Summary

Jernklorid-indusert tromboser Mouse Model på arteria carotis og mesenterium Vessel

Published: June 29, 2015
doi:

Summary

The FeCl3 induced thrombosis model in mice is described herein. A method to monitor thrombus growth by intravital microscopy observation on a mesenteric vessel and by blood flow measurement in the carotid artery is presented.

Abstract

Severe thrombosis and its ischemic consequences such as myocardial infarction, pulmonary embolism and stroke are major worldwide health issues. The ferric chloride injury is now a well-established technique to rapidly and accurately induce the formation of thrombi in exposed veins or artery of small and large diameter. This model has played a key role in the study of the pathophysiology of thrombosis, in the discovery and validation of novel antithrombotic drugs and in the understanding of the mechanism of action of these new agents. Here, the implementation of this technique on a mesenteric vessel and carotid artery in mice is presented. The method describes how to label circulating leukocytes and platelets with a fluorescent dye and to observe, by intravital microscopy on the exposed mesentery, their accumulation at the injured vessel wall which leads to the formation of a thrombus. On the carotid artery, the occlusion caused by the clot formation is measured by monitoring the blood flow with a Doppler probe.

Introduction

Studiet av de mekanismene som er involvert i utviklingen av trombose og evalueringen av effektiviteten av anti-trombotiske midler krever veletablerte eksperimentelle dyremodeller. Store dyremodeller var de første til å bli brukt som de gir store fartøy mer lik for mennesker enn gnagere 1. Men høye kostnader, større fasiliteter som kreves og vanskeligheten med å manipulere dem genetisk er store ulemper for deres bruk og store dyr er nå begrenset til slutten av prekliniske studier gang foreløpige tester på gnagere har gitt konkluderende resultater 2. Med store tilgjengeligheten av transgene og knockout stammer og deres lille størrelse som minimerer mengden av antitrombotiske legemidler som kreves for in vivo testing, er mus i hovedsak brukt for trombose forskning. Derfor har flere modeller av blodpropp er utviklet i mus tre.

Mange etablerte trombose modeller forstyrre intimet lag av karveggen, etterfulgt av eksponering av under endotelial ekstracellulære matriks til blodstrømmen å indusere dannelsen av blodpropper 4. Den tromber kan oppstå ved eksponering av kollagen som utløser aktivering av blodplater og / eller fra eksponering av vev faktor som aktiverer koagulasjonskaskaden 5. Flere teknikker blir så anvendt for å oppnå den første skade fartøyet. Pierangeli et al. Utviklet en mekanisk avbrudd modell med en mikro verktøyet på lårvenen 6. Kikushi et al., Beskrives en modell som består i administrering av en foto reaktiv forbindelse (Rose Bengal) som akkumuleres i det ytre lipid bilaget av endotelceller, etterfulgt av den spesifikke eksitasjon av karveggen av interesse med grønt lys (540 nm) 7. Skaden kan også være forårsaket av en kort høy intensitet puls laser belysning 8. En annen teknikk for det første etablert på halspulsåren hos rotterbestår i at topisk anvendelse av ferriklorid (FeCl3) 9. I dette tilfelle, idet fartøyet denudasjon resultatene fra frie radikaler som genereres av FeCl3 som forårsaker lipidperoksidasjon og ødeleggelse av endotelceller 10. Skaden induserer ekspresjon av flere adhesjonsmolekyler utløsende blodplateadhesjon og aggregering samt leukocytter rekruttering. Det har blitt demonstrert at leukocytter, særlig neutrofiler, spiller en avgjørende rolle i aktivering av koagulasjonskaskaden som fører til trombose 11. Denne fremgangsmåte er godt egnet til å reprodusere koaguleringskaskaden; etterforskere må huske på at i denne musemodell, er trombose vanligvis indusert hos friske fartøy mens blodpropp hos mennesker er i hovedsak skjer i syke f.eks. aterosklerotiske fartøy.

