Summary
Her, beskriver vi en opsætning for simultan optagelse af Elektrokardiografi og intraarteriel blodtryk (BP) i eksperimentel rotter, som kan gøres med standardudstyr i animalsk faciliteter og kan anvendes til fysiologiske eller farmakologiske undersøgelser til at undersøge patogene eller terapeutiske mekanismer i hjerte-kar-medicin.
Abstract
For undersøgelser i forbindelse med hjerte-kar-fysiologi eller Patofysiologi, er blodtryk (BP) og Elektrokardiografi observationelle grundparametre. Forskning med fokus på hjerte-kar-sygdomsmodeller, potentielle kardiovaskulære terapeutiske mål eller apoteksagenter kræver vurdering af systemiske arterielle pres og hjerte rytme ændringer. I situationer hvor radio telemetry systemer ikke er tilgængelige eller økonomisk overkommelig, er femoralis arterie cannulation teknik en alternativ måde at opnå intraarteriel pres bølgeform optagelser og systemisk BP målinger. Denne teknik er økonomisk og kan udføres med standardudstyr i animalsk faciliteter. Invasive arterielt tryk optagelse kræver imidlertid cannulation i de små arterier, som kan være en udfordrende kirurgiske færdigheder. Vi præsenterer her, trinvise protokoller til femoralis arterie cannulation procedurer. Vigtigste procedurer omfatter kalibrering af dataoptegningssystem, væv dissektion og femorale arterie cannulation og opsætning af arteriel cannulation system for pres optagelse. Overflade Elektrokardiografi optagelse procedurer er også inkluderet. Vi præsenterer også eksempler på BP optagelser fra normotensive og hypertensive rotter. Denne protokol giver mulighed for pålidelige direkte optagelser af systemisk BP med samtidige Elektrokardiografi.
Introduction
Blodtryk (BP) og Elektrokardiografi (EKG) er grundlæggende parametre for hjerte-kar-fysiologi og medicin. Eksperimentelle dyremodeller har været udbredt i biomedicinsk forskning for forskellige hjerte-kar-sygdomme såsom hypertensive hjertesvigt1 og procedurer for ECG optagelse og BP måling kan udføres i eksperimentel rotter.
Der er tre metoder til BP måling i rotter: intraarteriel cannulation (invasiv)2, hale manchet plethysmography (noninvasive)3og radio telemetry (invasiv). BP måling af hale manchet plethysmography pålidelighed kan påvirkes af dyr håndtering under optagelsen. For eksempel, undervurderer hale manchetten core BP forandringer, der sker samtidigt i tilbageholdenhed og måling faser4. Radio telemetry anses for den bedste "gold standard" teknik til overvågning BP og puls i vågen og frit flytte dyr5. Da radio telemetry hardware og software er dyre, er intraarteriel cannulation imidlertid også meget udbredt som et økonomisk alternativ.
Intraarteriel cannulation kræver betydelige microsurgical dygtighed men udbytter virkelige kurveformer af arterielt tryk. BP kan registreres via en saltvand fyldt kateter indsat i radial, collum, eller brachialis arterie. Denne metode til direkte invasive BP måling kræver pre kirurgisk animalske forberedelse, anæstesi, immobilisering af forsøgsdyr, kirurgisk færdighed i væv dissektion og arteriel cannulation og korrekt kalibrering før erhverve måling .
Gnaver overflade ECG ligner menneskelige ECG. En rotte ECG har sekvenser af P-bølger, QRS komplekser, T bølger og QT intervallerne6. P bølge, PR-interval, QRS kompleks og T bølger afspejler atrieflimren depolarisering, impuls overledning fra den atriale til AV-knuden, ventrikulær depolarisering og repolarisering, henholdsvis. QT-intervallet er defineret som perioden fra indledningen af Q bølge til farveprøve af T bølge hvor det vender tilbage til iso-elektriske baseline1.
EKG viser hjertets systole og diastole faser; Derfor, den samtidige optagelse af overfladen EKG korrelerer med invasive BP måling. Ved hjælp af en kombination af metoder, er det muligt at belyse patofysiologiske forandringer i en sygdom model eller de farmakologiske virkninger af et stof eller terapi i hjerte-kar-medicin.
