Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Geoptimaliseerde LC-MS/MS methode voor de analyse van de High-throughput van klinische monsters van Ivacaftor, de belangrijkste metabolieten daarvan en Lumacaftor in biologische vloeistoffen van Cystic Fibrosis patiënten

Published: October 15, 2017 doi: 10.3791/56084

Summary

Combinatie van Ivacaftor en ivacaftor-lumacaftor zijn twee nieuwe CF-drugs. Er is echter nog steeds een gebrek aan overeenstemming inzake hun PK/PD en farmacologie. We presenteren een geoptimaliseerde HPLC-MS-techniek voor de gelijktijdige analyse van ivacaftor en de belangrijkste metabolieten daarvan, en lumacaftor.

Abstract

Gebreken in de cystic fibrosis trans-membraan huidgeleiding regulator (CFTR) zijn de oorzaak van cystic fibrosis (CF), een ziekte met levensbedreigende pulmonale manifestaties. Ivacaftor (IVA) en ivacaftor-lumacaftor (LUMA) combinatie zijn twee nieuwe doorbraak CF drugs die rechtstreeks het moduleren van de activiteit en de handel van het defecte CFTR-eiwit. Er is echter nog steeds een gebrek aan inzicht in de farmacodynamische/farmacokinetische parameters en de farmacologie van ivacaftor en lumacaftor. De HPLC-MS-techniek voor de gelijktijdige analyse van de concentraties van ivacaftor, hydroxymethyl-ivacaftor, ivacaftor-carboxylaat en lumacaftor in biologische vloeistoffen in patiënten die standaard ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor combinatie therapie eerder is ontwikkeld door onze fractie en gedeeltelijk gevalideerd aan de FDA-normen. Echter, zodat de analyse van de hoge-doorvoer van een groter aantal monsters van de patiënt, heeft onze fractie geoptimaliseerd de gerapporteerde methode door het gebruik van een kleinere omgekeerde-phase chromatografie kolom van een porie-grootte (2,6 µm, C8 100 Å; 50 x 2.1 mm) en een kleurovergang oplosmiddel systeem ( 0-1 min: 40% B; 1-2 min: 40-70% B; 2-2.7 min: gehouden op 70% B; 2.7-2.8 min: 70-90% B; 2.8-4.0 min: 90% B spoelen; 4.0-4.1 min: 90-40% B; 4.1-6.0 min: gehouden op 40% B) in plaats van een isocratic elutie. Het doel van deze studie was om sneller op de HPLC-MS analyses per monster dramatisch van ~ 15 min te slechts 6 minuten per monster, die essentieel is voor de analyse van een grote hoeveelheid patiënt monsters. Deze raadzaam methode zullen van groot nut voor studies in het blootstelling-respons relaties van deze doorbraak CF drugs.

Introduction

Cystic fibrosis (CF) is een gemeenschappelijke genetische ziekte waarbij de exocrine slijm klieren van de longen, lever, alvleesklier en darmen veroorzaken progressieve multi orgaanfalen, zoals een afname in longfunctie en alvleesklier insufficiëntie1, 2,3. Ivacaftor (IVA) is de eerste Food and Drug Administration (FDA-US) en het Europees geneesmiddelen Agentschap (EMA) goedgekeurd cystic fibrosis trans-membraan huidgeleiding regulator (CFTR) potentiator drug, met blijkt klinische werkzaamheid produceren een aanzienlijke verbetering van de longfunctie over placebo in een kleine ondergroep van CF patiënten rekening houdend met de G551D-CFTR [glycine (G) in positie 551 wordt vervangen door asparaginezuur (D)] missense Mutatie (~ 4-5% van de bevolking van CF)4,5. Dit oraal toegediend drug verhoogt het CFTR-kanaal openen, dus het chloride-ion stroom te verhogen en reageren op de primaire afwijking die tot de klinische uitingen van CF4,6 leidt. Helaas, IVA monotherapie is niet effectief bij patiënten met de gemeenschappelijkere homozygoot F508del mutatie [in frame schrapping van het CFTR-gen dat in het verlies van fenylalanine (F) op positie 508 resulteert] wat resulteert in misfolded CFTR, die wordt gezien bij ~ 50% van de CF bevolking7,8.

