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Developmental Biology

후에 쥐에 있는 정액 액의 측정 및 여성 재생산 지역에서 정액 짝짓기의 컬렉션

Published: November 18, 2017 doi: 10.3791/56670

Summary

정액 액 화는 정액 젤에서 해방 될 정자에 대 한 필요 합니다. 이 연구는 여성 재생산 지역 포스트 성교에서 정액을 수집 하 고 정액 액 화 시간을 측정 하기 위한 절차를 제공 합니다.

Abstract

마우스에 ejaculated 정액은 자 궁에 입금 됩니다. 사정 후 정액에서 젤 같은 일관성을 변경 물, 프로세스 라는 액 화. 이 연구에서 우리는 마우스 모델에서 여성 재생산 지역에서 후 ejaculated 정액을 수집 하는 방법을 보여줍니다. 첫째, 성인 여성 쥐 발 정기 단계에서 남자의 감 금 소에 하룻밤 보관 되어 있었다. 다음날 아침, 결합 질에 copulatory 플러그의 존재에 의해 확인 됐다. 여성 쥐 copulatory 플러그와 안락사 했다 고 각 생식 관 (질, 자 궁, oviducts, 난소), 전체적으로 수집 된 정액을 포함 하는 닫힌된 시스템을 보장. 튜브에 정액을 풀어 질 렸와 생식로 1.5 mL microcentrifuge 튜브에 배치 되었다. 분석에 대 한 최대 정액 볼륨을 보장 하기 위해, 한적한 집게는 나머지 정액을 추방 하는 질 끝에 난소에서 자 궁 뿔을 집어넣은 사용 되었다. 전체 생식 관은 다음 삭제 됩니다. 정액에 포함 된 튜브는 잠시 내려 냈 지. 25 μ 모 세관 피 펫 (튜브 벽에 평행) 180 ° 각도로 튜브에 배치 했다. 25 μ 라인에 모 세관 튜브를 작성 하는 데 사용 하는 시간을 기록 했다. 검증 된 남성 종 축에서 정액은 일반적으로 25 μ 모 세관 튜브를 채우기 위해 약 60-180 s를 걸립니다. 이 정액 컬렉션 기술은 또한 정자 이미징 및 운동 성 분석 등 다른 다운스트림 응용 프로그램에 사용할 수 있습니다.

Introduction

여성 재생산 지역 상위 및 하위 책자의 구성 됩니다. 위 재생산 지역에는 나 팔 관, 자 궁 그리고 endocervix는 포함 되어 있습니다. 낮은 재생산 지역에는 ectocervix 및 질 포함 됩니다. 인간에서는, ejaculated 정액 ectocervix1에 인접 한 질 앞쪽 벽에 입금 됩니다. 그러나 쥐,, 정액은 휩 쓸 자 궁으로2짝짓기 후 분 이내.

정액 침투 수를 정자를 일으키는 루의 초 이내에 경화 되 고3움직일 정액 젤을 포함 합니다. 액 화 물 일관성에 젤 같은에서 정액을 변경 하 여 고정된 정자를 해제 합니다. 이 과정은 정자의 운동 성 및 포유류 복제에 대 한 필수적입니다. 정액 액 화의 지식은 주로 어디 정액 문화 접시에 액 화 된다 생체 외에서 연구 기반으로 합니다. 인간에서는, 전립선 특정 항 원 또는 PSA (일컬어 kallikrein 관련 peptidase 3 또는 KLK3)의 효소 활동은 semenogelins (젤 형성 단백질 정액에 존재)4 의 가수분해를 통해 액 화에 대 한 주요 기여자 ,56. Semenogelins의 정자 이동성 증가 정액 coagulum에서 정자를 줘 라. 계란을 기름 지 게 나 팔 관으로 정자 수영을 해제. 액 화 (또는 정액 점도) 테스트는 불 임 클리닉 남성 불 임7평가에서 정액 분석을 위한 표준 초기 검 진 중 하나.

