Summary

जन्म के पूर्व Isl मिलियन से ओकुलोमोटर, ट्रोक्लोर और स्पाइनल मोटर न्यूरॉन्स की अलगाव और संस्कृति: जीएफपी ट्रांसजेनिक चूहे

Published: November 12, 2019
doi:

Summary

यह काम प्राथमिक ओकुलोमोटर, ट्रोक्लोर और स्पाइनल मोटर न्यूरॉन्स की सजातीय कोशिका संस्कृतियों को उपज देने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करता है। इन संस्कृतियों का उपयोग नेत्र और रीढ़ की हड्डी के मोटर न्यूरॉन्स की रूपात्मक, सेलुलर, आणविक और इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल विशेषताओं के तुलनात्मक विश्लेषण के लिए किया जा सकता है।

Abstract

रीढ़ की हड्डी मोटर न्यूरॉन्स (एसएमएनएस) की तुलना में ओकुलोमोटर न्यूरॉन्स (CN3s) और ट्रोक्लोर न्यूरॉन्स (CN4s) अपक्षयी मोटर न्यूरॉन्स रोगों जैसे एमियोट्रोफिक लेटरल स्क्लेरोसिस (एएलएस) के लिए उल्लेखनीय प्रतिरोध प्रदर्शित करते हैं। प्राथमिक माउस CN3s, CN4s, और SMNs को अलग करने और संस्कृति करने की क्षमता इस चयनात्मक भेद्यता अंतर्निहित तंत्र का अध्ययन करने के लिए एक दृष्टिकोण प्रदान करेगी। आज तक, अधिकांश प्रोटोकॉल विषम कोशिका संस्कृतियों का उपयोग करते हैं, जो प्रयोगात्मक परिणामों की व्याख्या को चकित कर सकते हैं। मिश्रित-कोशिका आबादी से जुड़ी समस्याओं को कम करने के लिए, शुद्ध संस्कृतियां अपरिहार्य हैं। यहां, पहला प्रोटोकॉल विस्तार से वर्णन करता है कि भ्रूण दिवस ११.५ (E11.5) IslMN:GFP ट्रांसजेनिक माउस भ्रूण का उपयोग कर एक ही भ्रूण से एक ही भ्रूण से SMNs समकक्षों के साथ CN3s/CN4s को कुशलतापूर्वक शुद्ध और खेती करने के लिए । प्रोटोकॉल ऊतक विच्छेदन और विच्छेदन, FACS आधारित सेल अलगाव, और CN3/CN4 और SMN नाभिक से कोशिकाओं की विट्रो खेती पर विवरण प्रदान करता है । यह प्रोटोकॉल मौजूदा प्रोटोकॉल के लिए विट्रो CN3/CN4 संस्कृति प्रणाली में एक उपन्यास जोड़ता है और एक साथ तुलना के लिए एक शुद्ध प्रजातियों और उंर मिलान SMN संस्कृति प्रदान करता है । मोटर न्यूरॉन्स की रूपात्मक, सेलुलर, आणविक और इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल विशेषताओं पर ध्यान केंद्रित करने वाले विश्लेषण इस संस्कृति प्रणाली में व्यवहार्य हैं। यह प्रोटोकॉल मोटर न्यूरॉन विकास, चयनात्मक भेद्यता और रोग को परिभाषित करने वाले तंत्रों में अनुसंधान को सक्षम करेगा।

