Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

对离体乳头肌的心脏收缩力对小鼠的研究收缩尺寸

Published: September 17, 2015 doi: 10.3791/53076

Summary

鼠左心室乳头肌可用于研究在体外心脏收缩。本文详细介绍了隔离和实验方案,研究心脏收缩的特点。

Abstract

乳头肌从成年小鼠心脏分离,可用于在不同的生理/病理条件下,研究心脏收缩。独立的外部影响,如血管紧张或神经体液状态的收缩特性可以被评估。它描述了单细胞测量孤立心肌细胞之间, 超声心动图体内研究科学的方法。因此,乳头肌制剂作为一个很好的模型来研究心脏生理/病理生理学和可用于像由药剂的调制或转基因动物模型的探索调查。这里,我们描述分离鼠左前乳头肌以调查在器官浴设置心脏收缩的方法。在对比一个肌肉条准备从心室壁分离,乳头肌可以全盘而不损伤肌肉Tissu酒店制备Ë严重。器官浴设置包括几个温度控制,毒气和电极配备器官浴室。将分离的乳头肌固定在器官浴室和电刺激。诱发抽搐力是使用压力传感器和参数,如抽搐力的振幅和抽搐动力学分析记录。不同的实验方案,可以执行以调查收缩剂如儿茶酚胺或其他药物的碳酸钙和频率相关的收缩以及剂量 - 反应曲线。此外,像急性缺血病理状况可以模拟。

Introduction

像离子通道参照它们的作用为心脏收缩蛋白的调查是必不可少的发现不同的病理机制,并建立新的治疗策略用于心脏疾病,如局部缺血和心脏衰竭。

哺乳动物心肌收缩功能已知通过各种离子通道,转运和其他蛋白质被调制。动作电位诱发激活电压依赖性肌膜L型通道引出的Ca 2+内流 ,从细胞外空间,并随后到 Ca 2+ -诱导 Ca 2+释放(CICR)1,这将触发蜂窝收缩2。钙 -信号起着心脏收缩力和适应方面发挥核心作用的生理或病理压力。儿茶酚胺激活心脏β肾上腺素能受体,从而刺激腺苷酸环化酶(AC)的合成营。被激活,proteiÑ ​​激酶A(PKA)的磷酸化细胞内的不同和膜相关蛋白质如L-型Ca 2+通道 ,磷蛋白和兰尼碱受体导致的瞬变和心脏收缩1,3,4修饰。的cAMP通过磷酸二酯酶(PDE)的降解。 G s - 偶联受体比β肾上腺素能受体其它的活化也导致的cAMP蓄积。

心室肌细胞肌条收缩测量的技术已经非常成熟的大型哺乳动物物种5-8。基于基因的可能性靶向小鼠建立的方法来分析鼠心脏生理是重要的。然而,大约在小鼠中分离肌肉制剂的生理特性的现有数据的差异取决于实验条件9-12。

所描述的方法被用来分析左心室乳头肌的预心脏收缩parations 体外 。在没有影响改变心肌收缩力在体内 ,如血压,神经体液刺激和生理或代谢应激进行心肌收缩力的研究。承包肌肉制剂的跳动速率可以严格定义,改变随意。抽搐力能够在特定刺激,如钙浓度,跳动频率或温度的情况下进行分析。此外,这种方法可用于研究不同信号传导途径的组件和通过控制上述实验条件下进行比较的转基因小鼠模型的心脏的性能。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

注:分离过程的基本步骤示于图1中的所有步骤都在下面详细描述的协议。乳头肌隔离,安装在器官浴室,采集和分析是在一个连续的和强制性的时间表进行。

所有的动物实验均按照有关保护动物的有德国法律进行,并批准了海德堡大学的伦理审查委员会。

1.准备仪表

  1. 对于收缩测量使用多节器官浴设置。 体收缩器官浴中设置的组件示于图2。
    注意:为尽量减少的时间制备的乳头肌和实验方案的开始之间的时间量,建立设备和事先准备缓冲器收集实验tissue.This provid上课的时间,该组织保持生存能力进行实验的最大量。
  2. 启动计算机和数据采集设备。打开器官浴热(预设为32℃),并允许单位预先设定的温度。
  3. 准备采集设备。启动中提到的软件手册记录数据。
  4. 检查,并进行校准(如有必要)在每个通道上,零所有通道从各自的力换能器(与该信道相关联)提供的电信号标准化到由经认证的重量供给2克力。
  5. 开启气体供给(95%O 2/5%CO 2)到器官浴室中。连续气在整个协议的所有测量室。