최근에 출판 된 기사를 정액 액체 여성 마우스 생식 관 후 짝짓기에서 수집 된의 분석 이후에 다 산 결함8를 일으킬 수 있는 액 화 결핍을 설명 하기 위해 사용할 수 있습니다 보여줍니다. 결함이 액 정액 hyperviscosity 같은 남자9, 일반 액 화는 포유류 복제를 위한 불가결 제안에 불 임 사례의 11.8 32.3%에 기여 한다. 그러나, 연구 및 치료 액 결함의 남성7에 독점적으로 집중 했다. 여성 재생산 지역 정액 액 화에서 역할을 담당 하는 가능성은 탐구 하지. 따라서, 정액 수집 및 액 화 시간 측정 방법 연구 액 관심의 모델 생물에서 불 임의 원인 중 하나 될 수 있는지 여부를 결정 하는 새로운 진단 도구를 제공 합니다.

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Protocol

모든 동물 및 절차가이 연구에 사용 된은 WSU 승인 동물 프로토콜 #4702 # 4735과 워싱턴 주립 대학 (WSU) 동물 관리 및 사용 위원회 지침에 따라 처리 합니다.

1입니다. 마우스

  1. 사용 하 여 표준 C57BL/6J 성인 남성 쥐 또는 관심의 다른 긴장. 물과 음식 광고 libitum 액세스와 온도 및 습도 제어 환경에서 동물을 유지 한다.
    1. 8 주 정도에서 10 개월에 이르기까지 남성 브리 더를 사용 합니다. 실험에서 입증 된 종만을 사용 합니다.
  2. 재생산 지역 스 트로 겐 수용 체 α ( Esr1 유전자 인코딩)의 조직 선택적 삭제와 성인 여성 쥐를 사용 하 여 상피 세포10 (Wnt7aCre / +; Esr1f/f, 녹아웃 또는 "코" 라고)이이 연구에서 littermates (Esr1f/f, "CTRL" 라는) 제어.
    1. 8 주 된 여성을 사용 합니다. 여성의 연령대의 실험에 따라 다양합니다.
  3. 아침 08시 h에 estrous 사이클의 단계를 결정 합니다. 주기의 발 정기 단계에서 여성만을 사용 합니다. 질 번짐 및 cytological 분석의 자세한 방법에 대 한 이전 게시 절차11를 참조 하십시오.

2. 짝짓기와 Copulatory 플러그를 평가

  1. 발 정기 (16시 h) 일에서 남자의 감 금 소에 여성을 집.
  2. 다음날 아침 (08시 h), 남성 마우스에서 여성을 구분 합니다.
  3. 짝짓기의 표시로 질 또는 copulatory 플러그의 유무를 이전에 게시 방법12 의 적응을 사용 합니다.
  4. 짧게 뒷 다리 사지를 들어 꼬리의 기지에서 여성 마우스를 잡아.
  5. 이쑤시개를 사용 하 여 질 오프닝에서 하얀 정액 coagulum의 존재에 의해 copulatory 플러그를 찾아. 있으면 copulatory 플러그, 이쑤시개 질 운하에 삽입할 수 없습니다.

3입니다. 조직 컬렉션 전에 준비

  1. 10 mL Leibovitz의 L-15 미디어, 보충 1% 태아 둔감 한 혈 청의 준비 (라고 L15 미디어 + 1 %FBS) 15 mL 튜브에. waterbath에 15 분 동안 37 ° C에서 미디어를 품 어.
  2. 조직 및 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 정자의 생존을 위해, 미리 데워 진 L15 미디어 + 1%의 aliquot 2 mL 2 mL microcentrifuge에서 FBS 조직 컬렉션에 대 한 관.
  3. 37 ° c.에 stereomicroscope의 단계를 따뜻한 37 ° C로 열 블록을 설정 하 고 블록에는 빈 1.5 mL microcentrifuge 튜브를 배치.
  4. 다운스트림 응용 프로그램에서는 정자의 운동 성, 따뜻한의 37 ° c 유리 슬라이드 이미징 하는 경우

