, R. J., Chi, L., Rebello, S. S., Gagnon, A. Contribution of in vivo models of thrombosis to the discovery and development of novel antithrombotic agents. J Pharmacol Toxicol Methods. 43 (2), 101-116 (2000).
  2. Johnson, G. J., Griggs, T. R., Badimon, L. The utility of animal models in the preclinical study of interventions to prevent human coronary artery restenosis: analysis and recommendations. On behalf of the Subcommittee on Animal, Cellular and Molecular Models of Thrombosis and Haemostasis of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb Haemost. 81 (5), 835-843 (1999).
  3. Day, S. M., Reeve, J. L., Myers, D. D., Fay, W. P. Murine thrombosis models. Thromb Haemost. 92 (3), 486-494 (2004).
  4. Sachs, U. J. H., Nieswandt, B. In vivo thrombus formation in murine models. Circ Res. 100 (7), 979-991 (2007).
  5. Furie, B., Furie, B. C. Mechanisms of thrombus formation. N Engl J Med. 359 (9), 938-949 (2008).
  6. Pierangeli, S. S., Liu, X. W., Barker, J. H., Anderson, G., Harris, E. N. Induction of thrombosis in a mouse model by IgG, IgM and IgA immunoglobulins from patients with the antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 74 (5), 1361-1367 (1995).
  7. Kikuchi, S., Umemura, K., Kondo, K., Saniabadi, A. R., Nakashima, M. Photochemically induced endothelial injury in the mouse as a screening model for inhibitors of vascular intimal thickening. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 18 (7), 1069-1078 (1998).
  8. Rosen, E. D., Raymond, S., et al. Laser-induced noninvasive vascular injury models in mice generate platelet- and coagulation-dependent thrombi. Am J Pathol. 158, 1613-1622 (2001).
  9. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thromb Res. 60 (4), 269-280 (1990).
  10. Eckly, A., Hechler, B., et al. Mechanisms underlying FeCl3-induced arterial thrombosis. J Thromb Haemost. 9 (4), 779-789 (2011).
  11. Darbousset, R., et al. Involvement of neutrophils in thrombus formation in living mice. Pathol Biol (Paris). 62 (1), 1-9 (2014).
  12. Denis, C., Methia, N., et al. A mouse model of severe von Willebrand disease: defects in hemostasis and thrombosis). Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (16), 9524-9529 (1998).
  13. Wang, X., Hagemeyer, C. E., et al. Novel single-chain antibody-targeted microbubbles for molecular ultrasound imaging of thrombosis: validation of a unique noninvasive method for rapid and sensitive detection of thrombi and monitoring of success or failure of thrombolysis in mice. Circulation. 125 (25), 3117-3126 (2012).
  14. Wang, X., Smith, P. L., Hsu, M. -. Y., Ogletree, M. L., Schumacher, W. A. Murine model of ferric chloride-induced vena cava thrombosis: evidence for effect of potato carboxypeptidase inhibitor. J Thromb Haemost. 4 (2), 403-410 (2006).
  15. Karatas, H., Erdener, S. E., et al. Thrombotic distal middle cerebral artery occlusion produced by topical FeCl(3) application: a novel model suitable for intravital microscopy and thrombolysis studies. J Cereb Blood Flow Metab. 31 (6), 1452-1460 (2011).
  16. Jirousková, M., Chereshnev, I., Väänänen, H., Degen, J. L., Coller, B. S. Antibody blockade or mutation of the fibrinogen gamma-chain C-terminus is more effective in inhibiting murine arterial thrombus formation than complete absence of fibrinogen. Blood. 103 (6), 1995-2002 (2004).
  17. Dubois, C., Panicot-Dubois, L., Merrill-Skoloff, G., Furie, B., Furie, B. C. Glycoprotein VI-dependent and -independent pathways of thrombus formation in vivo. Blood. 107 (10), 3902-3906 (2006).