Når denne modellen er meget enkel å gjennomføre, og er også effektive i mus, er det nå mest brukt trombose modusl for små dyr in vivo studier. I tillegg har denne teknikken muligheten til å indusere dannelsen av tromber i en rekke fartøyer. Target fartøy kan være arterier eller vener med stor diameter (carotis, femoral, vena cava) eller liten diameter (mesentery, cremaster) 12-14. Mer nylig ble det også brukt på den proksimale midtre cerebral arterie for å utvikle en modell for slag 15. Den trombose Formasjonen kan observeres direkte ved intravital mikroskopi etter fluorescerende merking av blodplater og leukocytter eller overvåkes ved måling av blodstrømmen reduseres med en temperatursonde eller en sonde Doppler 12,16,17. Flere parametre som okklusjon tid, trombedannelse tid eller trombe størrelse kan deretter bli undersøkt. De fysiologiske forskjeller mellom karene undersøkt resultat i betydelige variasjoner i tromber oppnådd. Derfor etterforskere vanligvis velge målet fartøy i henhold til parametrene de ønsker å målere og / eller sykdommen sette de ønsker å undersøke. Vanligvis er modellen på halspulsåren mer relevant for forskning på aterotrombose relatert til hjerteinfarkt eller hjerneslag mens studier på vena cava er mer relevant for forskning på dyp venetrombose. Tilgjengeligheten av de forskjellige fartøyene bestemmer også den metoden som brukes til å måle tromben vekst. For eksempel, den mesenteriske fartøyene er lett tilgjengelige, noe som gjør denne modellen godt egnet for intra mikroskopisk observasjon og studiet av dynamikken i trombedannelse. Halspulsåren er mindre tilgjengelig, men større slik at blodstrømsmåling og gir en utmerket modell for å studere okklusivt trombose.

Den jernklorid indusert trombose modellen har gitt enorm fremgang i forståelsen av denne patologi. Det har blitt brukt i mange studier som fokuserer på rollen til von Willebrand-faktor i trombose formasjonen 18,19. Kombinert med genetisk modifikasjons- teknikker, har det tillatt identifisering av mange bestemt gen involvert i blodpropp. Lamrani et al. for eksempel har vist at en knock-in av JAK2 V617F genet er assosiert med en akselererende dannelse av ustabile blodpropp 20. Zhang et al. Har undersøkt den fysiologiske implikasjon av P2Y12 blodplate-reseptoren og viste at transgene mus som overuttrykker spesielt denne reseptoren på blodplater bare, viste en raskere og mer stabil trombedannelse i mesenterisk arterie skadet med FeCl3 21. Det avgjørende rolle Tissue-type plasminogen aktivator (tPA) og urokinase-type plasminogen aktivator (uPA) i fibrin nedbrytningsprosessen er også blitt undersøkt på denne måten 22. Videre denne modellen gir også en enkel og nøyaktig måte å teste de fibrinolytiske kapasiteten til mange nye legemidler in vivo. For eksempel, har Wang et al. Benyttet denne modellen for the preklinisk validering av en roman rekombinant plasminogenaktivator rettet mot aktiverte plater 23. Denne metoden har også gjort det mulig for validering av terapeutiske proteiner isolert fra spytt av flått, vampyrflaggermus, og mygg eller fra giften av slanger med spesifikk identifisering av målet 24-27. Disse eksemplene viser allsidigheten av ferriklorid modell. I denne artikkelen fokuserer vi på to metoder og studere jernklorid indusert trombose på to forskjellige skipstype; mesenterisk fartøy og halspulsåren.

Protocol

Alle forsøk med dyr ble godkjent av Alfred Medical Research and Education Precinct Animal etiske komité (E / 1534/2015 / B). Alle kirurgiske manipulasjoner ble utført under full narkose og dyrene ikke opplever smerte på noe tidspunkt. Alle forsøk som er beskrevet er ikke-utvinning. 1. Forberedelse Skjær tynne bånd av filterpapir (1 mm x 2 mm). Tilbereder to oppløsninger av treverdig jernklorid på 4% (vekt / volum) og 6% (w / v) fortynnet i avionisert vann. Forbe…

Representative Results

Det fluorescerende intravital mikroskopi observasjon av mesenteriet vil avdekke akkumulering av Rhodamine 6G merkede blodplater og leukocytter langs karveggen skadet av FeCl3. Den progressive dannelse av en partiell trombe blir overvåket på en 200 um mesenteriet fartøy (figur 1). En trombe langsomt vises, og er klart identifiserbar etter det første minutt av eksponering for FeCl3 (figur 1, t = 60 sek). 40 sekunder etter fjernelse av filterpapir dynket med …

Discussion

Den jernklorid indusert trombose modellen er et utmerket verktøy for forskning. Som vist i denne studien, er det svært enkelt å implementere og når de brukes i kombinasjon med intramikroskopi eller Doppler strømningsmåler, gir det en god sanntidsovervåking av trombedannelse. Justering av tidseksponering og konsentrasjonen av FeCl3, og tilbyr også muligheten for å fremstille enten ikke-okklusive eller okklusive tromber.