En spontan hypertensive rotter (SHR) stamme havde opnået ved indavl Wistar rotter med høj BP i Japan. BP stiger fra 5 til 10 ugens i alder og bliver stationære fra 30 til 35 ugers alder7. Wistar-Kyoto rotter (WKY) har systolisk BP om 130 mmHg7 og er almindeligt anvendt som normo-tensive kontrol. Vi brugte SHR og WKY til at vise resultatet af intraarterial cannulation BP og ECG optagelse.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle dyreforsøg beskrevet blev godkendt af institutionelle Animal Care og brug Udvalget af Kaohsiung medicinske universitet.
1. dyrs pleje
- For at undgå vanskelige cannulation på grund af små arteriel størrelse, skal du bruge rotter med kropsvægt over 200 g.
- Fjerne chow fra buret og hurtig rotter natten over.
- Tilbyde vand ad libidum, medmindre der er en særlig eksperimentel design.
2. eksperimentelt forberedelse
- Opnå følgende materialer: pincet med tænder (figur 1A), kirurgisk saks (figur 1B), pincet med fine tips (figur 1 c, 1 D), pincet med vinklet tips (figur 1E), bulldog vaskulære klemme (figur 1F ), silke snor ca 20 cm i længden (figur 1 g), micro saks (figur 1 H), intraarteriel kanyle, steril polyethylen (PE) rør med en indvendig diameter på 0,5 mm og en ydre diameter på 0,9 mm, 25 – 30 cm i længden, forbundet til 26 G x 1/2 '' nål (figur 1I), to trevejsspærreventiler (figur 1J) til at forbinde intraarteriel kanylen og tryk transducer (figur 1 K) og 1 mL sprøjter fyldt med heparinized saltvand (100 IE/mL).
-
Animalske forberedelse
- Bedøver rotter ved indånding af isofluran (placere rats i en 25 cm x 25 cm x 14 cm induktion kammer mættet med 4% isofluran, efterfulgt af nosecone brug med 3% isofluran).
Bemærk: Hvis dyret ikke er tilstrækkeligt bedøvede, slå op strømningshastigheden af isofluran. - Test den smerte refleks ved at klemme tæerne.
- Placere rotten i en liggende stilling på en præ-cut Styrofoam board (eller tykt pap). Fastgør de fire ben med elastikker til at immobilisere kroppen (figur 2A).
Bemærk: For at undgå potentielle støj under ECG optagelse, må placering overflade ikke elektrisk ledende.
- Bedøver rotter ved indånding af isofluran (placere rats i en 25 cm x 25 cm x 14 cm induktion kammer mættet med 4% isofluran, efterfulgt af nosecone brug med 3% isofluran).
- Udarbejde instrumenter til BP og ECG optagelse. Omfatte en analog input enhed for at erhverve signaler, en tryktransduceren med en kompatibel hub, tre bipolar nål-spids elektrokardiogram kundeemner og en computer med passende software.
3. Tryk Transducer kalibrering
- Før igangsætning af BP optagelse, kalibrere med en standard mercury blodtryksmaaler (figur 1 L).
- Fjerne tryk manchetten fra blodtryksmaaler og tilsluttes tryktransduceren (figur 1 K) af dataoptegningssystem tre-vejs stophane på inflationen tube.
- Skrue luft-release ventilen med uret. Holde øjnene på måleren og holde pumpning inflation pære. Når måleren viser 100 mmHg, skifte tre-vejs hanen til at oprette forbindelse til tryk transducer. Bruge 100 mmHg pres for kalibrering. Omregningsfaktor for beregning af BP bestemmes automatisk.
- Frigive trykket ved at skrue luft-frigivelse ventil mod uret, indtil trykket af blodtryksmaaler er tilbage til nul.
- Gentag trin 3.2 med tryk af 200 mmHg.
- Frigøre tryktransduceren fra kviksølv blodtryksmaaler.
- Tilslut tryktransduceren til tre-vejs stophane af PE kateter (figur 1I).
4. mini operation for Cannulation af den femorale arterie
-
Overflade landmark identifikation og excision af hud (figur 2)
- Identificere placeringen af lyskebrok krølle (indrykning ved krydset mellem mave og lår) (stiplet linje i figur 2A).
- Knib den fulde lag af huden på midten af den lyskelymfeknuder krølle. Skind kan barberet eller fjernet fra webstedet indsnit ved hjælp af elektrisk trimming eller en depilatory creme før indsnit.
- Løft huden og skære det med den kirurgiske saks på en orientering omtrent parallelt til ipsilaterale låret (figur 2B). Femoralis nerve og fartøjer, der er nedenunder det udsatte subkutane væv (figur 2 c).