4. 조직 컬렉션

  1. 조직 컬렉션 영역에 미리 따뜻하게 L15 미디어 + 1 %FBS 약 수를가지고.
  2. 여성 안락사 (~ 08:30 h) 자 궁 경관 탈 구 다음 이산화탄소 질 식을 사용 하 여.
    참고: 이것은 대략 8 h 짝짓기 후 가정 자정에 일어난 짝짓기입니다.
  3. 복 부 영역을 노출 하는 부정사 위치에 동물을 놓습니다.
  4. 복 부 뒷 다리 사지 근처에 70% 알코올을 스프레이.
  5. 낮은 복 부의 피부에 작은 상처 (~ 1 cm)을 해가 위를 사용 합니다.
  6. 지배적인 손을 꼬리 (및 필요한 경우 뒷 다리 사지)를 사용 하 여 비 지배적인 손을 당긴 다 피부 (머리)를 향해 반대 방향으로 복 부 근육을 노출 하는 동안. 이 메서드는 내장 장기에 머리 오염의 최소화 하는 데 사용 됩니다.
  7. V-모양에 인접 한 질, 복 부의 기지에서 내장 장기를 노출 하는 복 부 근육을 잘라.
  8. 내장 및 복 부 지방 노출 재생산 지역 쪽으로 이동 합니다.
  9. 방광과 질 영역 위에 다른 조직에서 트림.
  10. 음모 관절 질 조직에 대 한 액세스를 얻기 위해 떨어져 잘라.
  11. 질에 질 직물 들어올린 직장 조직에서 질 운하를 분리 하는 위를 사용 하 여.
  12. 신중 하 게 봄이 위를 사용 하 여 자 궁의 양쪽에서 mesenteric 지방에서 트림.
    주의: 자 궁 안에 정액 매우 깨지기 쉬운입니다. 자 궁을 찔린 하지 않도록 주의 하십시오 또는 다른 정액 손실 됩니다.
  13. 더 낮은 재생산 지역 들어올리고 양쪽의 난소 지방 패드를 잘라 합니다.
  14. 미리 따뜻하게 Leibovitz L-15 미디어 + 1%의 관에는 전체 생식 기관 전송 FBS.

5. 자 궁 콘텐츠 컬렉션에서 정액 액 화 (점도)의 측정

  1. stereomicroscope의 열띤된 무대에서 35mm 무 균 조직 문화 접시에 조직 3.5 mL 가득 전송 사전 예 열 L-15 미디어 + 1 %FBS 혈액과 다른 오염 물질의 조직 청소.
    주의: 세척, 동안 지방, 아니라 자 궁 조직을 잡아. 정액이 시점에서 예상 되는 자 궁 안에 그대로 수.
  2. 실험실 물티슈를 사용 하 여 초과 미디어의 조직 오 점.
  3. 미리가 열된 microcentrifuge 관에서 난소 끝을 배치 하면서 조직 질 끝에 잡으십시오. 질 끝을 잡고, 자 궁, 자 궁 뿔 microcentrifuge 튜브에 빠지게 할 수 있도록의 기지에서 자 궁 뿔을 잘라.
  4. 정액 하 게 튜브에 자 궁 뿔에서 흐름. 한적한 포 셉을 사용 하 여 부드럽게 질 끝, 남은 정액 밖으로 추방 하는 난소에서 자 궁 뿔을 짠 다.
  5. 생물 학적 가방에서 티슈를 삭제 하 고 소 각.
  6. 짧게는 minicentrifuge에 정액 아래로 회전 (1 ~ 2 s).
  7. 튜브, 열띤된 무대에 평행 하다-정액 밖으로 유출 하지 않습니다.
  8. 타이머를 준비 하 고 '을 계산 하 는'로 설정.
  9. (튜브 벽에 평행) 180 ° 각도로 정액 샘플으로 25 µ L 모 세관 튜브를 삽입 합니다. 이것은 다른 각도에서 모 세관 튜브를 잡고 각 조사 사이 가변성을 최소화 하는 것입니다.
  10. 모 세관 튜브 게 타이머를 누르면 정액과 접촉.
  11. 정액 25 µ L 라인에 도달 하는 데 걸리는 시간 (s)를 기록 합니다.
  12. 측정 완료 되 면 바로 추가 기능 분석, 정자 운동 성의 비디오 영상 등을 위해 건조 열 블록에 다시 정액을 포함 하는 튜브를 넣어.
  13. 20 분 동안 10% 표 백제 솔루션에서 튜브를 immersing 하 여 정액을 포함 하는 모 세관 튜브를 소독 하 고 세관 sharps 컨테이너에서 삭제.