Onlangs, de FDA goedkeuring heeft verleend voor het combineren van IVA met het CFTR-corrector drug lumacaftor. De slimme strategie van het combineren van een CFTR-corrector (lumacaftor, LUMA) die redt F508del-CFTR aan het celoppervlak met een modulator (IVA) die potentiates CFTR kanaal activiteit, wordt het venster van de behandeling effectief vergroot tot allermeest naar de CF bevolking5 . Vragen blijven over of deze drugs zal voldoen aan hun belofte als een aantal tegenstrijdige verslagen die cast twijfel op hun klinische werkzaamheid9,10 opgedoken. Bovendien verbeteringen in de longfunctie slechts bescheiden (2.6-4% voor de combinatie van de ivacaftor-lumacaftor) waren in vergelijking met de successen die zijn behaald met IVA monotherapie bij patiënten met een G551D Mutatie (10.6-12,5%)8. Potentiële antagonistische drug-drug-interacties tussen IVA en LUMA die potentieel de klinische werkzaamheid van ivacaftor-lumacaftor combinatie beperken, is afkomstig van de farmacokinetische eigenschappen ervan minder dan ideale7,11. IVA uitgebreid menselijk organisme worden gemetaboliseerd door cytochroom P450 enzymen (CYP), voornamelijk voor een actieve metaboliet hydroxymethyl-IVA (IVA-M1, M1) en een inactieve vorm IVA-carboxylaat (IVA-M6, M6)7,12. De CYP3A4 inductor LUMA, aan de andere kant, niet uitgebreid menselijk organisme worden gemetaboliseerd en wordt grotendeels onveranderd in de ontlasting11uitgescheiden. Zoals CYP3A4 inductoren cytochroom metabolisme induceren, kunnen ivacaftor (CYP3A4 substraat) concentraties worden verminderd. Bovendien zowel IVA en LUMA zijn zeer hydrofobe moleculen en zijn ~ 99% gebonden aan plasma-eiwitten, die aanzienlijk beperkt de vrije (actieve) drug concentratie1,13.

Collectief, kunnen deze factoren komen samen om te beperken van de klinische werkzaamheid van ivacaftor-lumacaftor combinatie. Het is niet bekend of optimale plasmaconcentraties worden bereikt onder de huidige doseringsschema voor ivacaftor-lumacaftor combinatie of als de therapeutische drempel8wordt gehandhaafd. Momenteel, is er een schaarste aan informatie met betrekking tot de farmacokinetische parameters, zoals de piek en steady-state plasmaconcentraties van ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor. Gezien het bekende metabolisme van ivacaftor en lumacaftor, is toezicht op blootstelling-respons relaties het vereiste om de optimale dosering regimes voor ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor-therapie. Onze fractie heeft onlangs de eerste HPLC/LC-MS methode voor het toezicht op blootstelling-respons relaties van IVA en LUMA14. Tot nu toe geen alternatieve technieken voor het meten van de concentraties van ivacaftor, zijn metabolieten en lumacaftor gemeld. De analyse van de hoge-doorvoer van een grotere patiënt collectief toestaan en analyse tijd drastisch te verminderen, onze fractie de gerapporteerde methode door middel van een kleinere omgekeerde-phase chromatografie kolom van een porie-grootte en een kleurovergang oplosmiddel systeem is geoptimaliseerd dat vermindert kosten en lopende tijden.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

goedkeuring voor ethiek was verkregen van Monash University menselijke onderzoek ethische Commissie (MUHREC).