-
Dissektion af væv til at eksponere arteria femoralis
- Dissekere vævet med pincet med fine tips, lag på lag. Stop dissektion på niveauet af collum fartøjer. Sørg for dissektion ikke er sårede fartøjer nedenunder.
- Forsigtigt bruge pincet (figur 1 c eller 1 D) at rydde ud i det bløde væv langs den femoralis nerve og fartøjer til at opnå god observation. Nerven er fiber-lignende i tekstur. Venen er mørk lilla og arterien er pulsatile (figur 3A).
- Bruge pincet med vinklet tips (figur 1E) for at udvide udsatte længden af den femorale arterie og vene (figur 3B).
-
Cannulation af den femorale arterie (figur 3)
- Bruge pincet til at adskille den femorale vene fra arterie og anvende en bulldog klemme på arteria femoralis som cranially som muligt (figur 3 c).
- Gøre en løs slips af to silke strengene, lige nedenfor bulldog klemme og den anden den caudale terminal i den udsatte femorale arterie (figur 3D).
- Lav et lille hul over den ventrale side af arteria femoralis (figur 3E) ved hjælp af mikro saks (figur 1 H).
- Indsæt spidsen af PE kateteret gennem det lille hul og rykke kateteret cranially.
Bemærk: Anvend ikke torsion samtidig fremme PE kateter. Torsion kraft kan vride arteria femoralis og resultere i luminale stenose. - Fjerne bulldog klemme efter PE kateteret er sikkert rykkede ind i femorale arterie lumen.
Bemærk: Holde øjnene på PE kateteret mens du fjerner bulldog klemme fra arteria femoralis. Observation af en arbejdscentrene af blod ind i PE kateteret knyttet til observation for puls bekræfter dets placering i det arterielle lumen. - Spænd den øverste silke streng for at sikre holdning af PE kateter.
Bemærk: Enhver utilsigtet pull eller dislokation af PE kateter kan resultere i større blødning. - Spænd den lavere silke snor for at undgå blødning fra den caudale side af arteria femoralis.
-
Bekræftelse af femorale arterie cannulation succes
- Bruge en 1 mL sprøjte til at injicere 0,1-0,2 mL af heparinized saltvand ind i arteria femoralis. Modstand på injektion skal være trivielt. Hvis nogen indlysende modstand ved injektion er bemærket, indskrive den hele cannulation igen.
Bemærk: Sørg for, at trevejsspærreventiler er korrekt skiftet før du anvender nogen negative pres eller saltvand indsprøjtning femorale arterie kanyle. På dette tidspunkt skal nogen injektion i tryktransduceren en ny kalibrering. - Kontrollere, om der er nogen oser rundt på cannulation site. Hvis ikke, dække operationsstedet med en våd vat.
- Bruge en 1 mL sprøjte til at injicere 0,1-0,2 mL af heparinized saltvand ind i arteria femoralis. Modstand på injektion skal være trivielt. Hvis nogen indlysende modstand ved injektion er bemærket, indskrive den hele cannulation igen.
5. registrering af blodtryk
- Efter en glat flush for PE kateter, tillægge PE kateter tre-vejs stophane på tryktransduceren (figur 4).
- Sørg for, at der er ingen luftbobler i cannulation systemet. Også kontrollere forbindelsen knudepunkter af tre-vejs stophane.
- Starte data erhvervelse system med sampling hyppighed af 1.000 Hz til post BP. arteriel pres bølger vil blive vist (figur 6).
- Tillad hele opsætningen til at stabilisere for mindst 3-5 min. I tilfælde med usikker signaler, kan stabilisering forlænges til 15 min.
- Kontroller cannulation webstedet med jævne mellemrum at sørge for der er ingen blødning.
Bemærk: Ved erhvervelse af data fra en tryktransduceren, det er vigtigt at placere transduceren i forbindelse med dyrets hjerte.
6. overfladen EKG
- Kontrol af de tre fører af bipolar EKG sørge for positive, negative, og platinum referenceelektroder er intakt.
- Indsæt fører subkutant på venstre forben, højre forben og højre hindleg (figur 5).
- Knytte elektrode hubs til en specialbygget ECG forstærker med sampling hyppighed af 1.000 Hz og filter hyppigheden af 3-500 Hz. holde EKG fører steady under optagelsen. Bevægelse af ECG fører kan producere usikker basislinjer og artefakter.