Introduction

प्राथमिक मोटर न्यूरॉन्स की संस्कृति एक शक्तिशाली उपकरण है जो न्यूरोनल विकास, कार्य और एक्सोजेनस तनावके अध्ययन को सक्षम बनाता है। मोटर न्यूरॉन संस्कृतियां न्यूरोडीजेनेरेटिव रोगों जैसे एमियोट्रोफिक लेटरल स्क्लेरोसिस (एएलएस)1,2के अध्ययन के लिए विशेष रूप से उपयोगी हैं, जिनकी रोग तंत्र को अधूरा समझा जाता है। दिलचस्प बात यह है कि एएलएस रोगियों और एएलएस मॉडल चूहों दोनों में स्पाइनल मोटर न्यूरॉन्स (एसएमएनएस) की महत्वपूर्ण कोशिका मृत्यु के बावजूद, ओकुलोमोटर न्यूरॉन्स (सीएन3एस) और ट्रोक्लोर न्यूरॉन्स (सीएन4) में सेल डेथ अपेक्षाकृत दुर्लभ1,3,4,5,7,7,8,9हैं। इसलिए, CN3s/CN4s और SMNs की शुद्ध संस्कृतियों के तुलनात्मक विश्लेषण सापेक्ष भेद्यता अंतर्निहित तंत्र के बारे में महत्वपूर्ण सुराग प्रदान कर सकता है । दुर्भाग्य से, इस तरह के विश्लेषण के लिए एक प्रमुख बाधा इन मोटर न्यूरॉन्स की शुद्ध संस्कृतियों को विकसित करने में असमर्थता रही है ।

पशु मॉडल ों से एसएमएनएस के शुद्धिकरण के लिए कई प्रोटोकॉल बताए गए हैं। इनमें से अधिकांश प्रोटोकॉल घनत्व ढाल केंद्रीकरण10,11,12 और/या p75एनटीआर-एंटीबॉडीआधारित सेल-छंटाई पैनिंग तकनीक13,14,15,16का उपयोग करते हैं । घनत्व ढाल केंद्रीकरण अन्य रीढ़ की हड्डी की कोशिकाओं के सापेक्ष एसएमएनएस के बड़े आकार का शोषण करता है, जबकि p75एनटीआर रीढ़ की हड्डी में एसएमएनएस द्वारा विशेष रूप से व्यक्त किया गया एक बाह्य प्रोटीन है। इनमें से एक या दोनों प्रोटोकॉल 11,12,14द्वारा लगभग 100% शुद्ध स्एम संस्कृतियों का उत्पादन किया गया है . हालांकि, ये प्रोटोकॉल CN3/CN4 संस्कृतियों को पैदा करने में सफल नहीं रहे हैं क्योंकि CN3s/CN4s p75NTRव्यक्त नहीं करते हैं, और अन्य विशिष्ट CN3/CN4 मार्कर की पहचान नहीं की गई है । वे भी SMNs से छोटे है और इसलिए, और अधिक आकार के आधार पर अलग करने के लिए मुश्किल है । इसके बजाय, CN3s या CN4s के इन विट्रो अध्ययन ों ने17,18,19,20,21,एक्सप्लांट17,22,23,24,25,26,और स्लाइस27,28 संस्कृतियों पर भरोसा किया है, जो विषम कोशिका प्रकारों से बने हैं, और कोई प्रोटोकॉल के लिए मौजूद नहीं है प्राथमिक CN3s या CN4s के अलगाव और संस्कृति।

यहां, एक प्रोटोकॉल एक ही भ्रूण दिन 11.5 (E11.5) IslMN:GFP ट्रांसजेनिक चूहों29 (चित्रा 1, चित्रा 2ए)से CN3s, CN4s, और SMNs की कल्पना, अलगाव, शुद्धिकरण और खेती के लिए वर्णित है। आईएसएलएमएन:जीएफपी विशेष रूप से मोटर न्यूरॉन्स को एक फर्राटेदार जीएफपी के साथ लेबल करता है जो कोशिका झिल्ली को स्थानीयता देता है। यह प्रोटोकॉल मोटर न्यूरॉन रोग में रोग तंत्र को स्पष्ट करने के लिए कई प्रकार के मोटर न्यूरॉन्स की प्रजातियों और आयु-मिलान तुलना को सक्षम बनाता है।

Protocol

प्रयोगशाला जानवरों की देखभाल और उपयोग के लिए और बोस्टन चिल्ड्रन अस्पताल की पशु देखभाल और उपयोग समिति के अनुमोदन के साथ NIH दिशा निर्देशों के अनुसार सभी प्रयोग किए गए थे । 1. विच्छेदन से पहले समय ?…