Imidlertid har denne metoden også noen begrensninger…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke teknisk støtte fra Joy Yao og Dr. Karen Alt, samt midler fra NHMRC og NHF.

Materials

Whatman chromatography paper GE Healthcare 3030917
Iron (III) chloride 40 % (w/v) VWR 24212.298
Rhodamine 6G Sigma R4127
Inverted microscope  Olympus IX81
Digital black-and-white camera  Olympus XM10
Doppler flowmeter Transonic TS420
Nano-doppler flow probe Transonic 0.5 PBS
Ketamine Hospira  0409-2051-05
Xylazine (Rampun) Bayer 75313 
Petri dish Sarstedt 82.1472
Insulin syringe (29 G) BD Ultra-Fine 326103
Cotton tipped applicators BSN medical 211827A
Dynek dysilk sutures Dynek Pty Ltd CS30100
Dulbecco's phosphate buffer saline (PBS) Gibco life technologies 21600-069
Heating pad Kirchner T60

References

  1. Leadley, R. J., Chi, L., Rebello, S. S., Gagnon, A. Contribution of in vivo models of thrombosis to the discovery and development of novel antithrombotic agents. J Pharmacol Toxicol Methods. 43 (2), 101-116 (2000).
  2. Johnson, G. J., Griggs, T. R., Badimon, L. The utility of animal models in the preclinical study of interventions to prevent human coronary artery restenosis: analysis and recommendations. On behalf of the Subcommittee on Animal, Cellular and Molecular Models of Thrombosis and Haemostasis of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb Haemost. 81 (5), 835-843 (1999).
  3. Day, S. M., Reeve, J. L., Myers, D. D., Fay, W. P. Murine thrombosis models. Thromb Haemost. 92 (3), 486-494 (2004).
  4. Sachs, U. J. H., Nieswandt, B. In vivo thrombus formation in murine models. Circ Res. 100 (7), 979-991 (2007).
  5. Furie, B., Furie, B. C. Mechanisms of thrombus formation. N Engl J Med. 359 (9), 938-949 (2008).
  6. Pierangeli, S. S., Liu, X. W., Barker, J. H., Anderson, G., Harris, E. N. Induction of thrombosis in a mouse model by IgG, IgM and IgA immunoglobulins from patients with the antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 74 (5), 1361-1367 (1995).
  7. Kikuchi, S., Umemura, K., Kondo, K., Saniabadi, A. R., Nakashima, M. Photochemically induced endothelial injury in the mouse as a screening model for inhibitors of vascular intimal thickening. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 18 (7), 1069-1078 (1998).
  8. Rosen, E. D., Raymond, S., et al. Laser-induced noninvasive vascular injury models in mice generate platelet- and coagulation-dependent thrombi. Am J Pathol. 158, 1613-1622 (2001).
  9. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thromb Res. 60 (4), 269-280 (1990).
  10. Eckly, A., Hechler, B., et al. Mechanisms underlying FeCl3-induced arterial thrombosis. J Thromb Haemost. 9 (4), 779-789 (2011).
  11. Darbousset, R., et al. Involvement of neutrophils in thrombus formation in living mice. Pathol Biol (Paris). 62 (1), 1-9 (2014).
  12. Denis, C., Methia, N., et al. A mouse model of severe von Willebrand disease: defects in hemostasis and thrombosis). Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (16), 9524-9529 (1998).
  13. Wang, X., Hagemeyer, C. E., et al. Novel single-chain antibody-targeted microbubbles for molecular ultrasound imaging of thrombosis: validation of a unique noninvasive method for rapid and sensitive detection of thrombi and monitoring of success or failure of thrombolysis in mice. Circulation. 125 (25), 3117-3126 (2012).
  14. Wang, X., Smith, P. L., Hsu, M. -. Y., Ogletree, M. L., Schumacher, W. A. Murine model of ferric chloride-induced vena cava thrombosis: evidence for effect of potato carboxypeptidase inhibitor. J Thromb Haemost. 4 (2), 403-410 (2006).
  15. Karatas, H., Erdener, S. E., et al. Thrombotic distal middle cerebral artery occlusion produced by topical FeCl(3) application: a novel model suitable for intravital microscopy and thrombolysis studies. J Cereb Blood Flow Metab. 31 (6), 1452-1460 (2011).