7. animalske dødshjælp efter afslutningen af forsøget
- Efter fuldførelse af BP og ECG optagelse, stop erhvervelse system. Fjerne elektroderne. Ligate arteria femoralis ved at stramme op på tidligere indsatte silke snor lige efter tilbagetrækning PE kateter.
- Sted rotter individuelt i salen, synlige eutanasi tilsluttet komprimeret kuldioxid (CO2) gasflasker. Forsegle toppen sikkert.
- Indføre 100% CO2 med en fyld af omkring 10% til 30% af salen volumen pr. minut.
- Hold dine øjne på rotten; manglende respiration, og falmet øjenfarve skal vises i 2−3 min.
Bemærk: Hvis betalingsstandsning respiratorisk bevægelse ikke opstår efter 3 min, bør systemet undersøges for kammer ordreudførelsesgrad, CO2 levering eller utætheder. - Bevar CO2 flow til afdeling for 1 minut efter respiration ophører.
- Fastslå hjerte og respiratory anholdelse og Bemærk fast og forstørrede elever for at bekræfte død.
Bemærk: Hvis rotten ikke er død, men i CO2 narkose, bruge en sekundær eutanasi som bilaterale torakotomi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Vi har købt SHR og normotensive Wistar-Kyoto WKY rotter fra National Laboratory Animal Center (Taipei, Taiwan). Alle dyr har været opstaldet i et temperatur-kontrollerede anlæg (20−22 ° C) med fri adgang til vand og standard chow på en 12-timers lys/mørke cyklus.
Vi brugte seks 47 uger gamle rotter og de blev vejet før måling af BP og ECG. De repræsentative tracings fra simultan optagelse af EKG og BP i SHR og WKY er vist i figur 6. Tabel 1 viser parametre for BP og puls. Statistiske (t) test afslørede betydeligt højere systolisk BP og gennemsnitlige BP i SHR (124.5 mmHg ± 15.1 mmHg og 84.3 mmHg ± 5,0 mmHg) end i WKY (90.0 mmHg ± 7,5 mmHg og 67,5 mmHg ± 5,0 mmHg) (Pedersen < 0,05) (tabel 1).
Parametrene for P bølge, PR intervaller, QRS bredden og QT intervallerne kan måles fra ECG optagelser (tabel 2). Valg af højre vs venstre femur cannulation i forhold til ECG elektrode placering (på den højre bagben lemmer) påvirkede ikke BP eller ECG-signaler.
Figur 1: materialer. (A) pincet med tænder, (B) kirurgisk saks, (C) væv pincet, (D) væv pincet med fine tips, (E) vinkel spids pincet, (F) bulldog vaskulære klemme, (G) silke snor, (H) micro saks, (jeg) polyethylen kateter forbinder med en 26 G x 1/2 '' nål og en tre-vejs stophane (J), (K) Tryk transducer forbinder med en tre-vejs stophane, (L) kviksølv blodtryksmaaler med en stophane ( grøn pil) og inflation pære med en air-lækage ventil (hvid pil). Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 2: overflade vartegn for femorale arterie dissektion. (A) liggende rat med venstre lyskelymfeknuder krølle understreget med en stiplet linje. (B) lysken hud opfanget af pincet med tænder at blive afskåret ved kirurgisk saks. (C) den kirurgiske zone for femorale arterie dissektion. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 3: væv dissektion og cannulation af arteria femoralis. (A) udsat femoralis nerve (gul pil), collum vene (blå pil) og femorale arterie (rød pil) efter væv dissektion. (B) Femoral vene og arterie efter nerve cut-off. (C) anvendelse af en bulldog vaskulære klemme over den kranielle terminal af dissekerede femoralis arterie. (D) femorale arterie med en bulldog klemme og to silke strenge med løs bånd. (E) A lille hul på den ventrale side af femorale arterie, oprettet ved hjælp af mikro saks. (F) indsættelse af polyethylen kateter i arteria femoralis. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 4: femorale arterie cannulation for pres optagelse. Intraarteriel kanylen (fremhævet af en stiplet grøn linje) er forbundet med to trevejsspærreventiler (blå pile) med sprøjter fyldt med heparinized saltvand. Tryktransduceren (rød pil) er knyttet til cannulation gennem de trevejsspærreventiler. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 5: hele eksperimentelle opsætningen af invasive femoral arterielt tryk og Elektrokardiografi. Tre elektrokardiografiske fører (røde pile) med platin nål elektroder subkutant indsat over bilaterale forgrunden ben og højre ben (gule pile). Den udsatte højre femorale arterie med cannulation (blå pil). Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 6: repræsentative tracings. Samtidige optagelser af EKG og BP i WKY (venstre) og SHR (til højre) for EKG (øverst) og arteriel trykbølger (nederst). Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
| WKY | SHR | P-værdi | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Vægt, g | 407.7 ± 6.4 | 353.7 ± 10.3 | < 0,01 |
| Puls, /min | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15,7 | 0,18 |
| Systoliske BP, mmHg | 90.0 ± 7,5 | 124.5 ± 15.1 | < 0,05 |
| Diastolisk BP, mmHg | 56.3 ± 4.0 | 64,2 ± 0,6 | 0,08 |
| Mener BP, mmHg | 67,5 ± 5,0 | 84.3 ± 5,0 | < 0,05 |
| Puls pres, mmHg | 33,6 ± 4.4 | 60.4 ± 15.1 | 0,08 |
Tabel 1: blodtryk målt ved invasiv femorale arterie cannulation. Data præsenteres som gennemsnit ± standardafvigelse; SHR = spontant hypertensive rotter; WKY = Wistar-Kyoto rotter; BP = blodtryk.