1. toepassing van de bepaling: patiënt Sample collectie

  1. Neem de tijd wanneer de patiënt hun standaard dosis van 150 mg ivacaftor of ivacaftor 125 mg /lumacaftor neemt 200 mg.
  2. Opmerking onderaan de nauwkeurige tijd wanneer de patiënt bloedmonster wordt verzameld.
    Opmerking: We raden 4-5 monsters verzamelen in een loop van de tijd 24 h. Als de collectie van slechts één steekproef mogelijk is, het aangegeven tijdstip is 2,5-4 h post ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor combinatie dosering als C max concentraties bij steady-state zal haalbaar na > 5 dagen van opeenvolgende behandeling.
  3. 4-5 mL bloed in de handel verkrijgbare onbehandelde blauwe buizen verzamelen.
  4. Na het verzamelen van de volbloed, laat het bloed stollen door het verlaten van het ongestoord bij kamertemperatuur.
    Let op: Dit duurt meestal 15-30 min.
  5. Verwijder de klonter door centrifugatie bij 1000 en 2000 x g gedurende 10 minuten bij 4 ° C in een gekoelde centrifuge. Het resulterende supernatant aanwijzen als plasma.
  6. Na centrifugeren, onmiddellijk overdracht de bovendrijvende substantie (plasma) in een schoon polypropyleen buis met behulp van een precisiepipet Pasteur. Label het plasma tube met de patiënt ID (bijvoorbeeld patiënt 1), de door de overheid gereguleerde drug (b.v., ivacaftor-lumacaftor combinatie), en tijd van de patiënt steekproef werd verzameld (bijvoorbeeld 2,5 h na dosering).
  7. Monsters van behouden bij 2-8 ° C tijdens de behandeling. Zodra afhandeling is voltooid, slaan monsters op – 20 ° C.
  8. Indien nodig, monsters met een goedgekeurde courier aan het analyseren Instituut schip.
    Opmerking: Monsters worden verzonden op droog ijs tot aankomst en dient te worden bewaard bij – 80° C tot analyse.

2. Voorbereiding en verwerking van gemaakte monsters en normen

Opmerking: Plasma van gezonde donoren naïef op ivacaftor/lumacaftor therapie was verkregen van de Australische Rode Kruis. Om de integriteit te garanderen, moeten alle monsters/normen tijdens de inzameling en verwerking bij 2-8 ° C worden gehouden. Zodra afhandeling is voltooid, slaan monsters op – 20 ° C.

  1. Weeg IVA, IVA-carboxylaat, hydroxymethyl-IVA en LUMA die als referentie voor de interne standaarden dienen zal.
  2. Bereiden twee onafhankelijke stamoplossingen van elke analyt (IVA, M1, M6 en LUMA) in LC-MS rang methanol op 100 µg/mL en 10 µg Fe/mL.
    Opmerking: Verbindingen vervalt na 10 dagen op de benchtop.
  3. Vers bereiden LC-MS kalibratie standaarden vóór elke analytische run door verdunning van de kalibratie-normen voorraadoplossingen in menselijk plasma te bereiken na concentraties: 0.01, 0,025 0.05, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.5, 5.0 en 10,0 µg/mL. Deze monsters worden aangeduid als normen.
  4. Te precipiteren eiwitten, bereiden van 0,1% mierenzuur (FA) in acetonitril (ACN, LC-MS rang) en laat in de koelkast totdat nodig.

3. Voorbehandeling van monsters van de gemaakte en normen

  1. toestaan beide monsters van de patiënt en lege plasma naar equilibreer tot kamertemperatuur.
  2. Vortex te mengen van elk monster plasma voor 15 s per monster.
  3. Pipetteer een hoeveelheid van 100 µL van beide leeg plasma voor normen of patiënt monsters voor analyse in een buis van polypropyleen microcentrifuge 1.5-mL.
  4. De interne standaard IVA in elk van de standaard buizen toevoegen (bijvoorbeeld 0,01, 0,025 0.05, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.5, 5.0 en 10,0 µg/mL ter dekking van de potentiële concentratiebereik), sluit het deksel en vortex voor 2-3 s. notitie dat interne standaard is alleen toegevoegd aan het leeg plasma en geen interne standaard wordt toegevoegd aan de patiënt monsters.
  5. Herhaal stap 3.4. voor de andere interne standaarden M1 en M6 LUMA.
  6. Spin down elke buis kort om ervoor te zorgen dat er geen druppels op het deksel.
  7. Voeg toe 200 µL van het mengsel van 0,1% FA in ACN in elke buis te precipiteren plasma-eiwitten.
  8. Vortex het mengsel krachtig gedurende ongeveer 15 s.
  9. Buizen te staan gedurende 10 minuten in de koelkast laten.
  10. Centrifugeer bij 10.000 x g gedurende 10 minuten bij 4 ° C, indien mogelijk.
  11. Filtreer een aliquot 200 µL van het supernatans dat door een 13 mm spuit filter in een flesje van de HPLC 1,5 mL.
  12. Breng 100 µL van de bovendrijvende substantie in de LC-MS flacon voor de HPLC-MS-analyse.