6. 비디오 이미징 정자 운동 성의

  1. 현미경 및 비디오 이미징 소프트웨어 설정.
  2. 유리 슬라이드 온수 스테이지에 배치 하는 동안 미리 데워 진된 유리 슬라이드에 남은 정액의 20 µ L를 플라스틱.
  3. 유리 coverslip 커버.
  4. 현미경 슬라이드 coverslip 측면을 내려 놓습니다.
  5. 20 X 렌즈를 사용 하 여 관심 영역을 찾을 수 있습니다.
  6. 100 X 객관적 렌즈 비디오 영상에 대 한 변경 합니다.
  7. 30 12 프레임/s (fps)에서 비디오 s.
  8. 임의로 동물 당 적어도 3 개의 다른 영역에 동영상을 기록 합니다.
  9. 이미징 수행 신속 하 고 정자의 운동 성 및 생존 능력을 유지 하기 위해 슬라이드에 빛 노출을 최소화.
    참고:이 이미징 절차는 2-3 분 내에서 행해져야 한다.
  10. 앞에서 설명한8ImageJ 소프트웨어를 사용 하 여 데이터 분석을 수행 합니다.

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Representative Results

정액은 비옥한 CTRL 남성과 짝짓기 후 ctrl 키와 코 여성 약 8 h에서 수집 되었다. 액 화 (또는 정액 점도) 정액 25 μ 모 세관 튜브를 작성 하는 데 걸린 시간에 의해 정량 이다. 정액에서 CTRL uteri 수집 했다 2.06 ±0.12 분 (mean±S.E.M, n = 5) 모 세관 튜브 (그림 1)을 채우기 위해. 그러나, 정액 코 uteri에서 수집 했다 60 분 이상 (60.0 ±0.0, mean±S.E.M, n = 5) 실험 시간. 이러한 데이터 정액은 크게 더 액 화 또는 CTRL에 보다 적게 점성 코 uteri에 비해 좋습니다.

여성 재생산 지역에서 정액을 모으기의 다운스트림 응용 프로그램 중 하나를 설명 하기 위해 정자 운동 성 비디오 이미지를 사용 하 여 평가 했다. 정액 그림 2A에서 스냅숏에서 미세한 필드 내에서 자유롭게 수영 정자를 보여주었다 CTRL uteri에서 수집. 코 uteri에서 수집한 정액 정액의 대부분 최소한의 이동성 (그림 2B) 함께 클러스터 했다 보여주었다. 이러한 연구 결과 정액 수집 여성 생식 관 8 h에서에서 짝짓기 더 정자 분석에 사용할 수 있습니다 나타냅니다.

Figure 1
그림 1 : 액 화 시간 (정액 점도) 정액에서 수집 마우스 uteri에서. 정액의 액 화 시간 (분)의 그래픽 표현을 짝짓기 후 약 8 h ctrl 키와 코 uteri에서 수집. 데이터를 나타내는 mean±S.E.M., n = 5 여성/유전자. p < 0.001, 짝이 없는 학생 t-테스트. 허가 이전에 게시 결과8 에서 적응. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2 : 정액 내 정자의 대표 이미지 마우스 uteri에서 수집. 정액에 정자의 1000 X 배율에서 찍은 비디오 영상에서 대표적인 스냅샷 ctrl 키 (A)(B) 코 uteri에서 수집. 이전 게시 결과8 동의에서 적응. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

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Discussion

같이 전 수 정액 및 여성 재생산 지역. 에서 분 비 물 간의 생리 적인 상호 작용 정액 분석에서 생체 외에서 이점을 제공할 수 있습니다 마우스 uteri에서 정액을 수집 이 연구에서 제시 하는 기술 연구원 정액 품질과 정자 생존으로 이상적인 생리 조건에서 운동 성을 확인 하 수 있습니다. 또한, 정액은 uteri에서 수집 된를 사용 하 여 수행할 수 있는 다양 한 다운스트림 분석, 예를 들어 정자 자 궁 및 정자 입력 실제 정자 수는 또한 운동 성 분석에 대 한 몇 군데 수 결정 계산 하실 수 있습니다. 수정 기능에 대 한 정액을 수집 하도록 이상적인 시간 포인트1짝짓기 후 1 ~ 2 h 이내 이어야 한다.

이전에 언급 한 다운스트림 응용 프로그램 뿐만 아니라 조사 또한 정자 수송에 억제제/화합물 관심의 효과 평가 수 처리, 정액 액 화 (또는 정액 점도), 정자 수, 정자에 운동 성, 또는 다른 지역 여성 생식 관의 정자 마이그레이션. 화합물8짝짓기 전에 여성 재생산 지역에 적용할 수 있습니다. 그런 다음, 그 억제제/화합물의 영향. 을 짝짓기 후 정액 샘플에서 평가 될 수 있다 이러한 메서드는 정자 수송을 억제 하는 피임 약의 실용성 테스트 유용할 수 있습니다.

정액 컬렉션 및 액 화/점도 측정에 대 한 배려의 중요 한 포인트는 정자의 감도 및 모 세관 튜브의 각도. 정자는 온도 변화에 민감합니다. 정자의 기능과 운동 성의 다운스트림 분석 실험 결과, 조직에 대 한 필수적 이며 정액에서 37 ° C에서 지켜질 필요가 경우 항상, 빛에 최소한의 노출. 만약 여러 여성에서 수집, 대기를 최소화 하기 위해 한 번에 한 동물을 안락사 여러 샘플을 확인 하 고 있습니다. 측정을 위해 액 화, 모 세관 튜브의 다른 각도 액 화 시간에 불일치를 생성합니다. 따라서, 조사자를 모 세관 튜브 튜브 벽에 병렬 (180 ° 각도)에서 각 조사에 의해 만들어진 변화를 최소화 하기 위해 있다. 정액 샘플 09시 h 이후에 수집 되어야 하지, 이것은 자 궁에서 액체 재흡수 때문 이다. 조사 하지 액 측정에 대 한 충분 한 액체 재료를 얻을 수 있습니다.

정액 액 화13전립선 분 비 하는 PSA의 효소 활동에 의해 중재 주로 설치 된다. 그러나, vivo에서 액 화 과정8동안 여성 생식 관의 역할을 결정 하기 위해 제한 된 연구 있다. 따라서, 컬렉션 여성 재생산 지역에서 정액의 액 화 연구에 중요 한 이점은 처리 vivo에서, 정액 여성 재생산 지역14에서 분 비 물에 노출 되었습니다 후 제공 합니다. 끝으로, 후 ejaculated 정액 액 화/점도 측정 정액과 여성 생식 기관 사이 상호 작용 해독 연구 수 있습니다.

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Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

이 작품은 ww 수의학 대학 (WSU) 시작 기금에 의해 지원 됩니다. 저자는이 논문의 중요 한 독서에 대 한 시에라 올 슨 (WSU) 감사합니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Toothpick Diamond 750-Flat Autoclaved sterile, use blunted toothpick. Do not use point-ended
Dissecting scissors Fisher 08-940
Spring scissors Roboz RS-5600
Fine forceps Roboz RS-5045
25-μL glass capillary tube VWR 53432-761
Leibovitz’s L-15 media Life Technologies 11415064 Supplement with 1% FBS
Fetal bovine serum (FBS) Gemini Bio-Products 100-106
1.5-mL microcentrifuge tube Axygen MCT-150-C
2-mL microcentrifuge tube Axygen MCT-200-A
Digital dry block heater VWR 13259-052 For warming the microcentrifuge tube prior to semen collection
Minicentrifuge Corning LSE 6765
35-mm culture dish VWR 10861-656
15-mL polypropylene centrifuge tube VWR 10025-686
Waterbath Precision TSGP05
Heated stage stereomicroscope Leica Microsystems MZ10F To keep the tissue warm prior to semen collection
Brightfield microscope Leica Microsystems DMi8 Optional. For video imaging of the sperm motility
Camera Leica Microsystems DMC2900 Optional. For video imaging of the sperm motility
Glass slides Fisher 12-552-3 Optional. For video imaging of the sperm motility
Coverslip VWR 48393-059 Optional. For video imaging of the sperm motility
Bleach Dilute in dH2O to 10% concentration

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References

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Li, S., Winuthayanon, W. CollectionMore

Li, S., Winuthayanon, W. Collection of Post-mating Semen from the Female Reproductive Tract and Measurement of Semen Liquefaction in Mice. J. Vis. Exp. (129), e56670, doi:10.3791/56670 (2017).

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