| WKY | SHR | P-værdi | |
| (n = 3) | (n = 3) | ||
| Puls, /min | 241.3 ± 15,0 | 262.0 ± 15,7 | 0,18 |
| P bølge-, msek | 38,7 ± 9.3 | 43,0 ± 4,6 | 0,52 |
| PR-interval-, msek | 59.0 ± 7,8 | 61.3 ± 4,7 | 0,69 |
| QRS bredden, msek | 43,0 ± 11.3 | 50,0 ± 2.6 | 0,4 |
| QT-intervallet, msek | 112.0 ± 12,8 | 116.7 ± 9,5 | 0,15 |
Tabel 2: målinger af elektrokardiografiske parametre. Data præsenteres som gennemsnit ± standardafvigelse; SHR = spontant hypertensive rotter; WKY = Wistar-Kyoto rotter.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Invasive arteriel cannulation tillader meget nøjagtig måling af BP. Det kan gøres med en PE rør uden at kræve en dyrt kateter. Invasive BP måling kan også udføres samtidig med en optagelse af overfladen EKG.
Den største indlæringskurve for denne metode er den eksperimentelle færdighed skal kanyleres små blodkar. I erfarne hænder, kan den succesfulde sats for femorale arterie cannulation nærme sig 100%. Praksis anbefales før du udfører virkelige eksperimenter. Nogle bemærkelsesværdige punkter under proceduren: (1) Sørg for, at dyr er helt bedøvede før du starter operationen; (2) Brug en bulldog klemme på den udsatte arterie høj stilling før opskæring arterievæggen for at forhindre omfattende blødning; (3) gøre indsnit kun over den ventrale væggen af arterien og undgå at beskadige den dorsale væg; og (4) stabil placering af det cannulation system og elektrokardiografiske fører hjælper med at undgå motion artefakter under optagelsen.
De potentielle komplikationer med denne procedure omfatter blødning fra kirurgisk dissektion. Blødning i en vellykket og smidig cannulation af en arterie er meget trivielt. Større blødning kan være forårsaget af utilsigtet skade til femoralis arterie eller vene eller de store grene under væv dissektion. Blødning kan være stoppet af fokal kompression med en klar vat. En anden årsag til større blødning er dislokation af den femorale cannulation. I dette tilfælde er blodtab normalt stor nok til at resultere i en betydelig nedgang i systemisk BP. På dette tidspunkt, kan BP optagelse afsluttes tidligt.
Telemeter implantation er også en etableret teknik for invasive BP optagelse8. Fordelen ved telemetri er evnen til at opnå en high-fidelity kontinuerlig optagelse over relativt lange perioder i bevidst, frit flytte dyr uden begrænsninger af tilbageholdenhed eller anæstesi. Direkte BP optagelser kan gøres med vellykket subkutane implantation af radiosendere og halspulsåren cannulation9. Men det kan være en udfordring for at implantere telemeter held og hardware og software til radio telemetry er dyre.
Der er nogle begrænsninger for invasive BP måling af femorale arterie cannulation. Først, det kan ikke udføres i uhæmmet og bevidst rotter. Andet, BP i arteria femoralis kan være højere eller lavere end BP i centrale aorta. Tredje, arteriel cannulation kan være vanskeligt for små gnavere, hvor femoralis arterier kan være for lille til at indsætte PE rør. For det fjerde bør den kanylerede arterie forbundet efter endt BP optagelse og ligatur af femorale arterie vil resultere i bagben iskæmi. På grund af denne begrænsning, er dyrene normalt aflives efter invasive BP optagelse.