2.准备缓冲区和生理解决方案

  1. 准备一个的Krebs-Henseleit缓冲溶液以达到最终浓度为119毫摩尔NaCl; 25毫米的NaHCO 3; 4.6毫米氯化钾; 11MM葡萄糖; 1毫米的Na-Pyruvate; 1.5毫米氯化钙2; 1.64毫米硫酸镁 ; 1.18毫KH 2 PO 4和调节pH值至7.4(见表1的生理溶液)。
  2. 制备单独的Krebs-Henseleit缓冲溶液如步骤2.1中所述用另外30毫2,3-丁二酮单肟(BDM)和50的IE肝素/毫升隔离期间使用。凉溶液至4℃(见表1制备的溶液)。缺血模拟,如表1中所述制备缺血溶液。
  3. 对于离子的协议-依赖性收缩, 离子加入到的Krebs-Henseleit缓冲溶液到请求的最终浓度。
    注意:它直接使用前准备这些解决方案,并与卡波盖斯以避免Calciumcarbonate沉淀。使用前Prewarm解决方案,以32℃。

3.准备的乳头切除术过程中使用的冲气管道和解剖菜

  1. 连接软气唱管(外径2-4毫米),气体连接(100%的氧气,卡波备选地)与专家工作。
  2. 创建冲气管解剖盘内配合的封闭环。穿刺放气管数次,一个连续鼓泡是有保证的。此放气管可多次使用。
  3. 制备夹层菜与硅弹性体在底部(0.5厘米厚),以使销可以卡到其中。此菜可多次使用。

4.分离的小鼠左前乳头肌

注:在启动乳头肌的隔离前,检查煤气管道是畅通无阻的。

  1. 准备器官浴设置为启动乳头肌的准备之前提到的协议部分1-3。制备所有溶液在实验当天。
  2. 颈椎脱位accordi牺牲鼠标(约8-12周龄)NG专家的工作和机构准则。
  3. 通过固定前爪固定在背侧位置的动物和后爪上的夹层板,通过与锋利的骨剪刀肋切割打开两侧的胸腔侧,然后切断与一个横向切口隔膜。取出心包。现在的心脏和主动脉的访问。
  4. 修复钝钳的心脏上的血管共干靠近心脏,迅速分开心脏与肺部剪刀和周围的组织。
  5. 跳动的心脏转移至培养皿装有充以氧(步骤2.2)中的冷却溶液制备。让心脏跳动,并通过触摸心尖钳刺激心脏收缩轻声。
  6. 一旦该心脏完全exsanguinous,其传输到解剖盘充满冷却制备溶液(步骤2.2)和通入O 2。从这个步骤上使用立体显微镜。
  7. 修复老天室温通过右心室使心脏从背部可见(右心室位于右侧,从运营商的观点)一个小针。
  8. 采用显微剪刀分开两个心房的房室水平,切从心室连接组织并丢弃。通过从AV-阀级到心脏,避免任何机械压力的顶点室壁执行剪切。
  9. 打开心室和修复左路游离壁用钳子,因此具有一起来看看这两个左心室乳头肌。
  10. 略切去上左前乳头肌的两侧保持在乳头肌制备瓣膜帆的一部分的心室组织的横向和避免接触或拉伸乳头肌尽可能。解剖从乳头肌的其余室壁组织。
  11. 在乳头肌准备两侧安装丝线(7/0,指标0.5)aration,一个在瓣膜帆,一个在肌肉部分。修复准备在器官浴室充满器官浴的解决方案,并通入卡波,温度32℃的建议。

5.平衡乳头肌和刺激

  1. 在器官浴中的固定后立即刺激乳头肌制备的矩形脉冲(2毫秒持续时间和100mA的电流)在1赫兹的刺激频率。
  2. 确保器官浴溶液的频繁变化,或者通过连续变化或根据所使用的器官浴类型的设置频繁地手动改变(每5分钟)。
  3. 逐步提高预紧直到最大抽搐力达。后面没有进一步增强在抽搐力预紧的增加时,最大抽搐力达到。
  4. 平衡后的45-60分钟,开始实验方案。