  18. Navarrete, A. -. M., Casari, C., et al. A murine model to characterize the antithrombotic effect of molecules targeting human von Willebrand factor. Blood. 120 (13), 2723-2732 (2012).
  19. Rayes, J., Hollestelle, M. J., et al. Mutation and ADAMTS13-dependent modulation of disease severity in a mouse model for von Willebrand disease type 2B. Blood. 115 (23), 4870-4877 (2010).
  20. Lamrani, L., Lacout, C., et al. Hemostatic disorders in a JAK2V617F-driven mouse model of myeloproliferative neoplasm. Blood. 124 (7), 1136-1145 (2014).
  21. Zhang, Y., Ye, J., et al. Increased platelet activation and thrombosis in transgenic mice expressing constitutively active P2Y12. J Thromb Haemost. 10 (10), 2149-2157 (2012).
  22. Schäfer, K., Konstantinides, S., et al. Different mechanisms of increased luminal stenosis after arterial injury in mice deficient for urokinase- or tissue-type plasminogen activator. Circulation. 106 (14), 1847-1852 (2002).
  23. Wang, X., Palasubramaniam, J., et al. Towards effective and safe thrombolysis and thromboprophylaxis: preclinical testing of a novel antibody-targeted recombinant plasminogen activator directed against activated platelets. Circ Res. 114 (7), 1083-1093 (2014).
  24. Decrem, Y., et al. Ir-CPI, a coagulation contact phase inhibitor from the tick Ixodes ricinus, inhibits thrombus formation without impairing hemostasis. J Exp Med. 206 (11), 2381-2395 (2009).
  25. Ma, D., et al. Desmolaris, a novel factor XIa anticoagulant from the salivary gland of the vampire bat (Desmodus rotundus) inhibits inflammation and thrombosis in vivo. Blood. 122 (25), 4094-4106 (2013).
  26. Lei, X., et al. Anfibatide, a novel GPIb complex antagonist, inhibits platelet adhesion and thrombus formation in vitro and in vivo in murine models of thrombosis. Thromb Haemost. 111 (2), 279-289 (2014).
  27. Waisberg, M., et al. Plasmodium falciparum infection induces expression of a mosquito salivary protein (Agaphelin) that targets neutrophil function and inhibits thrombosis without impairing hemostasis. PLoS Pathog. 10 (9), e1004338 (2014).
  28. Owens, A. P., Lu, Y., Whinna, H. C., Gachet, C., Fay, W. P., Mackman, N. Towards a standardization of the murine ferric chloride-induced carotid arterial thrombosis model. J Thromb Haemost. 9 (9), 1862-1863 (2011).
  29. Wang, X., Xu, L. An optimized murine model of ferric chloride-induced arterial thrombosis for thrombosis research. Thromb Res. 115 (1-2), 95-100 (2005).
  30. Tseng, M. T., Dozier, A., Haribabu, B., Graham, U. M. Transendothelial migration of ferric ion in FeCl3 injured murine common carotid artery. Thromb Res. 118 (2), 275-280 (2006).
  31. Bonnard, T., et al. Leukocyte mimetic polysaccharide microparticles tracked in vivo on activated endothelium and in abdominal aortic aneurysm. Acta Biomater. 10 (8), 3535-3545 (2014).
  32. Boulaftali, Y., Lamrani, L., et al. The mouse dorsal skinfold chamber as a model for the study of thrombolysis by intravital microscopy. Thromb Haemost. 107 (5), 962-971 (2012).
  33. Konstantinides, S., Schäfer, K., Thinnes, T., Loskutoff, D. J. Plasminogen activator inhibitor-1 and its cofactor vitronectin stabilize arterial thrombi after vascular injury in mice. Circulation. 103 (4), 576-583 (2001).
  34. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biol. 1 (1), 50-55 (2013).

Play Video

Cite This Article
Bonnard, T., Hagemeyer, C. E. Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel. J. Vis. Exp. (100), e52838, doi:10.3791/52838 (2015).

View Video