  16. Jirousková, M., Chereshnev, I., Väänänen, H., Degen, J. L., Coller, B. S. Antibody blockade or mutation of the fibrinogen gamma-chain C-terminus is more effective in inhibiting murine arterial thrombus formation than complete absence of fibrinogen. Blood. 103 (6), 1995-2002 (2004).
  17. Dubois, C., Panicot-Dubois, L., Merrill-Skoloff, G., Furie, B., Furie, B. C. Glycoprotein VI-dependent and -independent pathways of thrombus formation in vivo. Blood. 107 (10), 3902-3906 (2006).
  18. Navarrete, A. -. M., Casari, C., et al. A murine model to characterize the antithrombotic effect of molecules targeting human von Willebrand factor. Blood. 120 (13), 2723-2732 (2012).
  19. Rayes, J., Hollestelle, M. J., et al. Mutation and ADAMTS13-dependent modulation of disease severity in a mouse model for von Willebrand disease type 2B. Blood. 115 (23), 4870-4877 (2010).
  20. Lamrani, L., Lacout, C., et al. Hemostatic disorders in a JAK2V617F-driven mouse model of myeloproliferative neoplasm. Blood. 124 (7), 1136-1145 (2014).
  21. Zhang, Y., Ye, J., et al. Increased platelet activation and thrombosis in transgenic mice expressing constitutively active P2Y12. J Thromb Haemost. 10 (10), 2149-2157 (2012).
  22. Schäfer, K., Konstantinides, S., et al. Different mechanisms of increased luminal stenosis after arterial injury in mice deficient for urokinase- or tissue-type plasminogen activator. Circulation. 106 (14), 1847-1852 (2002).
  23. Wang, X., Palasubramaniam, J., et al. Towards effective and safe thrombolysis and thromboprophylaxis: preclinical testing of a novel antibody-targeted recombinant plasminogen activator directed against activated platelets. Circ Res. 114 (7), 1083-1093 (2014).
  24. Decrem, Y., et al. Ir-CPI, a coagulation contact phase inhibitor from the tick Ixodes ricinus, inhibits thrombus formation without impairing hemostasis. J Exp Med. 206 (11), 2381-2395 (2009).
  25. Ma, D., et al. Desmolaris, a novel factor XIa anticoagulant from the salivary gland of the vampire bat (Desmodus rotundus) inhibits inflammation and thrombosis in vivo. Blood. 122 (25), 4094-4106 (2013).
  26. Lei, X., et al. Anfibatide, a novel GPIb complex antagonist, inhibits platelet adhesion and thrombus formation in vitro and in vivo in murine models of thrombosis. Thromb Haemost. 111 (2), 279-289 (2014).
  27. Waisberg, M., et al. Plasmodium falciparum infection induces expression of a mosquito salivary protein (Agaphelin) that targets neutrophil function and inhibits thrombosis without impairing hemostasis. PLoS Pathog. 10 (9), e1004338 (2014).
  28. Owens, A. P., Lu, Y., Whinna, H. C., Gachet, C., Fay, W. P., Mackman, N. Towards a standardization of the murine ferric chloride-induced carotid arterial thrombosis model. J Thromb Haemost. 9 (9), 1862-1863 (2011).
  29. Wang, X., Xu, L. An optimized murine model of ferric chloride-induced arterial thrombosis for thrombosis research. Thromb Res. 115 (1-2), 95-100 (2005).
  30. Tseng, M. T., Dozier, A., Haribabu, B., Graham, U. M. Transendothelial migration of ferric ion in FeCl3 injured murine common carotid artery. Thromb Res. 118 (2), 275-280 (2006).
  31. Bonnard, T., et al. Leukocyte mimetic polysaccharide microparticles tracked in vivo on activated endothelium and in abdominal aortic aneurysm. Acta Biomater. 10 (8), 3535-3545 (2014).
  32. Boulaftali, Y., Lamrani, L., et al. The mouse dorsal skinfold chamber as a model for the study of thrombolysis by intravital microscopy. Thromb Haemost. 107 (5), 962-971 (2012).
  33. Konstantinides, S., Schäfer, K., Thinnes, T., Loskutoff, D. J. Plasminogen activator inhibitor-1 and its cofactor vitronectin stabilize arterial thrombi after vascular injury in mice. Circulation. 103 (4), 576-583 (2001).
  34. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biol. 1 (1), 50-55 (2013).
check_url/52838?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bonnard, T., Hagemeyer, C. E. Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel. J. Vis. Exp. (100), e52838, doi:10.3791/52838 (2015).

View Video