Representative Results

इस प्रोटोकॉल का उद्देश्य अत्यधिक शुद्ध और संस्कृति दोनों प्राथमिक CN3s/CN4s और SMNs दीर्घकालिक मोटर न्यूरॉन विकारों अंतर्निहित तंत्र के तुलनात्मक विश्लेषण सक्षम करने के लिए किया गया था (…

Discussion

ऐतिहासिक रूप से, CN3 और/या CN4 मोटर न्यूरॉन्स के इन विट्रो अध्ययन ों ने विषम संस्कृतियों जैसे असंतुष्ट17,18,19,20,21,एक्सप्लांट17,22,</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम SMN विच्छेदन तकनीकों में निर्देश के लिए ब्रिजित पेटमैन (बायोजेन, कैम्ब्रिज, एमए, यूएसए) का शुक्रिया अदा करते हैं; दाना फारबर कैंसर संस्थान फ्लो साइटोमेट्री सुविधा, हार्वर्ड मेडिकल स्कूल की इम्यूनोलॉजी डिवीजन फ्लो साइटोमेट्री सुविधा, जोस्लिन डायबिटीज सेंटर फ्लो साइटोमेट्री कोर, ब्रिघम और महिला अस्पताल फ्लो साइटोमेट्री कोर, और बोस्टन चिल्ड्रन हॉस्पिटल फ्लो साइटोमेट्री रिसर्च फैसिलिटी प्राइमरी मोटर न्यूरॉन्स के FACS अलगाव के लिए; ए ए Nugent, ए. पी. Tenney, एएस ली, ईएच गुयेन, M.F. गुलाब, अतिरिक्त Engle प्रयोगशाला के सदस्यों, और तकनीकी सहायता और विचारशील चर्चा के लिए परियोजना ALS कंसोर्टियम के सदस्यों । इस अध्ययन को प्रोजेक्ट एएलएस द्वारा समर्थित किया गया था। इसके अलावा, आरएफ जापान हार्ट फाउंडेशन/बायर Yakuhin अनुसंधान अनुदान विदेशों में और NIH प्रशिक्षण अनुदान आनुवंशिकी T32 GM007748 द्वारा वित्त पोषित किया गया था; जेजे को बोस्टन चिल्ड्रन अस्पताल के माध्यम से और विकासात्मक न्यूरोलॉजी प्रशिक्षण कार्यक्रम पोस्टडॉक्टोरल फैलोशिप (5T32NS007473-19) द्वारा नेत्र रोगों के आणविक ठिकानों (5T32EY007145-16) में NIH/NEI प्रशिक्षण कार्यक्रम द्वारा समर्थित किया गया था; M.C.W NEI (5K08EY027850) और बच्चों के अस्पताल नेत्र विज्ञान फाउंडेशन (संकाय डिस्कवरी पुरस्कार) द्वारा समर्थित था; और ईसीई एक हावर्ड ह्यूजेस मेडिकल इंस्टीट्यूट अन्वेषक है ।