4. HPLC-MS analyse

Opmerking: The HPLC-MS-analyse werd uitgevoerd op een systeem van de LC-MS in combinatie met de triple vierpolige massaspectrometer (tabel 1).

  1. Draaien op het systeem van de LC-MS, plaatst u de lade, met de monsters in de auto-sampler.
  2. De kolom koppelen aan een voorkolom en sluit aan op het systeem van de LC-MS.
  3. Hechten beide flessen van mobiele fasen (fles van A: 100% ACN; fles B: 0,1% mierenzuur in water) en het systeem van de LC-MS equilibreer.
  4. De volgende parameters in het LC-MS protocol opnemen.
    1. De mobiele fase stroom verdeeld alvorens de massaspectrometer in een verhouding van 2:1 (afval: MS inlaat).
    2. Voeren een kleurovergang elutie op een debiet van 0,5 mL/min met behulp van een mobiele fase, bestaande uit 100% ACN en 0,1% mierenzuur in water (startpunt op 40:60, v/v). Merk op dat het percentage van het volume van de mobiele fase in de gehele analyse verandert.
    3. Werken de massaspectrometer in een positieve electrospray ionisatie modus.
    4. Zorg ervoor dat de LC-MS-instellingen als volgt: ion spray spanning 4.5 kV, botsing energie 295.9 V, nebulizing gas: stikstof op 3 L/min, botsing gas: argon; drogen gas flow 20 L/min, lens spanning Q3:-22 V, desolvation temperatuur 250 ° C met een warmte-blok temperatuur van 400 ° C.
    5. Injecteren 10 µL volume per monster.
    6. Analyse analyten met behulp van meerdere reactie controle (MRM). Controleren van de ion overgangen van m/z 392.49 → 393, m/z 408.49 → 409, m/z 422.47 → 423 en m/z 452.40 → 453 voor IVA, IVA-M1, IVA-M6 en LUMA, respectievelijk.
      Nota: De nieuwe geoptimaliseerde methode moet nog volledig worden gevalideerd volgens FDA normen.

5. Kalibratiekrommen

  1. Construct de LC-MS kalibratiekrommen vóór elke analyse uitvoeren met behulp van de relatie tussen de ratio's van piek, gebied van elk van de vier analyten aan interne standaard en de kalibratie standaard nominale concentraties van ivacaftor (IVA-M1, IVA-M6 of LUMA) vanuit het instellingen programma van LC-MS.
    Opmerking: De exacte stappen voor de bouw van de kalibratiekromme is afhankelijk van het model van LC-MS apparatuur wordt gebruikt. Deze informatie is mogelijk in de handleiding van de apparatuur beschikbaar.
  2. Lineaire kleinste kwadraten regressie-analyse uitvoeren door weging van 1/C 2 volgens de reciproke van concentraties.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