注意:下面列出的实验方案包括标准的机动生理和病理条件下心肌收缩的特点。在代表节中,我们还详细示出代表性的结果说明这些协议(也见表2)。

  1. 记录和试验方案分析
    1. 对于记录,使用合适的软件,有足够的时间分辨率(采集率≥1kHz时)。
    2. 分析参数,包括抽搐力的振幅(高度),达峰时间张力(TTP)和半数最大松弛时间(R 50 / TFALL,分别)中提到的软件程序(如实施例图表的ADInstruments 5.5, 参见图4)。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

本手稿的孤立鼠的乳头肌收缩制剂测量值的协议被调谐到最佳条件,以实现在生理条件下可再现的实验结果。为了确定最佳的实验条件下,我们进行试点实验,不同的器官浴温度和细胞外钙离子浓度(参见12)。这里描述的协议用的1.5mM的胞外钙浓度和32℃的温度下进行。

基底收缩特性

要抽搐力振幅表征基底收缩性质,参数,抽搐率,达峰时间(定义为达到从5%基底起始最大收缩力所需的时间)和松弛50时间(半最大松弛时间;定义为所需的时间达到一半松弛力)在本协议中使用。 TW的代表痕迹痒和这些参数的分析示出图3A-B中

钙依赖收缩

细胞外钙浓度关键确定心脏兴奋收缩耦联以及通过改变该参数,收缩装置的心肌细胞的钙敏感性进行评估。 如图3C中改变钙瞬变的胞外钙浓度导致在改变的抽搐力产生的增加和随后。钙浓度的胞外溶液的增大一步一步在1.5至7毫米)。通过应用该协议,关于收缩装置的钙依赖性收缩的钙稳态可以评估。在该手稿中使用的器官浴设置,通过改变器官浴SOLUT执行的胞外钙浓度的变化离子手动导致起搏的短时中断,并随后向一个人工postrest增强(见非起搏间隔后力增强)。

非起搏间隔后力增强(PRP)

在一个收缩周期钙的端部螯合成sarcoplasmatic网(SR)主要由ATP依赖钙泵(SERCA,肌浆-内质​​网钙ATP酶),从而在舒张期间降低细胞内钙浓度。如果两个收缩之间的时间间隔变大,更多的钙可以抽回SR并且随后更钙能在下一个激励期间被释放。该postrest-增强协议(PRP)描述了先前的刺激定​​义的持续时间的休整期之后,抽搐力的振幅的变化。在人类,大鼠以及小鼠心脏组织,抽搐力的增大显示出10,12-14,16( 13,14,16,17的心脏组织的不利。该协议用 ​​于评估舒张钙积累的功能在细胞内储4,15。

频率相关的收缩(FFR)

力频率的关系描述了跳动率和收缩力抽搐(鲍迪奇效应)18之间的相关性。力-频率关系哺乳动物物种和实验条件19之间显著不同。在小鼠中,显示出打浆速率和收缩强度之间的特定相关性。在32℃,0.1-1赫兹刺激率之间的初始负FFR被示出,而FFR被证明是在1-4赫兹刺激9-12(图3E)的范围内积极。

在没有myocardium搏动频率和收缩描述20,21之间的负相关关系。在该手稿,标准起搏频(1赫兹)降低到0.1赫兹,并从那里开始,则起搏频率被逐步升高到5赫兹(0.2; 0.5; 1; 2; 3; 4; 5赫兹)。

β肾上腺素能刺激

像肾上腺素和去甲肾上腺素儿茶酚胺这期间(病理)生理应激条件下通过激活β肾上腺素能受体调节心肌收缩力被释放激素。儿茶酚胺医源性应用起着临床治疗急性心脏衰竭,暂时加强心肌收缩力显着的作用。这种效果也可以看到并研究在体外研究 。作为β肾上腺素受体 ​​的激动剂,异丙肾上腺素增加收缩抽搐力。 在体内,增加跳动频率也会发生(正性肌力作用),其此外调制收缩反应(鲍迪奇效果,另见上文FFR协议中所述)。使用此处描述的方法中,异丙肾上腺素的肌力作用可以在一个固定的打浆速率进行调查没有这种变时作用3F)。 β-肾上腺素受体的刺激也可以通过其他激素如组胺实现。在小鼠心室组织,在其中包含的初始正性肌力作用,但与在抽搐力的瞬时下降如图3G双相反应应用组胺结果。出于这个原因,通过应用组胺测量数据的解释似乎很难;尤其是其受体激活小鼠并没有完全解决。