Materials

Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) Thermo Fisher Scientific A-11001 1:400
Alexa Fluor 594-conjugated F(ab')2 goat anti-rabbit IgG (H+L) Thermo Fisher Scientific A-11072 1:400
B27 Supplement (50X), serum free Thermo Fisher Scientific 17504-044
BD FACSAria llu SORP Flow Cytometer BD Bioscience This has 4 laser system equipped with 405, 488, 594, and 640 nm lasers.
BD Falcon 70μm Nylon Cell Strainers CORNING 352350 For filtering the dissociating cells before FACS.
BD Falcon Round Bottom Test Tubes With Snap Cap CORNING 352054
BDNF Human ProSpec-Tany TechnoGene, Ltd. CYT-207
Cell Culture microplate, 96 well, PS, F-bottom (Chimney Well) Greiner Bio-One International 655090 We tried multiple 96-well dishes and this was the best one for culture and analyses after ICC
Circular Cover Glasses for microscopy Karl Hecht & Assistent 1001/14 We used this coverslip since the area was large (diamater: 14 mm).
CNTF Human ProSpec-Tany TechnoGene, Ltd. CYT-272
Cyclopiazonic acid from Penicillium cyclopium Sigma-Aldrich C1530 CPA. One of ER stressors.
4′,6-diamidino-2-phenylinodole (DAPI) Thermo Fisher Scientific D1306
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich D2650 DMSO
Dumont #5 Forceps Inox Tip Size .05 x .01 mm Biologie Tips Roboz Surgical Instrument RS-5015
Forskolin Thermo Fisher Scientific BP25205
GDNF Human ProSpec-Tany TechnoGene, Ltd. CYT-305
GlutaMAX supplement Thermo Fisher Scientific 35050-061
Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific 14175-095
Hibernate E BrainBits HE
Hibernate E low fluorescence BrainBits HELF Fluorescence which hinders observation of embryo's GFP expressions should be low.
Horse serum, heat inactivated, New Zealand origin Thermo Fisher Scientific 26050-070
IBMX Tocris Cookson 2845 Isobutylmethylxanthine
Laminin Thermo Fisher Scientific 23017-015
Leibovitz’s L15 medium Thermo Fisher Scientific 11415064
2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250
Micro Dissecting Scissors Roboz Surgical Instrument RS-5913
Micro Knife 4.75" 1.7 x 27 mm blade Roboz Surgical Instrument RS-6272
Moria Mini Perforated Spoon Fine Science Tools 10370-19
mouse monoclonal antibody to neuronal class III β-tubulin (TUBB3) BioLegend 801202 1:500, TUJ1
Nikon Perfect Focus Eclipse Ti live cell fluorescence microscope and Elements software Nikon Differential interference contrast images and immunocytochemistry images of the cell cultures were captured with these equipments
Nitric Acid 90%, Fuming (Certified ACS) Fisher Scientific A202-212 For rinsing coverslips
Olympus 1.7ml Microtubes, Clear Genesee Scientific 22-281 These are the tubes that we described "1.7 mL microcentrifuge tubes" in the context.
Papain Dissociation System Worthington Biochemical Corp LK003150 Papain solution and alubumin-ovomucoid inhibitor solution are prepared from this kit.
Penicillin-streptomycin (10,000 U/ml) Thermo Fisher Scientific 15140-122
Phosphate buffered saline (PBS) Thermo Fisher Scientific 10010-023
Poly D-lysin (PDL) MilliporeSigma A-003-E
rabbit monoclonal antibody to Islet1 Abcam ab109517 1:200
SMZ18 and SMZ1500 zoom stereomicroscopes with DS-Ri1 camera Nikon Dissection was performed and images of dissected embryos and tissues are captured under these fluorescence microscopes.
Sylgard 170 Black Silicone Encapsulant – A+B 0.9 Kg kit Dow Corning 1696157 We make dissection dishes using this kit.
TC treated Dishes, 100 x 20 mm Genesee Scientific 25-202 We make dissection dishes using this dish.
Thum Dressing Forceps 4.5" Serrated 2.2 mm Tip Width Roboz Surgical Instrument RS-8100
Transducer for LOGOQ e VET GE Healthcare L8-18i-RS For ultrasound on female mice
Veterinary ultrasound machine GE Healthcare LOGOQ e VET For ultrasound on female mice
Zeiss LSM 700 series laser scanning confocal microscope and Zen Software Carl Zeiss Confocal image of the embryo was captured with these equipments