We hebben onlangs gemeld een gedeeltelijk aan FDA-normen, op een triple-vierpolige LC-MS en een HPLC detector systeem, gevalideerde methode met behulp van een C8 kolom (5 µm, 3.9 x 50 mm ID) met de mobiele fase, bestaande uit 100% ACN en 0,1% mierenzuur in water (40:60 v/v) op een debiet van 1 mL/min. Een lineaire correlatie van de pieken werd waargenomen over een concentratiebereik van 0,01 tot 10 µg Fe/mL in menselijk plasma voor alle metabolieten, ivacaftor, Iva-M1, Iva-M6 en lumacaftor14. Hier deze methode is geoptimaliseerd om drastisch verminderd LC retentietijden en dus de volledige looptijd van de test, die essentieel is voor de analyse van de hoge-doorvoer van een grote hoeveelheid klinische monsters. De bepaling is geoptimaliseerd door het gebruik van een kleinere omgekeerde-phase chromatografie kolom van een porie-grootte en een kleurovergang oplosmiddel systeem in plaats van een isocratic elutie, vermindering van de tijd per monster van ~ 15 min tot slechts 6 minuten. De analyten worden in electrospray positieve mode met behulp van meerdere reactie controle (MRM) bepaald. De procedure moet intern worden gevalideerd vóór gebruik, zoals we eerder hebben gedetailleerde14.

De nauwkeurigheid van de methode werd 94,2% ± 4,53% tot 97,5% ± 2,94%, afhankelijk van de analyt14. Het kalibratietraject van 0,01 tot 10 µg/mL geldt voor gebruik in de klinische setting, met name gezien het feit dat ivacaftor-lumacaftor-therapie, zeer lage concentraties van actieve IVA en M1 werden gerapporteerd door onze fractie eerder, in plasma potentieel te wijten aan de inductie van CYP3A4 door LUMA, wat in uitgebreide IVA metabolisme14 resulteert. De nauwkeurigheid van de intra-day voor elke analyt evalueerden met zes onafhankelijk bereid kwaliteitscontrole (QC) monsters op dezelfde dag bij concentraties van 0,05, 0,5 en 8 µg/mL. De nauwkeurigheid van Inter dag evalueerden met zes onafhankelijk bereid QC-monsters op drie opeenvolgende dagen. Nauwkeurigheid en precisie werden berekend via relatieve standaardafwijking (RSD). Voor elk monster QC de RSD-waarden dient minder dan 15%15. Alle vier analyten toonde RSD waarden van minder dan 15%14. De ondergrens voor detectie (LOD) en kwantificering (LOQ) werden opgericht: voor IVA LOD 2,50 x 10-3 µg/mL en LOQ 7.57 x 10-3 µg/mL; voor M1, LOD 4,57 x 10-4 µg/mL en LOQ 1.38 x 10-3 µg/mL; voor M6 LOD 5.86 x 10-4 µg/mL en LOQ 1,78 x 10-3 µg/mL; voor LUMA LOD was 6.08 x 10-4 µg/mL en LOQ 1,84 x 10-3 µg/mL14. Een typische chromatogram is afgebeeld in Figuur 1. Een optimale gaschromatografische resolutie werd verkregen met behulp van een mobiele fase 100% ACN en 0,1% mierenzuur in water (startpunt op 40:60, v/v) met een kleurovergang elutie op een kolom C8 (2,6 µm; 100 Å; 50 x 2.1 mm). De kleurovergang scheiding werd gebruikt met 40% van de mobiele fase B van 0 naar 1 min; dan 40% - 70% van de mobiele fase B van 1 min 2 min; die 70% van de mobiele fase B van 2 min 2,7 min; verhogen van 70% tot 90% van de mobiele fase B van 2.7 min 2,8 min; die 90% van de mobiele fase B van 2,8 min naar 4.0 min voor het wassen van doeleinden; tot slot terugkomen van 90% 40% van de mobiele B van 4.0 min naar 4.1 min; vervolgens houden 40% van de mobiele fase B van 4.1 min naar 6.0 min voor de initiële voorwaarden op (Figuur 1). De LC-retentietijden waren als volgt voor M6 1.0 min; voor M1 1.3 min; voor IVA: 1.55 min; voor LUMA: 2.3 min (Figuur 1). In alle lege plasma monsters, geen interferentie met de behoudtijd van een van de analyten werd waargenomen, noch was interferentie ontdekt uit de combinatie van ivacaftor met lumacaftor.