缺血性条件

急性心肌缺血被定义为血液流动,导致与氧心脏组织的供应不足一个严格的限制,并养分导致的损失的收缩,缺血性挛缩和细胞死亡的发展。为了模拟缺血体外,肌肉被暴露30分钟,以葡萄糖和丙酮酸盐-自由胞外溶液鼓泡用95% N 2/5%CO 2。这一做法的ATP在心肌细胞耗尽,应引起。在开始缺血模拟后几分钟,抽搐力的下降发生在外观描绘成在预置张力( 图3H)自发增加缺血性挛缩。

表1

表1:成分及所使用的缓冲溶液的浓度。

表2 />

表2:建议试验性的协议列表调查孤立乳头肌的准备心肌收缩力。

图1
图乳头肌准备1.关键步骤。这两个心房(A)解剖。 二)对左室前壁乳头肌查看。 ( 三)夹层从心室壁乳头肌。 (四)在器官浴室固定前两丝线的附件。 请点击此处查看该图的放大版本。

6fig2.jpg“/>
图2.器官浴设置。器官浴设置的( 一)示意图设置。配备有通气玻璃料水套器官浴室提供稳定的温度控制。以产生方波脉冲场电极被附连到组织支撑。的力传感器检测的肌肉,从而放大所产生的信号的收缩。这个信号被滤波并传送回计算机由A / D转换器。该信号然后被数字化并可以保存供以后的分析。 二)照片的单个乳头肌固定编制从器官浴设置(C)器官浴室。 请点击此处查看该图的放大版本。

皮克“/>
图鼠左前乳头肌收缩力的测量代表性的成果。(A)抽搐力的振幅的代表分析,达峰时间紧张(TTP)和单抽搐半最大舒张时间(R 50)。根据基底刺激1赫兹(B)的搏动频率鼠乳头肌制剂刺激抽搐,期间增加细胞外钙离子浓度(C)代表的录音,在规定的休息时间间隔(后剩下的增强,PRP)(D),或不同刺激率(力频率的关系,FFR)(E)和应用后Isoprenaline-(F)或组胺的应用程序(G)的浓度增加。刺激抽搐和预紧期间缺血刺激(H)代表记录。S://www.jove.com/files/ftp_upload/53076/53076fig3large.jpg“目标=”_空白“>点击此处查看该图的放大版本。

图4
收缩参数图4.分析。为了表征收缩功能,参数,包括抽搐力的振幅(高度),达峰时间张力(TTP)和半数最大松弛时间(R 50 / TFALL,分别)在这个协议中使用的软件分析计划表5.5(的ADInstruments)。 请点击此处查看该图的放大版本。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

在这个手稿,我们描述的方法来研究的鼠的乳头肌收缩力在体外可被用来回答有关心脏生理和病理小鼠几个科学问题以及支持的转基因品系的分析和新药物的方法的发现治疗心脏功能障碍。我们示出了使用这种方法来评估的心肌收缩性生理,病理和药理性质参照图3)。这里未示出的其它应用包括使用不同的药理学试剂的细胞内途径的评价(参见12)。

心脏疾病,如缺血性心脏疾病和心脏衰竭显示杰出的临床问题,并保持对死亡率和发病率全世界22的首要原因。为了表达在心脏许多蛋白质​​,其对心肌收缩作用是STIL升知之甚少或没有研究到现在。对离体乳头肌收缩力的测量表明,研究体外心脏收缩在小鼠模型中有意义的和有效的方法。

