Summary
Aqui, descrevemos uma configuração para gravação simultânea do eletrocardiograma e pressão intra-arterial (BP) em ratos experimentais, que podem ser feitos com equipamento padrão em instalações de animais e podem ser aplicados a fisiológicos ou farmacológicos estudos para investigar os mecanismos de patogenicidade ou terapêuticos em medicina cardiovascular.
Abstract
Para estudos relacionados à fisiologia cardiovascular ou fisiopatologia, pressão arterial (PA) e eletrocardiograma são parâmetros básicos observacionais. Pesquisa com foco em modelos de doenças cardiovasculares, alvos terapêuticos cardiovasculares ou agentes farmacêuticos requer a avaliação de mudanças de ritmo arteriais sistêmicas da pressão e coração. Em situações onde os sistemas de telemetria de rádio não são disponíveis ou acessíveis, a técnica de cateterização da artéria femoral é uma maneira alternativa para obter medições de BP sistêmicas e gravações de forma de onda de pressão intra-arterial. Esta técnica é econômica e pode ser realizada com equipamento padrão em instalações de animais. No entanto, gravação de pressão arterial invasiva requer canulação de pequenas artérias, que pode ser uma habilidade cirúrgica desafiador. Aqui, apresentamos protocolos passo a passo para a artéria femoral, procedimentos de cateterização. Procedimentos mais importantes incluem a calibração do sistema de aquisição de dados, canulação de dissecção e artéria femoral de tecido e configuração do sistema para gravação de pressão arterial canulação. Procedimentos de gravação de eletrocardiograma de superfície também estão incluídos. Também apresentamos exemplos de gravações de BP de ratos normotensos e hipertensos. Este protocolo permite gravações diretas confiáveis de BP sistêmica com eletrocardiografia simultânea.
Introduction
Pressão arterial (PA) e eletrocardiograma (ECG) são parâmetros básicos de medicina e fisiologia cardiovascular. Modelos animais experimentais foram aplicados extensamente na pesquisa biomédica para várias doenças cardiovasculares, tais como de insuficiência cardíaca hipertensiva1 e procedimentos para a gravação do ECG e medição de BP pode ser realizada em ratos experimentais.
Existem três métodos para a medição de BP em ratos: canulação intra-arterial (invasiva)2, cauda manguito pletismografia (não invasiva)3e radio telemetria (invasiva). A confiabilidade da medição de BP por pletismografia de braçadeira de cauda pode ser afetada por animal manipulação durante a gravação. Por exemplo, a braçadeira de cauda subestima as alterações de BP de núcleo que ocorrem simultaneamente durante a fases de contenção e medição4. Radiotelemetria é considerada a melhor técnica de "padrão ouro" para monitorização BP e da frequência cardíaca em acordado e movimentando-se livremente animais5. No entanto, desde que o software e hardware de rádio telemetria são caros, canulação intra-arterial é também amplamente utilizada como uma alternativa econômica.
Intra-arterial canulação requer considerável habilidade microcirúrgica mas produz as formas de onda reais da pressão arterial. BP pode ser gravado através de um cateter de solução salina-cheia, inserido na artéria braquial ou radial, femoral. Este método de medição direta de BP invasora requer preparação pré-cirúrgica de animais, anestesia, imobilização dos animais de laboratório, experiência cirúrgica no tecido dissecção e canulação arterial e calibração adequada antes de adquirir a medição .
ECG de superfície roedor é semelhante ao ECG humano. Um rato ECG tem sequências de ondas P e complexos QRS, ondas T, QT intervalos6. A onda P, intervalo PR, complexo QRS e ondas T refletem despolarização atrial, condução do impulso da atrial para o nó AV, ventricular despolarização e repolarização, respectivamente. O intervalo QT é definido como o período compreendido entre o início da onda Q o ponto final da onda T onde ele retorna para o iso-elétrica de base1.
O ECG indica a sístole cardíaca e a diástole fases; Portanto, a gravação simultânea do ECG superfície correlaciona-se com a medição invasiva da BP. Usando uma combinação de metodologias, é possível elucidar alterações fisiopatológicas em um modelo de doença ou os efeitos farmacológicos de uma droga ou terapia em medicina cardiovascular.
Uma cepa de rato (SHR) hipertensos espontâneos tinha sido obtida por endogamia de ratos Wistar com BP alta no Japão. A BP sobe de 5 para 10 semanas de idade e se torna estacionária de 30 a 35 semanas de idade7. Ratos Wistar-Kyoto (WKY) tem cerca de 130 mmHg7 pressão sistólica e são comumente usados como normo-tensive controle. Nós costumávamos SHR e WKY para demonstrar o resultado da gravação de cateterização intra-arterial BP e ECG.
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Protocol
Todos os experimentos animais descritos foram aprovados pelo cuidado institucional do Animal e uso Comitê de Kaohsiung médica da Universidade.
1. animal Care
- Para evitar a canulação difícil devido ao pequeno tamanho arterial, use ratos com mais de 200 g de peso.
- Retire o chow da gaiola e ratos rápidos durante a noite.
- Oferece água ad libidum, a menos que haja um projeto especial e experimental.
2. experimental preparação
- Obter os seguintes materiais: fórceps com dentes (figura 1A), tesoura cirúrgica (figura 1B), pinças com pontas fina (Figura 1, 1D), pinças com pontas em ângulo (Figura 1E), Buldogue braçadeira vascular (Figura 1F ), corda de seda aproximadamente 20 cm de comprimento (Figura 1), micro tesouras (Figura 1-H), cânula intra-arterial, um tubo estéril de polietileno (PE) com um diâmetro interno de 0,5 mm e um diâmetro exterior de 0,9 mm, 25 a 30 cm de comprimento, ligada uma agulha 26 x 1/2 ' (Figura 1I), duas torneiras de três vias (Figura 1J) para conectar a cânula intra-arterial e as seringas de transdutor (Figura 1 K) e 1 mL de pressão preenchido com soro fisiológico heparinizado (100 UI/mL).
-
Preparação de animais
- Anestesia o rato por inalação de isoflurano (colocando os ratos em um 25 x 25 cm x 14 cm indução câmara saturada com isoflurano 4%, seguido pelo uso de cone de nariz com 3% de isoflurano).
Nota: Se o animal não é suficientemente anestesiado, aumente a taxa de fluxo de isoflurano. - Teste o reflexo de dor por comprimir os dedos dos pés.
- Coloque o rato na posição supina sobre uma placa de isopor pre-cut (ou papelão grosso). Fixe as quatro pernas com elásticos para imobilizar o corpo (Figura 2A).
Nota: Para evitar potencial ruído durante a gravação do ECG, a superfície de colocação não deve ser eletricamente condutiva.
- Anestesia o rato por inalação de isoflurano (colocando os ratos em um 25 x 25 cm x 14 cm indução câmara saturada com isoflurano 4%, seguido pelo uso de cone de nariz com 3% de isoflurano).
- Prepare os instrumentos para a gravação de BP e ECG. Incluem uma unidade de entrada analógica para adquirir um computador com software adequado, um transdutor de pressão com um hub compatível, três pistas de eletrocardiograma com ponta de agulha bipolar e sinais.
3. calibração de transdutores de pressão
- Antes do início da gravação de BP, calibre com um esfigmomanômetro de mercúrio padrão (Figura 1 L).
- Remova a braçadeira de pressão o esfigmomanômetro e ligue a torneira de três vias do tubo de inflação para o transdutor de pressão (Figura 1 K) do sistema de aquisição de dados.
- A válvula de escape de ar parafuso no sentido horário. Mantenha os olhos no medidor e o balão de insuflação de bombeamento. Quando o medidor mostra 100 mmHg, alterne a torneira de três vias para se conectar ao transdutor de pressão. Use a 100 mmHg de pressão para a calibração. O fator de conversão para cálculo BP será determinado automaticamente.
- Libera a pressão apertando a válvula de escape de ar no sentido anti-horário até que a pressão do esfigmomanômetro volta a zero.
- Repita a etapa 3.2 com pressão de 200 mmHg.
- Desanexe o transdutor de pressão do esfigmomanômetro de mercúrio.
- Conecte o transdutor de pressão para a torneira de três vias do cateter PE (Figura 1I).
4. mini cirurgia para canulação da artéria Femoral
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Identificação do Marco de superfície e excisão da pele (Figura 2)
- Identificar a localização da prega inguinal (recuo na junção entre o abdômen e coxa) (linha do tracejado na Figura 2A).
- Belisca a camada completa da pele no centro da prega inguinal. O pelo pode ser raspado ou removido do local da incisão com tosquiadeiras elétricas ou um creme depilatório antes da incisão.
- Levantar a pele e cortá-lo com a tesoura cirúrgica em uma orientação aproximadamente paralelo a coxa ipsilateral (Figura 2B). O nervo femoral e os vasos estão sob o tecido subcutâneo exposto (Figura 2).
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Dissecação do tecido para expor a artéria femoral
- Disse o tecido usando fórceps com dicas bem, camada por camada. Pare a dissecação ao nível dos vasos femorais. Certifique-se que a dissecação não está ferindo os vasos por baixo.
- Cuidadosamente use fórceps (Figura 1 ou 1D) para limpar o tecido mole ao longo do nervo femoral e navios para obter boa observação. O nervo é fibra-like na textura. A veia é roxo escuro e a artéria é pulsátil (Figura 3A).
- Use fórceps com pontas em ângulo (Figura 1E) para estender o comprimento exposto da artéria e veia femoral (Figura 3B).
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Canulação da artéria femoral (Figura 3)
- Use fórceps para separar a veia femoral da artéria e aplicar uma pinça bulldog na artéria femoral como cranialmente quanto possível (Figura 3).
- Fazer uma gravata solta das duas cordas de seda, um pouco abaixo da braçadeira de buldogue e o outro no terminal do caudal da artéria femoral exposta (Figura 3D).
- Faça um pequeno furo no lado ventral da artéria femoral (figura 3E) usando a tesoura micro (Figura 1 H).
- Introduza a ponta do cateter através do pequeno orifício PE e avançar o cateter cranialmente.
Nota: Não aplique torção enquanto avança o cateter de PE. A força de torção pode torcer a artéria femoral e resultar em estenose luminal. - Remova a braçadeira de buldogue após o cateter PE firmemente é avançado para o lúmen da artéria femoral.
Nota: Mantenha os olhos no cateter de PE enquanto retira a buldogue braçadeira da artéria femoral. A observação de um proc de sangue dentro do cateter PE associado a observação por pulso confirma sua colocação no lúmen arterial. - Aperte a sequência de caracteres de seda superior para fixar a posição do cateter PE.
Nota: Qualquer tração acidental ou deslocamento do cateter PE pode resultar em sangramento importante. - Aperte a sequência de caracteres de seda inferior para impedir o sangramento do lado caudal da artéria femoral.
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Confirmação do sucesso da cateterização da artéria femoral
- Use uma seringa de 1 mL para injetar 0,1-0,2 mL de soro fisiológico heparinizado na artéria femoral. A resistência na injeção deve ser trivial. Se qualquer resistência óbvia após injeção é reparada, verifique a canulação inteira novamente.
Nota: Certifique-se as torneiras de três vias são adequadamente antes de aplicar qualquer pressão negativa ou injeção salina dentro da cânula da artéria femoral. Neste ponto do tempo, qualquer injeção no transdutor de pressão vai precisar de uma re-calibração. - Verifique se há qualquer sangramento ao redor do local de canulação. Se não, cobrir o local cirúrgico com uma bola de algodão molhado.
- Use uma seringa de 1 mL para injetar 0,1-0,2 mL de soro fisiológico heparinizado na artéria femoral. A resistência na injeção deve ser trivial. Se qualquer resistência óbvia após injeção é reparada, verifique a canulação inteira novamente.
5. a gravação da pressão arterial
- Depois de um flush suave para o cateter de PE, anexe a torneira de três vias do cateter PE àquele sobre o transdutor de pressão (Figura 4).
- Certifique-se de que não há nenhuma bolha de ar no sistema de canulação. Verifique também as junções de conexão da torneira de três vias.
- Começar os dados do sistema de aquisição, com frequência de amostragem de 1.000 Hz para registro das ondas de Pressão Arterial de BP será demonstrado (Figura 6).
- Permitir que toda a configuração estabilizar pelo menos 3-5 min. Em casos com sinais instáveis, tempo de estabilização pode ser estendido para 15 min.
- Confira o site de canulação periodicamente para certificar-se de que não há nenhuma hemorragia.
Nota: Aquando da aquisição de dados de um transdutor de pressão, é importante colocar o transdutor ao nível do coração do animal.
6. ECG de superfície
- Verifique os três leva do ECG bipolar para certificar-se do positivo, negativo, e eletrodos de referência platina estão intactos.
- Inserir os contatos por via subcutânea na esquerda foreleg, foreleg certo e certo hindleg (Figura 5).
- Anexe os hubs de eletrodo para um Custom-Built amplificador de ECG com frequência de amostragem de frequência de 1.000 Hz e filtro de 3 – 500 Hz. ECG manter contatos estacionário durante a gravação. Movimento dos fios ECG pode produzir artefatos e linhas de base instáveis.
7. animal eutanásia após a conclusão do experimento
- Após a conclusão da BP e ECG gravação, pare o sistema de aquisição. Remova os eletrodos. Ligar a artéria femoral apertando a sequência de caracteres de seda previamente colocado logo após a retirada do cateter de PE.
- Lugar que os ratos individualmente na câmara de eutanásia visível conectados ao comprimido cilindros de gás dióxido de carbono (CO2). Sele o topo com segurança.
- Introduza 100% CO2 , com uma taxa de preenchimento de cerca de 10% a 30% do volume câmara por minuto.
- Mantenha os olhos no rato; falta de respiração e cor dos olhos desbotado deve aparecer dentro de min 2−3.
Nota: Se a cessação do movimento respiratório não ocorrer após 3 min, o sistema deve ser examinado para a taxa de preenchimento de câmara, abastecimento de CO2 ou vazamentos. - Maintain CO2 fluxo para a câmara por mais de 1 minuto após a respiração cessa.
- Determinar a prisão cardíaca e respiratória e observe as pupilas fixas e dilatadas para confirmar a morte.
Nota: Se o rato não está morto, mas em CO2 narcose, use um método secundário de eutanásia como a toracotomia bilateral.
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Representative Results
Nós compramos SHR e normotensos ratos Wistar-Kyoto WKY do centro nacional de Animal laboratório (Taipei, Taiwan). Todos os animais foram alojados em uma instalação de temperatura controlada (20−22 ° C) com acesso gratuito à água e chow padrão em um ciclo claro/escuro de 12 h.
Usamos seis semanas de idade 47 ratos e eles foram pesados antes da medição da tensão arterial e ECG. Os traçados representativos de gravação simultânea de ECG e pressão arterial em SHR e WKY são mostrados na Figura 6. A tabela 1 mostra os parâmetros de pressão e batimentos. Testes estatísticos (t) revelaram significativamente maior pressão sistólica e média BP em SHR (124,5 mmHg ± 15,1 mmHg e 84,3 mmHg ± 5,0 mmHg) do que em WKY (90,0 mmHg ± 7,5 mmHg e 67.5 mmHg ± 5,0 mmHg) (P < 0,05) (tabela 1).
Os parâmetros da onda P, intervalos PR, QRS largura e intervalos QT podem ser medidos a partir as gravações de ECG (tabela 2). Escolha de direita versus esquerda canulação femoral em relação à colocação de eletrodos de ECG (na extremidade direita do hind) não afetou os sinais ECG ou BP.
Figura 1: materiais. (A) fórceps com dentes, tesouras cirúrgicas (B), fórceps do tecido (C) (D) fórceps de tecido com dicas bem, pinças de ponta de ângulo (E), pinça vascular do buldogue (F), (G) corda de seda, micro (H) tesouras, (eu) polietileno cateter conectando com um 26 x 1/2 ' agulha e uma torneira de três vias (J), (K) pressão transdutor conectando com uma torneira de três vias, esfigmomanômetro de mercúrio (L) com uma torneira de passagem ( Arqueiro Verde) e insuflação com uma válvula de escape de ar (seta branca). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: superfície Marco para dissecação da artéria femoral. (A) rato em decúbito dorsal com prega inguinal esquerdo realçado com uma linha tracejada. (B) escolhida por fórceps com dentes para ser cortada por uma tesoura cirúrgica de pele da virilha. (C) a zona cirúrgica para dissecação da artéria femoral. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: tecido dissecção e canulação da artéria femoral. (A) expostos a artéria femoral (seta vermelha), veia femoral (seta azul) e o nervo femoral (seta amarela) após dissecção de tecidos. (B) veia Femoral e artéria após o corte do nervo. (C) aplicação de uma pinça vascular buldogue o terminal cranial da artéria femoral dissecada. (D) artéria Femoral com uma pinça de buldogue e duas cordas de seda com laços soltos. (E) A furo pequeno no lado ventral da artéria femoral, criado usando micro tesouras. (F) de inserção do cateter de polietileno na artéria femoral. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4: canulação da artéria Femoral para gravação pressão. A cânula intra-arterial (realçada por uma linha tracejada verde) é conectada com duas torneiras de três vias (setas azuis) com seringas preenchidas com soro fisiológico heparinizado. O transdutor de pressão (seta vermelha) está ligado a canulação através as torneiras de três vias. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5: A instalação toda experimental invasiva da pressão arterial femoral e eletrocardiografia. Três eletrocardiográficos leva (setas vermelhas) com eletrodos de agulha de platina por via subcutânea inseridos pela frente bilateral pernas e perna direita (setas amarelas). A exposto artéria femoral direita com canulação (seta azul). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 6: traçados representativos. Gravações simultâneas de ECG e BP em WKY (à esquerda) e SHR (à direita) para o ECG (em cima) e as ondas de pressão arterial (parte inferior). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
| WKY | SHR | Valor de P | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Peso, g | 407.7 ± 6,4 | 353.7 ± 10,3 | < 0,01 |
| Frequência cardíaca, / min | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15,7 | 0.18 |
| Pressão sistólica, mmHg | 90,0 ± 7,5 | 124.5 ± 15,1 | < 0.05 |
| Pressão arterial diastólica mmHg | 56.3 ± 4.0 | 64,2 ± 0,6 | 0.08 |
| Quer dizer BP, mmHg | 67.5 ± 5,0 | 84,3 ± 5,0 | < 0.05 |
| Pressão de pulso, mmHg | 33,6 ± 4,4 | 60,4 ± 15,1 | 0.08 |
Tabela 1: níveis de pressão arterial medida por invasiva artéria femoral canulação. Os dados são apresentados como média ± desvio-padrão; SHR = espontaneamente ratos hipertensos; WKY = ratos Wistar-Kyoto; BP = pressão arterial.
| WKY | SHR | Valor de P | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Frequência cardíaca, / min | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15,7 | 0.18 |
| Onda P, MS | 38,7 ± 9,3 | 43,0 ± 4,6 | 0,52 |
| Intervalo PR, MS | 59.0 ± 7,8 | 61,3 ± 4,7 | 0,69 |
| Largura do QRS, MS | 43,0 ± 11,3 | 50,0 ± 2,6 | 0.4 |
| Intervalo QT, MS | 112.0 ± 12,8 | 116,7 ± 9,5 | 0.15 |
Tabela 2: medições dos parâmetros eletrocardiográficos. Os dados são apresentados como média ± desvio-padrão; SHR = espontaneamente ratos hipertensos; WKY = ratos Wistar-Kyoto.
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Discussion
Canulação arterial invasiva permite uma medição altamente precisa de BP. Isso pode ser feito com um tubo de PE, sem a necessidade de um cateter de caro. Medição invasiva BP também pode ser executada simultaneamente com uma gravação do ECG de superfície.
A grande curva de aprendizado para este método é a habilidade experimental necessária para Canule pequenos vasos sanguíneos. Em mãos experientes, a taxa de sucesso para cateterização da artéria femoral pode aproximar de 100%. Recomenda-se a prática antes de realizar experimentos reais. Alguns pontos notáveis durante o procedimento: (1) Certifique se de que animais são completamente anestesiados antes de iniciar a cirurgia; (2) usar uma pinça bulldog na posição alta da artéria exposta antes de cortar a parede arterial, para prevenir hemorragias extensas; (3) fazer a incisão só por cima da parede ventral da artéria e não danificar a parede dorsal; e (4) colocação constante do sistema de canulação e eletrocardiográficas leva ajuda a evitar artefatos de movimento durante a gravação.
As complicações potenciais deste procedimento incluem hemorragia a dissecação cirúrgica. A hemorragia em uma bem sucedida e suave canulação de uma artéria é muito trivial. Grande hemorragia pode ser causada por danos acidentais, a artéria femoral, veia ou maiores ramos durante a dissecção do tecido. A hemorragia pode ser interrompida por compressão focal com uma bola de algodão limpo. Outra causa de hemorragia importante é luxação da canulação femoral. Neste caso, a perda de sangue é geralmente grande o suficiente para o resultado em uma queda significativa no BP sistêmica. Neste ponto, gravação de BP pode ser terminada mais cedo.
Implantação de telêmetro é também uma técnica estabelecida para invasiva BP gravação8. A vantagem de telemetria é a capacidade de obter uma gravação de alta fidelidade contínua durante relativamente longos períodos de tempo em consciente, movimentando-se livremente animais sem as limitações de retenção ou anestesia. Gravações de BP diretas podem ser feitas com sucesso implantação subcutânea de transmissores de rádio e de canulação da artéria carótida9. No entanto, isso pode ser um desafio para implantar o telêmetro com êxito e o hardware e software para radio telemetria são caros.
Existem algumas limitações para medição invasiva da BP por cateterização da artéria femoral. Primeiro, ele não pode ser executado em ratos desenfreados e conscientes. Em segundo lugar, a BP a artéria femoral pode ser maior ou menor do que a BP na aorta central. Canulação arterial, terceira pode ser difícil para os pequenos roedores, onde as artérias femoral pode ser pequenas demais para inserir o tubo de PE. Em quarto lugar, a artéria canulada deve ser ligada depois de completar a gravação de BP e ligadura da artéria femoral irá resultar em isquemia da pata traseira. Devido a essa limitação, os animais são geralmente sacrificados após gravação de BP invasiva.
Invasiva de artéria femoral canulação requer de restrição e anestesiar os animais, que potencialmente apresenta stress e influencia tanto a BP e a eletrocardiografia dados10. O stress podem ser aliviado por anestesia adequada. Anestesia inclui protocolos de injeção ou inalação. Em nossa experiência do passado, a alta pressão sanguínea elevada em I.P. anestesiados WKY ratos sugere que os animais eram ainda sob estresse ou dor. BP normal em conscientes ratos WKY é 130/80 mmHg; Isto caiu para abaixo de 100 mmHg em nossos ratos WKY anestesiados por inalação (tabela 1). Anestesia inalatória (isoflurano) tem várias vantagens sobre agentes injetáveis: início rápido, manipulação mínima do animal, facilidade de controle, sem drogas controladas e uma rápida recuperação. As desvantagens são o custo do equipamento, o risco de exposição humana em caso de vazamento de gás substancial no ambiente de trabalho, e supressora efeito significativo na redução induzida por isoflurano BP BP deve ser considerado ao escolher o regime de anestesia.
Outras aplicações são possíveis para medição invasiva BP. De acordo com os princípios de dinâmica de fluidos para velocidade de onda de pulso (VOP), a artéria mais aguerrida se propaga a onda de pulso mais rápido11. Ao aplicar as cânulas de duplas sobre a artéria carótida e a artéria femoral, o PWV aórtica pode ser determinado. O comprimento de propagação do pulso aórtica pode ser medido como a distância entre as pontas da cânula no (proximal) da carótida e artérias (femorais) distais. A VOP é a razão entre o comprimento da aorta e a diferença entre o tempo os valores mínimos de12pulsos arteriais proximal e distal.
A configuração acima descrito para eletrocardiografia simultânea e intra-arterial gravação BP em ratos experimentais é uma técnica barata e altamente acessível para estudos fisiológicos ou farmacológicos investigando patogénicas ou terapêutica mecanismos em medicina cardiovascular.
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Disclosures
Os autores não têm nada para divulgar.
Acknowledgments
Este estudo foi suportado por Taiwan Ministério da ciência e tecnologia concede mais 104-2314-B-037-080-MY3 e mais 107-2314-B-037-110 para HCL e institutos de pesquisa de saúde nacional Taiwan conceder INDH-EX107-10724SC.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polyethylene tube | BECTON DICKINSON | 427401 | internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm |
| 26 G x 1/2"" needle | TERUMO | 160426D | |
| Adson Forceps | TOP Line | 12-540 | 12 cm (4.75") Long, Straight, 1 x 2 Teeth |
| Bulldog vascular clamp | Teleflex | 357581 | 8 mm |
| Computer | AUSUS | X453M | |
| Exernal analog signal recording device | iWorx | T5141538 | This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module. |
| Graefe Forceps | AESCULAP Surgical Instruments | BD312R | MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8 |
| Mecury sphygmomanometer | Spirit | CK-101 | |
| Pressure transducer | iWorx | IworxBP100 | |
| Semken Forceps | MEDE TECHNIK | 10-104 | 100 mm |
| Software | LabScribe3 | ||
| Surgical scissors | HEBU | 1714 | 14.5 cm long |
| Syringe (1 mL) | TERUMO | 160426D | |
| Three-way stopcocks | Cole-Parmer | EW-30600-23 | |
| Tipped forceps | World Precision Instruments | 504506 | 11 cm long, 0.1 x 0.06 mm Tips |
| Vannas Scissors | World Precision Instruments | 500086 | 8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades |
References
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