Figure 1
Figuur 1 : Vertegenwoordiger LC-MS chromatogram van menselijk plasma verrijkt met 10 µg/mL IVA-M6, IVA-M1, lumacaftor en ivacaftor met betrekking tot de kleurovergang elutie van pomp. Een 0,1% mierenzuur in water en pomp B 100% acetonitril (0-1 min: 40% B, 1-2 min: 40%-70% B; 2-2.7 min: gehouden op 70% B 2.7-2.8 min: 70%-90% B; 3.8-4,0 min: 90% B wassen; 4.0-4.1 min: 90%-40% B; 4.1-6.0 min: gehouden op 40% B). De ion overgangen van m/z 392.49 → 393, m/z 408.49 → 409 en m/z 422.47 → 423 m/z 452.40 → 453 werden gebruikt voor MS/MS monitoring van ivacaftor, IVA - M1, IVA-M6 en lumacaftor, respectievelijk. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

HPLC-voorwaarden
Kolom C8; 2,6 µm; 100 Å; 50 x 2.1 mm
Voorkolom HPLC In-Line Filter 0,5 µm; Diepte Filter x 0,004 inID
Filter x 0,004 inID
Kolomtemperatuur: 30 ° C
Mobiele fase A: 0,1% FA in water
Mobiele fase B: 100% ACN
Mobiele fase compositie aan het vertrekpunt 60 / 40 (v/v)
Monster temperatuur: 4 ° C
Geïnjecteerd volume: 5 ΜL
Naald wassen 80% methanol, 20% water 300 µL
Debiet: 0,5 mL/min
Verloop: -1 min: 40% B
-1-2 min: 40% - 70% B
-2-2.7 min: gehouden op 70% B
-2,7 - 2.8 min: 70% - 90% B
-2,8 - 4.0 min: 90% B wassen
-4.0 - 4.1 min: 90% - 40%
-4.1-6.0 min: gehouden op 40%,
Totaal uitvoeren: 6 minuten
Retentietijden: Retentietijd voor M6: 1.0 min
Retentietijd voor M1: 1.3 min
Retentietijd voor IVA: 1.55 min
Retentietijd voor LUMA: 2.3 min
MS voorwaarden
Detectie-modus: electrospray positieve ESI +
Ion spray spanning: 4.5 kV
Botsing energie: 295.9 V
Nebulizing Gas (stikstof): 3 L/min
CID Gas: 230 kPa
Drogen gasstroom (stikstof): 20 L/min
Q1 pre rod bias: - & #1
60;      5 V CE: -25 V Q3 pre staaf bias: -5 V Interface huidige: 0.1 UA Desolvation temperatuur: 250 ° C Warmte blok temperatuur: 400 ° C IVA m/z 392.49 → 393 M1 m/z 408.49 → 409 M6 m/z 422.47 → 423 LUMA m/z 452.40 → 453

Tabel 1: Meer informatie over de voorwaarden van de HPLC-MS.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Zoals eerder gemeld heeft onze fractie voor het eerst ontwikkeld en gevalideerd een HPLC en LC-MS methode voor snelle detectie en kwantificering van ivacaftor en de belangrijkste metabolieten daarvan hydroxymethyl-IVA M1 (actief) en IVA-carboxylaat M6 (inactief); en lumacaftor in het plasma en sputum van CF patiënten14. De bepaling eerder gerapporteerd door onze fractie werd met succes gebruikt voor het kwantificeren van de concentratie van LUMA, IVA, IVA-M1 en IVA-M6 in het plasma en sputum van CF patiënten die een steady-state standaard therapie met IVA 150 mg /q12 h (Latijnse terminologie: quaque 12 h; eenmaal elke 12 h) of 200 mg /q12 h LUMA-125 mg /q12 h IVA combinatie14. Voor de high-throughput analyse van grote hoeveelheden van patiënt monsters, hebben we de gerapporteerde methode geoptimaliseerd met behulp van een kleinere porie-grootte omgekeerde-phase chromatografie kolom C8 (2,6 µm; 100 Å; 50 x 2.1 mm2) en een kleurovergang oplosmiddel systeem in plaats van de huidige isocratic elutie. Dit reduceert de lopende tijd tot 6 min per monster.