尽管该方法在技术上是可行并显示了良好的再现性,也有必要的几个关键步骤,以确保它的成功:首先,分离的心脏后,确保在制备过程期间血液中的游离溶液,以便能够正常工作(可视化)。另一个关键步骤是组织准备工作认真执行,以确保可行性,避免任何接触或拉伸乳头肌。如在方法部分中描述尽量保持瓣膜帆连接到乳头肌,以确保无故障附着丝线。制备在器官浴室的固定后,在第一分钟改变器官浴溶液数次冲洗出BDM。 Increa瑟制剂的预紧略微逐步直到没有更多的增加抽搐力发生。有一些排除标准的单一协议的评估,如心律失常节拍和预紧作为缺血性条件的标志自发的增加。几个实验方案如postrest增强和力频率的关系可以用相同的制剂样品进行,而一个新的制剂样品应当用于对收缩药物介导的效应的分析。制备协议被优化以分离左前乳头肌。适配协议,也后部肌肉可用于收缩的测量此方法。

隔离的乳头肌的测量该方法提供了关于钙,温度和频率有关的收缩力的各种信息,以及有关应用药理学试剂或SIM后收缩反应ulation的病理状况。然而,这些结果的解释和外插需要与科学小心处理。所描述的方法是体外模型心肌,从它的正常环境和神经支配断开。因此,实验条件不生理和在这个协议中接收到的结果不能无需深入解释被转移到体内的情况。例如,该方法没有考虑到在血压,激素或外在神经控制帐户改变。的氧和代谢补充剂的制剂在器官浴中的供给受到扩散限制。的氧和代谢补充剂供应不足会导致缺血性病症,随后无效的实验结果。为了避免这种情况,在试验条件应该是最佳的,特别是关于氧合器官浴溶液,钙的浓度和温度。与这里描述的协议的实验条件下,有效的结果可以得到。

在这份手稿模拟类缺血病症的方法。此外缺氧的仿真,所述器官浴中的溶液的所有含能补充被耗尽模仿缺血状态体内尽可能好。在对比缺氧,它表明,氧和能源供应的同时消耗导致的变化的钙瞬变媲美见于体内 23的改变。

对小鼠的乳头肌的隔离中描述的方法可以适用于其它物种例如大鼠。然而,器官浴设置的最佳条件可以在不同的动物模型之间,具体费用可能会进行调整。可能需要自适应参数是温度和生理溶液中的钙浓度。

在总表Y,这种收缩方法提供了一个非常有效的方法来评估心脏生理学,病理生理学和药理学。如果使用得当,它为研究心肌收缩在一个孤立的,但良好的控制环境的能力。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

Acknowledgments

这项工作是由德意志研究联合会(B&K 196“Signaltransduktion北adaptativen UND maladaptiven kardialen改建-Prozessen”,FR 1638 / 1-2)以及由DZHK(德国中心心血管研究,健康研究的德国中心的部分支持,这是一个BMBF(德国教育和研究部的)行动)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761 
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Glucose Sigma-Aldrich D9434 
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P5280 
Calcium chloride dihydrate Sigma-Aldrich 223506
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich 230391
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P 5655
2,3-Butanedione monoxime Sigma-Aldrich B0753
3-Isobutyl-1-methylxanthine Sigma-Aldrich I5879 Hazard statement H 302, solve in DMSO
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650
Isoprenaline hydrochloride Sigma-Aldrich I5627 Hazard statement H 315-H319-H335
Sodium Heparine 250.000 IE/10 ml ratiopharm PZN 3874685
Histamine dihydrochloride Sigma-Aldrich H7250 Hazard statement H 315-H 317-H319- H334-H335