References

  1. Kiernan, M. C., et al. Amyotrophic lateral sclerosis. Lancet. 377 (9769), 942-955 (2011).
  2. Wood-Allum, C., Shaw, P. J. Motor neurone disease: a practical update on diagnosis and management. Clinical Medicine (London, England). 10 (3), 252-258 (2010).
  3. Nijssen, J., ComLey, L. H., Hedlund, E. Motor neuron vulnerability and resistance in amyotrophic lateral sclerosis. Acta Neuropathologica. 133 (6), 863-885 (2017).
  4. Gizzi, M., DiRocco, A., Sivak, M., Cohen, B. Ocular motor function in motor neuron disease. Neurology. 42 (5), 1037-1046 (1992).
  5. Kanning, K. C., Kaplan, A., Henderson, C. E. Motor neuron diversity in development and disease. Annual Review of Neuroscience. 33, 409-440 (2010).
  6. Nimchinsky, E. A., et al. Differential vulnerability of oculomotor, facial, and hypoglossal nuclei in G86R superoxide dismutase transgenic mice. The Journal of Comparative Neurology. 416 (1), 112-125 (2000).
  7. Angenstein, F., et al. Age-dependent changes in MRI of motor brain stem nuclei in a mouse model of ALS. Neuroreport. 15 (14), 2271-2274 (2004).
  8. Niessen, H. G., et al. In vivo quantification of spinal and bulbar motor neuron degeneration in the G93A-SOD1 transgenic mouse model of ALS by T2 relaxation time and apparent diffusion coefficient. Experimental Neurology. 201 (2), 293-300 (2006).
  9. Spiller, K. J., et al. Selective Motor Neuron Resistance and Recovery in a New Inducible Mouse Model of TDP-43 Proteinopathy. The Journal of Neuroscience. 36 (29), 7707-7717 (2016).
  10. Graham, J. M. Isolation of a mouse motoneuron-enriched fraction from mouse spinal cord on a density barrier. Scientific World Journal. 2, 1544-1546 (2002).
  11. Gingras, M., Gagnon, V., Minotti, S., Durham, H. D., Berthod, F. Optimized protocols for isolation of primary motor neurons, astrocytes and microglia from embryonic mouse spinal cord. Journal of Neuroscience Methods. 163 (1), 111-118 (2007).
  12. Beaudet, M. J., et al. High yield extraction of pure spinal motor neurons, astrocytes and microglia from single embryo and adult mouse spinal cord. Scientific Reports. 5, 16763 (2015).
  13. Camu, W., Henderson, C. E. Purification of embryonic rat motoneurons by panning on a monoclonal antibody to the low-affinity NGF receptor. Journal of Neuroscience Methods. 44 (1), 59-70 (1992).
  14. Arce, V., et al. Cardiotrophin-1 requires LIFRbeta to promote survival of mouse motoneurons purified by a novel technique. Journal of Neuroscience Research. 55 (1), 119-126 (1999).
  15. Wiese, S., et al. Isolation and enrichment of embryonic mouse motoneurons from the lumbar spinal cord of individual mouse embryos. Nature Protocols. 5 (1), 31-38 (2010).
  16. Conrad, R., et al. Lectin-based isolation and culture of mouse embryonic motoneurons. Journal of Visualized Experiments. (55), (2011).
  17. Lerner, O., et al. Stromal cell-derived factor-1 and hepatocyte growth factor guide axon projections to the extraocular muscles. Developmental Neurobiology. 70 (8), 549-564 (2010).
  18. Ferrario, J. E., et al. Axon guidance in the developing ocular motor system and Duane retraction syndrome depends on Semaphorin signaling via alpha2-chimaerin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (36), 14669-14674 (2012).
  19. Clark, C., Austen, O., Poparic, I., Guthrie, S. α2-Chimaerin regulates a key axon guidance transition during development of the oculomotor projection. The Journal of Neuroscience. 33 (42), 16540-16551 (2013).
  20. Theofilopoulos, S., et al. Cholestenoic acids regulate motor neuron survival via liver X receptors. The Journal of Clinical Investigation. 124 (11), 4829-4842 (2014).