Deze betrouwbare en nieuwe methode biedt een eenvoudige, gevoelige en snelle aanpak voor therapeutische drug monitoring van de combinatie van de ivacaftor en ivacaftor-lumacaftor in biologische vloeistoffen. Gezien de noodzaak om blootstelling-respons relaties te maximaliseren drug werkzaamheid evenals het bevatten van kosten voor gezondheidszorg te ontwikkelen, moeten meer gevoelige instrumenten worden ontwikkeld en gevalideerd om clinici helpen bij het gebruik van bewijsmateriaal gebaseerde therapieën en hoge-doorvoer analytische technieken voor patiënten die lijden CF. onze fractie heeft eerder gemeld een gedeeltelijk gevalideerde HPLC-MS voor IVA, IVA-M1, IVA-M6 en LUMA gelijktijdig te analyseren in het plasma en sputum van CF patiënten14. Tot vaststelling van een gemeenschappelijk en easy-to-use analytische protocol voor de analyse van patiënten die ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor combinatie zou data vergelijking en interpretatie van de resultaten van toekomstige farmacokinetisch onderzoek vergemakkelijken. Meten van IVA, IVA-M1, IVA-M6 en LUMA in biologische vloeistoffen met LC-MS technieken kan belichamen een krachtig hulpmiddel voor het verkennen van de blootstelling-respons-relatie met betrekking tot therapeutische resultaten.

Meer in het algemeen, HPLC-MS analyse van ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor combinatie in biologische vloeistoffen een moleculaire basis kan bieden voor de uitvoering van geïndividualiseerde Pharmacotherapeutische strategieën met patiënten die lijden aan CF en blijken handig op grond van de dure ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor-combinatietherapie rendabeler, maken door het potentieel het aangeven van de noodzaak voor minder frequent doseren. Door toepassing van de voorgestelde analysemethode op klinische farmacodynamische/farmacokinetische studies, is de mogelijkheid ontstaan om de farmacokinetische parameters van ivacaftor of ivacaftor-lumacaftor combinatie op een grotere patiënt verder te onderzoeken collectieve.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

J.L. en T.V. worden ondersteund door het nationale Instituut van allergie en besmettelijke ziekten (NIAID) van de National Institutes of Health (R01 AI111965). De inhoud is uitsluitend de verantwoordelijkheid van de auteurs en vertegenwoordigt niet noodzakelijk de officiële standpunten van de nationale Instituut van allergie en besmettelijke ziekten of de National Institutes of Health. MC is een Australische NHMRC Principal Research Fellow. J. L. is een Australische nationale gezondheids- en medische onderzoek Raad (NHMRC) Senior Research Fellow en T.V. is een Australische NHMRC industrie carrière ontwikkeling niveau 2 Research Fellow. E.K.S is een benoemde Ambassadeur van de jonge 2017 voor ASM (American Society for Microbiology) en wordt ondersteund door de Australische Postgraduaat Award.
Delen van dit werk werd gepresenteerd op de 12th Australiasian conferentie over Cystic Fibrosis In Melbourne (5-8th van augustus 2017).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
IVA (Cat#S114)  SelleckChem (USA). 
LUMA (Cat#S1565)  SelleckChem (USA). 
IVA-carboxylate (Cat# 510242247CS)  Clearsynth (Canada). 
hydroxymethyl-IVA (Cat# 510240849CS)  Clearsynth (Canada). 
Methanol (MeOH, LC-MS grade),  Sigma-Aldrich
acetonitrile (ACN, LC-MS grade)  Sigma-Aldrich
formic acid (FA)  Sigma-Aldrich
triple-quadrupole Shimadzu 8030 LC-MS 
Phenomenex Kinetex (2.6 µm C8 100 Å; 50 × 2.1mm)
(KrudKatcher Ultrea HPLC In-Line Filter 0.5 m Depth Filter x 0.004inID). 
1.5 mL polypropylene microcentrifuge tube (VWR). 
Eppendorf Centrifuge 5430
13-mm syringe filter (0.45 µm nylon, GRACE, USA) 
[Phenomenex VEREX, 9 mm, PP, 300 µL, PTFE/Silicone septa]. 