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Endoh, M. Cardiac Ca2+ signaling and Ca2+ sensitizers. Circ J. 12 (12), 1915-1925 (2008).
  2. Bers, D. M. Calcium cycling and signaling in cardiac myocytes. Annu Rev Physiol. 70, 23-49 (2008).
  3. Bers, D., Despa, S. M. Na/K-ATPase—an integral player in the adrenergic fight-or flight response. Trends Cardiovasc Med. 19, 111-118 (2009).
  4. Bers, D. M. Cardiac excitation–contraction coupling. Nature. 415, 198-205 (2002).
  5. Pieske, B., et al. al. Ca(2+)-dependent and Ca(2+)-independent regulation of contractility in isolated human myocardium. Basic Res Cardiol. 92, Suppl 1. 75-86 (1997).
  6. Corbin, J. Sildenafilcitrate does not affect cardiac contractility in human or dog heart. Curr Med ResOpin. 19 (8), 747-752 (2003).
  7. Romero-Vecchione, E., Vasquez, J., Rosa, F. Direct negative inotropic effect of cocaine in rat ventricle strip. Acta Cient Venez. 47 (1), 17-23 (1996).
  8. Näbauer, M., et al. Positive inotropic effects in isolated ventricular myocardium from nonfailing and terminally failing human hearts. Eur J Clin Invest. 18 (6), 600-606 (1988).
  9. Gao, W. D., Perez, N. G., Marban, E. Calcium cycling and contractile activation in intact mouse cardiac muscle. J Physiol. 507, 175-184 (1998).
  10. Bluhm, W. F., Kranias, E. G., Dillmann, W. H., Meyer, M. Phospholamban: a major determinant of the cardiac force-frequency relationship. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 278 (1), H249-H255 (2000).
  11. Redel, A., Baumgartner, W., Golenhofen, K., Drenckhahn, D., Golenhofen, N. Mechanical activity and force-frequency relationship of isolated mouse papillary muscle: effects of extracellular calcium concentration, temperature and contraction type. Pflugers Arch. 445 (2), 297-304 (2002).
  12. Uhl, S., Mathar, I., Vennekens, R., Freichel, M. Adenylyl cyclase-mediated effects contribute to increased Isoprenaline-induced cardiac contractility in TRPM4 deficient mice. JMCC. 74, 307-317 (2014).
  13. Allen, D. G., Jewell, B. R., Wood, E. H. Studies of the contractility of mammalian myocardium at low rates of stimulation. J Physiol. 254 (1), 1-17 (1976).
  14. Pieske, B., Maier, L. S., Schmidt-Schweda, S. Sarcoplasmic reticulum Ca2+ load in human heart failure. Basic Res Cardiol. 97, Suppl 1. 163-171 (2002).
  15. Koch-Weser, J., Blinks, J. R. The Influence of the Interval between Beats on Myocardial Contractility. Pharmacol Rev. 15, 601-652 (1963).
  16. Bocalini, D. S. Myocardial remodeling after large infarcts in rat converts post rest-potentiation in force decay. Arq Bras Cardiol. 98 (3), 243-251 (2012).
  17. Juggi, J. S. Effect of ischemia-reperfusion on the post-rest inotropy of isolated perfused rat heart. J Cell Mol Med. 6 (4), 621-630 (2002).
  18. Lakatta, E. G. Beyond Bowditch: the convergence of cardiac chronotropy and inotropy. Cell Calcium. 35 (6), 629-624 (2004).
  19. Taylor, D. G., Parilak, L. D., LeWinter, M. M., Knot, H. J. Quantification of the rat left ventricle force and Ca2+ -frequency relationships: similarities to dog and human. Cardiovasc Res. 61 (1), 77-86 (2004).
  20. Schmidt, U., Hajjar, R. J., Gwathmey, J. K. The force-interval relationship in human myocardium. J Card Fail. 1 (4), 311-321 (1995).
  21. Rossman, E. I., Petre, R. E., Chaudhary, K. W., Piacentino, V. 3rd, Janssen, P. M., Gaughan, J. P., Houser, S. R., Margulies, K. B. Abnormal frequency-dependentresponses represent the pathophysiologic signature of contractile failure inhuman myocardium. JMCC. 36 (1), 33-42 (2004).
  22. Moran, A. E., Forouzanfar, M. H., Roth, G. A., Mensah, G. A., Ezzati, M., Murray, C. J., Naghavi, M. Temporal trends in ischemic heart disease mortality in 21 world regions, 1980 to 2010: the Global Burden of Disease 2010 stud. Circulation. 129 (14), 1483-1492 (1980).
  23. Lee, J. A., Allen, D. G. Changes in intracellular free calcium concentration during long exposures to simulated ischemia in isolated mammalian ventricular muscle. Circ Res. 71 (1), 58-69 (1992).

Tags

医药,第103,乳头肌,收缩,小鼠心脏,β-肾上腺素信号,缺血
对离体乳头肌的心脏收缩力对小鼠的研究收缩尺寸
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Uhl, S., Freichel, M., Mathar, I.More

Uhl, S., Freichel, M., Mathar, I. Contractility Measurements on Isolated Papillary Muscles for the Investigation of Cardiac Inotropy in Mice. J. Vis. Exp. (103), e53076, doi:10.3791/53076 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter