Summary
Här, beskriver vi en setup för samtidig inspelning av EKG och intraarteriell blodtryck (BP) i experimentell tjaller, som kan göras med standardutrustning i djurens faciliteter och kan tillämpas på fysiologiska eller farmakologiska studier för att undersöka patogena eller terapeutiska mekanismer i kardiovaskulär medicin.
Abstract
För studier relaterade till kardiovaskulär fysiologi eller patofysiologi, är blodtryck (BP) och EKG observationsstudier grundegenskaper. Forskning med inriktning på hjärt-kärlsjukdom modeller, potentiella kardiovaskulära terapeutiska mål eller farmaceutiska ämnen kräver bedömning av systemiska arteriella trycket och hjärta rytm förändringar. I situationer där radio telemetri system inte är tillgängliga eller prisvärda är tekniken av femoralartären kanylering ett alternativt sätt att få intraarteriell trycket vågform inspelningar och systemisk BP mätningar. Denna teknik är ekonomiskt och kan utföras med standardutrustning i djurens faciliteter. Invasiva artärtryck inspelning kräver dock kanylering av små artärer, vilket kan vara en utmanande kirurgisk färdighet. Här presenterar vi stegvisa protokoll för lårbensartären kanylering förfaranden. Viktiga metoder innefattar kalibrering av de system för datainsamling, vävnad dissekering och femoralartären kanylering och inställning av arteriell kanylering systemet för trycket inspelning. Ytan EKG inspelningsprocedurer ingår också. Vi presenterar också exempel på BP inspelningar från normotensiva och hypertensiv råttor. Detta protokoll tillåter tillförlitlig direkt inspelningar av systemisk BP med samtidiga EKG.
Introduction
Blodtryck (BP) och EKG (EKG) är grundläggande parametrar för kardiovaskulär fysiologi och medicin. Experimentella djurmodeller har tillämpats allmänt i biomedicinsk forskning för olika hjärt-kärlsjukdomar såsom hypertensiv hjärtsvikt1 och förfaranden för EKG och BP mätning kan utföras i experimentell råttor.
Det finns tre metoder för BP mätning hos råttor: intraarteriell kanylering (invasiv)2, svans manschetten pletysmografi (noninvasiv)3och radio telemetri (invasiv). BP mätning av svans manschetten pletysmografi tillförlitlighet kan påverkas av djurhantering under inspelningen. Till exempel underskattar svans manschetten de core BP förändringar som uppträder samtidigt under den återhållsamhet och mätning faser4. Radio telemetri anses vara den bästa ”gold standard”-tekniken för övervakning BP och puls i vaken och fritt rörliga djur5. Men, eftersom radio telemetri maskinvara och programvara är kostsamma, intraarteriell kanylering används också allmänt som ett ekonomiskt alternativ.
Intraarteriell kanylering kräver avsevärd mikrokirurgisk skicklighet men ger den verkliga vågformer i artärtryck. BP kan registreras genom en saltlösning-kateter läggas i radial, femorala, eller armartären. Denna metod för direktmätning invasiva BP kräver före kirurgisk djur beredning, anestesi, immobilisering av försöksdjur, kirurgiska skicklighet i vävnad dissektion och arteriell kanylering och korrekt kalibrering innan mätningen .
Gnagare ytan EKG liknar mänskliga ECG. En råtta ECG har sekvenser av P vågor, QRS-komplex, T-vågor och QT intervall6. Den P-vågens, PR-intervall, QRS-komplexet och T-vågor återspeglar förmaksflimmer depolarisation, impuls överledning från den förmaksflimmer till knutan, ventrikulär depolarisation och repolarisering, respektive. QT-intervallet definieras som tiden från inledandet av den Q-våg till slutpunkten av T vågen där det återgår till den iso-elektriskt originalplan1.
EKG visar hjärt systole och diastole faser; Därför korrelerar samtidig inspelning av den ytan EKG med invasiv BP mätningen. Genom att använda en kombination av metoder, är det möjligt att klarlägga patofysiologiska förändringar i en sjukdom modell eller de farmakologiska effekterna av ett läkemedel eller terapi i kardiovaskulär medicin.
En spontan hypertensiv råtta (SHR) stam hade erhållits genom inavel Wistar råttor med höga BP i Japan. BP stiger från 5 till 10 veckors ålder och blir stillastående från 30 till 35 veckors ålder7. Wistar-Kyoto råttor (WKY) har systoliskt BP om 130 mmHg7 och används ofta som normo-omfattande kontroll. Vi använde SHR och WKY för att visa resultatet av intraarterial kanylering BP och EKG registrering.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alla de djurförsök som beskrivs godkändes av institutionella djur vård och användning kommittén av Kaohsiung medicinska universitet.
1. djurvård
- Undvik svåra kanylering på grund av små arteriell storlek, använda råttor med kroppsvikt över 200 g.
- Ta bort chow från buren och snabb råttor över natten.
- Erbjuda vatten ad libidum om det finns en speciell experimentell design.
2. experimentell förberedelse
- Hämta följande material: pincett med tänder (figur 1A), kirurgisk sax (figur 1B), pincett med fina tips (figur 1 c, 1 D), pincett med vinklade tips (figur 1E), bulldog vaskulär klämman (figur 1F ), silk sträng ca 20 cm i längd (figur 1 g), micro sax (figur 1 H), intraarteriell kanyl, en steril polyeten (PE) rör med en inre diameter av 0,5 mm och en ytterdiameter av 0,9 mm, 25 – 30 cm i längd, ansluten till en 26 G x 1/2 '' nål (figur 1I), två tre-vägs Avstängningskranar (figur 1J) för att ansluta intraarteriell kanylen och tryck givare (figur 1 K) och 1 mL sprutor fyllda med hepariniserad saltlösning (100 IE/mL).
-
Djur förberedelse
- Söva råtta vid inandning av isofluran (placera råttorna i en 25 x 25 cm x 14 cm induktion kammare mättad med 4% isofluran, följt av noskon användning med 3% isofluran).
Obs: Om djuret inte är tillräckligt sövd, Vrid upp flödet klassar av isofluran. - Testa den smärta reflexen genom att nypa tårna.
- Placera råtta i ryggläge en färdigskurna frigolit ombord (eller tjock kartong). Fixa fyra benen med gummiband för att immobilisera kroppen (figur 2A).
Obs: För att undvika potentiella buller under EKG, får placering ytan inte vara elektriskt ledande.
- Söva råtta vid inandning av isofluran (placera råttorna i en 25 x 25 cm x 14 cm induktion kammare mättad med 4% isofluran, följt av noskon användning med 3% isofluran).
- Utarbeta instrument för BP och EKG registrering. Inkludera en analog ingång enhet att förvärva signaler, en tryckgivare med en kompatibel hubb, tre bipolära nål spets ELECTROCARDIOGRAMEN leads och en dator med lämplig programvara.
3. Tryck givare kalibrering
- Före initiering av BP inspelning, kalibrera med en standard kvicksilver blodtrycksmätare (figur 1 L).
- Ta bort trycket manschetten från att blodtrycksmätare och Anslut trevägs Avstängningskranen på inflationen röret till tryckgivaren (figur 1 K) av datainsamlingssystemet.
- Skruva luft-release ventilen medurs. Håll ögonen på mätaren och hålla pumpa inflationen glödlampan. När mätaren visar 100 mmHg, växla trevägs Avstängningskranen ansluta till tryckgivaren. Använd 100 mmHg tryck för kalibrering. Konverteringsfaktorn för beräkning av BP avgörs automatiskt.
- Släpp trycket genom att skruva luft-release ventilen moturs tills trycket av blodtrycksmätare är tillbaka till noll.
- Upprepa steg 3,2 med tryck på 200 mmHg.
- Lossa tryckgivaren från det kvicksilver blodtrycksmätare.
- Anslut tryckgivaren till trevägs Avstängningskranen av PE katetern (figur 1I).
4. Mini kirurgi för kanylering av femoralartären
-
Yta landmark identifiering och excision av hud (figur 2)
- Identifiera platsen för inguinal veck (indrag i korsningen mellan buken och låret) (streckad linje i figur 2A).
- Nyp ihop det hela lagret av huden i mitten av inguinal veck. Pälsen kan vara Rakad eller bort från webbplatsen snitt med elektriska hårklippningsmaskiner eller en hårborttagningsprodukter kräm innan snittet.
- Lyfta huden och avskurna det med den kirurgiska saxen på en orientering ungefärligen parallellt till ipsilaterala låret (figur 2B). Den femoralisblockad och fartyg är under utsatt subkutan vävnad (figur 2 c).
-
Dissektion av vävnad att exponera femoralartären
- Dissekera vävnad med pincett med fina tips, lager för lager. Stoppa dissekering av femorala fartyg. Kontrollera att dissektion inte är skadar kärlen under.
- Försiktigt använda pincett (figur 1 c eller 1 D) att rensa ut den mjuka vävnaden längs femoralisblockad och fartyg att erhålla bra observation. Nerven är fiber-liknande konsistens. Venen är mörklila och artär är pulserande (figur 3A).
- Använda pincett med vinklade tips (figur 1E) för att förlänga den femoral artär och ven (figur 3B) utsatta.
-
Kanylering av femoralartären (figur 3)
- Använda pincett och separera femoral ven från artär som du kan tillämpa en bulldog klämma på femoralartären som cranially som möjligt (figur 3 c).
- Göra en lös slips av två siden strängarna, en strax under bulldog klämman och den andra vid stjärtfenan terminalen av exponerade femoralartären (figur 3D).
- Gör ett litet hål över ventrala sida av femoralartären (figur 3E) med micro sax (figur 1 H).
- Sätt spetsen på PE katetern genom det lilla hålet och fram katetern cranially.
Obs: Gäller inte vridning samtidigt avancera PE katetern. Kraften som vridning kan vrida femoralartären och resultera i luminala stenos. - Ta bort bulldog klämman efter PE katetern är säkert Avancerat in i lårbensartären lumen.
Obs: Håll ögonen på PE katetern medan ur femoralartären bulldog klämman. Observation av en kostnadsredovisning med bakåtavräkning av blod till PE katetern är associerad med observation för pulse bekräftar dess placering i arteriell lumen. - Dra åt den övre silk strängen för att säkra positionen för PE katetern.
Obs: Varje oavsiktlig pull eller luxerad PE katetern kan resultera i större blödning. - Dra åt lägre silk strängen för att förhindra blödning från den kaudala delen av femoralartären.
-
Bekräftelse av framgången av femoralartären kanylering
- Använd en 1 mL spruta för att injicera 0,1 – 0,2 mL hepariniserad koksaltlösning i femoralartären. Motståndet på injektion måste vara trivial. Om något uppenbart motstånd vid injektion är märkt, kolla den hela kanylering igen.
Obs: Kontrollera de tre-vägs Avstängningskranar slås på lämpligt sätt innan någon undertryck eller saltlösning injektion i lårbensartären kanylen. Vid denna tidpunkt behöver någon injektion i tryckgivaren en omkalibrering. - Kontrollera om det finns någon förångas runt webbplatsen kanylering. Om så inte är fallet, omfatta den kirurgiska platsen med en våt bomullstuss.
- Använd en 1 mL spruta för att injicera 0,1 – 0,2 mL hepariniserad koksaltlösning i femoralartären. Motståndet på injektion måste vara trivial. Om något uppenbart motstånd vid injektion är märkt, kolla den hela kanylering igen.
5. registrering av blodtryck
- Efter en smidig flush för PE katetern, fästa PE katetern trevägs Avstängningskranen på tryckgivaren (figur 4).
- Kontrollera att det inte finns några luftbubblor i kanylering systemet. Också kontrollera anslutning korsningar av trevägs Avstängningskranen.
- Starta data förvärv system med samplingsfrekvens på 1000 Hz till post BP. arteriella tryckvågorna kommer att påvisas (figur 6).
- Låt den helhet setup att stabilisera för minst 3-5 min. I fall med ostadig signaler kan stabilisering tid förlängas till 15 min.
- Kontrollera webbplatsen kanylering regelbundet för att kontrollera att det finns ingen blödning.
Obs: Vid förvärv av data från en tryckgivare, det är viktigt att placera givaren på nivå av djurets hjärta.
6. ytan EKG
- Kontrollera de tre leder av bipolär EKG se till positiva och negativa, och platina referenselektroder är intakta.
- Infoga leads subkutant på vänster framben, höger framben och höger hindleg (figur 5).
- Fäst elektroden Naven till en specialbyggd ECG-förstärkare med samplingsfrekvens på 1000 Hz och filter frekvensen av 3 – 500 Hz. hålla ECG leads steady under inspelning. Rörelse av ECG leads kan producera ostadig baslinjer och artefakter.
7. djur dödshjälp efter avslutad av experimentet
- Efter avslutad av BP och ECG inspelning, stoppa förvärv system. Ta bort elektroderna. Ligera femoralartären genom att strama upp tidigare placerade silk strängen direkt efter att återkalla PE katetern.
- Plats råttorna individuellt i synliga dödshjälp kammaren anslutna till komprimerad koldioxid (CO2) gasflaskor. Försegla toppen ordentligt.
- Introducera 100% CO2 med en fyllning av cirka 10% till 30% av volymen per minut.
- Håll ögonen på råtta; brist på andning och bleka ögonfärg bör visas inom 2−3 min.
Obs: Om upphörande av respiratoriska rörelser inte uppstår efter 3 min, bör systemet undersökas för kammare Fyll rate, CO2 leverans eller läckor. - Underhåll CO2 flöde till kammaren för 1 minut efter andning upphör.
- Kontrollera hjärt- och andningsfunktionen gripandet och notera fasta och dilaterade eleverna för att bekräfta död.
Obs: Om råttan inte är död men i CO2 narkos, använda en sekundär metod för dödshjälp såsom bilaterala torakotomi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Vi köpte SHR och normotensiva Wistar-Kyoto WKY råttor från National Laboratory Animal Center (Taipei, Taiwan). Alla djur har varit inhysta i en temperatur-kontrollerad anläggning (20−22 ° C) med fri tillgång till vatten och standard chow på en cykel med 12 h i ljus och mörker.
Vi använde sex 47 veckor gamla råttor och de vägdes innan BP och EKG mätning. De representativa tracings från samtidig inspelning av EKG och BP i SHR och WKY visas i figur 6. Tabell 1 visar parametrar för BP och hjärtfrekvens. Statistik (t) tester avslöjade betydligt högre systoliskt BP och genomsnittlig BP i SHR (124,5 mmHg ± 15,1 mmHg och 84,3 mmHg ± 5,0 mmHg) än i WKY (90,0 mmHg ± 7,5 mmHg och 67,5 mmHg ± 5,0 mmHg) (P < 0,05) (tabell 1).
Parametrarna för P-vågens, PR intervall, QRS bredd och QT-intervall kan mätas av ECG inspelningar (tabell 2). Val av höger kontra vänster femorala kanylering i förhållande till ECG elektrodplacering (på den högra bakbenen) påverkade inte BP eller ECG signalerna.
Figur 1: material. (A) pincett med tänder, (B) kirurgisk sax, (C) vävnad pincett, (D) vävnad pincett med fina tips, (E) vinkel tip pincett, (F) bulldog vaskulär klämma, (G) siden sträng (H) micro sax, (jag) polyeten katetern ansluta med ett 26 G x 1/2 '' nål och en tre-vägs Avstängningskranen (J), (K) Tryck givare ansluta med en tre-vägs Avstängningskranen, (L) kvicksilver blodtrycksmätare med en Avstängningskranen ( den gröna pilen) och inflationen glödlampa med en luftläckage ventil (vit pil). Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 2: Surface landmärke för lårbensartären dissektion. (A) liggande råtta med vänster inguinal veck markeras med en streckad linje. (B) ljumske hud plockas upp av pincett med tänder vara avskurna genom kirurgisk sax. (C) den kirurgiska zonen för lårbensartären dissektion. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 3: vävnad dissekering och kanylering av femoralartären. (A) exponeras femoralisblockad (gul pil), femoral ven (blå pil) och lårbensartären (röd pil) efter vävnad dissektion. (B) Femoral ven och artär efter nerv cut-off. (C) tillämpning av en bulldog vaskulär klämma över kraniala terminalen av dissekerade femoralartären. (D) lårbensartären med en bulldog klämma och två siden strängar med lös anknytning. (E) A litet hål på den ventrala sidan av lårbensartären, skapade med hjälp av micro sax. (F) införandet av polyeten katetern i femoralartären. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 4: lårbensartären kanylering för trycket inspelning. Intraarteriell kanylen (markerade med en streckad grön linje) är ansluten med två tre-vägs Avstängningskranar (blå pilar) med sprutor fyllda med hepariniserad saltlösning. Tryckgivaren (röd pil) är kopplad till kanylering genom de tre-vägs Avstängningskranar. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 5: hela experimentella inställningen för invasiv femorala artärtryck och EKG. Tre EKG leder (röda pilar) med platina visarelektroderna subkutant insatt över bilaterala fore Ben och höger ben (gula pilar). Exponerade rätt femoralartären med kanylering (blå pil). Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 6: representativa tracings. Samtidiga inspelningar av EKG och BP i WKY (vänster) och SHR (höger) för ECG (överst) och arteriell tryckvågorna (nederst). Klicka här för att se en större version av denna siffra.
| WKY | SHR | P-värde | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Vikt, g | 407.7 ± 6,4 | 353.7 ± 10,3 | < 0,01 |
| Puls, / min | 241,3 ± 15,0 | 262,0 ± 15,7 | 0,18 |
| Systoliskt BP, mmHg | 90.0 ± 7,5 | 124,5 ± 15,1 | < 0,05 |
| Diastoliskt BP, mmHg | 56,3 ± 4,0 | 64,2 ± 0,6 | 0,08 |
| Menar BP, mmHg | 67,5 ± 5,0 | 84,3 ± 5,0 | < 0,05 |
| Pulstrycket, mmHg | 33,6 ± 4,4 | 60,4 ± 15,1 | 0,08 |
Tabell 1: blodtrycknivåer mätt med invasiv lårbensartären kanylering. Data presenteras som medelvärde ± standardavvikelse; SHR = spontant hypertensiva råttor; WKY = Wistar-Kyoto råttor; BP = blodtryck.
| WKY | SHR | P-värde | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Puls, / min | 241,3 ± 15,0 | 262,0 ± 15,7 | 0,18 |
| P-vågens, MS | 38,7 ± 9,3 | 43,0 ± 4,6 | 0,52 |
| PR-intervall, MS | 59,0 ± 7,8 | 61,3 ± 4,7 | 0,69 |
| QRS bredd, MS | 43,0 ± 11,3 | 50,0 ± 2.6 | 0,4 |
| QT-intervallet, MS | 112,0 ± 12,8 | 116,7 ± 9,5 | 0,15 |
Tabell 2: mätning av EKG parametrar. Data presenteras som medelvärde ± standardavvikelse; SHR = spontant hypertensiva råttor; WKY = Wistar-Kyoto råttor.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Invasiva arteriell kanylering tillåter mycket exakt mätning av BP. Det kan göras med ett PE-rör utan att kräva en dyra katetern. Invasiva BP mätning kan även utföras samtidigt med en inspelning av den ytan EKG.
Den stora inlärningskurvan för denna metod är experimentell skicklighet krävs för att cannulate små blodkärl. I erfarna händer, kan andelen framgångsrika för lårbensartären kanylering närma sig 100%. Rekommenderas innan du utför den verkliga experiment. Några anmärkningsvärda punkter under förfarandet: (1) se till att djuren bedövas helt innan operationen; (2) Använd en bulldog klämma på den exponerade artären hög ställning innan du skär kärlväggen för att förhindra omfattande blödning; (3) gör i snitt endast över ventrala väggen i artären och undvika att skada dorsala väggen; och (4) kanylering system och EKG leder stadig placering hjälper till att undvika rörelse artefakter under inspelningen.
De potentiella komplikationerna med detta förfarande är blödning från kirurgisk dissektion. Blödning i en lyckad och smidig kanylering av en artär är mycket triviala. Större blödning kan orsakas av oavsiktliga skador på femoralartären eller ven eller de stora grenarna under vävnad dissektion. Blödning kan stoppas av fokal komprimering med en tydlig bomullstuss. En annan orsak till stor blödning är luxerad den femorala kanylering. I det här fallet är blodförlusten vanligtvis tillräckligt stor för att resultera i en betydande minskning av systemisk BP. Vid denna punkt, kan BP inspelningen avslutas tidigt.
Telemeter implantation är också en etablerad teknik för invasiv BP inspelning8. Fördelen med telemetri är möjligheten att få en HiFi-kontinuerlig inspelning under relativt lång tid i medveten, fritt rörliga djur utan begränsningar av återhållsamhet eller anestesi. Direkta BP inspelningar kan göras med framgångsrika subkutan implantation av radio-sändare och halspulsådern kanylering9. Men det kan vara svårt för att implantera telemeter framgångsrikt och maskinvara och programvara för radio telemetri är kostsamma.
Det finns vissa begränsningar för invasiv BP mätning av femoralartären kanylering. Först, det går inte att ohämmat och medveten råttor. Andra kan BP i femoralartären vara högre eller lägre än BP i centrala aorta. Tredje, arteriell kanylering kan vara svårt för små gnagare där femoral artärer kan vara för liten för att infoga PE röret. För det fjärde, den kanylerade artären bör vara sammanskrivna efter fullbordandet av BP inspelning och ligering av femoralartären kommer att resultera i bakben ischemi. På grund av denna begränsning, är djuren oftast avlivas efter invasiva BP inspelning.
Invasiva lårbensartären kanylering kräver besöksförbud och anesthetizing djuren, som potentiellt introducerar stress och påverkar både BP och EKG data10. Stress kan lindras genom lämplig anestesi. Anestesi innehåller protokollen injektion eller inhalation. I vår tidigare erfarenhet, hög förhöjda BP i I.P. sövda WKY råttor tyder på att djuren var fortfarande under stress eller smärta. Normal BP medvetna WKY råttor är 130/80 mmHg; Detta sjunkit till under 100 mmHg i vår inandning-sövd WKY råttor (tabell 1). Via inhalation anestesi (isofluran) har flera fördelar jämfört med injicerbara medel: snabb debut, minimal djurhantering, enkel kontroll, inga narkotikaklassade droger och en snabb återhämtning. Nackdelarna är kostnaden för utrustningen, risk för exponering i fall med betydande gasläcka i arbetslivet, och en betydande suppressiv effekt på BP. isofluran-inducerad BP minskning bör beaktas när du väljer den anestesi regim.
Ytterligare applikationer är möjligt för invasiv BP mätning. Enligt fluiddynamik principerna för pulse wave velocity (PWV) propagerar den styvare artären pulse wave snabbare11. När du tillämpar dubbla kanyleringar över halspulsådern och lårbensartären, kan den aorta PWV bestämmas. Längden på aorta puls förökning kan mätas som avståndet mellan tips av kanylen på halspulsådern (proximala) och distala (lårbenshals) artärer. PWV är förhållandet mellan aorta längd och skillnaden mellan minimala värdena av proximala och distala arteriell pulser12tiden.
Inställningar som ovan för samtidiga EKG och intraarteriell BP inspelning i experimentell råttor är en billig och mycket tillgänglig teknik för fysiologiska eller farmakologiska studier som undersöker patogena eller terapeutiska mekanismer i kardiovaskulär medicin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Författarna har något att avslöja.
Acknowledgments
Denna studie stöddes av Taiwan ministeriet för vetenskap och teknik ger mest 104-2314-B-037-080-MY3 och mest 107-2314-B-037-110 till HCL och Taiwan nationella hälsa forskningsinstitut bevilja NHRI-EX107-10724SC.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polyethylene tube | BECTON DICKINSON | 427401 | internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm |
| 26 G x 1/2"" needle | TERUMO | 160426D | |
| Adson Forceps | TOP Line | 12-540 | 12 cm (4.75") Long, Straight, 1 x 2 Teeth |
| Bulldog vascular clamp | Teleflex | 357581 | 8 mm |
| Computer | AUSUS | X453M | |
| Exernal analog signal recording device | iWorx | T5141538 | This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module. |
| Graefe Forceps | AESCULAP Surgical Instruments | BD312R | MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8 |
| Mecury sphygmomanometer | Spirit | CK-101 | |
| Pressure transducer | iWorx | IworxBP100 | |
| Semken Forceps | MEDE TECHNIK | 10-104 | 100 mm |
| Software | LabScribe3 | ||
| Surgical scissors | HEBU | 1714 | 14.5 cm long |
| Syringe (1 mL) | TERUMO | 160426D | |
| Three-way stopcocks | Cole-Parmer | EW-30600-23 | |
| Tipped forceps | World Precision Instruments | 504506 | 11 cm long, 0.1 x 0.06 mm Tips |
| Vannas Scissors | World Precision Instruments | 500086 | 8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades |
References
- Shiou, Y. -L., Huang, I. C., Lin, H. -T., Lee, H. -C. High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats. Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).
- Parasuraman, S., Raveendran, R. Measurement of invasive blood pressure in rats. Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).
- Fink, G. D. Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice? Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554 (2017).
- Wilde, E., et al. Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse. Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).
- Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).
- Kaese, S., Verheule, S. Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size. Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).
- Okamoto, K., Aoki, K. Development of a strain of spontaneously hypertensive rats. Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).
- Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).
- Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry. Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).
- Irvine, R. J., White, J., Chan, R. The influence of restraint on blood pressure in the rat. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).
- Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree. Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).
- Cosson, E., et al. Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats. The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).