Invasive femorale arterie cannulation kræver fastholdende og bedøve dyr, som potentielt introducerer stress og påvirker både BP og Elektrokardiografi data10. Stress kan afhjælpes ved hensigtsmæssige anæstesi. Anæstesi omfatter injektion eller indånding protokoller. I vores tidligere erfaringer, højt ophøjet BP i I.P. bedøvede WKY rotter tyder på, at dyrene var stadig under stress eller i smerte. Normal BP i bevidst WKY rotter er 130/80 mmHg; det faldt til under 100 mmHg i vores indånding-bedøvede WKY rotter (tabel 1). Slimhindeirritation anæstesi (isofluran) har flere fordele frem for injicerbar agenter: hurtig indsættende, minimal animalske håndtering, lethed af kontrol, ingen kontrollerede stoffer, og en hurtig genopretning. Ulemperne er omkostningerne til udstyret, den potentielle fare for menneskers eksponering i tilfælde med betydelige gasudslip i arbejdsmiljøet, og en betydelig undertrykkende effekt på BP. isofluran-induceret BP reduktion bør overvejes, når du vælger den anæstesi regime.
Yderligere anvendelser er muligt for invasive BP måling. Overensstemmelse med fluid dynamics principperne for pulse wave hastighed (PWV) overfører den stivere arterie pulse wave hurtigere11. Når du anvender dobbelt cannulations over halspulsåren og femorale arterie, kan den aorta PWV bestemmes. Længden af aorta puls formering kan måles som afstanden mellem spidsen af kanylen i carotis (proksimalt) og distale (femur) arterier. PWV er forholdet mellem aorta længden og forskellen mellem tidspunktet, de minimale værdier af proksimale og distale arteriel pulser12.
Opsætningen beskrevet ovenfor for samtidige Elektrokardiografi og intraarteriel BP optagelse i eksperimentel rotter er en billig og meget tilgængelig teknik til fysiologiske eller farmakologiske undersøgelser ved at undersøge patogene eller terapeutisk mekanismer i hjerte-kar-medicin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Forfatterne har ikke noget at oplyse.
Acknowledgments
Denne undersøgelse blev støttet af Taiwan Ministeriet for videnskab og teknologi giver mest 104-2314-B-037-080-MY3 og mest 107-2314-B-037-110 HCL og Taiwan nationale sundhed forskningsinstitutter give NHRI-EX107-10724SC.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polyethylene tube | BECTON DICKINSON | 427401 | internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm |
| 26 G x 1/2"" needle | TERUMO | 160426D | |
| Adson Forceps | TOP Line | 12-540 | 12 cm (4.75") Long, Straight, 1 x 2 Teeth |
| Bulldog vascular clamp | Teleflex | 357581 | 8 mm |
| Computer | AUSUS | X453M | |
| Exernal analog signal recording device | iWorx | T5141538 | This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module. |
| Graefe Forceps | AESCULAP Surgical Instruments | BD312R | MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8 |
| Mecury sphygmomanometer | Spirit | CK-101 | |
| Pressure transducer | iWorx | IworxBP100 | |
| Semken Forceps | MEDE TECHNIK | 10-104 | 100 mm |
| Software | LabScribe3 | ||
| Surgical scissors | HEBU | 1714 | 14.5 cm long |
| Syringe (1 mL) | TERUMO | 160426D | |
| Three-way stopcocks | Cole-Parmer | EW-30600-23 | |
| Tipped forceps | World Precision Instruments | 504506 | 11 cm long, 0.1 x 0.06 mm Tips |
| Vannas Scissors | World Precision Instruments | 500086 | 8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades |
References
- Shiou, Y. -L., Huang, I. C., Lin, H. -T., Lee, H. -C. High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats. Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).
- Parasuraman, S., Raveendran, R. Measurement of invasive blood pressure in rats. Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).
- Fink, G. D. Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice? Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554 (2017).
- Wilde, E., et al. Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse. Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).
- Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).
- Kaese, S., Verheule, S. Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size. Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).
- Okamoto, K., Aoki, K. Development of a strain of spontaneously hypertensive rats. Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).
- Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).
- Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry. Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).
- Irvine, R. J., White, J., Chan, R. The influence of restraint on blood pressure in the rat. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).
- Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree. Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).
- Cosson, E., et al. Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats. The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).