  21. Montague, K., Guthrie, S., Poparic, I. In Vivo and In Vitro Knockdown Approaches in the Avian Embryo as a Means to Study Semaphorin Signaling. Methods in Molecular Biology. 1493, 403-416 (2017).
  22. Porter, J. D., Hauser, K. F. Survival of extraocular muscle in long-term organotypic culture: differential influence of appropriate and inappropriate motoneurons. Developmental Biology. 160 (1), 39-50 (1993).
  23. Serafini, T., et al. Netrin-1 is required for commissural axon guidance in the developing vertebrate nervous system. Cell. 87 (6), 1001-1014 (1996).
  24. Varela-Echavarría, A., Tucker, A., Püschel, A. W., Guthrie, S. Motor axon subpopulations respond differentially to the chemorepellents netrin-1 and semaphorin D. Neuron. 18 (2), 193-207 (1997).
  25. Irving, C., Malhas, A., Guthrie, S., Mason, I. Establishing the trochlear motor axon trajectory: role of the isthmic organiser and Fgf8. Development. 129 (23), 5389-5398 (2002).
  26. Chen, J., Butowt, R., Rind, H. B., von Bartheld, C. S. GDNF increases the survival of developing oculomotor neurons through a target-derived mechanism. Molecular and Cellular Neurosciences. 24 (1), 41-56 (2003).
  27. Whitman, M. C., et al. Loss of CXCR4/CXCL12 Signaling Causes Oculomotor Nerve Misrouting and Development of Motor Trigeminal to Oculomotor Synkinesis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (12), 5201-5209 (2018).
  28. Whitman, M. C., Bell, J. L., Nguyen, E. H., Engle, E. C. Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth. Journal of Visualized Experiments. , e59911 (2019).
  29. Lewcock, J. W., Genoud, N., Lettieri, K., Pfaff, S. L. The ubiquitin ligase Phr1 regulates axon outgrowth through modulation of microtubule dynamics. Neuron. 56, 604-620 (2007).
  30. Bibel, M., Richter, J., Lacroix, E., Barde, Y. A. Generation of a defined and uniform population of CNS progenitors and neurons from mouse embryonic stem cells. Nature Protocols. 2 (5), 1034-1043 (2007).
  31. An, D., et al. Stem cell-derived cranial and spinal motor neurons reveal proteostatic differences between ALS resistant and sensitive motor neurons. eLife. 8, e44423 (2019).
  32. Huber, A. B., et al. Distinct roles for secreted semaphorin signaling in spinal motor axon guidance. Neuron. 48 (6), 949-964 (2005).
  33. Plachta, N., et al. Identification of a lectin causing the degeneration of neuronal processes using engineered embryonic stem cells. Nature Neuroscience. 10 (6), 712-719 (2007).
  34. Eide, L., McMurray, C. T. Culture of adult mouse neurons. BioTechniques. 38 (1), 99-104 (2005).
  35. Brewer, G. J., Torricelli, J. R. Isolation and culture of adult neurons and neurospheres. Nature Protocols. 2 (6), 1490-1498 (2007).
  36. Seibenhener, M. L., Wotten, M. W. Isolation and culture of hippocampal neurons from prenatal mice. Journal of Visualized Experiments. (65), (2012).
  37. Hanson, M. G., Shen, S., Wiemelt, A. P., McMorris, F. A., Barres, B. A. Cyclic AMP elevation is sufficient to promote the survival of spinal motor neurons in vitro. The Journal of Neuroscience. 18 (18), 7361-7371 (1998).
  38. Lamas, N. J., et al. Neurotrophic requirements of human motor neurons defined using amplified and purified stem cell-derived cultures. Plos One. 9 (10), (2014).
  39. Mazzoni, E. O., et al. Synergistic binding of transcription factors to cell-specific enhancers programs motor neuron identity. Nature Neuroscience. 16 (9), 1219-1227 (2013).

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Fujiki, R., Lee, J. Y., Jurgens, J. A., Whitman, M. C., Engle, E. C. Isolation and Culture of Oculomotor, Trochlear, and Spinal Motor Neurons from Prenatal Islmn:GFP Transgenic Mice. J. Vis. Exp. (153), e60440, doi:10.3791/60440 (2019).

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