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Schneider, E. K., et al. Drug-drug plasma protein binding interactions of ivacaftor. J Mol Recognit. 28 (6), 339-348 (2015).
  2. Solomon, M., Leatte, P. N. Treatments for Cystic fibrosis. , (2009).
  3. O'Sullivan, B. P., Flume, P. The clinical approach to lung disease in patients with cystic fibrosis. Semin Respir Crit Care Med. 30 (5), 505-513 (2009).
  4. Ramsey, B. W., et al. A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation. N Engl J Med. 365 (18), 1663-1672 (2011).
  5. Wainwright, C. E., et al. Lumacaftor-Ivacaftor in Patients with Cystic Fibrosis Homozygous for Phe508del CFTR. N Engl J Med. 373 (3), 220-231 (2015).
  6. Hadida, S., et al. Discovery of N-(2,4-di-tert-butyl-5-hydroxyphenyl)-4-oxo-1,4-dihydroquinoline-3-carboxamide (VX-770, ivacaftor), a potent and orally bioavailable CFTR potentiator. J Med Chem. 57 (23), 9776-9795 (2014).
  7. FDA. FDA Advisory Commitee Briefing Material VERTEX-FDA Pulmonary-Allergy drugs advisory commitee. 98 , VERTEX Pharmaceuticals Incorporated. (2015).
  8. Holmes, D. False dawn for cystic fibrosis disease modifiers? Nat Rev Drug Discov. 13 (10), 713-714 (2014).
  9. Veit, G., et al. Some gating potentiators, including VX-770, diminish DeltaF508-CFTR functional expression. Sci Transl Med. 6 (246), 246ra297 (2014).
  10. Cholon, D. M., et al. Potentiator ivacaftor abrogates pharmacological correction of DeltaF508 CFTR in cystic fibrosis. Sci Transl Med. 6 (246), 246ra297 (2014).
  11. EMA, Assessment report ORKAMBI (ivacaftor/lumacaftor) European medicines agency. , (2015).
  12. VERTEX. Vertex prescribing infomation. , (2015).
  13. Matthes, E., et al. Low free drug concentration prevents inhibition of F508del CFTR functional expression by the potentiator VX-770 (ivacaftor). Br J Pharmacol. 173 (3), 459-470 (2016).
  14. Schneider, E. K., et al. Development of HPLC and LC-MS/MS methods for the analysis of ivacaftor, its major metabolites and lumacaftor in plasma and sputum of cystic fibrosis patients treated with ORKAMBI or KALYDECO. J Chrom B Analyt Technol Biomed Life Sci. 1038, 57-62 (2016).
  15. Su, Q., et al. An LC-MS/MS method for the quantitation of cabozantinib in rat plasma: application to a pharmacokinetic study. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 985, 119-123 (2015).

Tags

Geneeskunde kwestie 128 Ivacaftor lumacaftor HPLC-MS cystic fibrosis plasma sputum biologische vloeistoffen
Geoptimaliseerde LC-MS/MS methode voor de analyse van de High-throughput van klinische monsters van Ivacaftor, de belangrijkste metabolieten daarvan en Lumacaftor in biologische vloeistoffen van Cystic Fibrosis patiënten
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Schneider, E. K., Reyes-Ortega, F.,More

Schneider, E. K., Reyes-Ortega, F., Li, J., Velkov, T. Optimized LC-MS/MS Method for the High-throughput Analysis of Clinical Samples of Ivacaftor, Its Major Metabolites, and Lumacaftor in Biological Fluids of Cystic Fibrosis Patients. J. Vis. Exp. (128), e56084, doi:10.3791/56084 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter