Summary
Her beskriver vi et oppsett for samtidig opptak av electrocardiography og intra arterielt blodtrykk (BP) i eksperimentell rotter, som kan gjøres med standard utstyr i dyr anlegg og kan brukes på fysiologiske eller farmakologiske studier undersøke patogene eller terapeutiske mekanismer i hjerte medisin.
Abstract
Studier knyttet til hjerte fysiologi eller patofysiologi, er blodtrykk (BP) og electrocardiography grunnleggende observasjonsstudier parametere. Forskningen fokuserer på hjerte sykdom modeller, potensielle hjerte terapeutiske mål eller farmasøytisk agenter krever vurdering av systemisk arteriell press og hjerte rytme endringer. I situasjoner der radio telemetrisystem ikke er tilgjengelig eller rimelig, er teknikken av femoral arterien cannulation en alternativ måte intra arteriell press bølgeform innspillinger og systemisk BP målinger. Denne teknikken er økonomisk og kan utføres med standard utstyr i dyr anlegg. Men krever invasiv arterieblodtrykk innspillingen cannulation av små arteriene, som kan være en utfordrende kirurgiske ferdigheter. Her presenterer vi trinnvise protokoller for femoral arterien cannulation prosedyrer. Viktige prosedyrer inkluderer kalibreringen av data anskaffelse systemet, vev disseksjon og femoral arterien cannulation og oppsett av arteriell cannulation systemet for press opptak. Overflate electrocardiography innspillingen prosedyrer er også inkludert. Vi presenterer også eksempler på BP opptak fra normotensive og hypertensive rotter. Denne protokollen gir pålitelig direkte opptak av systemisk BP med samtidige electrocardiography.
Introduction
Blodtrykk (BP) og electrocardiography (ECG) er grunnleggende parametere for hjerte fysiologi og medisin. Eksperimentelle dyr modeller har vært mye brukt i biomedisinsk forskning for ulike hjerte-sykdommer som Hypertensiv hjertesvikt1 og prosedyrer for EKG-opptak og BP måling kan utføres i eksperimentell rotter.
Det finnes tre metoder for BP måling i rotter: intra arteriell cannulation (invasiv)2, hale mansjett plethysmography (noninvasive)3og radiotelemetri (invasiv). Påliteligheten av BP måling av halen mansjett plethysmography kan påvirkes av dyr behandling under innspillingen. For eksempel undervurderer hale mansjetten kjernen BP endringene som oppstår samtidig under tilbakeholdenhet og måling faser4. Radiotelemetri regnes som den beste teknikken for "gold standard" for overvåking BP og hjertefrekvens i våken og fritt flytte dyr5. Men siden radio telemetri maskinvare og programvare er kostbare, er intra arteriell cannulation også mye brukt som et økonomisk alternativ.
Intra arteriell cannulation krever betydelig Mikrokirurgiske dyktighet, men gir den virkelige bølgeformene arteriell press. BP kan registreres gjennom en saltholdig-fylt kateter inn i radiell, femur, eller brachialis arterien. Denne metoden for direkte invasiv BP måling krever pre kirurgisk dyr forberedelse, anestesi, immobilisering av forsøksdyr, kirurgiske ferdigheter i vev disseksjon og arteriell cannulation og riktig kalibrering før anskaffe måling .
Gnager overflaten ECG ligner menneskelige ECG. Rotte ECG har sekvenser av P bølger, QRS komplekser, T bølger og QT intervaller6. P bølgehøyde, PR intervall, QRS-komplekset og T bølger gjenspeiler atrial depolarization, impuls ledning fra den atrial AV node, ventrikulær depolarization og repolarisasjon, henholdsvis. QT-intervallet er definert som initiering av Q bølgen perioden til slutten-punktet av T wave der den returnerer til iso-elektrisk opprinnelig plan1.
EKG angir cardiac systolen og diastolen faser. Derfor korrelerer samtidig opptak av overflaten EKG med invasiv BP målingen. Ved å bruke en kombinasjon av metoder, er det mulig å belyse patofysiologiske endringer i en sykdom modell eller farmakologiske effekter av et stoff eller behandling i cardiovascular medisin.
En spontan Hypertensiv rotten (SHR) belastning hadde fått tak i inbreeding Wistar rotter høy BP i Japan. BP stiger fra 5 til 10 ukens av alderen og blir stasjonære fra 30 til 35 uker av alder7. Wistar-Kyoto rotter (WKY) har systolisk BP om 130 mmHg7 og brukes ofte som normo-tensive. Vi brukte SHR og WKY til å vise resultatet av intraarterial cannulation BP og EKG-opptak.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle dyreforsøkene beskrevet ble godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk komiteen av Kaohsiung Medical University.
1. dyr omsorg
- For å unngå vanskelig cannulation på grunn av liten arteriell størrelse, bruk rotter med kroppsvekt over 200 g.
- Fjern chow fra buret og rask rotter over natten.
- Tilby vann annonsen libidum med mindre det er en spesiell eksperimentell design.
2. eksperimentelle forberedelse
- Få følgende materialer: tang med tenner (figur 1A), kirurgisk saks (figur 1B), tang med fine tips (figur 1 c, 1 D), tang med vinklet tips (figur 1E), bulldog vaskulær klemme (figur 1F ), silke streng ca 20 cm i lengde (figur 1G), micro saks (figur 1 H), intra arteriell kanyle, et sterilt polyetylen rør med en indre diameter på 0,5 mm og en ytre diameter på 0,9 mm, 25-30 cm i lengde, koblet til en 26 G x 1/2 '' nål (figur 1I), to treveis stopcocks (figur 1J) for å koble den intra arteriell kanyle og press svinger (figur 1 K) og 1 mL sprøyter fylt med heparinized saltvann (100 IU/mL).
-
Dyr forberedelse
- Bedøve rotta ved inhalasjon av isoflurane (plassere rotter i en 25 cm x 25 cm x 14 cm induksjon kammer mettet med 4% isoflurane, etterfulgt av nosecone bruk med 3% isoflurane).
Merk: Hvis dyret ikke er tilstrekkelig anesthetized, slå opp inntakets isoflurane. - Test den smerte-refleks ved klemming tærne.
- Sett rotta i supine posisjon på en pre-cut Styrofoam styret (eller tykk kartong). Løse fire bena med gummistrikk til nakkens kroppen (figur 2A).
Merk: For å unngå potensielle støy under EKG-opptak, være plassering overflaten ikke elektrisk ledende.
- Bedøve rotta ved inhalasjon av isoflurane (plassere rotter i en 25 cm x 25 cm x 14 cm induksjon kammer mettet med 4% isoflurane, etterfulgt av nosecone bruk med 3% isoflurane).
- Forberede instrumenter for BP og EKG-opptak. Omfatte en analog input enhet å erverve signaler, en trykktransduceren med en kompatibel hub, tre bipolar p-tipped elektrokardiogram leder og en datamaskin med egnet programvare.
3. Trykk svinger kalibrering
- Før innvielsen av BP opptak, kalibrere med en standard kvikksølv sphygmomanometer (figur 1 L).
- Fjerne press mansjetten fra sphygmomanometer og koble den treveis stopcock på inflasjonen røret til trykktransduceren (figur 1 K) av oppkjøpet datasystemet.
- Skru luft-release ventilen klokken. Holde øynene på måleren og holde pumpe inflasjonen pære. Når måleren viser 100 mmHg, bytte treveis stopcock koble til trykktransduceren. Bruk 100 mmHg press for kalibreringen. Omregningsfaktoren for beregning av BP bestemmes automatisk.
- Slipp trykket Drei luft-release ventilen mot klokken til trykket av sphygmomanometer er tilbake til null.
- Gjenta trinn 3.2 med trykket av 200 mmHg.
- Koble trykktransduceren fra mercury-sphygmomanometer.
- Koble trykktransduceren til treveis stopcock av PE kateter (figur 1I).
4. mini kirurgi for Cannulation av arteria Femoral
-
Overflaten landemerke identifikasjon og eksisjon av huden (figur 2)
- Identifisere plasseringen til lysken Press (innrykk i krysset mellom magen og lår) (stiplet linje i figur 2A).
- Hugge det hele laget av huden på midten av lysken press. Pelsen kan være barbert eller fjernet fra snitt området med elektrisk avklipt eller en depilatory fløte før snitt.
- Løft huden og kutt den av med den kirurgisk saksen på en retning omtrent parallell til ipsilateral låret (figur 2B). Femoral nerve og fartøy er under eksponert subkutant vev (figur 2C).
-
Disseksjon av vev å avsløre arteria femoral
- Dissekere vev ved hjelp av pinsett med fine tips, lag på lag. Stopp dissection på nivå av femur. Kontroller at dissection ikke er skadet fartøyene under.
- Forsiktig bruk tang (figur 1 c eller 1 D) til å tømme bløtvev langs femur nerve og fartøy å få god observasjon. Nerve er fiber-lignende i tekstur. Venen er mørk lilla og arteria pulsatile (figur 3A).
- Bruk tang med vinklet tips (figur 1E) til Forleng eksponert femoral arterien og venen (figur 3B).
-
Cannulation av arteria femoral (Figur 3)
- Bruk tang til å skille femur venen fra arteria bruke en bulldog klemme på arteria femoral så cranially som mulig (Figur 3 c).
- Foreta stemmelikhet løs de to silke strengene, bare under bulldog klemmen og den andre på caudal terminalen til utsatte femoral arterien (figur 3D).
- Lage et lite hull over ventral side av arteria femoral (figur 3E) ved hjelp av mikro saks (figur 1 H).
- Stikk PE kateter gjennom det lille hullet og fremme kateter cranially.
Merk: Gjelde ikke torsjon mens fremme PE kateter. Torsjon styrken kan vri femoral arterien og føre luminal stenose. - Fjerne bulldog klemmen etter PE kateter er sikkert Avansert i femoral arterien lumen.
Merk: Holde øynene på PE kateter stund fjerner bulldog klemmen fra arteria femoral. Observasjon av en etterskuddsvis av blod i PE kateter forbundet med observasjon for puls bekrefter plasseringen i arterial lumen. - Trekk til øvre silke strengen sikrer posisjonen PE kateter.
Merk: Noen utilsiktet trekk eller forvridning av PE kateter kan medføre store blødninger. - Skru den nedre silke strengen for å hindre blødning fra arteria femoral caudal side.
-
Bekreftelse av suksessen til femoral arterien cannulation
- Bruk en 1 mL sprøyte for å injisere 0.1-0,2 mL heparinized saltoppløsning i arteria femoral. Motstanden på injeksjon må være trivielt. Hvis en tydelig motstand ved injeksjon er merket, kan du kontrollere hele cannulation igjen.
Merk: Kontroller at treveis stopcocks er riktig slått før noen negative trykket eller saltvann injeksjon i femoral arterien kanyle. På dette tidspunkt trenger noen injeksjon i trykktransduceren en ny kalibrering. - Kontroller om det er noen oser rundt i cannulation området. Hvis ikke, dekke kirurgiske området med en våt bomullsdott.
- Bruk en 1 mL sprøyte for å injisere 0.1-0,2 mL heparinized saltoppløsning i arteria femoral. Motstanden på injeksjon må være trivielt. Hvis en tydelig motstand ved injeksjon er merket, kan du kontrollere hele cannulation igjen.
5. opptak av blodtrykk
- Etter en glatt flush for PE kateter, fest PE kateter treveis stopcock på trykktransduceren (Figur 4).
- Kontroller at det er ingen luftbobler i cannulation systemet. Også sjekke tilkobling knutepunkter i treveis stopcock.
- Starte dataene oppkjøpet system med samplingsfrekvens på 1000 Hz til post trykkbølger BP. arteriell blir vist (figur 6).
- La hele oppsettet å stabilisere seg minst 3-5 minutter. I tilfeller med ustø signaler kan stabilisering tid bli utvidet til 15 min.
- Sjekk cannulation nettstedet regelmessig for å sikre at det er ingen blødning.
Merk: Når de skal innhente data fra en trykktransduceren, er det viktig å plassere svingeren nivået av dyrets hjertet.
6. overflaten EKG
- Sjekk de tre leder av bipolar EKG sørge for positivt, negative, og referanse platina elektrodene er intakt.
- Sett inn fører subcutaneously på venstre forben, rette forben og rett hindleg (figur 5).
- Fest elektrode hubene til en spesialbygd ECG forsterker med prøving hyppigheten av 1000 Hz og filter frekvens av 3-500 Hz. holde EKG fører stødig under opptak. Bevegelse av EKG-avledninger kan produsere ustø grunnlinjene og gjenstander.
7. dyr Euthanasia etter fullført av eksperimentet
- Etter fullført av BP og EKG-opptak, kan du stoppe oppkjøpet systemet. Fjerne elektrodene. Ligate arteria femoral ved å stramme opp tidligere plassert silke strengen rett etter uttak PE kateter.
- Sted rottene individuelt i synlig euthanasia kammeret koblet til komprimert karbondioksid (CO2) gassflasker. Forsegle de sikkert.
- Introdusere 100% CO2 med en fylle rate på ca 10% til 30% av kammeret volum per minutt.
- Holde øynene på rotte; mangel på åndedrett og falmet øyenfarge skal vises i 2−3 min.
Merk: Hvis opphør av respiratoriske bevegelsen ikke oppstår etter 3 min, bør systemet undersøkes for kammer fylle rate, CO2 forsyning eller lekkasjer. - Behold CO2 flyt til kammeret i 1 mer minutt etter åndedrett opphører.
- Fastslå hjerte- og respirasjonssykdommer arrestasjon og Merk faste og utvidede elevene for å bekrefte død.
Merk: Hvis rotta ikke er død, men i CO2 narkose, bruke en sekundær metode for euthanasia som bilaterale thoracotomy.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Vi kjøpte SHR og normotensive Wistar-Kyoto WKY rotter fra National Laboratory dyr Center (Taipei, Taiwan). Alle dyrene ble plassert i et temperaturkontrollert anlegg (20−22 ° C) med vann og standard chow på en 12 h lys/mørke syklus.
Vi brukte seks 47-uke-gamle rotter og de ble veid før BP og EKG-målingen. De representative tracings fra samtidig opptak av EKG-en og BP i SHR og WKY er vist i figur 6. Tabell 1 viser parametere for BP og hjertefrekvens. Statistisk (t) testene viste signifikant høyere systolisk BP og mener BP i SHR (124.5 mmHg ± 15.1 mmHg og 84.3 mmHg ± 5.0 mmHg) enn i WKY (90.0 mmHg ± 7.5 mmHg og 67.5 mmHg ± 5.0 mmHg) (P < 0,05) (tabell 1).
Parameterne for P-kurvens, PR intervaller, QRS bredde og QT intervaller kan måles fra ECG opptakene (tabell 2). Valg av høyre mot venstre femur cannulation i forhold til ECG elektrodeplassering (på høyre hind lem) påvirke ikke BP eller ECG signaler.
Figur 1: materialer. (A) tang med tennene, (B) kirurgisk saks, (C) tissue tang, (D) tissue tang med fine tips, (E) vinkel tips tang, (F) bulldog vaskulær klemme, (G) silke streng, (H) mikro Sakser, (jeg) polyetylen kateter forbinder med en 26 G x 1/2 '' nål og en treveis stopcock (J), (K) Trykk svinger forbinder med en tre-veis stopcock, (L) kvikksølv sphygmomanometer med en stopcock ( grønn pil) og inflasjon pære med en luft-lekkasje ventil (hvit pil). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 2: overflaten landemerket for femoral arterien disseksjon. (A) Supine rotte med venstre lysken press markert med en stiplet linje. (B) lyske huden plukket av Tang med tenner å bli avskåret av kirurgisk saks. (C) i kirurgiske sonen for femoral arterien disseksjon. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 3: vev disseksjon og cannulation av arteria femoral. (A) utsatt femur nerve (gul pil), femur vene (blå pil) og femoral arterie (rød pil) etter vev disseksjon. (B) Femoral vene og arterien etter nerve cut-off. (C) bruk av en bulldog vaskulær klemme over skallen terminalen av dissekert femoral subclavia. (D) Femoral arterie med en bulldog klemme og to silke strenger med løs bånd. (E) A lite hull på ventral side av femoral arterie, opprettet med mikro saks. (F) innsetting av polyetylen kateter inn arteria femoral. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 4: Femoral arterien cannulation for press opptak. Intra arteriell kanyle (markert med en stiplet grønn linje) er forbundet med to treveis stopcocks (blå piler) med sprøyter fylt med heparinized saltløsning. Trykktransduceren (rød pil) er knyttet til cannulation gjennom treveis stopcocks. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 5: hele eksperimentelle oppsettet for invasiv femur arteriell press og electrocardiography. Tre electrocardiographic leder (røde piler) med platina nål elektroder subcutaneously settes inn over bilaterale forgrunnen bein og høyre ben (gule piler). Utsatte høyre femoral subclavia med cannulation (blå pil). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 6: Representative tracings. Samtidig opptak av EKG-en og BP i WKY (venstre) og SHR (høyre) for ECG (øverst) og arteriell trykkbølger (nederst). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
| WKY | SHR | P-verdi | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Vekt, g | 407.7 ± 6.4 | 353.7 ± 10.3 | < 0,01 |
| Hjertefrekvens, / minutt | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15.7 | 0,18 |
| Systolisk BP, mmHg | 90.0 ± 7.5 | 124.5 ± 15.1 | < 0,05 |
| Diastolisk BP, mmHg | 56.3 ± 4.0 | 64.2 ± 0,6 | 0,08 |
| Mener BP, mmHg | 67.5 ± 5.0 | 84.3 ± 5.0 | < 0,05 |
| Pulstrykk, mmHg | 33,6 ± 4.4 | 60.4 ± 15.1 | 0,08 |
Tabell 1: blodtrykk målt ved invasiv femoral arterien cannulation. Dataene presenteres som gjennomsnittlig ± standardavvik; SHR = spontant Hypertensiv rotter; WKY = Wistar-Kyoto rotter; BP = blodtrykk.
| WKY | SHR | P-verdi | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Hjertefrekvens, / minutt | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15.7 | 0,18 |
| P bølge, MS | 38.7 ± 9.3 | 43.0 ± 4.6 | 0.52 |
| PR intervall, MS | 59.0 ± 7.8 | 61.3 ± 4.7 | 0.69 |
| QRS bredde, MS | 43.0 ± 11.3 | 50.0 ± 2.6 | 0,4 |
| QT-intervall, MS | 112.0 ± 12,8 | 116.7 ± 9.5 | 0,15 |
Tabell 2: målinger av electrocardiographic parametere. Dataene presenteres som gjennomsnittlig ± standardavvik; SHR = spontant Hypertensiv rotter; WKY = Wistar-Kyoto rotter.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Invasiv arteriell cannulation gir svært nøyaktig måling av BP. Det kan gjøres med en PE tube uten et dyrt kateter. Invasiv BP måling kan også utføres samtidig med et opptak av overflaten EKG.
Store læringskurven for denne metoden er eksperimentell ferdigheter må cannulate små blodkar. I erfarne hender, kan den vellykkede rate for femoral arterien cannulation nærmer 100%. Praksis er anbefalt før du utfører virkelige eksperimenter. Noen bemerkelsesverdig punkter under prosedyren: (1) gjør at dyr er helt anesthetized før du starter operasjonen; (2) bruk en bulldog klemme ved høy arteria utsatt før klippe arterieveggen for å hindre omfattende blødning; (3) foreta innsnitt bare over ventrale veggen av arterien og unngå skade dorsal muren. og (4) stødig plassering av cannulation systemet og electrocardiographic fører unngår bevegelse under innspillingen.
Mulige komplikasjoner med denne fremgangsmåten er blødning fra kirurgisk dissection. Blødning i en vellykket og glatt cannulation av en arterie er svært trivielle. Store blødning kan skyldes skader arteria femoral eller vene eller de store grenene under vev dissection. Blødning kan stoppes ved fokal komprimering med en klar bomullsdott. En annen årsak til stor blødning er forvridning av femur cannulation. I dette tilfellet er blodtap vanligvis store nok til å føre til en betydelig nedgang i systemisk BP. På dette punktet, kan BP opptak være avsluttet tidlig.
Telemeter implantasjon er også en etablert teknikk for invasiv BP opptak8. Fordelen av telemetri er muligheten til å få et Hi-Fi-kontinuerlig opptak over relativt lang tid i bevisst, fritt flytte dyr uten begrensninger av selvbeherskelse eller anestesi. Direkte BP opptak kan gjøres med vellykkede subkutan implantasjon av radiosendere og arteria carotis cannulation9. Men det kan være utfordrende for å implantatet i telemeter vellykket og maskinvare og programvare for radiotelemetri er kostbare.
Det er noen begrensninger for invasiv BP måling av femoral arterien cannulation. Først kan ikke det utføres i uhemmet og bevisst rotter. Andre kan BP i arteria femoral være høyere eller lavere enn BP i sentrale aorta. Tredje, arteriell cannulation kan være vanskelig for små gnagere, hvor femoral arterier kan være for liten til å sette inn PE røret. Fjerde, arteria cannulated bør være samskrevet etter fullfører BP opptak og ligation av femoral arterien vil resultere i hind ben ischemia. På grunn av denne begrensningen er dyrene vanligvis euthanized etter invasiv BP opptak.
Invasiv femoral arterien cannulation krever påbud og anesthetizing dyrene, som potensielt introduserer stress og påvirker både BP og electrocardiography data10. Stress kan lindres ved passende anestesi. Anestesi omfatter injeksjon eller innånding protokoller. I våre tidligere erfaringer, høy opphøyet BP i IP anesthetized WKY rotter antyder dyrene var fortsatt under stress eller i smerte. Normal BP i bevisst WKY rotter er 130/80 mmHg; Dette falt til under 100 mmHg i våre inhalasjon-anesthetized WKY rotter (tabell 1). Inhalasjon-anestesimiddel anestesi (isoflurane) har flere fordeler fremfor injiserbare agenter: rask utbruddet, minimal dyr håndtering, enkel kontroll, ingen kontrollerte stoffer og en rask utvinning. Ulempene er kostnaden for utstyret, faren for menneskelig eksponering i tilfelle med betydelig gasslekkasje i arbeidsmiljøet, og en betydelig undertrykkende effekt på BP. Isoflurane-indusert BP reduksjon bør vurderes når du velger den anestesi regime.
Ytterligere bruksområder er mulig for invasiv BP måling. Etter fluiddynamikk prinsippene for pulsen bølge hastighet (PMW –) overfører arteria stivere pulsen bølge raskere11. Når du bruker doble cannulations over arteria carotis og femoral arterien, kan den aorta PMW – bestemmes. Lengden på aorta puls forplantning kan måles som avstand mellom tips av kanyle på carotis (proksimale) og distale (femur) arterier. Den PMW – er forholdet mellom hvor aorta og forskjellen mellom tiden på minimal verdiene i den proksimale og distale arteriell pulser12.
Oppsettet beskrevet ovenfor for samtidige electrocardiography og intra arteriell BP opptak i eksperimentell rotter er en rimelig og svært tilgjengelig teknikk for fysiologiske eller farmakologiske studier undersøker patogene eller terapeutiske mekanismer i hjerte medisin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Forfatterne ikke avsløre.
Acknowledgments
Denne studien ble støttet av Taiwan departementet for vitenskap og teknologi gir mest 104-2314-B-037-080-MY3 og mest 107-2314-B-037-110 HCL og Taiwan National Health Research institutter gi NHRI-EX107-10724SC.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polyethylene tube | BECTON DICKINSON | 427401 | internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm |
| 26 G x 1/2"" needle | TERUMO | 160426D | |
| Adson Forceps | TOP Line | 12-540 | 12 cm (4.75") Long, Straight, 1 x 2 Teeth |
| Bulldog vascular clamp | Teleflex | 357581 | 8 mm |
| Computer | AUSUS | X453M | |
| Exernal analog signal recording device | iWorx | T5141538 | This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module. |
| Graefe Forceps | AESCULAP Surgical Instruments | BD312R | MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8 |
| Mecury sphygmomanometer | Spirit | CK-101 | |
| Pressure transducer | iWorx | IworxBP100 | |
| Semken Forceps | MEDE TECHNIK | 10-104 | 100 mm |
| Software | LabScribe3 | ||
| Surgical scissors | HEBU | 1714 | 14.5 cm long |
| Syringe (1 mL) | TERUMO | 160426D | |
| Three-way stopcocks | Cole-Parmer | EW-30600-23 | |
| Tipped forceps | World Precision Instruments | 504506 | 11 cm long, 0.1 x 0.06 mm Tips |
| Vannas Scissors | World Precision Instruments | 500086 | 8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades |
References
- Shiou, Y. -L., Huang, I. C., Lin, H. -T., Lee, H. -C. High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats. Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).
- Parasuraman, S., Raveendran, R. Measurement of invasive blood pressure in rats. Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).
- Fink, G. D. Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice? Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554 (2017).
- Wilde, E., et al. Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse. Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).
- Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).
- Kaese, S., Verheule, S. Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size. Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).
- Okamoto, K., Aoki, K. Development of a strain of spontaneously hypertensive rats. Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).
- Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).
- Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry. Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).
- Irvine, R. J., White, J., Chan, R. The influence of restraint on blood pressure in the rat. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).
- Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree. Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).
- Cosson, E., et al. Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats. The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).
